供货周期: | 现货 |
品牌: | LMAI Bio |
规格: | 100次 |
货号: | LM-F271 |
CAS号: |
即用型易错PCR试剂盒
产品特点:制突变PCR易错 PCR(error-prone PCR)是利用 Taq DNA 多聚酶不具有 3′→5′校对功能的特性,在一定条件下(如不同的 dNTP 浓度、Mg 浓度和 MnCl2存在)能够按较高的机率引入随机引入突变。如果有适当的选择方法,则可从构建的突变库选出所需突变体。易错 PCR 和常规 PCR 的比较如下:本产品就是专门为广大的研究工作者进行易错 PCR 而开发,本产品具有下列特点:
1. 即开即用,十分简单方便,尤其在生物制药和酶学研究领域显示出了它的优越性。
2. 配方经过精心优化,突变率稳定,突变没有趋向性。易错 PCR 的突变率为 0.66%(±0.13%),详见使用手册疑难解答。
3. 比体内基因突变更快捷简单,但如果在 PCR 引物中设计位点,则可使产物克隆到表达载体,也可以用于体内蛋白活性的筛选。
4. 可用于连续易错 PCR(sequential error-prone PCR),只需把上一次易错 PCR 的产物用作下一次易错 PCR 的模板即可,使每一次获得的小突变累积而产生重要的有益突变。
5. 只适用于扩增 1kb 以下的产物,对于 1kb 以上的产物,建议分段扩增。
6. 本产品足够 100 次 30uL 体系的易错 PCR 反应,只能用于科研。
规格及成分 成 份 编 号 十孔盒包装
易错 PCR Mix,10× LM101005a 300 uL(白盖)
易错 PCR 专用 dNTP,10× LM101005b 300 uL(绿盖)
易错 PCR 专用 MnCl2 LM160903c 300 uL(黄盖)
易错 PCR 专用
Taq DNA 聚合酶(5U/uL)
101005c 50 uL(红盖)
使用手册 101005sc 1 份
运输及保存 低温运输,-20℃保存, 有效期为一年。
自备试剂 引物、DNA 模板、超纯水。
使用方法 1. 将自备的 PCR 引物稀释到 10uM。引物也是决定易错 PCR 成败的关键因素,设计引物时要保证其 Tm 在 70℃,长度在 25-30nt 之间,GC 含量在 45%-60%之间,3端 GC 含量低,并且没有发夹结构。用自备引物和常规 PCR 试剂扩增制备易错 DNA 模板(常规 PCR 产物),胶回收并准确确定浓度。注意:易错 PCR 的模板一定要用胶回收的常规 PCR 产物,因为胶回收会可以把电泳不可见的非特异性扩增片段去除,否则这些片段由于也是用易错 PCR引物扩增所得,在易错 PCR 扩增时也会被扩增,产生竞争抑制,降低靶分子的扩增效率。如果常规 PCR 制备模板的引物和易错 PCR 引物不同(类似巢式 PCR)则可以避免此问题,但需要合成两对引物。本试剂盒只适用于扩增 1kb 以下的产物,对于1kb 以上的产物,建议分段扩增。
2. 将回收的 DNA 片段(模板)稀释到 1ng/uL 、10ng/uL 和 100ng/uL 三个浓度。
注意:模板使用量是影响突变率的最重要因素,模板 DNA 为非突变 DNA,扩增产生的 DNA 为突变 DNA,易错 PCR 体系最终 DNA 量是基本固定的,因此模板 DNA 使用量越大,则突变 DNA 在终产物中的相对比例就越低,突变率就越低。反之亦然。但模板太少又不容易扩增成功,所以建议同时测试三个模板用量。如果都成功,则优先选用模板浓度低的 PCR 产物进行分析。
3. 以 30 uL 的标准 PCR 反应体系为例,如果反应体系不是 30 uL,各成分需要等按比例增加或减少。在一干净的 PCR 管中,加入下列成分:成分 模板用量 1 模板用量 2 模板用量 3
易错 PCR Mix, 10× 3 uL 3 uL 3 uL
自备 DNA 模板 1 uL(1ng/uL)1 uL(10ng/uL)1 uL(100ng/uL)
易错 PCR 专用 dNTP,10×3 uL 3 uL 3 uL
易错 PCR 专用 MnCl2 3 uL 3 uL 3 uL自备易错 PCR 引物(10 uM each)各 1 uL 各 1 uL 各 1 uL
易错 PCR 专用 Taq
DNA 聚合酶(5U/uL)
0.5 uL 0.5 uL 0.5 uL
补自备超纯水到 30 uL 30 uL 30 uL
4. 按用户已经优化的 PCR 条件进行一定循环数的 PCR(循环数与突变率的关系见下表),然后取 10uL 电泳检查。如果没有优化的 PCR 条件,一般可以先尝试下面的PCR 条件(注意:易错 PCR 一般不需要热启动,也不需要在 PCR 结束后做延伸处理):
步骤 参数 循环数
PCR 前变性 94℃ 3 分钟 循环 1 次
易错 PCR
94℃ 1 分钟
45℃ 1 分钟 循环 30-60 次
72℃ 1 分钟
注:易错 PCR 一般不需要热启动,也不需要在易错 PCR 结束后做延伸处理。易错 PCR
循环次数越多,突变 DNA(扩增产物)与非突变 DNA(原始模板)的比例就越高。此外
在突变率和模板长度恒定的情况下,扩增次数越多,发生突变的数就越高,在同一模
板上发生的突变位点数就越多,所以如果需要,可以做 30、35、40、45、50、55、60
次 7 个循环数的比较。
5. 电泳检测是否得到预计长度的 PCR 产物。如果没有,可以调整模板用量和 PCR 参数。
6. 胶回收易错 PCR 扩增产物、克隆并对单菌落进行功能筛选或测序分析、如果需要增加突变率,可以以突变后的 DNA 为模板,进行下一轮易错 PCR。
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