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流变发酵测定仪

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流变发酵测定仪相关的论坛

  • 工业发酵过程优化与控制研究进展

    传统的酿造工业和近代发酵工业多为劳动密集型产业,自动化程度较低。近些年来随着连续发酵技术、现代生物分离技术、生物反应器技术、生物传感器技术等现代生物工程技术快速发展.基因工程生物新产品不断出现,加快了发酵工业向技术密集型转变的进程。而影响这一进程的关键因素之一就是发酵过程最优化控制技术,特别是发酵过程连续在线监测控制技术。发酵过程是一个非性线、多变量和随机性的动态过程,发酵体系是一个复杂的被控对象。温度、溶氧、pH、培养基成分、细胞形态、细胞浓度、产物组成及含量等均是发酵过程的重要控制参数。以往测定这些参数采用离线分析,不能及时反映发酵过程的状态,无法实现自动控制和连续跟踪。因此,工业发酵过程中最优化控制技术主要是在线测控系统。在线测控系统可连续、迅速、准确实现取样、检测、信号处理、反馈控制等过程,实现工业发酵过程最优化的自动控制。随着计算机及控制技术的突飞猛进,生物传感器技术的发展,发酵动力学模型研究的完善,发酵过程控制系统愈来愈多,应用范围亦越来越广。但是,工业上实现发酵过程最优化自动控制的实例却不多,仍以人工控制和半自动控制为主。1 工业发酵过程最优化控制的现状与难点总的来看,目前发酵工厂发酵过程的计算机应用和自动化控制程度不高,落后于其他领域。现代化的发酵工厂已初步实现对部分因素如温度、溶氧、pH、搅拌转速、流速等的在线检测,也可对其变化进行单因素控制,但仍与发酵最优化的自动控制目标相去甚远,即难以成功建立对培养系统进行系统的反馈性控制。其发展滞后的主要原因如下:1.1 微生物生长代谢的特殊性 这是由于发酵过程的微生物学属性,使得其不同于一般的化学反应系统,其特殊性表现在:1)微生物细胞的生长繁殖、产物的代谢既随外界条件的变化而变化,亦随遗传基因的变异而变化;2)微生物细胞是有生命的,必然要经历幼龄、壮龄、衰老和死亡等过程,发酵过程微生物之间是不同步的,微生物个体之间是有差异的;3)相当一部分发酵过程的生物化学反应途径尚不清楚,难以对反应变化进行精确的计算。因此,目前的发酵动力学模型多为经验或半经验模型,或为简化的模型;4)人类对生命科学的认知程度很低,即使对最简单的生物一微生物的认知程度也不充分,对发酵机理的认识还远远不够,对许多发酵产物形成的代谢调控机制还没有完全研究清楚,难以确立最佳的控制条件和手段;5)细胞的生长和目的代谢产物的形成最优控制条件往往是不一致的。1.2 发酵生产过程控制的复杂性 影响发酵生产过程的因素较多,远比一般化工生产过程复杂,对生产过程控制的难度较大,具体体现在以下几个方面:1)发酵过程是生化反应与化学物质跨膜(细胞膜)传输过程的叠加,属于气、液、固三相反应系统;2)由于菌体(尤其是菌丝体)的数量变化和各种代谢产物的不断积累,发酵过程发酵液粘度变化复杂,多呈非牛顿型流体性质,给传质、传热的控制带来困难;3)影响生化反应的因素除物理因素和化学因素外,还有生物因素,如细胞之间的影响、杂菌的干扰等;且这些因素又互相关联,给反应过程控制带来困难。无菌操作对生产设备和工艺都有特殊的要求;4)发酵原料多属生物材料,一般使用天然或半天然培养基,培养基成分复杂。