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染色体微阵列分析

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染色体微阵列分析相关的论坛

  • Y染色体数据分析研究取得进展

    中科院昆明动物所在张亚平院士带领下,该所彭旻晟、贺军栋、樊隆等人开发出针对DNA芯片数据中Y染色体单核苷酸多态性位点的分析策略。相关研究11月27日在线发表于《欧洲人类遗传学》。 随着全基因组关联分析广泛应用于人类遗传学工作之中,相关的DNA芯片(微阵列)也不断得到发展。许多Y染色体单核苷酸多态性位点(Y-SNPs)已被整合在DNA芯片中。然而,这些Y-SNPs数据在全基因组关联分析中都被弃之不顾,没有进行任何评估分析。  为此,研究人员运用开发的分析策略对来自114个缅甸人和3个尼日利亚人共117份男性样本DNA芯片数据中的2041个Y-SNPs进行了评估分析。基于数据过滤后提取出的369个Y-SNPs,研究人员构建了Y染色体单倍型类群树,解析出缅甸人群的父系遗传结构。  该结果得到基因分型实验和Y染色体重测序数据的支持,表明该策略切实可行。研究人员对分析中的数据格式转换、过滤和注释处理后发现,DNA芯片对Y-SNPs的检测灵敏度和准确性依旧有待提高,例如:芯片厂商可依据Y染色体重测序数据重新选择合适的Y-SNPs并设计相关探针。

  • 微阵列清洗干燥工作站特色

    [url=http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/waly.html][b]微阵列清洗干燥工作站[/b][/url]专业为[b]微阵列清洗干燥[/b]和[b]荧光原位杂交FISH玻片清洗干燥[/b]而设计的[b]微阵列干燥清洗[/b]仪器,是分子杂交领域的理想自动[b]玻片清洗干燥仪[/b]器。[b]微阵列清洗干燥工作站[/b]可以处理市面上任何商用或定制的微阵列和玻片或芯片,用于任何类型的微阵列实验,如基因表达,微阵列比较基因组杂交 CGH array,ChIP-on-chip, miRNA。[b]微阵列清洗干燥工作站特色[/b]自动清洗干燥站大大提高了杂交的微阵列的的质量,具有更高信号强度,更低的背景噪音和更为均匀干净的玻片,直接可用于扫描使用。从而避免这些步骤常出现的负面影响。[img=微阵列清洗干燥工作站]http://www.f-lab.cn/Upload/microarray-wash-dry.png[/img]微阵列清洗干燥工作站:[url]http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/waly.html[/url]

  • 高通量微阵列清洗器优势及应用

    [url=http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/washstation.html]高通量[b]微阵列芯片清洗器[/b][/url]专业为[b]玻片清洗[/b]和[b]微阵列芯片清洗[/b]而设计的[b]玻片清洗器[/b],拥有耐用的载玻片架,可容纳1-25个25×76毫米规格的玻璃玻片微阵列,可浸入到500ml的缓冲溶液槽。[b]高通量微阵列清洗器特色[/b]大大了微阵列芯片干燥前的清洗效率和效果。该缓冲溶液槽配备有磁力搅拌棒和盖子,可以防止缓冲物蒸发。含独立的缓冲液加快微阵列芯片的处理和清洗速度。是提高基因学,生物医学,制药和农业研究的质量和速度的理想的工具[img=高通量微阵列清洗器]http://www.f-lab.cn/Upload/microarray-wash.jpg[/img]高通量微阵列清洗器:[url]http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/washstation.html[/url]

  • 微阵列芯片扫描仪优势特点

    [b]孚光精仪:[url]http://www.f-lab.cn/[/url]微阵列芯片扫描仪:[url]http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/innoscan.html[/url]微阵列芯片扫描仪[/b],[b]innoscan[/b]专业为[b]扫描基因芯片[/b],[b]扫描蛋白质芯片[/b]等[b]微阵列芯片扫描[/b]而设计,是功能强大的高分辨率[b]荧光扫描仪[/b],适合所有[b]微阵列芯片扫描,[/b]如DNA芯片,蛋白质芯片和细胞和组织。[b]微阵列芯片扫描仪[/b]是完全开放的系统,兼容任何标准的显微镜载玻片25x75mm(玻璃基板,塑料,透明和不透明),适用于各类型的应用研究,如基因表达,基因分型,aCGH,芯片分析片内,微RNA检测的SNP,蛋白质组学和微阵列的方式。[img=微阵列芯片扫描仪]http://www.f-lab.cn/Upload/innoscan-scanner.jpg[/img][b]微阵列芯片扫描仪[/b]可以扫描生物芯片,有3 1.mu.m/像素的分辨率,同时保持高图像质量。能够同时扫描两个检测通道3.5分钟(10.mu.m/像素,最大扫描区域),InnoScan900是市场上最快的扫描器,扫描速率可调节,达10到35行每秒。

  • 请教:微阵列电极用在生物芯片的研究中

    如题,微阵列电极在生物芯片的研究中作用大不大?据我所知,目前国内还没有人能够生产微阵列电极(也许我孤陋寡闻,愿意讨教:各位有知道国内哪家有生产微阵列电极的吗?)前段时间和南京某大学的老师请教了一下微阵列电极的应用,好像在生物芯片的研究中用到还挺多的。据说国内不能生产是因为涉及到精密的微加工技术不过关。愿意和大家讨论!

