叶片工业检测

无损检测葡萄叶片中的花青素含量最近对红色花青素的一项调查研究表明，花青素具有某种药理性质可以减少动脉粥样硬化，心血管疾病，血栓症及癌症的发生率，这引发了人们对其的研究热情。花青素含量可以反映植物生理状态的有用信息，不同品种及培养方式都可以造成花青素含量的差异，通常在新生及正在衰老的叶片中，亮红色花青素含量丰富，干旱或缺少元素钾，极高的温度以及极度的光照都会引起花青素的合成，因此花青素也可用于作物胁迫的指示剂。检测花青素的传统方法主要为湿化学法，从提取的花青素溶液中通过吸光度得到花青素含量，既耗时又对叶片又破坏性，反射测量可以有效，无损，即时的监测花青素含量，为植物合成物检测提供了新的思路。实验方法:反射法检测花青素含量ACI主要通过比较叶绿素在近红外的吸收与在绿光范围的反射之比得到。研究中采用的叶片为生长时间10-90天，厚度0.25-0.6mm。反射测量采用分叉光纤，USB2000光谱仪（350-1000nm）和LS-1卤钨灯，塑料叶片夹用于固定光纤探头的检测位置，每片采集6个点，然后每片剪取直径1cm的圆片提取色素，通过吸光度检测计算色素含量，将所得数据分为验证集和标准集。实验结论与分析:花青素含量ACI=αgreen/αNIR，通过计算530nm和940nm的反射率之比得到，即Modified ACI = ρNIR/ρgreen，其他参数，如Red/Green，花青素反射指标ARI和MARI等通过平均反射率得出，λgreen = 540–560nm； λred = 660–680 nm； λred edge = 690–710 nm；and λNIR =760–800 nm，结果表明，ARI和MARI在无损预测叶片中花青素含量十分有效，不受叶片厚度，色素组成，叶片年龄的影响，通过ARI预测需要540-560nm和690-710nm两个波段，而通过MARI预测还需要近红外760-800nm波段的信息。其中AnthARI=1.11ˣAnthmeas+0.97(R2=0.96，RMSE2.93 nmol/cm2)，AnthMARI=0.99ˣAnthmeas+0.18(R2=0.97，RMSE2.23 nmol/cm2)。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211182153_405099_2432394_3.jpghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211182153_405100_2432394_3.jpg

摘要： 本小论文利用GC-MS测定了两种含有特殊脂肪酸植物（琉璃苣和报春）叶片的脂肪酸含量和种类，提供了提取植物叶片脂肪酸的方法，并对实验结果进行了简单的分析和讨论。前言： 多不饱和脂肪酸是重要的生物营养物质，指含有两个或两个以上双键并且碳链长度为18~22个碳原子的直链脂肪酸。它们在机体内发挥着重要的生理功能和生物学效应。其中，亚油酸（LA）及亚麻酸（ALA）被公认为人体必需脂肪酸，可进一步衍生为具有不同功能的高度不饱和脂肪酸，如花生四烯酸（AA）、二十碳五烯酸（EPA）、二十二碳六烯酸（DHA）等。 人体自身不能合成亚油酸和亚麻酸（所以这两种脂肪酸被称为必需脂肪酸），但是却含有进一步合成更长链多不饱和脂肪酸的酶。而高等植物体内都能合成亚油酸和亚麻酸，但却不能合成进一步合成更长链脂肪酸的酶，也就不能不能合成多不饱和脂肪酸。仅有少数高等植物如月见草，琉璃苣，报春等能合成利用亚油酸和亚麻酸的Δ6-脂肪酸脱氢酶，因而可以进一步合成γ-亚麻酸（GLA）和十八碳四烯酸（OTA）。二者在人体内都具有重要的生理功能。GLA是重要的前体物质，可合成AA、前列腺素等，同时GLA还有降血脂、减肥、抗血栓性心血管疾病等生物学功能。OTA是EPA和DHA的前体，可以有效缓解与EPA和DHA缺乏有关的生理疾病。 琉璃苣，为紫草科琉璃苣属植物，1年生草本，果实为小坚果，主要分布在欧洲与非洲地区。报春，为报春花科报春花属植物，一年生草本，果实为小坚果，主要分布于北温带，少产于南半球，是一种重要的观赏植物。这两种植物种子都含有丰富的GLA和OTA，但对于其叶片脂肪酸种类却鲜有报道，这里利用GC-MS检测了两种植物叶片的脂肪酸组成及含量。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211271753_407677_1306303_3.bmp 图1：琉璃苣植株及花器官（图片来源于网络）http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211271754_407678_1306303_3.jpg图2：报春植株及花器官（图片来自网络） 气相色谱-质谱联用仪（GC-MS）是油脂研究中的常用仪器之一。