产品详情
生物素含量检测试剂盒说明书
高效液相色谱法
注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定。
规格:50T/48S
产品简介:
生物素又称维生素 H、辅酶 R,是水溶性维生素,也属于维生素 B 族,B7。生物素作为羧化酶
的辅酶,是参与糖异生、脂肪酸合成与氨基酸代谢不可或缺的物质,是一种维持人体自然生长、发育和正常人体机能健康必要的营养素。
生物素在 210 nm 处存在紫外吸收,可利用紫外检测器测定其含量。
试验中所需的仪器和试剂:
高效液相色谱仪(Polaris C18-A 色谱柱(4.6×250 mm),紫外检测器(VWD))、台式离心
机、可调式移液枪、研钵/匀浆器、EP 管(1.5 mL)、针头式过滤器(水系) 、注射器、抽滤器、滤膜(水系、有机系)、棕色进样瓶、超纯水、甲醇(色谱纯)。
产品内容:
提取液:液体 30 mL ×1 瓶,4℃保存。本提取液中含有不溶物,需摇匀后使用。
试剂一:液体 5 mL ×1 瓶,4℃保存。
试剂二:液体 1.5 mL ×1 瓶, 4℃保存。
试剂三:粉剂×2 瓶,4℃保存。
标准品:粉剂×1 瓶,4℃避光保存。临用前加入 1 mL 0.1 mol/L KOH 配制成 5 mg/mL 生物素标准溶液,4℃密封保存,避免阳光直射。
实验前准备工作:
1. 将 1 瓶试剂三溶解到 1000 mL 超纯水中,再加入 0.55 mL 的试剂二,混匀,得到流动相 A。
2. 将 1000 mL 配制好的流动相 A、甲醇(色谱纯)用滤膜抽滤。(配制好的流动相 A 采用 0.22 μm水系滤膜抽滤,甲醇采用 0.45 μm 有机系滤膜抽滤)。
3. 将抽滤好的流动相超声 20 min,除去气泡。
4. 标准品的配制:将 5 mg/mL 的生物素标准溶液采用倍比稀释的方法分别用蒸馏水稀释成
1000μg/mL、500 μg/mL、100 μg/mL、20 μg/mL、4 μg/mL 的生物素标准溶液。(标准品浓度仅供参考,可根据实际样品浓度进行调整)。4℃避光保存(密封),测试前采用水系针头式过滤器过滤
到棕色进样瓶内,待测。
操作步骤:
一、生物素的提取:
样本:按质量(g):提取液体积(mL)1:5~10 比例,建议称取 0.1 g 样本(新鲜样本:剪碎;
烘干样本:研磨过筛),加入 0.6 mL 提取液(新鲜样本需匀浆),密封,混合均匀,置于 60℃水浴锅中浸取 30 min。冷却至室温,加入 0.1 mL 试剂一,0.3 mL 蒸馏水,混匀,静置 2 min。10000 rpm离心 10 min,取上清液(若仍有浑浊,可再次离心),测试前采用水系针头式过滤器过滤到棕色进样瓶内,待测(若上清液颜色过深或者浓度过高,可稀释后再次过滤待测)。
细胞:按细胞数量(104):提取液体积(mL)1000~5000 万:1 比例,建议取 5000 万细胞,加入
0.6 mL 提取液,冰浴超声破碎细胞(功率 20%,超声 3s,间歇 9s,重复 30 次,总时间:6 min),密封混匀,置于 60℃水浴锅中浸取 30 min。冷却至室温,加入 0.1 mL 试剂一,0.3 mL 蒸馏水,混匀,静置 2 min。10000 rpm 离心 10 min,取上清液(若仍有浑浊,可再次离心),测试前采用水系针头式过滤器过滤到棕色进样瓶内,待测。
血清:按血清体积(mL):提取液体积(mL)1~5:1 比例,建议取 0.5 mL 血清,加入 0.1 mL 提
取液,密封混匀,置于 60℃水浴锅中浸取 30 min。冷却至室温,加入 0.1 mL 试剂一,0.3 mL 蒸馏水,混匀,静置 2 min。10000 rpm 离心 10 min,取上清液(若仍有浑浊,可再次离心),测试前采用水系针头式过滤器过滤到棕色进样瓶内,待测。
二、测定步骤:
1. 开启电脑、打开液相色谱仪各模块开关按钮,安装上色谱柱,打开软件,在方法组中设置进样量为 10 μL,柱温:30℃,流速为 1 mL/min,紫外检测器:波长为 210 nm。单个样本走样时间 25 min,设置完毕保存方法组。
3. 采用相应的流动相清洗柱子,用流动相 A 平衡柱子,待基线稳定后开始加样。
4. 检测待测的标准品溶液,进样量为 10 μL,在 25 min 内可分离出生物素,生物素的保留时间为21.3 min 左右(体系、柱子、流动相 pH、温度等不同,保留时间有差异,仅作为参考)。
5. 检测待测的样品溶液,进样量为 10 μL,在相应的保留时间处检测生物素的峰面积。
6. 序列完整加样表:(包含单个样本测定完成后色谱柱的清洗和再平衡过程)
三、生物素含量计算
以标准品浓度(μg/mL)为横坐标,峰面积为纵坐标绘制生物素的标准曲线,将样本的峰面积
代入标准曲线,计算提取液中生物素的浓度 x(μg/mL)。
1. 组织样本
生物素的含量(μg/g)= x ×V 提取÷W×F=x÷W×F
V 提取:加入提取液总体积,1 mL;W:样本质量,g;F:稀释倍数,稀释后测试的样本,计
算时需要乘以相应的稀释倍数。
2. 细胞样本
生物素的含量(μg/104细胞)= x ×V 提取÷细胞数量(104)×F=x÷细胞数量×F
V 提取:加入提取液总体积,1 mL(0.6mL 提取液+0.1mL 试剂一+0.3mL 蒸馏水);细胞数量:
单位 104;F:稀释倍数,稀释后测试的样本,计算时需要乘以相应的稀释倍数。
3. 血清样本
生物素的含量(μg/mL)= x ×V 提取÷V 样本×F=2x×F
V 提取:提取液总体积,1 mL(0.5mL 血清+0.1mL 提取液+0.1mL 试剂一+0.3mL 蒸馏水);V
样本:加入样本体积,0.5 mL;F:稀释倍数,稀释后测试的样本,计算时需要乘以相应的稀释倍数。
注意事项
1. 本试剂盒提取液中含有不溶物,需摇匀后使用。
2. 测试完毕后,需要用高浓度的超纯水相冲洗色谱柱(约 20-30 个柱体积),以防阻塞色谱柱,再用高浓度的有机相冲洗色谱柱,最 后按柱子的种类规范冲洗,防止损伤色谱柱。
3. 标准品的稀释倍数要根据样品中生物素的浓度确定,样品中生物素的峰面积必须在不同浓度的标准品溶液的峰面积之内,该标准品的稀释倍数只是一个参考。若样本中生物素浓度过高,建议用蒸馏水稀释后再测。
4. 若样本量过大,建议每天测试一次标准溶液(一个浓度的标准溶液即可),以确定相应的保留时间,待测溶液测试前须放置至室温状态。
5. 为了排除梯度洗脱基线漂移的影响,可进行一次空白检测。
特别提示:本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!