  • 染色体芯片技术大幅提高试管婴儿成功率

    目前,我国试管婴儿技术的成功率平均仅为50%多,最大瓶颈就在于产前染色体异常的筛查。记者昨日获悉,今年3月成立的染色体芯片产前诊断联合实验室(CMA),利用针对中国人群定制的染色体芯片,能够检测出在常规染色体检测中显微镜下无法识别的基因缺陷,可筛查出200多种已知的染色体微缺失或微重复引起的疾病。这一技术不仅可通过产前诊断达到优生目的、降低流产率,而且将会使试管婴儿的成功率整体提高两成达70%,尤其是将会使高龄女性做试管婴儿的成功率提高五成。http://www.ibioo.com/data/attachment/portal/201308/25/094237zntmsn8tmz7tzmit.jpg技术:染色体芯片技术可查缺陷基因据广州医科大学附属第三医院广东省产科重大疾病重点实验室主任、广州妇产科研究所副所长孙筱放教授介绍,随着强制婚检的取消,近年来新生儿出生缺陷率明显升高。目前已知的出生时严重出生缺陷婴儿染色体异常的比率只有10%。而国外学者通过高通量、高分辨率的染色体芯片技术研究发现,大量以前无法确定遗传改变的出生缺陷,实际上都是由常规染色体检查显微镜下无法识别的基因组微缺失和微重复引起的。“正是这个原因,我们与香港中文大学成立了染色体芯片产前诊断联合实验室。”她说,“我们现在已经可以检测出200多种已知的染色体微缺失或微重复引起的各种疾病。我们还可以结合DNA测序技术对已知各种单基因疾病进行诊断。这项技术在全国范围内都属于领先的。”故事1:十次试管婴儿都失败来自湖北的阿丹和阿强(均为化名)结婚十年来一直没有怀上孩子,两人为此焦虑不已。近年来,求子心切的他们居然连续做了十次试管婴儿,但都以失败而告终。每次将胚胎植入之后,他们都满怀希望地等待,但无一例外,没有一次能够怀到“瓜熟蒂落”。漫长的求子之路,让他们身心俱疲。尤其是阿丹,经历了十次“煎熬”之后,精神“几近崩溃”,身体也经受了太多的损伤。他们为什么总不成功?他们还有希望吗?他们抱着最后一线希望来到广医三院。专家解读:植入前做检测 妊娠率可达80%“对于做试管婴儿的夫妻来说,压力之大非外人所能想象,尤其是做了几次不成功的夫妻。”广州医科大学附属第三医院生殖医学中心主任刘见桥教授介绍,“在传统的技术中,胚胎植入前遗传学诊断只能检测少数几条染色体是否异常。但事实上,每一条染色体都有可能发现异常,只是以前很多其他的染色体异常没有筛查出来,所以即使不健康的胚胎也会被植入。”刘见桥说,目前,该院与美国休斯敦生殖医学中心合作,率先开展了利用染色体芯片技术对植入前胚胎筛查,可以检测全部染色体组的异常数目。“通过这种筛选的胚胎,妊娠率可提高到80%。”“目前我们可以做到的是,在胚胎植入前就可以对全部染色体组进行检测,然后进行筛查,再把健康的胚胎植入体内。”刘见桥说,无论是什么年龄阶段的女性,最后的成功率都可达70%,这就大大减少对女性身心的伤害,也为患者免去了许多不必要的经济损失,尤其是对于高龄女性而言,成功率更提高了五成。故事2:孕妈担心再生先心娃今年30岁的周洁(化名)怀孕20周了,然而,新生命并未给她带来多少喜悦,相反,更多的是忐忑和纠结。原因就是她曾经生育过一个患有一种先天性心脏畸形而且面部发育也不正常的女儿。第二个孩子会不会也出现畸形呢?这个胎儿究竟是去还是留呢?周洁来到广医三院的生殖医学中心,医生抽了她患病的女儿外周血和腹中胎儿的羊水分别进行染色体芯片检查。结果发现她女儿的3号染色体有一段较长的微重复,正是这一重复区域,导致了她的先天性疾病。而她腹中胎儿的染色体芯片结果并没有跟她女儿相同的变异区域,说明胎儿再患这种先天性心脏畸形的概率较低。目前,她腹中的胎儿的确也发育良好,未见明显畸形。她终于可以放心地把孩子怀下去了。专家解读:可对比染色体差异并作去留判断“在常规的染色体检测中,一般只是显微镜下识别基因缺陷,有很多缺陷是无法识别的。”广医三院妇产科研究所实验部副主任、CMA实验室负责人范勇介绍,而使用该院正在使用的染色体芯片,不仅能够检测和比较患儿和胎儿的染色体差异,更重要的是,通过结果分析,可能对胎儿的去留作出准确的判断,消除了妊娠者及其家属的顾虑。“染色体芯片技术与传统染色体分析技术相比,具有集高通量和高分辨率的优势,目前已被加拿大遗传学会、欧洲遗传学会和美国遗传学会推荐作为遗传学诊断的首选手段。”范勇说,染色体芯片分析还可以进一步地检测患者双亲,以明确某一类的先天性缺陷的致病变异来源。“这对于指导患者再次怀孕具有很重大的临床意义。”范勇说,实验室成立三个月以来,已为230多名孕妇进行了该项技术检查,确诊十余例染色体结构异常胎儿。

