小鼠肌肉中生化检验检测方案(生物显微镜)

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Echo Revolve 显微镜在骨骼肌挫伤修复研究中的应用解决方案 近日在《Stem Cells and Development》期刊杂志上发表题为《Bone MarrowStromal Cell-Derived Exosomes promote muscle healing following contusionthrough macrophage polarization》的文章。在这项研究中，使用梯度离心从 BMSC的上清液中分离和纯化外泌体。纳米粒子跟踪分析，透射电子显微镜和蛋白质印迹被用来鉴定外泌体。使用 ECHO 正倒置一体荧光显微镜对 HE 染色， Masson 染色和免疫荧光的肌肉样本进行成像。最后得到的结论： BMSC-Exos 通过改变巨噬细胞的极化状态抑制炎症反应，减轻了小鼠的肌肉挫伤损伤并促进了肌肉的愈合。 骨骼肌挫伤是运动医学和临床最常见的损伤之一。由于挫伤后局部纤维化形成，受伤的肌肉很容易再次受伤，骨骼肌纤维化被证明与损伤初期的过度炎症反应有关，而与炎症 浸润密切相关的巨噬细胞被发现在骨骼肌的愈合过程中起着至关重要的作用。如何调节巨噬细胞极化仍然是肌肉愈合的重要问题。 最近的研究表明，骨髓基质细胞源性外泌体 (BMSC-Exos) 可以影响炎症和组织恢复。因此，作者假设 BMSC-Exos 可以通过影响巨噬细胞极化来下调炎症反应，从而促进挫伤后骨骼肌的愈合。在这项研究中，作者从 BMSC 中分离了 BMSC-Exos， 在体内和体外测试了它们的功能，并研究了 BMSC-Exos 对巨噬细胞免疫调节和肌肉愈合影响的潜在机制。 通过粒度分析、透射电镜和Western Blot 方法鉴定外泌体，为了检查靶蛋白的表达和位置，在TA(胫前肌)切片上进行了免疫荧光染色。使用的一抗是抗 CD206， 抗α-SMA， 抗 MyoD 和抗 Pax7， DAPI 用于定位细胞核，通过荧光显微镜 (ECHORevolve， 美国)观察图像。 结果： 总体外观，相对重量，形态特征：挫伤损伤后3d， 挫伤组的 TA 肌肉比 BMSC-Exos组的肌肉血肿更大(图3A)。两组之间在第三天， TA肌肉的相对肌肉重量也显著不同，挫伤组的 TA肌肉较重(图3B)。 对于 HE染色，在阴性对照组中，肌肉纤维规则且密集地排列。但是，在挫伤组中，随着时间的流逝，肌肉纤维变得越来越分散，许多增殖的胶原纤维占据了肌肉纤维的空间，这些现象在 BMSC-Exos 组中得到了改善。 Masson 染色中，在挫伤组中观察到大量胶原纤维， 而 BMSC-Exos 治疗在所有时间点均显著减少了纤维化区域(图3C-D)。 ▲ 图3 此外，为了进一步检查纤维化状况，作者对平滑肌肌动蛋白α(α-SMA)进行了免疫荧光染色。形态学结果表明， BMSC-Exos 治疗显著降低了挫伤在不同时间点引起的高蛋白表达和α-SMA的广泛分布(图4)。巨噬细胞耗竭后， BMSC-Exos 的抗纤维化作用受到抑制，挫伤和 BMSC-Exos 治疗组在第14天均观察到大的纤维化区域和广泛分布的α-SMA 蛋白。 ▲图4：免疫荧光法检测7d，14d和28d三组在平滑肌肌动蛋白α(α-SMA)的相对表达和分布，包括标准对照组，挫伤组和BMSC-Exos组 (挫伤+ BMSC-Exos注射)。绿色信号表示c-SMA， 蓝色信号表示核。放大100倍。 为了确定卫星细胞的不同成肌状态，进行了 Pax7 和 MyoD 的共定位。形态上，从受伤后3天开始，总的 Pax7 +/MyoD +卫星细胞显著增加。显然， BMSC-Exos 治疗组的数量多于挫伤组和阴性对照组。在三个不同的组中，相对的 Myod 蛋白表达也呈现出类似的趋势(图5D)。综上所述， BMSC-Exos 注射液可在早期促进肌肉再生。 ▲图5：第3天采用免疫荧光法检测Pax7和Myod1的相对表达和分布。绿色、红色和蓝色信号分别代表Myod1、Pax7和细胞核。200×放大。箭头指向Pax7和Myod1阳性细胞。 结论： 研究表明局部使用 BMSC-Exos 可以减少挫伤后的纤维化组织，增强肌肉再生并改善骨骼肌的生物力学特性。BMSC-Exos 通过促进 M2 巨噬细胞极化，抑制了受伤肌肉的炎性微环境。作者的研究为 BMSC-Exos 在临床实践中可用于肌肉愈合提供了有力的支持。 Revolve 正倒置体体显微镜 Revolve 展现了其非凡的灵活性，可以轻松地实现正置和倒置显微镜转换，创新性地把正倒置显微镜合二为一，开启了显微镜 Hybrid 时代。 