仪器对比
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主要特征：
功能： | 血细胞分类计数器设置了四种计数方式(血片、单独巨核、简易骨髓、组化),可对32种细胞计数，功能分：粒／红、髓／红比，粒系总数、红系总数、巨系总数及细胞个数和百分比。采用16*2大字符液晶显示，交直流两种供电方式，方便实用。 |
粒系： | 原粒、早粒、中粒、晚粒、杆状、分叶、嗜酸、嗜碱 |
红系： | 原红、早红、中红、晚红、巨早、巨中、日晚、其它1 |
巨系： | 原始、幼稚、颗粒、产板、裸核、小原、小幼、小巨 |
其它： | 原始、幼稚、浆、网状、淋巴、异淋、单核、其它2 |
组化： | -、+、++、+++、++++ |
随着医疗科学技术的不断进步，细胞计数器已经广泛应用于各临床医疗机构。在其为临床提供准确可靠数据的同时，也有许多影响因素使检测结果产生误差，给临床医师的诊断和治疗带来诸多不便。
白细胞计数
白细胞计数假性：
1、血液采集因素
血液采集过程中若采血处发生炎症、采血管中抗凝剂的剂量不足、血液和抗凝剂的混合不均匀，导致了标本中血小板的凝聚。处理措施：采血操作要规范，采血管里要有适量的抗凝剂，并且抗凝剂与血液标本要充分混合后再行检测，如果细胞计数器计数再次不准，需重新采血。
2、气候因素
由于天气气温较低，血液中的蛋白质发生沉淀出现沉淀小团块，细胞计数器直方图显示血小板右边曲线无下滑趋势。处理措施：保持室内温度适中，标本加温至37℃，行离心，离心后使用等量生理盐水置换血浆，充分混合标本，再行检测。
3、疾病因素
①在高脂血症、异常血红蛋白症等疾病中血红细胞无法正常溶解，细胞计数器直方图显示左侧淋巴峰升高。处理措施：将样本稀释两倍进行离心，离心后使用等量的生理盐水置换血浆，然后充分混合样本，再次进行检测，其结果要乘以样本稀释的倍数。
②如果血液是来自新生儿、溶血性贫血患者，由于幼红细胞的存在，细胞计数器直方图显示淋巴峰双峰。处理措施：放弃细胞计数器，使用显微镜计数。
③如果血液来自急性失血、脾切除手术后溶血性贫血、真性红细胞增多症、慢性粒细胞性白血病等疾病患者，老中青血小板同时释放参与了机体的血液循环，导致了大型血小板比率。处理措施：放弃细胞计数器，使用显微镜计数。
白细胞计数假性降低：
1、气候因素
由于气候寒冷导致白细胞聚集。处理措施：将样本加温至37℃，充分摇匀后，再用细胞计数器检测。
2、非气候因素
白细胞出现聚集，但是与气候原因无关，细胞计数器直方图右侧显示一波峰，标本涂片同时出现凝集。处理措施：将样本加温至37℃，或者使用生理盐水置换血浆，充分混合后重新检测。
红细胞计数
红细胞假性：
1、红细胞假性绝大部分原因是由人为造成的，标本放置时间过久后发生分层未能充分混合，底部吸样。处理措施：使样本充分混合，可以防止其发生假性升高。
2、红细胞假性还存在一种原因即患者出现大量脱水时，血液浓缩，红细胞数目增多。处理措施：给予患者补液，脱水症状解决后再用细胞计数器进行检测。
红细胞计数假性降低：
红细胞发生凝集时平均红细胞体积值增大，镜下可见凝集小块。处理措施：将样本至于37℃水浴箱加温5分钟后，将样本摇匀，再进行检测。
血红蛋白
血红蛋白假性：
1、乳糜标本因素
乳糜标本中由于液体浑浊不清，检测时标本吸光度(OD值)升高，导致了血红蛋白数值假性。处理措施：采用等量的盐水置换血浆，二者充分混匀后再行检测。
2、白细胞因素
由于白细胞数目异常(高于100.0×109/L)，检测时标本吸光度(OD值)升高，导致了血红蛋白数值假性。处理措施：用HiCN分光光度测定法测定血红蛋白，比色前要高速离心，取上清液比色。
血小板计数
血小板计数假性：