  • 新研究发现X染色体可以影响男性性别形成

    俗话说,每一个伟大的男人背后,都有一个伟大的女人。每一个精子的背后,也有一个X染色体在起作用。在人体中,Y染色体决定人的性别为男性,因此许多研究人员认为:男性发育过程中负责决定性别的相关基因都位于Y染色体上。但是现在有一个科研团队发现,X染色体(“女性染色体”)也可以在此过程中发挥重要的作用。X染色体包含了决定成为精子形成的大量的基因。这一发现改变了我们对性别形成的固有想法,至少在某种程度上X染色体在进化过程中扮演一个令人意外的角色。哺乳动物有一对性染色体。女性的X染色体有两个拷贝,男性有一个拷贝,与Y染色体形成对。而人体只需要X染色体一个拷贝发挥作用,所以在女性体内,第二个拷贝是被“关闭”的。约50年前,遗传学家Susumu Ohno提出,这样的关闭作用减缓了X染色体的进化进程,所以大多数哺乳动物中的X染色体都非常相似。剑桥大学怀特海德生物医学研究所的遗传学家David Page研究了经过80亿年的进化后,上述说法是否在老鼠和人类之间成立,Page和同事得到的研究结果发表在近日的 Nature Genetics杂志上。虽然这两个物种的基因组已经被解码,但这些DNA序列还存在一些缺陷和错误,特别是X染色体的缺陷和错误首先需要被填充和修复。Page的研究团队使用一个特殊的测序技术确定了缺口处的DNA碱基序列,这里包含很多的重复的DNA区域,而此前用现有的技术通过一次测序很难破译这些重复区域。然后,研究人员比较了小鼠和人类的X染色体基因。这两个物种的X染色体共同拥有800个左右的基因,这些共享基因,通常是是男性和女性相对稳定的基因,并且它们以单拷贝的形式存在。这些基因上发生的突变,能引发X-连锁隐性遗传病,例如血友病和杜氏肌营养不良症。与此同时,研究团队也发现了相较前人研究该染色体与众不同的、令人迷惑的一面。人类有144个X染色体基因是小鼠所没有的,而有197个基因是个小鼠基因是特有的。人类的144个基因中,有107个存在于X染色体重复序列中,这些基因的变化较为迅速。基于这样的证据,Page得出结论,在人类和老鼠祖先产生分离的时候,这些基因分化就出现了。“对于人类X染色体和老鼠X染色体上存在如此大量的非共享基因,我感到非常惊讶,” 密歇根大学的进化遗传学家Jianzhi Zhang说。这一发现表明,X染色体上基因可能随时都在变化。基因改变时,就会影响进化,Page认为X染色体基因效用可能是特别强劲的。例如,一些先前发现的X染色体基因,似乎已经在小鼠的形态发育上发挥了作用。他和他的同事调查了八个人类男性和女性的身体组织来观察X染色体基因如何发挥作用。“在许多情况下,这些非共享的基因在女性体内甚至没有表达,” Page说。相反,它们在决定精子形成的睾丸却表现得非常活跃。“我们认为X染色体过着双重的生活,” 其一,它是稳定的,像前人研究描述的一样;其二,它在不停变化并影响男性特征。Page表示,在其它基因上,重复区域在治疗癌症和其他疾病中已经具有了巨大的生物医学意义,他希望其他研究人员能进一步探索X染色体的重复区域是否同样重要,特别是在男性的繁衍和睾丸癌治疗方面。但目前,我们必须先知道这些基因的功能,了解它们对健康和形态的影响。但有一件事是肯定的,人们将开始关注X染色体的进化。http://www.ibioo.com/data/attachment/portal/201307/23/202226bu6vaasv3g6lwfs0.jpg参考文献http://www.ibioo.com/data/attachment/portal/201307/23/202226i11s7d9xysyswvvy.gifIndependent specialization of the human and mouse X chromosomes for the male germ line作者:Jacob L Mueller et al. We compared the human and mouse X chromosomes to systematically test Ohno's law, which states that the gene content of X chromosomes is conserved across placental mammals1. First, we improved the accuracy of the human X-chromosome reference sequence through single-haplotype sequencing of ampliconic regions. The new sequence closed gaps in the reference sequence, corrected previously misassembled regions and identified new palindromic amplicons. Our subsequent analysis led us to conclude that the evolution of human and mouse X chromosomes was bimodal. In accord with Ohno's law, 94–95% of X-linked single-copy genes are shared by humans and mice; most are expressed in both sexes. Notably, most X-ampliconic genes are exceptions to Ohno's law: only 31% of human and 22% of mouse X-ampliconic genes had orthologs in the other species. X-ampliconic genes are expressed predominantly in testicular germ cells, and many were independently acquired since divergence from the common ancestor of humans and mice, specializing portions of their X chromosomes for sperm production.

  • 蛋白质微阵列芯片制作打印机优势

    [b][url=http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/nanoprint.html]蛋白质微阵列芯片制作打印机[/url]特色[/b]具有高精度湿度和温度控制系统,具有方便用户操作的软件,可以全面和高效地打印微阵列和用于分子生物学研究和诊断应用的各种芯片具有除湿功能可供用户选择配备,除湿功能可让用户在潮湿环境下操作。可打印高达384个微孔的微孔板,最多可以打印60个标准玻璃芯片底片。可以打印各种微孔板,1“X3”的芯片和其他任何微流体生物芯片。纳米打印机系统提供先进的微孔板,位于微孔板下的 Peltier将其进行冷却。[img=蛋白质微阵列芯片制作打印机]http://www.f-lab.cn/Upload/nanoprint-arrayit.jpg[/img][b][/b]蛋白质微阵列芯片制作打印机:[url]http://www.f-lab.cn/microarray-manufacturing/nanoprint.html[/url][b][/b]

  • 【原创大赛】人工染色体简介

    人工染色体指人工构建的含有天然染色体基本功能单位的载体系统。包括酵母人工染色体(YAC)、细菌人工染色体(BAC)以及后来的人类人工染色体(HAC)和植物人工染色体(PAC)等多种类型。人工染色体的出现,为基因组图谱制作,基因图位克隆,动物的基因治疗,植物的多基因转化提供了有用的工具。酵母人工染色体(Yeast artificial chromosome, YAC)1983年,Murray和Szostak1]在大肠杆菌质粒pBR322中插入酵母的着丝粒、自主复制序列、选择性标记及四膜虫核糖体RNA基因rDNA(Tr)末端序列,并转化酵母菌,构建成了酵母人工染色体。YAC载体一般能够容纳500 kb,甚至1 Mb大小的染色体片段[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&threadid=&postid=&title=&action=&FTTID=1&hasReadRelease=yes#_ENREF_2]2, [url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&threadid=&postid=&title=&action=&FTTID=1&hasReadRelease=yes#_ENREF_3]3]。目前,在多种高等生物中均构建了高质量的YAC文库。YAC可用于大规模基因组测序和物理图谱构建。例如,美国科学家利用YAC完成了人Y染色体及21q的物理图谱并进行了相应的测序工作[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&threadid=&postid=&title=&action=&FTTID=1&hasReadRelease=yes#_ENREF_4]4]。然而,YAC具有一些缺陷,克隆外源基因易出现嵌合体;部分克隆不稳定,在传代培养中可能会发生缺失或重排;YAC与酵母染色体具有相似的结构,因此难与酵母染色体区分开[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&threadid=&postid=&title=&action=&FTTID=1&hasReadRelease=yes#_ENREF_2]2, [url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&threadid=&postid=&title=&action=&FTTID=1&hasReadRelease=yes#_ENREF_3]3]。细菌人工染色体(Bacterial artificial chromosome, BAC)[/si