组成油脂的脂肪酸部分大多容易气化，在试验中，常利用GC-MS检测油脂中脂肪酸的组成及含量。这里用GC-MS检测报春及琉璃苣叶片中脂肪酸组成及含量。实验材料及采用仪器：1 实验材料： 自己栽培的琉璃苣及报春。2实验主要仪器： 恒温水浴锅，氮气吹干仪，PerkinElmer GC-MShttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211271756_407680_1306303_3.png图3 恒温水浴锅http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/201211271756_407681_1306303_3.jpg图4 氮气吹干仪http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/11/20121127

目前公司开发3.0M瓦风机叶片的研制，以前都是用玻璃纤维增强，此项目准备使用碳纤维。希望权威人士能给些有用的参考资料和相关信息。可包括叶片形状设计，纤维铺层设计，树脂和纤维材料的选择，以及各种检测方法等系列相关信息。不胜感谢！！！

植物的叶片一般由上表皮，叶肉组织，下表皮，保卫细胞，气孔五个部分组成，由于下表皮含有保卫细胞和气孔两个组织，在实验中一般选择植物叶片下表皮细胞来观察植物叶片生长发育情况。而植物下表皮作为叶片一部分，而且十分轻薄，要怎样快速的获得该组织呢？http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/10/2015071521495131_01_3021049_3.png我搜查了一下有关剥离植物叶片下表皮的方法。包括有透明法，铬酸离析法，指甲油、琼脂等物质的印拓法和次氯酸钠离析法等。不过指甲油和琼脂的印拓法的指甲油和琼脂在显微镜下影像模糊，影像气孔数据统计，而次氯酸钠离析法剥离下表皮操作时比较复杂，以上这些方法都相对来说操作较复杂。对于一般的叶片，比如玉米，可以有最简便的办法。方法一是直接撕取法，选取一些相对老的叶片较容易剥离，手指夹紧叶片，用尖头夹紧一小片，直接撕取，在撕下的叶片边缘会有一些只有下表皮层，这个方法要多试几次。方法二，胶带撕取法。先用刀片在叶片背面轻轻的划一些小道，要轻轻的，不能划穿了叶片。然后用胶带粘住叶片，可以用力按压，然后快速撕下胶带，在胶带上会沾上下表皮层，可以直接观察。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/10/2015071522180481_01_0_3.jpghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/10/2015071522181077_01_3021049_3.jpg本人推崇简单，一般采用下面两个最简单的办法。下面是拍摄的图片。接下来想做叶片纵切，不知道大家有谁有简便的叶片纵切方法，希望能一起交流。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/07/201507152224_555710_3021049_3.jpg

[align=center]不同环氧树脂对水稻叶片超微结构的影响[/align][align=center]吴佳楠[url=#footnote_1]1[/url][font=times new roman][size=13px]，张丽娜[/size][/font][font=times new roman][sup][size=13px]2[/size][/sup][/font][/align][align=center]（中国农业科学院 作物科学研究所 重大平台中心，北京 100089）[/align]摘要：树脂包埋是制备超薄切片前的关键一步，良好的包埋效果是保证超微结构真实的保证，不同的包埋剂根据其自身特点对样品包埋过程产生不同的影响。本文以水稻超微结构为例，对比实验室常用的两种环氧树脂spurr和epon812的包埋效果，发现spurr的包埋效果整体上要优于epon812，但是在干燥的环境下，epon812包埋效果较好。关键词：树脂；spurr；epon812；水稻叶片实验室常用环氧树脂spurr和epon812均可以用于制备水稻叶片超薄切片，其中spurr树脂的流动性好、黏度小，常用于植物组织的包埋；epon812由于黏度大、易吸潮，较少的用于植物组织。