因此,实际生产中只能对主要成分进行检控;5)生物反应器不同于一般的化学反应器,要人工提供微生物生长代谢的最佳物理、化学和生态的环境。要在生物反应器内保持菌种的最佳状态,减少各种营养物、代谢物对细胞生长和代谢的阻遏效应等均较困难;6)供在线检测用的传感器的种类和质量还远不能满足发酵最优化控制的要求。2 工业发酵过程最优化控制对策目前的最优化控制条件大多建立在经验的基础上,要取得发酵过程最优控制的突破,首先需要具体发酵产品的微生物生长代谢,发酵调控原理认识的突破,并在此基础上运用科学的方法建立发酵过程数学模型,为计算机的应用提供条件。其次,建立和完善硬件技术,即发酵过程各种参数在线检测控制的设备技术。2.1 发展完善发酵过程在线测控技术 发酵过程在线测控装置一般包括三个部分:分析检测装置(传感器)、将检测装置与发酵介质相结合的取样过滤装置、实现控制理论的反馈和控制装置,即信号传输装置和计算机。目前正在应用和研究的在线测控装置有以下几种。2.1.1传感器系统 一种直插式传感器,为直接安装在反应器内实现在线监控的传感器。已用于发酵生产中的主要是罐内物化参数的测定,如温度、溶氧、pH、转速、罐压、粘度、浊度及流量等。此类传感器的性能较稳定,应用也较为普遍,在氨基酸发酵、啤酒发酵等生产中均有应用,实现了部分参数的在线监控。其主要特点是能够承受高温高压环境,常用的有热电偶传感器、转速传感器、测力传感器、玻璃传感器、光学传感器及溶氧传感器等。另外,微生物传感器可用于测量发酵工业中的原材料(如糖蜜、乙酸等)和代谢产物(如谷氨酸、乳酸等)测量装置基本上都是由适合的微生物电极与氧电极组成原理是利用微生物的同化作用耗氧通过测量氧电极电流的变化量来测量氧气的减少量从而达到测量底物浓度的目的。在测定微生物细胞数量时,在阳极Pt表面上菌体可以直接被氧化并产生电流,这种电化学系统可以应用于细胞数目的测定。测定结果与常规的细胞计数法测定的数值相近,利用这种电化学微生物细胞数传感器可以实现菌体浓度连续、在线测定。2.1.2 流动注射检测系统(FIA) 有些传感器不能承受高温高压环境或不适合微生物发酵环境,因此不能作为直插式传感器直接在发酵罐内使用,如生物传感器。流动注射检测系统(FIA)可较好地解决这一问题,FIA 系统由取样装置、样品预处理装置、泵、注射选择阀、传感器、信号转移和数据处理计算机等组成。生物传感器安装于反应器外,样品被处理后送至反应器外与生物传感器接触反应产生信号,实现发酵过程的在线测控。常用于FIA系统的生物传感器有电流式电极、pH 电极、Bio—FEF电极、光学生物传感器、光纤生物传感器以及化学发光传感器等。2.1.3 映象在线控制系统 随着光学技术的不断发展,直接将光学显微镜安装在反应器内,在线监测发酵过程中细胞的形态和生理状态,并可以对细胞数量、大小、种类进行计算统计,荧光显微镜还可以监测细胞代谢过程。将映象在线控制系统与流动注射检测系统结合,可成为更有效的监测系统。一个典型例子是用于在线监测细胞培养状态的FI—FCM系统。该系统样品首先从生物反应器传人多位置的真空管并同时排空,数十种不同的样品和反应剂被筛选,通过连接着十条真空管的精密注射泵导人系统,连接着双向真空管的微室用于稀释样品或将样品与不同的反应剂混合。然后将处理后的样品通过自由脉冲方式注人流动细胞测定仪,流动细胞测定仪可测定培养过程中细胞大小和数量、通过观察荧光变化检测绿色荧光蛋白形成的动力学过程等,流动细胞测定仪的数据处理由主机完成,连接有系统控制板和数据控制板的计算机对系统进行控制。