  • 【原创大赛】利用“截短法”构建人工染色体的问题及应对策略

    植物人工染色体技术具有广泛的应用前景,然而,目前植物人工染色体技术尚处于其发展初期,仍然存在很多问题。首先,植物人工染色体的构建仍然依赖于常规的转基因技术,或者是农杆菌介导的遗传转化,或者是基于基因枪的粒子轰击的遗传转化,这就不可避免的存在常规遗传转化所存在的问题:转化目的片段插入的随机性,这是一个影响人工染色体构建乃至将来应用的一个重要问题。例如起始载体pWY86系列都是随机插入到某一染色体的某一位置,如果染色体组既包含常染色体,也包含B染色体或者附加染色体,那么目的片段的插入可能位于常染色体,亦可能位于其它染色体,到目前为止,还没有办法控制其特异的插入到某一特定染色体上。同样的,目的片段插入到染色体上的位置也是随机的,尚无办法控制其插入到染色体的特定位置,这些都为后续应用造成了一定的问题:首先,如果目的片段插入到常染色体上,并在插入位置发生端粒介导的染色体切割,这样会造成常染色体部分片段的缺失,对于二倍体植物,这种缺失常常是不能忍受的,大多会造成植株的严重发育不良,或者败育。即便是对于多倍体植物,某条常染色体片段的缺失也有可能造成生长性状的改变。固然我们可以筛选那些发生了端粒介导的染色体切割形成了小染色体,同时遗传性状又没有明显改变的植株,但这需要很大的工作量,同时,即使没有可见或可检测的性状改变也并不能表明不存在隐形的对受体植株的不良影响。同时,常染色体通常很大,靠一次或者几次端粒介导的染色体切割很难形成理想的人工小染色体,即切割后形成的人工染色体可能依然很大,不能满足后续应用要求。如果受体材料染色体组存在B染色体,对于构建植物人工染色体无疑是一个好消息,尤其是如果这些B染色体可以稳定遗传。B染色体通常长度较短,不编码任何功能基因,对于植株的生长发育无影响。如果我们的目的片段插入了B染色体并且发生了端粒介导的染色体切割,并且如果发生了切割的B染色体可以在后面的减数分裂中不被湮没,可以稳定的遗传给子代,那么对于研究者来说是一个巨大的好消息。因为通常认为B染色体对于植株是可有可无的,那么即使发生了端粒介导的染色体切割形成了植物人工小染色体也不会对受体植株造成影响,同时,由于B染色体本身长度较小,无功能,其自身性质就决定了它是构建植物人工小染色体的优良载体。但是B染色体较常染色体而言,通常数量少,长度短,如果基于常规遗传转化的随机性而言,目的片段插入到B染色体,并发生端粒介导的染色体切割的概率就小。幸运的是,Yu W等将pWY86质粒成功的导入了玉米的B染色体,并成功观察到了端粒介导的染色体切割的发生1],这为未来利用B染色体组构建植物人工染色体的研究带来了福音。然而,并不是所有植物物种都含有B染色体,并且,通常B染色体会随着减数分裂的进行而随机丢失或者增加1],这些无疑都给利用B染色体组构建植物人工染色体带来了麻烦。利用附加染色体构建植物人工染色体是又一个理想的选择。在自然界,很多物种都有附加系的存在,这些附加系多附加一对外源染色体,这些附加的外源染色体通常不会对植株发育造成影响,一些附加系很容易发生丢失,如黑麦的附加系[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&FTTID=1#_ENREF_2]2],然而有一些附加系具有很好的遗传稳定性,那么这些含有可以稳定遗传的附加系材料就可以成为构建人工染色体的优良载体。例如本研究的受体材料甘蓝型油菜就有很多附加系[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&FTTID=1#_ENREF_3]3],其中一些附加系就具有很好的遗传稳定性[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&FTTID=1#_ENREF_4]4]。如果以这些遗传稳定的附加系作为转化受体,在转基因后代中筛选目的片段定位于附加染色体并且发生了端粒介导的染色体切割的转化株系,就可以利用这些株系作为进一步的转化或者杂交受体,进行位点特异性重组,实现多基因的定点整合,并且不影响转基因植株的遗传稳定性和生长发育等性状。[size=10pt][1] Yu, W., Han, F., Gao, Z., Vega, J.M. and Birchler, J.A. (2007). Construction and behavior of engineered minichromosomes in maize. Proceedings of the National Academy of Sciences 104, 8924-8929.[size=10pt][2] 任正隆[size=10pt]. (1991). 黑麦种质导入小麦及在小麦育种的利用方式[size=10pt]. 中国农业科学 24, 18-25.[size=10pt][3] 戚存扣,[size=10pt], 浦惠明,[size=10pt] and 傅寿仲[size=10pt]. (1995). 甘蓝型油菜[size=10pt]-埃塞俄比亚芥二体附加系植株形态及细胞学鉴定[size=10pt]. 作物学报 21, 717-722.[size=10pt][4] 戚存扣,[size=10pt], 高冠军,[size=10pt], 浦惠明,[size=10pt], 傅寿仲,[size=10pt] and 仲裕泉[size=10pt]. (2000). [font=宋

  • 【原创大赛】构建植物人工染色体的两种方法的比较

    21世纪以来,随着技术的发展,植物人工染色体技术迅速崛起,而目前最常用的两种构建人工染色体的方法就是“组装法”和“截短法”。“组装法”的研究起步较早,但是由于技术的限制,利用“组装法”构建植物人工染色体的进展一直不理想,到目前为止,也只有在玉米细胞中获得成功1]。然而这种人工构建的环状染色体与真核生物中正常存在的线形染色体相差甚远,因为不具有端粒结构,这种环状的人工染色体能否成为稳定的载体系统还有待进一步证实。与之相比,利用“截短法”构建植物人工染色体的的研究起步较晚,直至2006年才有关于利用“截短法”在玉米中构建植物人工染色体的报道[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487#_ENREF_2]2]。尽管如此,这种方法还是获得了很大成功,随后,科研人员相继在拟南芥[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487#_ENREF_3]3],大麦[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487#_ENREF_4]4],水稻[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487#_ENREF_5]5]中利用“截短法”构建了植物人工染色体,利用“截短法”构建植物人工染色体的研究获得了蓬勃的发展。然而,无论是“组装法”还是“截短法”都各自有其优缺点,笔者认为,“组装法”如果获得成功转化,并且能像常染色体一样稳定遗传,那么利用这种方法构建植物人工染色体周期短,后续应用方便。然而这一方法目前由于受到着丝粒在不同物种中的高度特异性,着丝粒区域的复杂性和难扩增性,以及遗传转化技术等多方面因素制约,使得其在植物中的研究和应用成功率极低,对于其相关的遗传稳定性也难以预料。“截短法”从目前的研究进展看,其可行性是毋庸置疑的,然而从众多的转基因事件中,筛选出转化受体生长发育等各方面性状不发生改变,同时在非常染色体上形成一对可稳定遗传的小染色体的过程也并非易事。不过笔者相信随着转化技术的进步,检测手段的简化和完善,利用“截短法”构建植物人工染色体用以改良作物必将获得长足进步和最终成功。[size=16px] [size=16px]