但因为epon812具有高度反差和良好的切割性能，在保证环境湿度的前提下，epon812也可以用于植物组织的渗透包埋。本文以水稻叶片为例，通过相同的样品制备流程，对比spurr和epon812在不同环境条件下的包埋效果，spurr树脂的整体包埋效果，如切片的平整度和衬度要优于epon812，但是在干燥环境中epon812包埋的样品，其切片的平整度和衬度要优于spurr，并且在切片的时候无需采用氯仿薰片，即可获得平整的超薄切片。1[font=宋体] 实验方法[/font]1.1取材取新鲜的水稻叶片，蒸馏水清洗表面杂质，用干净的双面刀片切成1mm[sup]3[/sup]大小的组织块，立即投入2.5%戊二醛+4%多聚甲醛固定液中抽真空固定24h[font=calibri][sup][1][/sup][/font]。1.2清洗、脱水固定完成的水稻叶片经0.1mol PB清洗后采用30%、50%、70%、90%、100%、100%丙酮依次脱水10min。1.3树脂渗透分别配置spurr和epon812树脂，具体配方见表1和表2。采用丙酮：树脂为1：1和1:3的比例配置spurr和epon812的树脂渗透液，每个梯度渗透12小时。纯树脂渗透2次，每次24小时树脂渗透过程需辅助旋转装置，保证渗透完全[font=calibri][sup][2][/sup][/font]。[align=center]表1 spurr树脂配方[/align][table][tr][td][align=center]树脂单体[/align][/td][td][align=center]质量（g）[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]ERL-4221[/align][/td][td][align=center]10[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]DER-736[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]NSA[/align][/td][td][align=center]26[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]DMAE[/align][/td][td][align=center]0.4ml[/align][/td][/tr][/table][align=center]表2 epon812树脂配方（Luft配方，1961）[/align][table][tr][td][/td][td][align=center]树脂单体[/align][/td][td][align=center]质量（ml）[/align][/td][/tr][tr][td=1,2][align=center]A液[/align][/td][td][align=center]Epon812[/align][/td][td][align=center]62[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]DDSA[/align][/td][td][align=center]100[/align][/td][/tr][tr][td=1,2][align=center]B液[/align][/td][td][align=center]Epon812[/align][/td][td][align=center]100[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]MNA[/align][/td][td][align=center]89[/align][/td][/tr][tr][td=3,1][align=center]根据湿度将A和B液在使用前混合：[/align][align=center]夏季A:B=1:4；冬季A:B=1:9[/align][align=center]混合后滴加催化剂DMP-30[/align][/td][/tr][/table]1.4包埋聚合spurr和epon812渗透的水稻组织均采用包埋板包埋（包埋板使用之前需在70℃烘箱中过夜，去除微滴水分），其中spurr70℃聚合48h，epon812 40℃聚合6h后60℃聚合42h。1.5切片染色观察聚合好的叶片经超薄切片机切片70nm，捞于铜网上干燥后染色，于HT7700透射电子显微镜下观察，记录实验结果。