  • 发酵液气相测定

    近日打算做下发酵液中酸的含量测定,发现直接进样效果很差,后来看文献才看到要进行酯化或硅烷化衍生处理,求教各位老师,为何要进行这种处理 另外有何更简单的处理方法? 谢谢

  • 发酵过程溶解氧的控制与测定实验

    一、发酵过程检测的主要参数按性质分1. 物理参数:温度、搅拌转速、空气压力、空气流量、 物理参数:温度、搅拌转速、空气压力、空气流量、 溶解氧、表观粘度、排气氧(二氧化碳) 溶解氧、表观粘度、排气氧(二氧化碳)浓度等 2. 化学参数:基质浓度(包括糖、氮、磷)、pH、 化学参数:基质浓度(包括糖、 产物浓度、核酸量等 产物浓度、 3. 生物参数:菌丝形态、菌浓度、菌体比生长速率、 生物参数:菌丝形态、菌浓度、菌体比生长速率、 呼吸强度、基质消耗速率、 呼吸强度、基质消耗速率、关键酶活力等从检测手段分1. 直接参数:通过仪器或其它分析手段可以测得的 直接参数:参数,如温度、 、 参数,如温度、pH、残糖等在线检测参数: ①在线检测参数:不经取样直接从发酵罐上安装的仪表 得到的参数,如温度、 、搅拌转速; 上 得到的参数,如温度、pH、搅拌转速; 离线检测参数:取出样后测定得到的参数,如残糖、 ②离线检测参数:取出样后测定得到的参数,如残糖、 NH2-N、菌体浓度。 、菌体浓度。2. 间接参数:将直接参数经过计算得到的参数,如 间接参数:将直接参数经过计算得到的参数,摄氧率、 摄氧率、KLa等 等二、发酵过程参数常用检测方法及仪器主要参数检测原理及仪器• 取样系统十分重要。 生物反应过程大多为纯培养,无菌操作十分重要 生物反应过程大多为纯培养,无菌操作十分重要。 问题 1. 三角瓶内的培养液如何取样? 三角瓶内的培养液如何取样? 2. 发酵罐常用取样方式可否知道? 发酵罐常用取样方式可否知道?• 溶氧的检测1、常用检测方法:溶氧电极法 、常用检测方法:思考:溶氧电极如何标定? 思考:溶氧电极如何标定?2、电极的标定 、一般测定中应进行以下二点标定 一般测定中应进行以下二点标定 (1)零点标定 ) 用饱和Na 作无氧状态的溶液, 用饱和 2SO3作无氧状态的溶液,将氧电极放入 该溶液中,显示仪表上可见溶氧浓度下降, 该溶液中,显示仪表上可见溶氧浓度下降,待下降 稳定后,调节零点旋钮显示零值。 稳定后,调节零点旋钮显示零值。 (2)饱和校正(满刻度) )饱和校正(满刻度) 进行简便测定时,可以采取空气饱和方式。将电 进行简便测定时,可以采取空气饱和方式。 极放入培养液中,通气搅拌一段时间, 极放入培养液中,通气搅拌一段时间,显示仪上 可见溶氧上升,待上升稳定, 可见溶氧上升,待上升稳定,调节满刻度旋钮至 100%即为饱和值。 即为饱和值。 即为饱和值主要参数检测原理及仪器