  • 分散染色体观测用分散物镜是什么

    想买台显微镜测试石棉,国标GB/T 23263里要求物镜为分散染色体观察用分散物镜,问了几家显微镜厂家都不知道是什么东西?哪位高人可以指点下啊。

  • 一组洋葱根尖染色体的照片。

    一组洋葱根尖染色体的照片。

    [img=,690,520]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801300826338324_3945_1633232_3.jpg!w690x520.jpg[/img][img=,690,511]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801300825152536_5967_1633232_3.jpg!w690x511.jpg[/img][img=,690,520]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801300825503312_9987_1633232_3.jpg!w690x520.jpg[/img]最近闲得无聊,制作了一套洋葱根尖染色体的压片,照了几张比较典型的染色体照片发上来大伙看看。固定液为卡诺,盐酸60度水解15min,改良本分品红染色5min,酒精盐酸分色,压片进行观察并照相,照相机为荣耀7[img]http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09502.gif[/img]

  • 【分享】科学家揭秘“急性癌症”成因:染色体“爆炸”破坏DNA

    据英国《每日邮报》1月7日报道,英国科学家找到了“急性癌症”的形成原因:细胞内的染色体发生“爆炸”破坏了DNA,从而让人有可能在短时间内患上癌症。相关论文发表于《细胞》。传统理论认为癌症是人体经历成千上万次的细胞突变后,慢慢演化的结果。但英国著名的疾病研究机构桑格研究所的新发现推翻了这种看法。这暗示了不管人们怎么努力保持身体健康,也不能保证命运不会拿他们开玩笑。同时还说明了为什么有些人在体检时根本没发现癌症痕迹,但数月后突然就被诊断患上这种疾病了。桑格学院的科学家是通过研究750个肿瘤的遗传缺陷后得出以上结论的。其中大部分的案例都与传统理论相符,染色体的损坏是常年累积的结果。然而,其中至少有1/40的肿瘤不符合“标准模式”,有的染色体似乎是在一夜之间遭到破坏的。参与此项研究的坎贝尔博士称:“测验结果太让我们惊讶了。在一个细胞里面,染色体经过一次或者是多次爆炸成为碎片。如果这个细胞开始笨拙地修补,把碎片杂乱的缝合起来,这样就破坏了原来的DNA结构,为癌症的快速形成提供了条件。”坎贝尔博士表示:“这个细胞应该说‘好吧,我放弃’,而不是像对待昂贵的瓷器一样,把染色体拼接回去。细胞试图修复一个不可修复的东西,最后造出一个灾难性的、能让癌症更快形成的基因组。”这种“急性癌症”在骨癌里面特别常见,大概1/4的患者身上都能看到明显的染色体受损特征模式。科学家目前还不能肯定是什么引起了这种染色体“爆炸”,但有嫌疑的罪魁祸首包括X光和晒伤。坎贝尔博士称:“如果我们能了解根本的病因,或许就可以防止患上这种癌症。”http://www.dailymail.co.uk/health/article-1344740/Why-cancers-develop-instant--cells-explode-wreaking-havoc-DNA.html---科学网

  • 转让晶芯LuxScan 10K微阵列芯片扫描仪

    转让晶芯LuxScan 10K微阵列芯片扫描仪

    晶芯LuxScan 10K微阵列芯片扫描仪,如图,有软件和电子版资料http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/03/201703140910_01_2953916_3.jpghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/03/201703140910_02_2953916_3.jpghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/03/201703140910_03_2953916_3.jpg

  • 【原创大赛】常规转基因技术和人工染色体技术优缺点的比较

    植物转基因技术已经成为现代分子生物学研究中的最重要手段。在过去的十几年里,植物转基因技术获得了重大发展,新型和更为有效的转化方法应运而生。尽管如此,农杆菌介导的遗传转化和基因枪法进行的遗传转化仍然是最重要的两种转化方法。农杆菌转化广泛应用于在谷类及双子叶植物。同时,其他转基因技术也迅速发展,如显微注射法、激光微束穿刺法、PEG 法、花粉管通道法、超声波法、阳离子转化法等1][/sup]。常规转基因技术具有很多优点。农杆菌介导的遗传转化成本低,不需要复杂的仪器设备,转化效率高,适用范围广,插入片段大。正因为具有以上优点,农杆菌转化是目前应用最为广泛的转化方法。基因枪法对转化受体要求低,几乎可适用于所有植物物种,方法快速简单;然而基因枪设备要求高,转化成本相对较高,这在一方面限制了基因枪法的使用。同时利用基因枪法获得的转化子通常具有多个转基因拷贝,粒子轰击也常会造成目的片段的断裂失活,转化子出现嵌合体频率高,这些也都在一定程度上限制了基因枪法的使用。其它方法在应用上都存在一定的局限性,或者是操作复杂,或者是适用的物种少。然而不管使用哪种常规方法,都有共同的局限性:1)插入位置的随机性,由于这种随机性的存在,可能导致转化受体发生性状上的改变,如败育,生长不良等等。2)常规的转基因技术多是进行单性状基因的转入,很难将控制多个性状的多个基因同时转入一种作物中,更难将整条复杂代谢途径中的所有基因引入作物中,很难产生新的复杂性状或代谢产物。3)外源基因在转入作物时,往往因整合进内源基因而破坏该内源基因的功能;同时转化的随机性使转入的外源基因受到整合区域上游或下游调控元件的影响,很难进行操控1]。相比之下,植物人工染色体技术具有很多优势:1)植物人工染色体单独成对存在于转化受体,并且稳定遗传给子代,不会影响和破坏其他染色体的结构和功能。2)植物人工染色体采用位点特异重组技术可以将目的基因定点整合到人工染色体的特定位置,不会破坏受体内源基因的功能,也不会受到整合区域上下游的影响。3)植物人工染色体可以承载多个基因,甚至编码复杂代谢网络的众多基因[[url=http://bbs.instrument.com.cn/post.asp?forumid=487&threadid=&postid=&title=&action=&FTTID=1&hasReadRelease=yes#_ENREF_2]2]。正是这些优势的存在,使得植物人工染色体技术当仁不让的成为第三代植物转基因技术,并具有广泛的应用前景。 [size=10pt][1] Barampuram, S. and Zhang, Z.J. (2011). Recent advances in plant transformation. Methods Mol Biol 701, 1-35.[size=10pt][2] Yu, W., Han, F. and Birchler, J.A. (2007). Engineered minichromosomes in plants. Curr Opin Biotechnol 18, 425-31.

  • 【求助】求 植物染色体的SEM样品制备方法 ?

    【求助】求 植物染色体的SEM样品制备方法 ?

