MP课堂 |这么多款饮食诱导非酒精性脂肪肝病动物模型案例,您学会了吗?


2020年您是不是奉旨宅家了呢?有没有贴春夏秋冬膘?体检过后突然发现身边一群小伙伴患了肝浸润?也许很多人会认为,只要不饮酒那么自己的肝脏就不会有多大损伤。那当然是No, No, No~

脂肪在肝细胞中堆积到一定量时,非酒精性脂肪性肝(NAFLD)就出现了。相对于酒精性肝病来说,NAFLD的发病率正以惊人的数目增长着,80%的肥胖患者患有NAFLD,而BMI指数正常的人群中也有16%的人患有此病。

NAFLD目前尚缺有效的治疗方法,动物模型是研究NAFLD发病机制以及新药开发的重要平台。遗传和环境因素在肥胖的发生中起重要作用,食是诱导肥胖及相关代谢疾病的主要环境因素之一。下面小编就分享几款饮食诱导的NAFLD动物造模案例吧~

【 高脂饮食(HFD) 】

HFD诱导动物NAFLD与人类NAFLD发病机制接近,可引起增重、肥胖、胰岛素抵抗等。但在实验过程中,造模时间较长,症状较轻。与MCD相同喂养时间里,只能诱导温和的脂肪变性和炎症。此外,不同品种和性别的实验动物可能会对模型的建立造成影响。HFD模型诱导小鼠肝脂肪并不一定是线性增长,可能出现先降低后增长的现象。


正常喂食小鼠(图左),HFD喂食小鼠(图右)



案例一:C57BL/6J 小鼠+HFD[1]



实验表现

喂食16周后,与人类患者相似,小鼠体重异常增加(图A),肝脏甘油三酯异常积累(图C)。

进一步通过油红染色,确认高脂饮食诱导小鼠表现出广泛脂肪浸润(图A,红色部分)。


【 蛋氨酸和胆碱缺乏饮食(MCD) 】
MCD可以非常迅速诱导可测量的NAFLD标志,4-8周内即可诱导包括纤维化在内的NASH表型,这是其他模型难以达到的效果。在减缓脂肪肝发展和逆转脂肪肝疾病研究中广受欢迎。


但与NAFLD人类疾病患者常伴胰岛素抵抗、肥胖等代谢综合征不同,该模型诱导动物通常伴随体重下降,且不具备胰岛素抵抗。因此,难以将该模型得到的动物发病机制延伸到人类发病机制中去。


案例二:成年雄性Wistar大鼠+MCD[2]


实验表现

与人类患者通常伴随肥胖症状不同,MCD喂食小组体重从第七天开始出现异常下降。

短时间内表现出与人类NASH患者相似病理组织状态。喂食4周,所有肝脏出现脂肪浸润。喂食13周,出现更广泛的脂肪变性,还有炎症、肝细胞坏死、纤维化出现。

【 高果糖饮食(HFr) 】
高果糖饮食可诱导小鼠肝脏脂质新生,胰岛素抵抗、脂肪变性、炎症、纤维化,与人类NASH患者具有相似表型,但该模型诱导的动物体重增长较HFD模型少,可以结合高脂饮食及高胆固醇饮食一起使用。

案例三:雄性SD大鼠+MCD[3]

实验表现


两组体重在2周时无明显差异,但从喂食第6周开始出现差异,喂食12周时体重出现较显著差异。


随着诱导时间延长,NASH表型逐渐加重,依次出现脂肪变性、肝细胞膨胀、纤维化等表型。


【 胆碱缺乏-高脂饮食(CD-HFD) 】
胆碱缺乏饮食与高脂饮食相结合,能够解决单一饲料所引起的实验造模不足问题,不仅可以诱导肥胖、胰岛素抵抗、脂肪变性、炎症、纤维化等NASH表型,甚至可以诱导肝癌细胞的产生。

案例四:C57BL/6J 小鼠+CD-HFD[4]

实验表现

喂养小鼠在两个月龄时,较对照组体重明显增长,并持续增大(图A)。10月龄时,进一步检测脂肪与瘦体重变化,脂肪较对照组显著增长,而瘦体重无明显变化(图B)。


CD-HFD小鼠肝脏中甘油三酯沉积在鼠龄六个月出现显著增加,并且持续增长;苏丹红对脂肪进行染色,随时间推移肝脂肪变性由轻度变性变为重度变性


【  MP 动物饲料 】

不同方法制备的脂肪肝动物模型的表型和形成机制各异,应尽量选择与人类NAFLD相似、方法简单、成功率高、动物死亡率低、造模时间短和重复性好的实验模型。


MP Biomedicals 拥有超过50年的定制经验,饲料配方丰富,原料严格把控,产品新鲜制作,可为客户定制任何饲料的公司。文中提到的非酒精性脂肪肝病动物模型并非详尽无遗,如果您的研究需要用到定制配方,欢迎来电咨询我们。

【 订购信息 】

注:常用包装规格为10kg、20kg、50kg,上述表中均为10kg的饮食诱导非酒精性脂肪肝造模相关产品货号。带 * 的产品分常规款和辐照款可供选择,MP Biomedicals也可根据您的要求定制。

相关文献

1.Flores-CostaR, Alcaraz-Quiles J, Titos E, López-Vicario C, Casulleras M, Duran-Güell M,Rius B, Diaz A, Hall K, Shea C, et al. The soluble guanylate cyclase stimulatorIW-1973 prevents inflammation and fibrosis in experimental non-alcoholicsteatohepatitis. Br J Pharmacol 2018;175(6):953–67.

2.Weltman MD, Farrell GC, Liddle C. Increased hepatocyte CYP2E1 expression in arat nutritional model of hepatic steatosis with inflammation. Gastroenterology.1996; 111:1645–53.

3.SvendsenP, Graversen JH, Etzerodt A, Hager H, Roge R, Gronbaek H, Christensen EI,Moller HJ, Vilstrup H, Moestrup SK. Antibody-directed glucocorticoid targetingto CD163 in M2-type macrophages attenuates fructose-induced liver inflammatorychanges. Mol Ther Methods Clin Dev 2017;4:50–61.

4.Wolf MJ, Adili A, Piotrowitz K, Abdullah Z, Boege Y, Stemmer K, Ringelhan M,Simonavicius N, Egger M, Wohlleber D, et al. Metabolic activation ofintrahepatic CD8+ T cells and NKT cells causes nonalcoholic steatohepatitis andliver cancer via cross-talk with hepatocytes. Cancer Cell 2014;26(4):549–64.

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