外源DNA/RNA不整合到宿主染色体中,因此一个宿主细胞可存在多个拷贝数,产生高水平的表达,但通常只持续几天,多用于启动子和其他调控元件的分析。一般来说,超螺旋质粒DNA转染效率较高,在转染后24-72h内分析结果,常常用到一些报告系统如荧光蛋白,β半乳糖苷酶等来帮助检测。
稳定转染:外源DNA既可以整合到宿主染色体中,也可能作为一种游离体存在。尽管线性DNA比超螺旋DNA转入量低但整合率高。外源DNA整合到染色体中概率很小,通常需要一些选择性标记反复筛选得到稳定转染的同源细胞系。
方法及特点:
化学法:磷酸钙法、DEAE-右旋糖苷法、阳离子脂质体法
物理法:电穿孔法、显微注射法、biolistic颗粒传递法
病毒介导法:逆转录病毒、腺病毒
阳离子脂质体法:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。
影响转染的因素:
1、血清 血清影响复合物的形成,降低转染效率
阳离子脂质体和DNA的zui佳量在使用血清时会有所不同,因此想在转染培养基中加入血清时要进行条件优化。大部分细胞可以在无血清培养基中几个小时内保持健康,对于对血清缺乏比较敏感的细胞,可以使用OPTI-MEM I培养基。对于对血清缺乏比较敏感的贴壁细胞,建议使用LIPOFECTAMINE 2000。
2、抗生素 比如青霉素和链霉素,是影响转染的培养基添加物。这些抗生素一般对于真核细胞无毒,但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性,使抗生素可以进入细胞。这降低了细胞的活性,导致转染效率低。
3、细胞代数 转染前细胞zui好经过1-2次传代保证细胞生长旺盛容易转染,注意贴壁细胞一旦长满就不好转染。
4、细胞铺板密度 一般转染时,贴壁细胞密度为70%-90%,悬浮细胞密度为2*10^6--4*10^6细胞/ml时效果较好。确保转染时细胞没有长满或处于静止期。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。
5、DNA质量 DNA质量对转染效率影响非常大。一般的转染技术基于电荷吸引原理,如果DNA不纯,如带少量的盐离子,蛋白,代谢物污染都会显著影响转染复合物的有效形成和转染的进行。
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