C反应蛋白(CRP)检测试剂盒说明书

C反应蛋白(CRP)检测试剂盒

适用生物 Homo sapiens (Human，人)  
检测范围 62.5-4000pg/mL 灵敏度 26.3pg/mL
样本类型 Serum, plasma, tissue homogenates, cell lysates, urine, cerebrospinal fluid, cell culture supernates and other biological fluids.
实验时长 4.5h 实验方法 双抗夹心法 
规格 96T

C反应蛋白(CRP)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法)
适用生物：人
使用说明书
仅供体外研究使用，不用于临床诊断!
C反应蛋白(CRP)检测试剂盒[预期应用]
本试剂盒运用双抗体夹心ELISA 法定量测定人血清、血浆、组织匀浆、细胞裂解液、尿液、脑脊液、细胞培养上清
或其它相关生物液体中CRP 含量。
[试剂盒内容]
试剂名称数量试剂名称数量
96孔板(预包被) 1 96孔板覆膜4
标准品2 标准品稀释液1×20mL
检测溶液A 1×120μL 检测稀释液A 1×12mL
检测溶液B 1×120μL 检测稀释液B 1×12mL
TMB底物1×9mL 终止液1×6mL
浓洗涤液(30×) 1×20mL 使用说明书1
[需自备的设备及试剂]
1、450±10nm 滤光片的酶标仪(建议仪器使用前提前预热)
2、单道或多道微量加液器及吸头
3、稀释样品的EP 管
4、蒸馏水或去离子水
5、吸水纸
6、盛放洗液的容器
[试剂盒的储存及有效期]
1、未开封的试剂盒：所有试剂均按试剂瓶标签上所示保存。请注意，收到试剂盒后请尽快将标准品、检测溶
液A、检测溶液B 以及96 孔板保存于-20oC。
2、使用后的试剂盒：剩余试剂仍需按照试剂瓶标签所示的温度保存，开封后的酶标板要加干燥剂后密封保存于
-20oC，避免潮湿。
注意：
试剂盒内酶标条可拆卸，按实验需求可分多次使用；使用后的剩余试剂盒建议在首次实验后1 个月内使用完毕。
产品过期时间以盒子上的标签为准，保质期内所有组分都确保是稳定的。
[标本的采集与保存]
1、血清：将收集于血清分离管的全血标本在室温放置2 小时或4oC 过夜，然后1000×g 离心20 分钟，取上清即
可，或将上清置于-20oC 或-80oC 保存，但应避免反复冻融。
2、血浆：用EDTA 或肝素作为抗凝剂采集标本，并将标本在采集后的30 分钟内于2-8oC 1000×g 离心15 分钟，
取上清即可检测，或将上清置于-20oC 或-80oC 保存，但应避免反复冻融。
3、组织匀浆：
1） 取适量组织块，于预冷PBS（0.01mol/L, pH 7.0-7.2）中清洗去除血液，称重后备用（组织块较大需先剪碎后
再匀浆）；
2） 可同时选用多种匀浆方法达到较好的破碎效果：首先将组织块移入玻璃匀浆器，加入5-10mL 预冷PBS 进行充
分研磨，该过程需在冰上进行（有条件实验室可选用机器匀浆）；得到的匀浆液可再利用超声破碎或反复冻融
进一步处理（超声破碎过程中注意冰浴降温；反复冻融法可重复2 次）。
3） 将制备好的匀浆液于5000×g 离心5 分钟，留取上清即可检测。
4、细胞裂解液：
1）贴壁细胞需要先用胰酶消化，离心收集细胞（悬浮细胞可直接离心收集）；
2）将收集到的细胞用冷PBS 洗3 次；
3）物理方法裂解细胞（可先超声破碎细胞，再反复冻融）：
i 超声破碎：取适量PBS 重悬细胞，用一定功率的超声波处理细胞悬液，使细胞急剧震荡破裂。
ii 反复冻融：将待破碎的细胞在-20oC 以下冰冻，室温融解，反复3 次，使细胞溶胀破碎。
4）将标本于2-8oC 1500×g 离心10 分钟，收集上清备用。
5、尿液：请收集清晨第一次尿液（中段尿），或24 小时尿液，2000×g 离心15 分钟后收集上清，并将标本保存于
-20oC，且应避免反复冻融。
6、脑脊液：请离心后收集上清，并将标本保存于-20oC，且应避免反复冻融。
7、细胞培养上清或其它生物标本：请1000×g 离心20 分钟，取上清即可检测，或将上清置于-20oC 或-80oC 保
