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蓝藻中光合能力检测方案(植物荧光成像)

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光合作用在高光下是很容易受损的,因此光合有机体需要进化出各种策略来应对这一问题。德国慕尼黑大学与慕尼黑工业大学合作,通过实验室适应进化显著提高了蓝藻Synechocystis的高光适应性。这一研究发表于2021年《Nature Plants》。

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易 科泰 生态技术有限 公司Ecotech Ecological Technology Ltd. FluorCam 叶绿素荧光成像技术:通过实验室适应进化增强高光条件下蓝藻的光合能力 光合作用在高光下是很容易受损的,因此光合有机体需要进化出各种策略来应对这一问题。德国慕尼黑大学与慕尼黑工业大学合作,通过实验室适应进化显著提高了蓝藻 Synechocystis 的高光适应性。这一研究发表于2021年《Nature Plants》。 首先来说,这一研究的第一个难点就在于最初样品处理时需要精确同步模拟不同光强尤其是高光条件,同时还要确保其他培养环境参数一致,如培养温度、通气等。MC10008 通道藻类培养与在线监测系统则完美解决了这一问题。这一系统每台单机可实现8通道同步藻类培养,全LED 光源,最高光强可达 2500umol/m²/s, 可养每个培养试管的光强进行独立调节控制。除光强以外,还能精确控制温度、光质、培养周期、CO2浓度等培养条件,模拟自然周期变化,对培养温度、光密度 OD680和OD720(或OD730)在线实时监测。 MC10008 通道藻类培养与在线监测系统 本研究中,研究人员使用 MC1000 模拟了多种高光强与其他培养条件,使蓝藻在高光中进行随机突变与适应进化。 umol photons per m²pers 高光处理后培养液的性状变化 而由于随机突变和适应进化,同一批次培养液表现出了很明显的不均一性。既然研究的目标是获得在高光条件下维持高光合能力的突变株,那么通过对突变变光合能力来进行筛选是必要的。FluorCam 叶绿素荧光成像系统无疑是最合适进行这一工作的。通过最小荧光 Fo 的成像检测,筛选出了最有价值的蓝藻克隆进入下一步实验。 易科泰生态技术 左. FluorCam 封闭式与开放式荧光成像系统;右.本研究通过 FluorCam 叶绿素荧光成像对突变后的蓝藻克隆进行耐高光筛选 经过基因重测序、系统发育分析等工作后最终获得了具备高光耐受性的蓝藻菌株,还需进一步验证其是否在高光下表现出更高的活力。一方面检测其在高光下的生物量,这同样还是通过 MC1000模拟不同光强并同步监测 OD730实现的;另一方面是光合活力的检测, FluorCam 提供了关键性的光合活力数据:最小荧光Fo 和可变荧光Fv 及成像图。 左图:不同光强下高光耐受性菌株彩色照片与光密度;右图:高光耐受性菌株的 Fo 荧光成像图与Fv 数据 这一研究中使用的实验室适应进化方法能够使光合微生物应对变化的光照条件,这可以用于辅助进化方法,未来则可以用于增强作物的光合稳定性。 在藻类光合相关研究中, FluorCam 叶绿素荧光成像技术与 MC1000 为代表的藻类智能 LED 培养技术结合应用,为科学家提供了不可多得的科研利器,已经取得了大量研究成果。 易 科泰 生:态技术有限 公司Ecotech Ecological Technology Ltd. 调整莱茵衣藻 NPQ以提高生物量:左.NPQ突变株的NPQ 荧光曲线;;右.NPQ突变株的 OD730生长曲线 (Berteotti, 2016) 莱茵衣藻色素结合蛋白表达机制与生物量的关系::左.高光培养条件下NPQ 荧光曲线;;5中:OD720生长曲线;右:日生长率(Perozeni,2018) ( 参考文献: ) 1.Dann M, et al.2021.Enhancing photosynthesis at high light levels by adaptive laboratory evolution.Nature Plants 7: 681-695 2.Berteotti S, et al. 2016. Increased biomass productivity in green algae by tuning non-photochemicalquenching. Scientific Reports 6:21339 3.Perozeni F, et al. 2018. LHCSR Expression under HSP70/RBCS2 Promoter as a Strategy to IncreaseProductivity in Microalgae. Int.J. Mol. Sci. 19: 155 北京易科泰生态技术公司提供藻类光合表型研究全面技术方案: 1.AquaPen、FluorCam 叶绿素荧光/多光谱荧光技术 2.SpectraPen/PolyPen、Specim 高光谱测量技术 3.FKM多光谱荧光动态显微成像系统 4.FMT150 藻类培养与在线监测系统 5.MC1000 8通道藻类培养系统 6.FL6000 双调制式叶绿素荧光测量系统 7.TL6000 叶绿素热释光测量系统 8.AlgaTech@高通量藻类表型成像分析平台 北京市海淀区高里掌路号院号楼单元(Tel.: + 北京市海淀区高里掌路号院号楼单元 (Tel.: +nfo@eco-tech.com.cnhttp: //www.eco-tech.com.cn Email: sales@eco-tech.com.cn 光合作用在高光下是很容易受损的,因此光合有机体需要进化出各种策略来应对这一问题。