  • 制药发酵工艺优化方法与思路

    发酵是细胞大规模培养技术中最早被人们认识和利用的。发酵技术在医药、轻工、食品、农业、环保等领域的广泛应用,使这一技术在国民经济发展中发挥着越来越重要的作用。 为了提高发酵生产水平,人们首先考虑的是菌种的选育或基因工程的构建。而实际上,发酵工艺的优化,包括生物反应器中的工程问题,也同样非常重要。 发酵环境条件的优化发酵环境条件的优化是发酵过程中最基本的要求,也是最重要、最难掌握的技术指标。温度、pH值、溶氧、搅拌转速、氨离子、金属离子、营养物浓度等的优化控制,依据不同的发酵而有所不同。同时,微生物在生长的不同阶段、生产目的代谢产物的不同时期,对环境条件可能会有不同的要求。因此,应该在生物反应器内,使温度、pH值、溶氧、搅拌转速等不断变换,始终为其提供最佳的环境条件,以提高目的产物的得率。 在发酵放大实验中,一般都很注重寻找最佳的培养基配方和最佳的温度、pH值、溶氧等参数,但往往忽视了细胞代谢流的变化。例如:在溶解氧浓度的测量与控制时,关心的是最佳氧浓度或其临界值,而不注意细胞代谢时的摄氧率;用氨水调节pH值时,关心的是最佳pH值,却不注意添加氨水时的动态变化及其与其他发酵过程的参数的关系,而这些变化对细胞的生长代谢却非常重要。 基于此,华东理工大学的张嗣良提出了“以细胞代谢流分析与控制为核心的发酵工程学”的观点。他认为,必须高度重视细胞代谢流分布变化的有关现象,研究细胞代谢物质流与生物反应器物料流变化的相关性,高度重视细胞的生长变化,尽可能多地从生长变化中做出有实际价值的分析,进一步建立细胞生长变量与生物反应器的操作变量及环境变量三者之间的关系,以便有效控制细胞的代谢流,实现发酵过程的优化。 补料分批发酵技术该技术可以有效地减少发酵过程中培养基黏度升高引起的传质效率降低、降解物的阻遏和底物的反馈抑制的现象,很好地控制代谢方向,延长产物合成期和增加代谢物的积累。 所需营养物限量的补加,常用来控制营养缺陷型突变菌种,使代谢产物积累到最大。氨基酸发酵中采用这种补料分批技术最普遍,实现了准确的代谢调控。 超声波的应用超声波有很强的生物学效应。可应用于发酵过程的上、中、下游三个阶段。其在发酵工艺上的应用,可增加细胞膜的通透性和选择性,促进酶的变性或分泌,增强细胞代谢过程,从而缩短发酵时间,改善生物反应条件,提高生物产品的质量和产量。 超声波的作用机制分为热作用、空化作用和机械传质作用。热作用是超声波在介质内传播过程中,能量不断被介质吸收而使介质的温度升高的一种现象,可用于杀菌或使酶失活。空化作用是超声波在介质中传播时,液体中分子的平均距离随着分子的振动而变化。当其超过保持液体作用的临界分子间距,就形成空化(空泡)。空泡内可产生瞬间高温高压并伴有强大的冲击波或射线流等,这足以改变细胞的壁膜结构,使细胞内外发生物质交换。机械传质作用是超声波在介质中传播时,可使介质质点进入振动状态,加速发酵液的质量传递,提高发酵过程的反应速度。 超声波可广泛应用于生物发酵工程。不同频率和强度的超声波对发酵过程的作用是不同的,使用时应视具体的发酵工艺和使用条件进行选择。 增加前体物的合成增加目的产物的前体物的合成或是直接添加前体物,均有利于目的产物的大量积累。如:在氨基酸的发酵中,通常在微生物的培养中加入前体,生产氨基酸;在花生四烯酸的发酵中,通过增加前体物或是加强糖代谢的途径,增加其前体物的合成,均有助于提高花生四烯酸的产量。 去除代谢终产物改变细胞膜的通透性,把属于反馈控制因子的终产物迅速不断地排出细胞外,不使终产物积累到可引起反馈调节的浓度,即可以预防反馈控制。 发酵工艺优化的方法有很多,它们之间不是孤立的,而是相互联系的。在一种发酵中,往往是多种优化方法的结合,其目的就是要控制发酵,按照自己的设计,生产出更多、更好的产品。

  • 使用气相色谱测定发酵液中乙醇含量时柱子的选择问题

    最近在做柑橘皮水解发酵生产燃料乙醇实验,因为之前采用重铬酸钾分光光度计测定发酵液中乙醇含量时,由于发酵液中残留的未发酵完全的还原糖对实验结果的影响很大,导致最终结果误差太大,所以现在想采用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]法来测定。由于实验经费有限,实验室可用的色谱柱有:Porapak N、Porapak K、GDX-104、GDX-105、GDX-201、Chromosorb 105、Chromosorb 104。求色谱达人指点,看哪一种色谱柱可以用,本人将不胜感激!

