供货周期: | 现货 |
品牌: | 钦诚生物 |
规格: | 50次 |
货号: | QC100601-50 |
CAS号: |
动物细胞核制备试剂盒(密度梯度法)
英文名称:Nuclei Miniprep Kit
运输:常温
保存:常温
有效期:1年
货期:1-2天
其他:
产品介绍:
制备动物细胞核
原理及特点
用高密度介质来分离动物软体组织(如肝脏、脾脏等)细胞核是目前主
流的方法,它是由 Chauveau 于 1956 年发明,其原理是细胞核的密度较大,
在高速离心条件下(40 000g 1 小时)可在高密度介质(2.2mol/l 蔗糖溶液)
中沉降下来,从而达到与细胞质其它成分分开的目的。该方法能通过一步离
心得到较高纯度的细胞核,得到广泛应用。本产品就是在 Chauveau 方法的
基础上优化改进而来,它具有下列特点:
1. 基于密度梯度分离,可有效去除细胞质及其他细胞器,得到的细胞核纯净,
2. 加进氯化钙、氯化镁、氯化钾等改变分离介质渗透压的物质,减少了细胞
核的脆性,增加了细胞核的完整性。
3. 精心调节了介质的 pH,防止细胞核在分离过程中的聚集,还能保持细胞
核的精细结构
4. 快速,整个操作过程仅需 1 小时即可完成(对一个样品而言)。
5. 提供染色试剂,可以在普通光学显微镜下检测纯化的细胞核的纯度。
6. 处理温和,得到的细胞核中的大部分蛋白质都具有活性,可以用于胶迟阻
实验、酶活性分析细胞凋亡、信号传递、代谢和蛋白组学等的研究;也可
用于超大片段 DNA 的纯化。
7. 不但适用于动物和植物培养细胞,还能用于实体组织(能用 Dounce 或
Potter 匀浆器匀浆的组织均可)。
8. 一次微量提取足够处理 0.1 克组织或 10E7 个培养细胞,本产品足够 50
次微量提取。
运输及保存 常温运输和保存,有效期一年
自备试剂 手动或电动 Dounce 或 Potter 组织匀浆器(研磨杵和套管的空隙最好为 0.1
mm,如果小于细胞核的直径,则会使细胞核破裂)、水平式低温高速离心机、
光学显微镜。
使用方法 一、准备工作:先将溶液 A 的成分二(干粉)全部加入到溶液 A 成分一(溶
液)中,摇晃溶解后得到 100mL 溶液 A。将溶液 B 的成分二(干粉)
全部加入到溶液 B 成分一(溶液)中,摇晃溶解后得到 50mL 溶液 B。
4℃放置不能超过 2 天,长期放置需要放-20℃。
二、微量细胞核分离(放量提取各试剂的用量可以按比例放大):
1. 对组织细胞:称取 100~200 mg 新鲜组织(如动物肝脏、脑、心肌和植
物叶片等),用自备的 PBS 或生理盐水洗净血水,滤纸吸干,用剪刀或刀
片将其剪为碎块(最好大小为 1cm3,过小反而不利于匀浆)放入小容量
Dounce 或 Potter 玻璃匀浆器内。
2. 对培养细胞:用自备胰酶按标准方法消化培养细胞,PBS 洗涤,800×g
5~10 分钟离心收集细胞,计数。每次微量提取需要 5 × 10E7 个细胞,
加入 1.0 mL 预冷的溶液 A 重悬细胞,然后转移到小容量 Dounce 或
Potter 玻璃匀浆器内,
3. 用 Dounce 或 Potter 组织匀浆器在冰上破碎组织或细胞。如果用手动匀
浆器,一般需要 20~30 次。如果用电动匀浆器,一般需要处理 3-5 次,
每次 5~10 秒钟(转速为 500r/min)。
推荐使用的两种匀浆器,空隙为 0.1 mm
4. 将匀浆液转移到离心管中。如果匀浆液有可见的结缔组织和未破碎的组织
块,可以用三层自备的纱布放在 1.5 mL 离心管管口,将匀浆液过滤进入
离心管。可取少量滤液涂在载玻片上制得涂片 A,自然干燥涂片以便染色
做显微镜观察。
5. 4℃,700-800×g 水平离心 5-10 分钟。细胞核沉淀在收集管底部,弃
上清。可取少量上清液涂在载玻片上制得涂片 B,自然干燥涂片以便染色
做显微镜观察。
6. 加入 0.5 mL 预冷溶液 A 重悬沉淀。用预冷的匀浆器(用前需要将表面
的组织洗去)重悬沉淀。可取少量上清液涂在载玻片上制得涂片 C,自然
干燥涂片以便染色做显微镜观察。
7. 在水平型离心管中加入 0.5mL 预冷的溶液 B,然后靠管壁慢慢加入上步
得到的重悬液。
8. 在 4℃ 23000g 离心 30 分钟,管底的沉淀即为细胞核。
9. 小心吸弃上清液。注意:上清一般比较粘稠,最好倒立一段时间。
10.用 0.5 mL 溶液 A 重悬沉淀。
11.在 4℃ 1500g 离心 5 分钟,吸弃上清,沉淀即为纯净的细胞核。可以直
接使用,也可以加等体积的自备甘油,混匀后放液氮或-70℃保存。可取
少量上悬浮液涂在载玻片上制得涂片 D,自然干燥涂片以便染色做显微
镜观察。
12.用本方法一般可以从 0.1g 肝脏组织中纯化到 1-2×107 个细胞核。如果
后续试验是 Western Blot 和 2D-胶电泳,可直接加入上样缓冲液裂解细
胞核后上样。
三、显微镜检测涂片,计算效率
1. 将干燥后的 A-D 四张涂片加入固定液固定 15 分钟,晾干。
2. Giemsa 染液染 10 分钟。
3. 自备蒸馏水漂洗数秒,用滤纸吸干水。
4. 用显微镜(40×)检查涂片,细胞核将呈紫红色,混杂的细胞质为浅蓝
色碎片。根据每步细胞核的数量可以粗略估计回收效率。
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