不知道你测的血药水溶性如何，用的SDS浓度太高，有机物浓度太高，pH值太高。
如果血药水溶性还好的话，这些条件说明样品处理的不好，还大分子或蛋白过多，SDS、有机物和高pH都在为消除蛋白影响做贡献。
建议重新处理一下样品，最好用透析膜过一下，40mM硼砂可以，硼砂缓冲液在pH应该在7-9左右缓冲能力好，接近11还是否有缓冲能力了很怀疑，请楼主自己算一下。
降低SDS和有机物量看一看找找条件吧。如果水溶性不佳保持乙腈量，降低点SDS看看，感觉现在的条件不应该是最佳条件。而且不分离蛋白加SDS也有点感觉怪怪的。
SDS含高钠离子，这么大浓度电流不高就怪了。
SDS和有机物都会影响pH的测量。应该是测定好硼砂缓冲液的pH后，定量加入SDS和乙腈，然后不要再测pH了。SDS强吸附会钝化玻璃电极膜的，测久了等着换pH的玻璃电极吧。

可以通过改变其他条件来降低电流，比如降低电压，降低缓冲溶液的浓度等

楼主说的好详细，先谢谢啊。
我的药物就是水溶液比较好，有人建议我用盐析辅助液液萃取，我尝试了下，但还是不理想，不知是不是哪里操作有问题：
50ul空白血浆+10ul药物+10ul内标+50mg硫酸钠+0.5ml二氯甲烷-异丙醇，混旋10s，有沉淀产生，然后在3000r/min下离心5min，得到上清液于另一离心管，挥干，溶解，进样。检测发现还是有内源性杂质影响分离。我在想是不是我得到的这个上清液中含有水相，是不是还应该再离心一次，使水相和有机相分层。
另外，我之所以加这么多SDS，是想增强荧光强度。增加检测灵敏度。

讲的很详细，学习了！

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