2 实验结果与讨论2.1干燥环境下两种环氧树脂渗透的水稻叶片及叶绿体[align=center][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/10/202310311528566275_9449_3446098_3.jpg[/img][/align][align=center]图1 干燥环境（北京4、5月份）下spurr树脂和epon812树脂渗透的水稻叶片和叶绿体[/align][align=center]a和b为spurr树脂渗透包埋的水稻叶片及叶绿体；[/align][align=center]c和d为epon812树脂渗透包埋的水稻叶片及叶绿体[/align]图1为干燥环境下spurr树脂和epon812树脂渗透的水稻叶片及叶绿体，从图中可以看出，干燥环境下，两种环氧树脂渗透的水稻叶片切片的平整度和均一性良好，细胞结构清晰、细胞膜完整，叶绿体类囊体层次清晰；且epon812树脂渗透的水稻叶片及叶绿体的衬度较高。2.2干燥环境下两种环氧树脂渗透的水稻叶片及叶绿体[align=center][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/10/202310311528566912_7299_3446098_3.jpg[/img][/align][align=center]图2 潮湿环境（北京6、7月份）下spurr树脂和epon812树脂渗透的水稻叶片和叶绿体[/align][align=center]a和b为spurr树脂渗透包埋的水稻叶片及叶绿体；[/align][align=center]c和d为epon812树脂渗透包埋的水稻叶片及叶绿体[/align][align=center][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/10/202310311528570282_501_3446098_3.jpg[/img][/align][align=center]图3 潮湿环境（北京6、7月份）下epon812树脂渗透的水稻叶片和叶绿体[/align]图2为潮湿环境下spurr树脂和epon812树脂渗透的水稻叶片及叶绿体，从图中可以看出，潮湿环境下，spurr树脂渗透的水稻叶片及叶绿体结构完整、清晰，叶绿体类囊体层次清晰。而图2中epon812树脂渗透的水稻叶片及叶绿体结构模糊，衬度明显下降；在图3中可以看到叶片呈现“磨砂玻璃”状形态，提示严重吸潮。2.3讨论从实验结果中我们发现，spurr树脂在干燥（本文选择的是北京4.5月份）和潮湿（本文选择的是北京6、7月份）的环境中均能获得良好的切片效果，切片的平整度和均一性较高，切片衬度良好。这是因为spurr树脂的黏度较低（60CPS）[font=calibri][sup][3][/sup][/font]，对于有细胞壁限制的植物细胞较友好，容易渗透；而且不易吸潮，即使环境潮湿，也可以获得良好的细胞结构。epon812树脂在潮湿环境下（北京6、7月份）渗透的组织,其切片平整度和衬度较差。主要在于epon812配方中使用的NMA和DDSA均为酸酐，极容易吸潮[font=calibri][sup][4][/sup][/font]，而且催化剂DMP-30可以溶于水，尤其是相对湿度在35%以上的环境，会将水分子引入已脱水的组织中，导致组织渗透聚合不良，影响交联反应的均一度和完整度[font=calibri][sup][5][/sup][/font]，最终降低切片质量。树脂受到水分子的干扰，切片会呈现出一种被“磨砂玻璃”覆盖的状态，显示出细胞结构模糊不清，对比度下降；树脂渗透不良，会造成细胞结构出现空洞并造成切片的整体支撑度不均一，致使切片出现长条形的褶皱。此外，吸潮的epon812树脂发脆，切片修块时，容易崩断或呈现粉末状态，严重影响切片操作。但是在干燥环境下（北京4.5月份），spurr和epon812树脂渗透的组织切片平整度无较大差异，并且epon812的衬度要优于spurr，这主要是因为epon812分子量和黏度均较大，可以提高切片的整体支撑度，并且epon812中包含两种酸酐成分，与环氧集团的交联反应优于spurr。Epon812树脂的此种特性也决定切片时，epon812不用采用氯仿薰片即可获得平整的切片，减少了氯仿的使用，节约了切片时间[font=calibri][sup][6][/sup][/font]。3 结论本文对比组织切片中常用的两种环氧树脂在水稻叶片的渗透和包埋效果，发现在保证环境湿度的情况下可以可以优先考虑使用epon812树脂，但是对于密度较高、结构坚硬的组织或者环境湿度较大的情况下，则优先考虑spurr树脂。