鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体）PCR试剂盒

鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体）PCR试剂盒

【产品名称】

英文名称：Borrelia anserina PCR Kit

中文名称：鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体）PCR试剂盒

【包装规格】

50T/盒

【预期用途】

本产品就是为此目的根据 PCR 原理开发的试剂盒，它具有下列特点：

1. 即开即用，用户只需要提供 DNA 模板。

2. 引物经过精心优化，专一性强，只扩增鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体），与其他病毒没有交叉反应。

3. 提供阳性对照，便于区分假阴性样品。

4. PCR mix 中含上样染料，PCR 后可以直接上样电泳。

5. 本试剂盒足够做 40μL 体系的 PCR 50 次，但只能用于科研。

【检验原理】

本试剂盒采用 PCR 技术，针对鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体）的基因高度保守区域设计特异性引物，用 PCR 技术对鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体）的核酸进行体外扩增检测，在反应体系中含鹅疏螺旋体（鹅包柔氏螺旋体）核酸模板的情况下，PCR 反应进行特异性扩增，利用琼脂糖凝胶电泳技术对 PCR 扩增产物进行检测，依据特异性扩增片段的结果，判断待检样品中是否含有猪细小病毒源性成分，实现检测结果的定性分析。

【试剂组成】

说明：1）不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

2）试剂盒内各试剂组份足够包装规格所标示的检测次数。

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融少于 7 次，有效期 12 个月。

【适用仪器】

无 DNA/RNA 酶的 1.5mL 离心管，0.2mL PCR 反应管，滤芯吸头(规格:10μL,200μL,1000μL)，离心机，振荡混合器，各种规格的移液器，琼脂糖，电泳槽，电泳仪，凝胶成像系统。

【样品要求】

1. 根据实际情况可采取食品、粪便、呕吐物、口腔样本，唾液、咽喉部鼻孔眼部和肛门拭子及病毒培养物作为检测样本。

2. 应避免样本间交叉污染，样本采集后应及时检测，也可保存于-20±5℃待检，长期保存应置于-70℃以下。

【样品保存和运输】

上述标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-70℃，但不能超过 6 个月，标本运送应采用 2~8℃冰袋运输，严禁反复冻融。

【使用方法】

1. 样品处理（样本处理区）

1.1 样本前处理

取悬浮的口腔样本或粪便样本 100ul，加入 1.5ml 离心管中，用 DNA 核酸提取试剂盒进行提取即可。

1.2 DNA 提取

根据您实验室的具体情况和样品类型，选择适当的提取策略方法。为了使实验结果稳定、有效、可靠，我们建议使用商品化的试剂盒进行提取，严格按照对应试剂盒说明书进行操作，样本核酸提取过程中应避免污染，提取好的模板样品如不能立即检测，建议-15℃以下保存。

推荐采用我们公司研发生产的试剂盒：Hypure 病毒基因组 DNA 提取试剂盒(离心柱法) 

2. 试剂配制（试剂准备区）

2.1 从-15℃以下冰箱中取出试剂盒平衡到室温（20～25℃），注意避免强光照射，待完全溶解后振荡混匀并低速离心 10 s，使用低吸附吸头分液取样，避免试剂损失和浪费。

2.2 根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；样品每满 7 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表：

2.3 在适当容积的无菌离心管中加入上述试剂，充分振荡混匀后 2000 rpm 离心 10 s，按照 20 μL/管分装量将试剂分装至八联 PCR 反应管中。

2.4 盖紧八联 PCR 反应管盖, 并注意做好相应标识（请标记在八联 PCR 反应管盖两端突出部位，切勿标记在八联 PCR 反应管盖中间）。将 PCR 反应管转移至样本准备区，剩余试剂放回-15℃以下冰箱冷冻保存。

3. 加样（样本处理区）

将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀，短暂离心，核酸加样过程中应避免污染。

备注：模板浓度高或存在 PCR 抑制物，需用超纯水稀释模板 DNA，DNA 浓度低于 50ng/ul，可加 5μL 模板，高浓度 DNA 可能抑制 PCR 反应。

4. PCR 扩增（核酸扩增区）

4.1 将待检测反应管置于 PCR 仪反应槽内, 并记录放置顺序；

4.2 推荐循环参数设置：

5. 结果分析判定

5.1 电泳检测

取 10-20 μL PCR 产物。电泳检测 PCR 产物。本产品提供的扩增液在扩增结束后可以直接上样，不需要另外再加 loading buffer。

5.2 电泳结果判断

PCR 产物阳性对照必须有目的片段大小的条带出现，阴性对照必须无任何扩增，否则实验无效。对没有扩增产物的样品，可以稀释 10 倍后重复 PCR 扩增以排除PCR 抑制剂的感染。

6. 检测方法的局限性

Ø 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；

Ø 样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；

Ø 阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；

Ø 不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；

Ø 试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果。

7. 注意事项

Ø 所有操作严格按照说明书进行；

Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化，混匀并短暂离心；

Ø 反应液应避光保存；

Ø 反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；

Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；

Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；

Ø 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；

Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！