1、血液标本中存在血小板、红细胞、细胞碎片、以及由于冷凝集素导致的细胞凝集等，会导致血小板计数假性。处理措施：小细胞会诱发血小板计数结果升高，新型的细胞计数器，建议使用自动设置浮标界限方法的方式来避免误差。对于冷凝集素引起的细胞凝集现象，用37℃水浴约5分钟，进行检测，如仍发现不准确，重新采血检测。
2、当试剂不合格时，可以影响到血小板的计数，会出现假性升高。处理措施：更换合格试剂后再检测。
血小板计数假性降低：
1、血液采集后放置时间过久，这是导致血小板计数假性降低Z常见的原因，由于标本放置时间过久，血小板离开人体一段时间后容易发生变形、自溶等些列反应，细胞计数器漏查导致误差的发生。处理措施：标本采集后及时检测。
2、采集到血液标本后要与抗凝剂充分混匀，避免血小板由于体积较小，容易粘附于血管破损处及组织，同时发生聚集，导致了血小板计数假性降低。处理措施：采血时要迅速，采集血液后要与抗凝剂充分混合并及时检测。
3、如有巨大血小板情况发生，血小板计数也会降低。处理措施：使用显微镜进计数。
综上所述，随着现代医学科学技术的进步和发展，临床检验结果日益成为临床诊断、治疗和抢救中不可缺少的重要依据，化验结果受很多因素的影响，要想取得准确的检验结果就要在实验的每一步骤中认真操作，把人为因素引起的误差降到Zdi。
根据所有检验工作者的经验，细胞计数器要求专人管理与维护，做血常规检测时尽量选用静脉血，应在2小时内对样本进行测定，每天随机做质控，以消除过失误差，尽量减少偶然误差和系统误差，同时自动进样器检测也要随时观察，包括细胞计数器运行是否正常，是否卡管，是否有结果异常，发现问题及时解决，妥善处理，及时纠正潜在引起检验结果因素的影响，提高检验质量，以提高检验结果的准确性，更好地为临床诊断和治疗服务。
细胞培养技术中，细胞计数是一项基本功，对于标准化培养条件以及需要定量的实验来说都关键。这里介绍使用血细胞计数器对细胞进行计数的经典方法以及中间一些需要注意的细节。
制备细胞悬液：
对于贴壁生长的细胞，我们需要使用胰酶消化的方法使细胞从培养皿表面脱落
根据需要加入合适体积的培养基，将细胞进行中和及稀释，以得到均质的细胞悬液。要求尽可能将细胞吹打散开，不要残留任何细胞团
准备血细胞计数器：
使用70%乙醇将盖玻片和血细胞计数器清洁干净
将将盖玻片润湿（使用水或呼一口气，目的是使盖玻片与血细胞计数器接触更紧密，易于粘连），并覆盖至血细胞计数器上
台盼兰染色（可选）：
如果需要计算细胞的活力，则需要将细胞悬液和0.4%台盼兰等体积混合
室温孵育3-5分钟，使台盼兰进入死细胞，使死细胞着蓝色
血细胞计数器加样：
使用吸管将细胞悬液或细胞/台盼兰混合液滴加到血细胞计数器计数池的边缘。此时液滴将在虹吸的作用下进入盖玻片下方的计数池
以同样的方式在另一侧的计数池中也加入细胞悬液
将计数板放置几分钟使细胞扩散，同时用吸水纸吸除多余的液体
细胞计数：
在100倍显微镜下，移动计数板将视野对准计数板的中央大方块，该方块四周有一圈3条平行线包围，中间有密集的网格。中央方块区差不多刚好可以填满整个视野
使用手持式计数器记录计数池四个角以及中央方块内的细胞数（1-5号位置，经典的current-protocol推荐每个方块细胞数应不大于20-50），并重复记录另一侧计数池中的细胞数，总计十个方块。计数的方法是只计算上边和左边压线的细胞，而右边和下边压线的细胞不予计算（下图，总体原则是“计上不计下，计左不计右”，判断标准为是否接触三条边线的中间线）。如果有多个细胞没有吹散成团存在，此时只可记为一个细胞。如果团块很多，则可能需要重新吹打甚至消化直至绝大多数细胞为单个细胞
1年
是
无
电话视频指导
如有需要，可保养
终生保证在1-2小时内响应，24-72小时优先紧急技术支持服务，3-5个工作日，
保证设备停产后的备件供应保证15年，并以成本价格提供该设备所需的维修零配件，备件
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