    [em0803] [B]又送来几个样品, 说是要做植物细胞里的染色体观察[/B][color=#00008B]又是没接触过的样品,要怎么样制备啊?[/color]是不是要 去除掉细胞壁,用细胞内质的悬液来制备SEM样品啊?[em0813] [color=#DC143C]请教高人[/color][img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2008/04/200804110922_84729_1630556_3.jpg[/img]

  • 【原创】染色液的工作原理

    染色液具有醋酸洋红染色方便的优点,还具有席夫试剂只对核和染色体染色的优点,且染色效果稳定可靠。此液适于动植物各种大小的染色体、体细胞染色体和减数分裂染色体,并具有相当牢固的染色性能,保存性好,室温下两年不变质。

  • 多阵列杂交工作站特色及工作参数

    [url=http://www.f-lab.cn/hybridization/hybmix-s4.html][b]多阵列杂交工作站[/b][/url]是[b]微阵列玻片杂交[/b]和[b]多阵列玻片杂交[/b]的理想高效[b]杂交仪[/b],具有高效的杂交振荡系统和精确的杂交温度控制系统,是微阵列玻片和多个子阵列(多阵列玻片)杂交成功的有力[b]杂交工作站[/b]。集成了轨道振荡器,提供从300至900rmp的可调转速控制,有效提高杂交和结合反应成功率。[b]多阵列杂交工作站[/b]采用国际一流的用户友好界面,操作方便 用户可以设置温度,杂交持续时间和振荡速度。温度,时间和振荡速度显示于仪器前方的宽屏显示屏上,用户可以在任何时间调整参数。[img=多阵列杂交工作站]http://www.f-lab.cn/Upload/hybmix_.jpg[/img][b]多阵列杂交工作站特色[/b]Peltier温度控制技术精确控制温度精确温度调节集成了轨道振荡系统前部具有显示和控制面板用户友好的操作界面[b]多阵列杂交工作站参数[/b]温度范围:室温到105摄氏度加热/制冷系统:温控Peltier技术,温度分辨率 0.1 °C振荡系统:轨道振荡器速度300-1500RPM可调用户界面:高级荧光显示屏VFD, 8个编程控制操作键尺寸(LxDxH): 29.5 x 26.5 x 17.0 cm电力要求: 220 V, 50/60 Hz, 125 W重量:8.5kg更多分子杂交仪请浏览官网:[url]http://www.f-lab.cn/hybridization.html[/url]

  • 苏木精染色的大蒜根尖

    苏木精染色的大蒜根尖

    [img=,690,517]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/01/201901220814231064_5867_1633232_3.jpg!w690x517.jpg[/img][img=,690,517]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/01/201901220813260621_1523_1633232_3.jpg!w690x517.jpg[/img]最近在一位朋友那里看到一张用苏木精染色的染色体压片,材料是大蒜根尖。压片非常漂亮,细胞核、染色体被染成了蓝黑色,其他细胞器基本未着色,对比清晰。向朋友请教染色方法,他也想不起来了。网上有哪位高人做出来过,能告诉我一下染色的方法吗?谢谢。

  • 中药安全隐患不止染色剂 分析检测不可缺

    导读:药品安全作为国家食品药品监管局的重点监管项目之一受到广泛关注,而其中的中药安全随着近年来中医药的再度繁荣成为人们的关注焦点。  长期以来,中药材安全一直存在诸多隐患,生产日期造假、非法添加染色剂、农残产标、重金属超标、二氧化硫超标等等不一而足,而近期国家食品药品监管总局在全国范围内对黄柏、延胡索等中药材及中药饮片进行的专项监督抽验中,检出9批次添加了染色剂金胺O的不合格产品。  中药安全隐患多  “是药三分毒”,毒上加毒会怎样?中药里面被检出染色剂非此一例,对相关企业的处罚也未减轻,可为何中药材染色屡禁不止?这些非法添加会对人体造成什么伤害?  金胺O作为化学染色剂,曾发现被用于劣质黄柏、蒲黄、延胡索等中药材、中药饮片的非法染色。金胺O对人体具有一定毒性作用,被列为非食用物质,在中药材、中药饮片和中成药中均不得检出。  除了金胺0,苏丹红也经常被发现用于劣质血竭等药材的非法染色,苏丹红的化学成份中含有一种叫萘的化合物,具有致癌性,对人体的危害极大,国家规定在中药材、中药饮片和中成药中均不得检出。  现在逢年过节,很多人喜欢购买人参、灵芝、冬虫夏草等珍贵的中草药馈赠亲友,可这些卖相很好的中药有时候却可能含致命隐患。硫磺作为防腐剂和抗氧化剂,对中药材的加工储藏有一定的帮助作用,因此药材养护过程中经常会让二氧化硫熏蒸空气以间接作用于药材,然而随着时间推移,很多人为了商业利益,用硫磺对药材进行反复熏蒸来达到增白增色作用,熏蒸时间的延长和次数的增多会使药材中的一些有效成分发生变化,从而影响中药饮片的品质,对人体肝脏、肾脏等器官都有潜在危害。虽然2005年的《中国药典》已经表明不允许在中药材中使用硫磺熏蒸来增白、增艳、防虫,但是这根本无法遏制某些生产商欺上瞒下。  此外,中药材种植过程中滥用农药、抗生素、化肥,致使中药材的农药残留和重金属超标在行业内早已不是什么秘密,中药造假、非法炮制更已被多次曝光。  生病吃药本为痊愈,如果因吃药导致旧病未好再添新症,那真是得不偿失,还有谁人敢用药?其实究其原因,中药出现诸多安全隐患,到头来还是为一个字——利。利字当头,利用染色剂可以使劣质药材呈现好卖相,当然就有不良商家不惮于尝试了,他们会全面给大家阐释什么叫天下熙熙,皆为利来,天下攘攘,皆为利往。  保障中药安全 做好分析检测工作  要做好中药质量安全保障工作,对其分析检测尤为重要,传统的中药检测鉴别方法主要有济源鉴别、显微鉴别、经验鉴别和理化鉴别,然而由于这些方法都存在一定的局限性文无法做到绝对准确鉴别,那么还有何种方法可大展身手?  分光光度法是一个不错的选择,利用紫外可见分光光度计、红外分光光度计、原子吸收分光光度计以及荧光分光光度计对中药材进行检查、鉴别和含量测定成为中药常用的仪器分析方法之一,原子光谱法在测定中药中重金属含量上更具有其他方法无可比拟的优势。  此外,经常利用色谱分析进行中药中是否添加染色剂的检测,高效液相色谱法对中药中的农残检测也是得心应手。  至于鉴定中药材真伪,DNA条形码技术的出现为药用植物分类和鉴定提供了本质依据。只需选用一个或少数几个基因片断即可对绝大部分中药物种进行准确鉴定,可以在短时间内鉴定大量样本,重复性和稳定性高,实验过程标准、操作简单,更易实现物种鉴定自动化,可有效缓解分类鉴定人才缺乏的现状。  总之,保障中药安全,就是一个跟不法商家斗智斗勇的过程,你有金钟罩,我有铁布衫,你有张良计,我有过墙梯,监管人员要抓住违法实证施加会心一击,才能遏制中药市场的不正风气,为保障药品安全增加更多助力。