存，但应避免反复冻融。
注意：
1、以上标本均需密封保存，4oC 保存应小于1 周，-20oC 不应超过1 个月，-80oC 不应超过2 个月。
2、标本溶血会影响最后检测结果，因此溶血标本不宜进行此项检测。
3、标本使用前应缓慢均衡至室温，不应加热使之融解。
[试剂准备]
1、使用前将所有的试剂和标本缓慢均衡至室温(18-25oC)，试剂不能直接在37oC 溶解。
2、标准品(冻干品)：每瓶标准品加入标准品稀释液1mL，盖好后室温静置大约10 分钟，同时反复颠倒/搓动以
助溶解，其浓度为40,000pg/mL(贮液)。先将其稀释为4,000pg/mL(标准曲线最高浓度)后，再准备7 个稀释
标准品的EP 管，每个EP 管中加入500μL 的标准品稀释液，如图所示依次倍比稀释成4,000pg/mL,
2,000pg/mL, 1,000pg/mL, 500pg/mL, 250pg/mL, 125pg/mL, 62.5pg/mL，标准品稀释液(0pg/mL)直接作为
空白孔。为保证实验结果有效性，每次实验请使用新的标准品溶液。
Tube 1 2 3 4 5 6 7 8 9
pg/mL 40,000 4,000 2,000 1,000 500 250 125 62.5 0
3、检测溶液A 及检测溶液B：Detection A 及Detection B 在使用前请手甩几下或少时离心处理，以使管壁或
瓶盖的液体沉积到管底。临用前分别以检测稀释液A 或B1:100 稀释(如：10μL 检测溶液A/990μL 检测稀释
液A)，充分混匀，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制(100μL/孔)，实际配制时应多配制
0.1-0.2mL。
4、浓洗涤液：用580mL 蒸馏水或去离子水将20mL 浓洗涤液稀释至600mL，进行30 倍稀释。
5、底物溶液：请用灭菌的移液器吸头吸取所需体积的TMB 至另一干净容器中使用，容器中剩余的底物应予丢弃，
不要倒回TMB 瓶中。
注意：
1、标准品的稀释不能直接在板中进行。
2、标准品请于临用前15 分钟内配制。该标准品只能使用一次。
3、标准品、检测溶液A 工作液、检测溶液B 工作液请使用相应的稀释液配制，不能混淆。混匀时要轻轻充分混
匀，避免起泡。为保证实验结果的准确请使用微量吸管，并校准微量加液器。请依据所需的量精确配制，尽
量不要微量配制(如吸取检测溶液A 时，一次不要小于10μL)，以避免造成浓度误差。
4、请勿重复使用已经稀释过的标准品、检测溶液A 工作液和检测溶液B 工作液。
5、浓洗涤液中如有结晶析出，请先温育至室温，轻轻混匀，至到结晶完全溶解再进行配制。
6、试剂盒中部分试剂为储存液，客户需配置成工作液后使用，在配置过程中如因纯净水质量差或水质污染，以
及实验中所用耗材洁净度差，可能造成实验结果不准确，甚至完全错误，请使用双蒸水。
[标本处理]
1、本公司只对试剂盒本身负责，不对因使用该试剂盒所造成的样本消耗负责，请使用者使用前充分考虑到样本
的可能使用量，预留充足的样本。
2、实验前应预测标本含量，如果标本浓度过高，应对标本进行稀释，使稀释后的标本符合试剂盒的检测范围，
计算时再乘以相应的稀释倍数。
3、血清或血浆标本推荐稀释大约500 倍或500 倍以上，如：稀释500 倍，首先取20μL 血清或血浆样本加入
180μL PBS，做10 倍稀释，然后再取10 倍稀释后的样本10μL 加入490μL PBS 即可，稀释的每一步都需
混匀。标本使用0.01mol/L 的PBS 稀释(PH=7.0-7.2）。
4、若所检样本不包含在说明书所列样本之中，建议进行预实验验证其有效性，并注意留存样本。
5、使用化学裂解液制备的组织匀浆或细胞提取液可能会由于某些化学物质的引入导致ELISA 实验结果偏差。
6、若样本为细胞培养上清，因该类样本干扰因素较多，如：细胞状态、细胞数量、采样时间等，所以可能存
在检测不出的情况。
7、某些天然蛋白或重组蛋白，包括原核及真核重组蛋白，可能因为与本产品所使用的检测抗体及捕获抗体不匹
配，而不被检测出。
8、建议使用新鲜样本，保存时间过长可能会存在蛋白降解或变性导致实验结果偏差。
