远慕生物:核蛋白的提取方法

柱式法 Minute TM 胞质胞核分离试剂盒操作方法:

A. 悬浮细胞样品(包括植物,细菌,酵母和真菌制备的原生质体)

1.500Xg,3 分钟低速离心收集细胞,用预冷的 PBS 清洗一次

2. 将细胞转移到 1.5 ml 离心管中,3000 rpm 离心 1-5 分钟,弃去上清。

3. 按表格 1 加入适量的胞浆提取缓冲液(请注意样品及裂解液的比例,以达到最佳效果), 涡旋大力震荡 15 秒, 冰上孵育 5 分钟, 混匀. 接转胞质胞核分离步骤。

表格 1,不同细胞体积应加入相应体积缓冲液

细胞体积(ul

胞浆提取缓冲液(ul

胞核提取缓冲液(ul

5

50

25

10

100

50

20

200

100

50

500

250

﹡ NIH3T3 和 293T 细胞 10ul 体积相当于 1*106 个细胞

B. 贴壁细胞

1. 贴壁细胞生长至融合度 90-100%,将预冷的 PBS 直接加入细胞培养板,培养皿或培养瓶中清洗细胞两次,吸去上清。

2. 按表格 2 将适量的胞浆提取缓冲液均匀的加入整个器皿表面,冰上静置 5 分钟。用吸头吹打几次后转移到预冷的 1.5 ml 离心管中。涡旋大力震荡 15 秒。接转胞质胞核分离步骤。(请注意样品及裂解液的比例,如浓度较低请减少裂解液使用量)

表格 2,不同贴壁细胞量应加入相应体积缓冲液

器皿  

胞浆提取缓冲液(ul

胞核提取缓冲液(ul

24孔板

80

25

6孔板

300

150

25 cm2培养瓶

500

250

C.组织样品

1. 称重适量组织样品,放入预冷的 1.5 ml 离心管中。

2. 用预冷的 PBS 清洗组织样品一次。3000rpm 离心 1 分钟,弃去上清,尽可能的使沉淀干燥。

3. 按表格 3 加入适量胞浆提取缓冲液,用微型管杵或微粉碎机匀浆,去除没有完全匀浆的组织碎片。接转胞质胞核分离步骤。

表格 3,不同组织样品量应加入相应体积缓冲液

组织样品(mg

胞浆提取缓冲液(ul

胞核提取缓冲液(ul

5

50

25

10-15

100

50

15-20

200

100

20-30

500

250

胞质胞核分离步骤

1. 4oC,最高速 (14000-16000 rpm) 离心 5 分钟

2. 将上清液(上清为胞浆组份)转移到一个新的预冷的 1.5 ml 离心管中。将沉淀(可选优化:用 0.5 ml 预冷 PBS 重悬,10000 rpm,离心 3-5 分钟清洗沉淀可以减少胞浆蛋白污染)中加入适量的胞核提取缓冲液,涡旋大力震荡 15 秒,冰上孵育 1 分钟。然后重复震荡 15 秒,冰上孵育 1 分钟四次。(如核蛋白提取浓度低,可适当延长每次孵育及震荡时间)

3. 迅速将核提取物转入到预冷的离心管套管中,14000-16000 rpm,离心 30 秒。弃掉离心管柱。将核蛋白储存于-80℃。一般产量 1.5-2.5 mg/ml。


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