  • 【讨论】非发酵豆制品中色素的测定

    最近在做非发酵豆制品中色素的测定,也不知道是什么原因,回收率太低,首先是聚酰胺粉吸附很差,一用水洗,就都洗下去了。这个牌子的聚酰胺粉以前做饮料中的色素没问题,回收率也比较好。可做着个产品问题很大啊。郁闷,那位坛友帮忙指导下

  • 【讨论】GB 7959-87 大肠菌值测定 多管发酵法

    在GB 16889-1997 《生活垃圾填埋污染控制标准》里提到测大肠菌值用GB 7959-87,但是这个标准不叫《大肠菌值测定 多管发酵法》,而是叫《粪便无害化卫生标准》,请问有没有人做过大肠菌值啊,大肠菌值有没有单位?到底大肠菌值是越大越好还是越小越好?

  • 【求助】发酵液中成分测定

    请大侠们帮帮忙,我用乙醇的国标检测方法检测发酵液中成分,结果在乙醇和丙醇保留时间之间出了一个峰,而且当时用试纸测发酵液pH并未产酸迹象,现在这种成分确定不了是什么东西,大家能否给点建议呀?因为这个成分含量还比较高,我想确定是什么东西

  • 【原创大赛】第六届原创——发酵控制系统的整体设计

    【原创大赛】第六届原创——发酵控制系统的整体设计

    发酵控制系统的整体设计一、控制系统功能设计为了提高发酵过程的自动化水平,增加发酵产物产量,改善发酵工艺,该发酵控制系统主要完成以下功能:1) 发酵过程完全自动化,包括每阶段的操作动作的实现,即按照工艺要求或者随动控制蠕动泵分别补充碳氮、调整搅拌转速以调整溶氧量浓度,同时当达到发酵要求后,自动切换到下一个阶段;2) 当脱离上位机后,下位机也能够实现简单控制,增加系统的稳定性;3) 对发酵环境敏感因素,即温度T、溶解氧DO、搅拌转速v、酸碱度PH的实时采集,现场和远程显示,Excel文件记录,以及这些数据的历史曲线回顾。二、发酵罐的外围设备该发酵系统除了发酵罐外,还包括辅助的外围设备,对于发酵控制系统开发来说主要有:发酵罐的执行器系统、传感器系统等。1发酵罐的执行器系统发酵罐的执行器系统主要有:1) 搅拌电机转速控制,该电机是交流变频马达,功率1千瓦,电机转速范围是50-1500转/分,变频器的输入信号是4-20 mA直流电流;2) 罐体温控及灭菌,罐体具有双夹套结构,用自带的小型蒸汽发生器产生蒸汽进入外夹套,间接加热罐内发酵液,降温采用市政自来水在内夹套循环的方式;温度范围自来水温度-150摄氏度;3) 酸碱度调节,采用蠕动泵间断加入氨水或氢氧化钠溶液的方式调整;补C、补N,采用蠕动泵分别加入葡萄糖溶液和????溶液的方式来补给;该蠕动泵参数,固定转速50转/分,50 Hz交流230 V供电,功率11W;4) 进气和排气系统为全自动系统。对于本控制系统设计有关的控制量、执行器及控制信号,见下表,表控制量、控制信号与执行器控制量[font=

