藻类荧量仪

产品概述BGA-3000藻类自动分析仪采用荧光光谱分析方法，通过分析不同门类藻类的特异性荧光光谱，实现藻类快速监测。设备可同时监测藻密度和叶绿素a，无需试剂，整体便携手提箱设计，适合车载、船载等便携应用形式。产品特点1）自带温度补偿和浊度补偿功能，测量更准确2）多波长测量方法，数据更可靠3）背景扣除算法消除水中荧光有机物干扰，结果更准确4）具备水深监测功能，准确识别藻在水深方向的变化，支持不同水深剖面监测藻类密度，最深可在水下200m实现藻类测量5）创新性采用高集成度关键器件，相较同类产品具有低故障率、易维护的优势6）数据查看方便，提供安卓端、IOS端、Windows端三种软件查看数据7）可同时监测藻密度和叶绿素a浓度8）设备轻便，体积小，易携带应用领域湖泊、水库、饮用水源地、城市内河等

AquaPen AP110便携式藻类荧光测量仪是一款用于快速、精确测量水体藻类与蓝藻叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。AquaPen有两种探头型号。AP110-C配备比色杯试管测量室，将要测量的水体、悬浊液或培养溶液采集到比色杯中进行测量，配备455nm蓝色和620nmLED红色光源，既可以测量叶绿素荧光，又可以测量680nm和720nm光密度。AP110-P配备了浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量，也可测量大型藻类。AquaPen 具备极高的敏感度，可检测最低0.5μg Chl/L的叶绿素荧光，可以检测浮游植物浓度极低的自然水体，可用于野外和实验室测量。AquaPen采用调试式荧光测量技术，可设置多种参数，方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧，方便携带，设计新颖，操作简单，经济耐用，精度高稳定性好。 AquaPen AP110便携式藻类荧光测量仪应用领域 藻类、蓝藻光合特性研究 水体藻类含量检测 光合突变体筛选与表型研究 生物和非生物胁迫的检测 藻类抗胁迫能力或者易感性研究 经济藻类育种、病害检测、长势与产量评估 功能特点：§ 结构紧凑、便携性强，LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内，重量仅180g§ 功能强大，是叶绿素荧光技术的高端结晶产品，具备了大型荧光仪的所有功能，可以测量所有叶绿素荧光参数§ 内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序，包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP–test等§ 高时间分辨率，可达10万次每秒，自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数§ AquaPen两种探头型号：比色杯试管测量室，既可以测量叶绿素荧光，又可以测量680nm和720nm光密度；浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量，也可测量大型藻类§ FluorPen专业软件功能强大，可下载、展示叶绿素荧光参数图表，也可以通过软件直接控制仪器进行测量§ 具备无人值守自动监测功能