  • 【原创大赛】二极管阵列检测器与峰纯度分析

    【原创大赛】二极管阵列检测器与峰纯度分析

    二极管阵列检测器与峰纯度分析1引言 在药物色谱分析方法开发过程初步完成后,需要对分析方法进行验证,验证的内容包括定量限,精密度和专属性等内容…一些人认为分析方法的专属性是首选必须明确的验证项目,如果分析方法专属性不够,最终会影响准确度等验证内容,得出错误的结论。除了传统的验证专属性的方法外,峰纯度(Peak Purity)检查越来越多的用于评价方法的专属性,可以提供峰纯度的检测器有多通道紫外可见光检测器,二极管阵列检测器(DAD)和质谱(MS)。目前一般药物实验室都配备有二级管阵列检测器,在多种资料和国内药物分析培训中,建议在使用二极管阵列检测器做峰纯度分析时候,主峰的纯度因子应大于980。实际上,该建议的纯度因子及其相关参数表述是安捷伦(Agilent)色谱工作站光谱部分采用的峰纯度检查表现形式,别的色谱工作站会采取不同的表现形式,如waters的化学工作站采取计算峰纯度角与阈值角来比较峰纯度的。下面我们以安捷伦的chemsation中光谱选项涉及到的相关参数和处理过程为例讨论二极管阵列检测器与峰纯度分析过程。2评估峰纯度的原理 不同的化合物具有不同的形状的光谱(这里讨论的是紫外-可见光光谱图),在光谱上不同波长比值是一定的,如果色谱峰是均匀的同一种物质,那么在色谱峰流出的各个时间点,不同波长的比值是一定的。图1显示的是同时检测两个波长(信号A和信号B)的色谱图,下图显示的是两个波长(A/B)的比值图。纯的色谱图比值是恒定的,显示为一条直线,不纯的比值图是有波动的。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210150742_396570_2265735_3.jpg图1 如果用双波长检测器,同时检测两个波长并绘制比值图就可以评价峰纯度了,问题是选择那两个波长呢?如果选择的其中一个波长几乎没有吸收呢?只选择两个波长比值来评价整个峰纯度足够吗?有没有更加优化的办法呢?二极管阵列检测器可以解决上述问题。二极管阵列检测器可以实时提取色谱流出物的光谱,并采用合适的算法比较色谱峰每个时间点的光谱图,这远比比较光谱图上两个波长点更加准确和可行。下面我们讨论二极管阵列检测器考察峰纯度的过称(以Agilent为例)。3二极管阵列检测器和分析峰纯度的方法 二极管阵列检测器与普通的紫外-可见光检测器的最大构造不同是不对穿过检测池的进行分光。二极管阵列检测器在检测池的后方分光,全波段的光到达二极管阵列并产生信号。二极管阵列检测器可以实时获得检测池物质的紫外-可见光吸收光谱图,这是普通紫外-可见光检测器无法完成的。基于二极管阵列检测器以上特性,安捷伦的chemstation 采用两种方式显示峰纯度:(1)光谱归一化法;(2)光谱相似曲线。 光谱归一化法比较简单,选取色谱图上的3-5个点(这些点一般是峰开始,峰上升,峰顶点,峰下降,峰结束等色谱峰对称的几个点,因为二极管阵列是实时获取光谱图,当然你可以在色谱上选择更多的点),提取这些点的光谱图,把这些点的光谱图叠放,吸收值归一化,看这些光谱图是否重合,从重合的程度来判断峰的纯度。图2显示的是光谱归一化法评价色谱峰纯度,保留时间7.8min的色谱峰光谱图不能完全重合,显然该色谱峰是不纯的。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210150748_396571_2265735_3.jpg图2 光谱归一化法直观,与其相比光谱相似曲线从计算相似因子入手,绘制相似曲线,评价峰纯度过程更加精细化,相似因

  • 【求助】纳米线阵列是否可以用XPS分析?

    在基底上沉积的膜(10几纳米左右,有孔洞)+纳米线阵列(1微米左右),想分析纳米线的成分,可否用xps?xps能够反映表面以内多深的信息?基底的信息会造成干扰么?膜呢?菜鸟一只,不要见笑。