  • 拜求:发酵产物的分离

    我在做液体发酵产物乙醇,乙酸,丁酸,丙酸等有机酸的测定。现在标样我已经分开,但发酵产物峰太多,保留时间好多杂质峰重合了,怎么办?[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2006/04/200604212302_17228_1334594_3.gif[/img]下面是标样峰:我要的峰保留时间在3~4min,9~13min之间。[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2006/04/200604212305_17229_1334594_3.gif[/img]

  • 煤炭和焦炭测定仪是什么仪器

    [size=16px][font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b]煤炭和焦炭测定仪是什么仪器[/color][/font]煤炭和焦炭测定仪是用于测定煤炭和焦炭的质量和成分的各种分析仪器的总称。这些仪器运用不同的原理和技术来测量煤炭和焦炭的物理和化学特性,包括但不限于灰分、水分、挥发分、固定碳、硫分、发热量等。具体来说,对于煤炭的质量指标检测,可能会使用到粘结指数测定仪(G值)和胶质层测定仪(X值、Y值)等。而对于焦炭的质量或其他特性的测定,可能会使用到哈氏可磨指数测定仪、煤炭活性测定仪等。此外,煤炭和焦炭的破碎制样系列设备,如颚式破碎机、湿干煤锤式破碎机等,以及称量仪器系列,如电子秤和万分之一电子天平等,也是煤炭和焦炭测定过程中不可或缺的工具。请注意,具体的测定仪器和方法会根据煤炭和焦炭的种类、用途以及所需的测定指标而有所不同。因此,在选择和使用煤炭和焦炭测定仪时,应根据实际情况和具体需求进行选择,并遵循相关的操作规程和标准。[img=,400,300]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403071007478986_2400_6098850_3.jpg!w400x300.jpg[/img][/size]

  • DV-S粘度计测定微生物多糖发酵液粘度

    微生物多糖包括某些细菌、真菌和蓝藻类产生的多糖,主要以三种形式存在:粘附在细胞表面上,分泌到培养基中,构成细胞的成分。微生物多糖,因其安全无毒、理化性质独特等优良性质而倍受关注。近几年,随着对微生物多糖研究的深入,世界上微生物多糖的产量和年增长量均在10%以上,而一些新型多糖年增长量在30%以上。到目前为止,已大量投产的微生物胞外多糖主要有黄原胶、热凝多糖、结冷胶、小核菌葡聚糖、短梗霉多糖等。微生物多糖具有植物多糖不具备的优良性质,它们生产周期短,不受季节、地域和病虫害条件限制,具有较强的市场竞争力和广阔的发展前景。随着对微生物多糖的结构和功能研究的不断深入,工业化的微生物多糖产品应用在各个领域,如美容养生的保健食品、工业染料的稳定剂、石油工业中的钻井泥浆处理剂、提高采油的注水稠化剂、意料中的代血浆、纺织造纸的上胶料、化妆品的拼料以及生物化学医药工业和实验室用的吸附剂、固定化酶或固定化细胞的载体等各个方面。微生物多糖的应用如此广泛,它的粘度如何呢?粘度是对流体内部摩擦的一种量度,是影响流体物理性质的一个重要参数。对于微生物多糖这种非牛顿流体来说,测定其粘度是鉴定其物理性质的一个重要方面。大部分非牛顿流体都是假塑性流体,特别是一些高分子溶液和悬浮液均具有剪切稀化的特性,假塑性流体的表观粘度随着剪切速率发生变化的范围很大,所以不能把它们作为牛顿流体来处理,必须对它的流动问题进行单独的测试。通常情况下,非牛顿流体的流变测量主要是在对流体施加一定剪切应力的条件下,通过跟踪流体对手里的响应值而获得。根据公式剪切应力Շ=kγn,k和n可以通过流变仪测出,但是流变仪价格昂贵,难以普及,因此可以通过测定不同剪切速率下的粘度值而计算出来。实验室采用美国BROOKFIELD公司的DV-S旋转粘度计测定流体的不同剪切速率下的粘度值,DV-S粘度计是BROOKFIELD最新研发的最经济的数字显示粘度计,采用全中文操作面板,操作简便,采用应力传感器,反应迅速,结合实验室仪器的使用可得到微生物多糖的粘度。

  • 《反相高效液相色谱法测定发酵液中乳酸的含量》的全文?