AquaPen AP110手持式藻类荧光测量仪是一款用于快速、精确测量水体藻类与蓝藻叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。AquaPen有两种探头型号。AP110-C配备比色杯试管测量室，将要测量的水体、悬浊液或培养溶液采集到比色杯中进行测量，配备455nm蓝色和620nmLED红色光源，既可以测量叶绿素荧光，又可以测量680nm和720nm光密度。AP110-P配备了浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量，也可测量大型藻类。AquaPen 具备极高的敏感度，可检测最低0.5μg Chl/L的叶绿素荧光，可以检测浮游植物浓度极低的自然水体，可用于野外和实验室测量。AquaPen采用调试式荧光测量技术，可设置多种参数，方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧，方便携带，设计新颖，操作简单，经济耐用，精度高稳定性好。应用领域 藻类、蓝藻光合特性研究 水体藻类含量检测 光合突变体筛选与表型研究 生物和非生物胁迫的检测 藻类抗胁迫能力或者易感性研究 经济藻类育种、病害检测、长势与产量评估 教学功能特点：§ 结构紧凑、便携性强，LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内，重量仅180g§ 功能强大，是叶绿素荧光技术的高端结晶产品，具备了大型荧光仪的所有功能，可以测量所有叶绿素荧光参数§ 内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序，包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP–test等§ 高时间分辨率，可达10万次每秒，自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数§ AquaPen两种探头型号：比色杯试管测量室，既可以测量叶绿素荧光，又可以测量680nm和720nm光密度；浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量，也可测量大型藻类§ FluorPen专业软件功能强大，可下载、展示叶绿素荧光参数图表，也可以通过软件直接控制仪器进行测量§ 具备无人值守自动监测功能§ 内置蓝牙与USB双通讯模块, GPS模块，输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表§ 配备多种叶夹型号：固定叶夹式（适用于大批量样品快速测量）、分离叶夹式（适用于暗适应测量）、开放叶夹式（适用于温室、培养箱进行监测）、用户定制式等§ 可选配野外自动监测式荧光仪，防水防尘设计测量程序与功能 Ft：瞬时叶绿素荧光,暗适应完成后Ft＝F0 QY：量子产额，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应状态)或ΦPSII (光适应状态)。 OJIP：快速荧光动力学曲线，用于研究植物暗适应后的快速荧光动态变化 NPQ：荧光淬灭动力学曲线，用于研究植物从暗适应到光适应状态的荧光淬灭变化过程。 LC：光响应曲线，用于研究植物对不同光强的荧光淬灭反应。 OD：光密度，反映藻类密度（限AP110-C）。技术参数 测量参数包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶绿素荧光参数，OD680和OD720（限AP110-C）及3种给光程序的光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等 OJIP–test时间分辨率为10μs（每秒10万次），给出OJIP曲线和26个参数，包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等 测量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、LC1、LC2、LC3、OD（限AP110-C）、Multi无人值守自动监测 测量光：每测量脉冲0-0.09μmol(photons)/m2.s，0-100%可调 光化学光：0–1000μmol(photons)/m2.s，0-100%可调 饱和光：0–3000μmol(photons)/m2.s，0-100%可调 探头型号：AP110-C试管式、AP110-P探头式 光源：AP110-C：620nm红光和455nm蓝光测量叶绿素荧光，680nm和720nm红外光测量OD；AP110-P：455nm蓝光 试管容积（限AP110-C）：4ml 叶绿素荧光检测限：0.5μg Chl/L 检测器：PIN光电二极管，667–750nm滤波器 尺寸大小：超便携，手机大小，165×65×55mm，重量仅290g 存贮：容量16Mb，可存储149000数据点 显示与操作：图形化显示，双键操作，待机8分钟自动关闭 供电：可充电锂电池，USB充电，连续工作48小时，低电报警 工作条件：0–55℃，0–95%相对湿度（无凝结水） 存贮条件：-10–60℃，0–95％相对湿度（无凝结水） 通讯方式：蓝牙+USB双通讯模式 GPS模块：内置 软件：FluorPen1.1专用软件，用于数据下载、分析和图表显示，输出Excel数据文件及荧光动力学曲线图，适用于Windows 7及更高操作系统操作软件与实验结果产地: 欧洲参考文献1. X Chen, et al. 2018. The secretion of organics by living Microcystis under the dark/anoxic condition and its enhancing effect on nitrate removal. Chemosphere 196: 280-2872. C M' Rabet, et al. 2018. Impact of two plastic-derived chemicals, the Bisphenol A and the di-2-ethylhexyl phthalate, exposure on the marine toxic dinoflagellate Alexandrium pacificum. Marine Pollution Bulletin 126: 241-2493. P Steinrücken, et al. 2018. Comparing EPA production and fatty acid profiles of three Phaeodactylum tricornutum strains under western Norwegian climate conditions. Algal Research 30: 11-224. T Kieselbach, et al. 2018. Proteomic analysis of the phycobiliprotein antenna of the cryptophyte alga Guillardia theta cultured under different light intensities. Photosynthesis Research 135(1-3): 149-1635. E Bermejo, et al. 2018. Production of lutein, and polyunsaturated fatty acids by the acidophilic eukaryotic microalga Coccomyxa onubensis under abiotic stress by salt or ultraviolet light. Journal of Bioscience and Bioengineering, Available online 20 January 2018, In Press6. W Noh, et al. 2018. Harvesting and contamination control of microalgae Chlorella ellipsoidea using the bio-polymeric flocculant α-poly-l-lysine. Bioresource Technology 249: 206-2117. S Arisaka, et al. 2018. Genetic manipulation to overexpress rpaA altered photosynthetic electron transport in Synechocystis sp. PCC 6803. Journal of Bioscience and Bioengineering, Available online 5 March 2018, In Press8. J Tang, et al. 2018. Sustainable pollutant removal by periphytic biofilm via microbial composition shifts induced by uneven distribution of CeO2 nanoparticles. Bioresource Technology 248: 75-819. T Antal, et al. 2018. Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiologia Plantarum, https://doi.org/10.1111/ppl.1269310. SB Ouada, et al. 2018. Effect and removal of bisphenol A by two extremophilic microalgal strains (Chlorophyta). Journal of Applied Phycology 6: 1-12