  • 微生物染色技术

    染色方法  微生物染色方法一般分为单染色法和复染色法两种。前者用一种染料使微生物染色,但不能鉴别微生物。复染色法是用两种或两种以上染料,有协助鉴别微生物的作用。故亦称鉴别染色法。常用的复染色法有革兰氏染色法和抗酸性染色法,此外还有鉴别细胞各部分结构的(如芽胞、鞭毛、细胞核等)特殊染色法。食品微生物检验中常用的是单染色法和革兰氏染色法。1、单染色法  用一种染色剂对涂片进行染色,简便易行,适于进行微生物的形态观察。在一般情况下,细菌菌体多带负电荷,易于和带正电荷的碱性染料结合而被染色。因此,常用碱性染料进行单染色,如美兰、孔雀绿、碱性复红、结晶紫和中性红等。若使用酸性染料,多用刚果红、伊红、藻红和酸性品红等。使用酸性染料时,必须降低染液的PH值,使其呈现强酸性(低于细菌菌体等电点),让菌体带正电荷,才易于被酸性染料染色。  单染色一般要经过涂片、固定、染色、水洗和干燥五个步骤。  染色结果依染料不同而不同:  石碳酸复红染色液:着色快,时间短,菌体呈红色。    美兰染色液:着色慢,时间长,效果清晰,菌体呈兰色。  草酸铵结晶染色液:染色迅速,着色深,菌体呈紫色。2、革兰氏染色法  革兰氏染色法是细菌学中广泛使用的一种鉴别染色法,1884年由丹麦医师Gram创立。  细菌先经碱性染料结晶染色,而经碘液媒染后,用酒精脱色,在一定条件下有的细菌此色不被脱去,有的可被脱去,因此可把细菌分为两大类,前者叫做革兰氏阳性菌(G+),后者为革兰氏阴性菌(G—)。为观察方便,脱色后再用一种红色染料如碱性蕃红等进行复染。阳性菌仍带紫色,阴性菌则被染上红色。有芽胞的杆菌和绝大多数和球菌,以及所有的放线菌和真菌都呈革兰氏正反应;弧菌,螺旋体和大多数致病性的无芽胞杆菌都呈现负反应。  革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌在化学组成和生理性质上有很多差别,染色反应不一样。现在一般认为革兰氏阳性菌体内含有特殊的核蛋白质镁盐与多糖的复合物,它与碘和结晶紫的复合物结合很牢,不易脱色,阴性菌复合物结合程度底,吸附染料差,易脱色,这是染色反应的主要依据。  另外,阳性菌菌体等电点较阴性菌为低,在相同PH条件下进行染色,阳性菌吸附碱性染料很多,因此不易脱去,阴性菌则相反。所以染色时的条件要严格控制。例如,在强碱的条件下进行染色,两类菌吸附碱性染料都多,都可呈正反应;PH很低时,则可都呈负反应。此外,两类菌的细胞壁等对结晶紫—碘复合物的通透性也不一致,阳性菌透性小,故不易被脱色,阴性菌透性大,易脱色。所以脱色时间,脱色方法也应严格控制。本文来自检验地带网  革兰氏染色法一般包括初染、媒染、脱色、复染等四个步骤,具体操作方法是:  1)涂片固定。  2)草酸铵结晶紫染1分钟。  3)自来水冲洗。  4)加碘液覆盖涂面染1分钟。  5)水洗,用吸水纸吸去水分。  6)加95%酒精数滴,并轻轻摇动进行脱色,30秒后水洗,吸去水分。  7)蕃红梁色液(稀)染10秒钟后,自来水冲洗。干燥,镜检。  染色的结果,革兰氏正反应菌体都呈紫色,负反应菌体都呈红色。

  • 【原创大赛】Ni基纳米阵列的制备

    【原创大赛】Ni基纳米阵列的制备

    1、实验步骤(1)AAO模板前处理依次用丙酮,乙醇,去离子水对模板进行清洗,以除去表面油污和灰尘等杂质,以防阻塞纳米孔。然后,在模板的一侧进行喷金处理,根据本实验要求,选择喷黄金,喷金在真空条件下进行,时间为5min。前处理后,测得AAO模板喷金侧具有良好的导电性。 (2)电镀液的选取主要选用Ni的盐溶液作为电镀液使用,考虑到AAO模板易被腐蚀的特性,配制了酸性和中性两种电镀液配方进行实验。(3)电镀实验预处理用循环水泵抽真空,使电镀液充满氧化铝模板的孔洞。抽真空时间为12h左右,至溶液内不再有气泡冒出为止。 (4)电沉积 在室温条件下,采用两电极体系,Pt作为对电极。直流电源下电流密度恒定在8mA/cm2条件下制备得到了金属Ni纳米线。将所制备的样品用3MNaOH溶液进行充分溶解,除去多孔氧化铝膜,用去离子水反复长时间冲洗,将残留的NaOH去除干净。2、 结果与讨论2.1模板的微观形貌图1为AAO模板的电镜形貌图。AAO模板孔径为80~100nm。孔隙率,模板中孔洞的体积之和占模板总体积的百分比,用P表示。因模板孔洞平行排列,故孔隙率的大小可用垂直于模板孔洞生长方向的平面上,孔洞面积与总面积的比值来计算。所用模板孔隙率计算如下:α(孔密度)=n÷S总 (2·1)P(孔隙率)=S孔÷S总 (2·2)其中,n(孔数)应按选定的分析面积内完整孔洞的数目来计算。由于孔洞数目较多,且实际模板的孔洞并非理想的圆形,因此,可以考虑借助专门的图形分析处理软件对一些结构参数进行辅助分析计算,一方面可以提高工作效率,另一方面,结构参数分析的准确率也可以得到很好的保证。经计算得,实验所用AAO模板孔隙率约1011个孔/cm2。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/09/201509251659_567922_3043450_3.jpg图1 AAO模板的SEM图2.2制备Ni纳米阵列在室温下恒流电镀9h后,将AAO模板置于3M的NaOH中50min,进行模板的去除后,用SEM观察其微观形貌。图2为去除AAO模版后的纳米线的SEM图。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/09/201509251659_567923_3043450_3.jpg图2 Ni纳米线的SEM图从图2可以看出, Ni纳米线呈束状,有较大的长径比,大量纳米线互相接触,这是由于溶解时间过长,AAO模板全部被除去后,单独的纳米线无法独立支撑,未形成规整的阵列结构。Ni纳米线直径在80-100nm之间,这与AAO模板孔洞直径分布有关。AAO模板的制备过程中会因降压引起纳米孔洞底部变细小,镍纳米线的外形与氧化铝模板具有相似性,因此镍纳米线的根部会有分支、变细的现象。还可能是电沉积过程中,导电性能好的区域生长较快形成的。纳米线表面不光滑则说明Ni纳米线的生长为单晶结构,生长速度有一定的不可控性。图3为所制备的Ni基纳米线的俯视图,AAO模板全部去除,纳米线互相接触。可以看出,Ni纳米线具有很好的取向性且未发生断裂,表明纳米线刚性较好。在模板全部被去除的情况下,仍保持有一定的有序性。纳米线生长长度基本一致。纳米线呈束状集中也有可能是电沉积时间过长,导致所沉积的纳米线长度超过模板而在模板表面沉积而形成的。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/09/201509251659_567924_3043450_3.jpg图3 Ni基纳米阵列将AAO模板的去除时间缩短为35min,电沉积时间仍为9h,对制得的样品进行微观表征,如图4的a、b、c、d所示。由图4可知,模板部分去除后得到的Ni基纳米阵列,呈排列整齐的阵列结构,可用于下一步的纳米阵列电催化性能的研究。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/09/201509251659_567925_3043450_3.jpg图3·5 Ni基纳米阵列的SEM图依据上面的分析结果可知,为得到排列规整的Ni基纳米阵列,需对电镀时间和模板溶解时间进行调整。缩短模板溶解时间,使Ni纳米线底部不与基体脱离,使纳米线之间相互独立,保持模板去除前的间距,从而得到Ni基纳米阵列电极。3、结论通过AAO模板电沉积法制备的Ni基纳米线平行排列,高度有序,镍基纳米阵列中镍纳米线直径为80~100nm。

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