德国慕尼黑大学与慕尼黑工业大学合作,通过实验室适应进化显著提高了蓝藻Synechocystis的高光适应性。这一研究发表于2021年《Nature Plants》。首先来说,这一研究的第一个难点就在于最初样品处理时需要精确同步模拟不同光强尤其是高光条件,同时还要确保其他培养环境参数一致,如培养温度、通气等。MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统则完美解决了这一问题。这一系统每台单机可实现8通道同步藻类培养,全LED光源,最高光强可达2500μmol/m2/s,可对每个培养试管的光强进行独立调节控制。除光强以外,还能精确控制温度、光质、培养周期、CO2浓度等培养条件,模拟自然周期变化,对培养温度、光密度OD680和OD720(或OD730)在线实时监测。本研究中,研究人员使用MC1000模拟了多种高光强与其他培养条件,使蓝藻在高光中进行随机突变与适应进化。而由于随机突变和适应进化,同一批次培养液表现出了很明显的不均一性。既然研究的目标是获得在高光条件下维持高光合能力的突变株,那么通过对突变株光合能力来进行筛选是必要的。FluorCam叶绿素荧光成像系统无疑是最合适进行这一工作的。通过最小荧光Fo的成像检测,筛选出了最有价值的蓝藻克隆进入下一步实验。经过基因重测序、系统发育分析等工作后最终获得了具备高光耐受性的蓝藻菌株,还需进一步验证其是否在高光下表现出更高的活力。一方面检测其在高光下的生物量,这同样还是通过MC1000模拟不同光强并同步监测OD730实现的;另一方面是光合活力的检测,FluorCam提供了关键性的光合活力数据:最小荧光Fo和可变荧光Fv及成像图。这一研究中使用的实验室适应进化方法能够使光合微生物应对变化的光照条件,这可以用于辅助进化方法,未来则可以用于增强作物的光合稳定性。在藻类光合相关研究中,FluorCam叶绿素荧光成像技术与MC1000为代表的藻类智能LED培养技术结合应用,为科学家提供了不可多得的科研利器,已经取得了大量研究成果。参考文献:1.Dann  M, et al. 2021. Enhancing photosynthesis at high light levels by adaptive laboratory evolution. Nature Plants 7: 681–6952.Berteotti S, et al. 2016. Increased biomass productivity in green algae by tuning non-photochemical quenching. Scientific Reports 6:213393.Perozeni F, et al. 2018. LHCSR Expression under HSP70/RBCS2 Promoter as a Strategy to Increase Productivity in Microalgae. Int. J. Mol. Sci. 19: 155 北京易科泰生态技术公司提供藻类光合表型研究全面技术方案:1.AquaPen、FluorCam叶绿素荧光/多光谱荧光技术2.SpectraPen/PolyPen、Specim高光谱测量技术3.FKM多光谱荧光动态显微成像系统4.FMT150藻类培养与在线监测系统5.MC1000 8通道藻类培养系统6.FL6000双调制式叶绿素荧光测量系统7.TL6000叶绿素热释光测量系统8.AlgaTech®高通量藻类表型成像分析平台

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北京易科泰生态技术有限公司为您提供《蓝藻中光合能力检测方案(植物荧光成像)》,该方案主要用于其他中植物生理检测,参考标准《暂无》,《蓝藻中光合能力检测方案(植物荧光成像)》用到的仪器有FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪、FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台、MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、FMT150藻类培养与在线监测系统。

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