    或是关于色谱法测定发酵液的其他文章也行。那位有了帮忙在贴出来,多谢![img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=12578]反相高效液相色谱法测定发酵液中乳酸的含量[/url]我找到了,贴上来大家共享

  • 【发酵资料】发酵工艺控制!

    下载请回帖哦^_^第一节、发酵过程中的主要控制参数第二节、发酵过程中的代谢变化第三节、菌体浓度影响及其控制第四节、基质的影响及其控制第五节、温度的影响及其控制第六节、pH的影响及其控制第七节、溶氧的影响及其控制第八节、二氧化碳的影响及其控制第九节、补料的作用和控制第十节、泡沫的影响及其控制第十一节、发酵终点的判断

  • 求可以测发酵液有机酸含量的单位或公司

    我可以把发酵液的样品萃取,干燥之后寄样,然后你们按照你们那的有机酸测定条件溶解样品测,这样可以吗?我的发酵液是大肠杆菌发酵之后的上清液,未萃取时,主要成分是葡萄糖、乙酸、甲酸、琥珀酸、苹果酸等有机酸等。不萃取可以直接测吗?我主要要测的参数是乙酸含量,琥珀酸含量,但是如果其他的有机酸能测出来更好。测样的价格合理就行,价钱不是啥问题。

  • 流变仪的使用方法

    流变仪,用于测定聚合物熔体,聚合物溶液、悬浮液、乳液、涂料、油墨和食品等流变性质的仪器。流变仪,用于测定聚合物熔体,聚合物溶液、悬浮液、乳液、涂料、油墨和食品等流变性质的仪器。分为旋转流变仪、毛细管流变仪、转矩流变仪、.转矩流变仪和界面流变仪。下面让我来介绍一下它的使用方法。流变仪主要有锥板式、平行板式、同轴圆筒式和毛细管式。   锥板式为精密流变仪,可测多种材料函数,适用于较高黏度的高分子溶液和熔体。   平行板式为锥板式的附件,作为补充适于较黏高分子溶液熔体和多相体系。   同轴圆筒式为便易黏度计,适合低黏、低弹性流体。   毛细管式适合于宽范围表观黏度测定(尤其适于高速、高黏流体),剪切速率及流动时的流线,几何形状与挤出注模时的实际条件相似。可精确测量材料的黏度、弹性和流变特性。   目前测定高聚物剪切黏度和流动性的仪器有以下几类:落球型、转动型(包括各种改良型门尼黏度仪),振荡型(扭转振动流变仪和圆盘振荡流变仪)、混炼机型和毛细管挤出型(毛细管流变仪和加工性能测定仪)等。上述各种测试仪器和测定方法各有其优缺点和适用范围,可互相补充。

  • 青霉素的发酵工艺

    一、青霉素的发酵工艺过程一、工艺流程中国植提论坛|植提网(1)丝状菌三级发酵工艺流程冷冻管(25°C,孢子培养,7天)——斜面母瓶(25°C,孢子培养,7天)——大米孢子(26°C,种子培养56h,1:1.5vvm)——一级种子培养液(27°C,种子培养,24h,1:1.5vvm)——二级种子培养液(27~26°C,发酵,7天,1:0.95vvm)——发酵液。(2)球状菌二级发酵工艺流程&N-x$y5g2L8k冷冻管(25°C,孢子培养,6~8天)——亲米(25°C,孢子培养,8~10天)——生产米(28°C,孢子培养,56~60h,1:1.5vvm)[size

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