[操作步骤]
1、加样：分别设标准孔、待测样品孔、空白孔。设标准孔7 孔，依次加入100μL 不同浓度的标准品(见试剂准
备2)。空白孔加100μL(见试剂准备第二步最后一管)，余孔加待测样品100μL，酶标板加上覆膜，37oC 温
育2 小时。
2、弃去液体，甩干，不用洗涤。
3、每孔加检测溶液A 工作液100μL(临用前配制)，酶标板加上覆膜，37oC 温育1 小时。
4、弃去孔内液体，每孔用350μL 的洗涤液洗涤，浸泡1-2 分钟，吸去(不可触及板壁)或甩掉酶标板内的液体，
在实验台上铺垫几层吸水纸，酶标板朝下用力拍几次(也可轻拍将孔内液体拍干)，重复洗板3 次。最后一次
洗涤后，要把孔内的洗涤液完全甩干。自动洗板机亦可。
5、每孔加检测溶液B 工作液(临用前配制)100μL，加上覆膜，37oC 温育30 分钟。
6、弃去孔内液体，甩干，洗板5 次，方法同步骤4。
7、每孔加底物溶液90μL，酶标板加上覆膜，37oC 避光显色(反应时间控制在15-25 分钟，不要超过30 分钟。
当标准孔的前3-4 孔有明显的梯度蓝色，后3-4 孔梯度不明显时，即可终止)。
8、每孔加终止溶液50μL，终止反应，此时蓝色立转黄色。终止液的加入顺序应尽量与底物溶液的加入顺序相
同。如出现颜色不匀一，请轻轻晃动酶标板以使溶液混合均匀。
9、在确保酶标板底无水滴及孔内无气泡后，立即用酶标仪在450nm 波长测量各孔的光密度(O.D.值)。
注意：
1、试剂准备：准备一次实验所需要的酶标条，其它的可从微孔板上拆下，密封，按照说明书要求保存，以备下
次使用。
2、加样：实验操作中请使用一次性的吸头，避免交叉污染。加样时注意不要有气泡，将样品加于酶标板底部，
尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀。加样或加试剂时，第一个孔与最后一个孔加样之间的时间间隔如果太大，
将会导致不同的“预温育”时间，从而明显地影响到测量值的准确性及重复性。因此，一次加样时间(包括
标准品及所有样品)最好控制在10 分钟内。推荐设置复孔进行实验。
3、温育：为防止样品蒸发，实验时请将加上盖或覆膜的酶标板置于湿盒内，以避免液体蒸发，洗板后应尽快进
行下步操作，任何时侯都应避免酶标板处于干燥状态，同时应严格遵守给定的温育时间和温度。
4、洗涤：充分的洗涤非常重要，在每次洗涤过程中，都要将洗涤液完全甩干。洗涤过程中反应孔中残留的洗涤
液应在滤纸上拍干，勿将滤纸直接放入反应孔中吸水，同时要消除板底残留的液体和手指印，避免影响最后
的酶标仪读数。如果有自动洗板机，应在熟练使用后再用到正式实验过程中。
5、反应时间的控制：加入底物后请定时观察反应孔的颜色变化(比如，每隔10 分钟观察一次)，如颜色较深，
请提前加入终止液终止反应，避免反应过强从而影响酶标仪光密度读数。
6、底物：底物请避光保存，在储存和温育时避免强光直接照射。
7、如果实验室内湿度低于60%，推荐使用加湿器提高湿度水平。
[实验原理]
将CRP 抗体包被于96 孔微孔板中，制成固相载体，向微孔中分别加入标准品或标本，其中的CRP 与连接于固相
载体上的抗体结合，然后加入生物素化的CRP 抗体，将未结合的生物素化抗体洗净后，加入HRP 标记的亲和素，
再次彻底洗涤后加入TMB 底物显色。TMB 在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。
颜色的深浅和样品中的CRP 呈正相关。用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度(O.D.值)，计算样品浓度。
[计算]
各标准品及样本O.D.值扣除空白孔O.D.值后作图(七点图)，如设置复孔，则应取其平均值计算。以标准品的浓度
为纵坐标(或对数坐标)，O.D.值为横坐标(或对数坐标），绘出标准曲线(最佳方程式应依回归方程计算的R2值来定，
以R2 值越趋近于1 为好)。推荐使用专业制作曲线软件进行分析，如curve expert 1.30，根据样品O.D.值，由标
准曲线查出相应的浓度，乘以稀释倍数；或用标准物的浓度与O.D.值计算出标准曲