Discover revalve正倒置一体化研究级显微镜 The world’s first hybrid microscope √ 视网膜屏显示技术：比拟目镜人眼观察效果。 √ 全视野观察：更清晰，更方便。 √ 多通道荧光：多达4个EPI荧光通道，无须暗室，就可以轻松快速地完成多色荧光显微分析。 √ 自动化操作：通过 iPad Pro 点触操控相机及荧光通道之间的切换，实现了完全自动化操作。 App 应用软件：基于 IOS 的 Echo App 是与 Apple 团队合作研发的专业显微镜软件。 √ 精湛的工艺尽显高端品质：实现非凡的性能。 近日在《Stem Cells and Development》期刊杂志上发表题为《Bone Marrow Stromal Cell-Derived Exosomes promote muscle healing following contusion through macrophage polarization》的文章。在这项研究中，使用梯度离心从BMSC的上清液中分离和纯化外泌体。纳米粒子跟踪分析，透射电子显微镜和蛋白质印迹被用来鉴定外泌体。使用ECHO正倒置一体荧光显微镜对HE染色，Masson染色和免疫荧光的肌肉样本进行成像。最后得到的结论：BMSC-Exos通过改变巨噬细胞的极化状态抑制炎症反应，减轻了小鼠的肌肉挫伤损伤并促进了肌肉的愈合。背景介绍：骨骼肌挫伤是运动医学和临床最常见的损伤之一。由于挫伤后局部纤维化形成，受伤的肌肉很容易再次受伤，骨骼肌纤维化被证明与损伤初期的过度炎症反应有关，而与炎症浸润密切相关的巨噬细胞被发现在骨骼肌的愈合过程中起着至关重要的作用。如何调节巨噬细胞极化仍然是肌肉愈合的重要问题。最近的研究表明，骨髓基质细胞源性外泌体（BMSC-Exos）可以影响炎症和组织恢复。因此，作者假设BMSC-Exos可以通过影响巨噬细胞极化来下调炎症反应，从而促进挫伤后骨骼肌的愈合。在这项研究中，作者从BMSC中分离了BMSC-Exos，在体内和体外测试了它们的功能，并研究了BMSC-Exos对巨噬细胞免疫调节和肌肉愈合影响的潜在机制。实验方法：通过粒度分析、透射电镜和Western Blot方法鉴定外泌体，为了检查靶蛋白的表达和位置，在TA（胫前肌）切片上进行了免疫荧光染色。使用的一抗是抗CD206，抗α-SMA，抗MyoD和抗Pax7，DAPI用于定位细胞核，通过荧光显微镜（ECHO Revolve，美国）观察图像。结果：总体外观，相对重量，形态特征：挫伤损伤后3d，挫伤组的TA肌肉比BMSC-Exos组的肌肉血肿更大（图3A）。两组之间在第三天，TA肌肉的相对肌肉重量也显著不同，挫伤组的TA肌肉较重（图3B）。对于HE染色，在阴性对照组中，肌肉纤维规则且密集地排列。但是，在挫伤组中，随着时间的流逝，肌肉纤维变得越来越分散，许多增殖的胶原纤维占据了肌肉纤维的空间，这些现象在BMSC-Exos组中得到了改善。Masson染色中，在挫伤组中观察到大量胶原纤维，而BMSC-Exos治疗在所有时间点均显著减少了纤维化区域（图3C-D）。此外，为了进一步检查纤维化状况，作者对平滑肌肌动蛋白α（α-SMA）进行了免疫荧光染色。形态学结果表明，BMSC-Exos治疗显著降低了挫伤在不同时间点引起的高蛋白表达和α-SMA的广泛分布（图4）。巨噬细胞耗竭后，BMSC-Exos的抗纤维化作用受到抑制，挫伤和BMSC-Exos治疗组在第14天均观察到大的纤维化区域和广泛分布的α-SMA蛋白。为了确定卫星细胞的不同成肌状态，进行了Pax7和MyoD的共定位。形态上，从受伤后3天开始，总的Pax7 + / MyoD +卫星细胞显著增加。显然，BMSC-Exos治疗组的数量多于挫伤组和阴性对照组。在三个不同的组中，相对的Myod蛋白表达也呈现出类似的趋势（图5D）。综上所述，BMSC-Exos注射液可在早期促进肌肉再生。结论：研究表明局部使用BMSC-Exos可以减少挫伤后的纤维化组织，增强肌肉再生并改善骨骼肌的生物力学特性。BMSC-Exos通过促进M2巨噬细胞极化，抑制了受伤肌肉的炎性微环境。作者的研究为BMSC-Exos在临床实践中可用于肌肉愈合提供了有力的支持。Revolve正倒置一体显微镜Revolve展现了其非凡的灵活性，可以轻松地实现正置和倒置显微镜转换，创新性地把正倒置显微镜合二为一，开启了显微镜Hybrid时代。*   视网膜屏显示技术：比拟目镜人眼观察效果。*  全视野观察：更清晰，更方便。*   多通道荧光：多达4个EPI荧光通道，无须暗室，就可以轻松快速地完成多色荧光显微分析。*  自动化操作：通过iPad Pro点触操控相机及荧光通道之间的切换，实现了完全自动化操作。*   App应用软件：基于IOS的Echo App是与Apple团队合作研发的专业显微镜软件。*   精湛的工艺尽显高端品质：实现非凡的性能。