也有文章指出，可以将两者进行混合使用，根据组织的特点选择不同的比例进行渗透聚合，也可以很好的正好两种树脂的优点[font=calibri][sup][3][/sup][/font]。参考文献：黄吉雷,伦璇,刘传荷.水稻叶片透射电镜制样方法探讨[J].电子显微学报, 2018, 37(4):4..曹媛,陈家宝,殷亚方.通过改良超薄切片制样法观察汉代饱水考古木材细胞壁的超微构造[J].电子显微学报, 2022(003):041.杨慧,金良韵,姬曼,等.不同树脂对特殊生物样品包埋效果的比较[J].分析仪器, 2019(5):46-51.吴丽莉,颜永碧,陆月良.使用Epon-812包埋剂的体会[J].解剖学杂志, 1998, 21(06):521.刘庆宏,何幼英.不同湿度下Epon812,Epon618对电镜制样的影响[J].临床与实验病理学杂志, 2015, 31(7):824-825.[color=#333333]Finck.H.Epoxy resin in electron microscopy.J Biophys Biochem Cytol,1960,7(2):27-30[/color][url=#footnote_back_1]1[/url] [font=calibri][size=12px]1作者介绍：吴佳楠，[/size][/font][size=12px]（[/size][size=12px]1989-[/size][size=12px]），女（汉族），河北石家庄人，工程师[/size][size=12px].[/size][size=12px] [/size][size=12px]E-mail[/size][size=12px]：[/size][size=12px]wujianan1989@126.com[/size][font=calibri]2[/font][font=calibri][size=12px]通讯作者：张丽娜，[/size][/font][size=12px]女（汉族），辽宁丹东人，副研究员[/size][size=12px].[/size][size=12px] [/size][size=12px]E-mail[/size][size=12px]：[/size][size=12px]zhanglina@caas.cn[/size][font='Times New Roman'][color=#333333] [/color][/font]

下午摘的红掌新鲜叶片，剪刀剪的断层。不知道这些针状物是什么。30微米左右长，是细胞还是纤维？电镜照的http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2013/05/201305282049_442046_2539681_3.jpg

[size=16px]　　植物冠层分析仪是用于研究植物群落结构、生长和生态系统功能的仪器。测量植物叶片的平均倾角是其中的一个重要参数，它可以揭示植物在空间上的排列方式、生长状态以及对光能的吸收利用情况。以下是一般情况下植物冠层分析仪测量植物叶片平均倾角的基本步骤：　　仪器设置和安装： 安装冠层分析仪，确保其与被测量的植物位于适当的距离和角度。通常，仪器需要放置在离植物适度远的位置，以获取整体叶片分布的信息。　　数据采集： 冠层分析仪通常会发射激光束或其他传感信号，然后测量信号的反射或传播情况。这些信号在与植物叶片交互时会发生变化，从而可以推断出叶片的倾角信息。　　数据处理： 仪器收集到的数据需要进行处理，以计算出植物叶片的平均倾角。处理的方法可能因仪器型号和工作原理而异。一种常见的方法是基于接收到的信号强度变化来计算叶片的角度。　　统计分析： 多次测量不同位置的数据，然后对这些数据进行统计分析，以获得叶片的平均倾角。这可以帮助消除单一测量点的误差，并提供更准确的结果。　　需要注意的是，不同的植物冠层分析仪可能有不同的工作原理和测量方法，因此在使用特定仪器时，应该参考其使用手册或操作指南，以了解详细的操作步骤和数据处理方法。[/size][align=left]　　此外，随着技术的不断发展，可能会有新的方法和技术用于测量植物叶片的平均倾角，所以建议在实际操作中保持关注最新的技术进展。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/08/202308251019084435_6824_6098850_3.png!w690x690.jpg[/img][/align]