调制叶绿素荧定仪

用途：FL 6000双调制叶绿素荧光仪测量叶绿素a（ChlA）的荧光强度。测量时，一组发光二极管发出持续几微秒、强度很低的测量光，激发叶绿素产生叶绿素荧光，叶绿素荧光由PIN光电二极管检测，并由16位A/D转换器数字化。该仪器支持脉冲光调制测量，同时可以捕捉快速的OJIP瞬态曲线、快速测量QA-再氧化动力学，S状态转换。FL 6000-F快速版双调制叶绿素荧光仪，可以进行闪光荧光诱导(FFI)实验，用于计算光合色素有效天线尺寸、天线连通性和快速光曲线。FL 6000-F的主要特点是配置有高功率的矩形光化光以及620nm的激发光源，特别适用于蓝藻的测量。QA受体的完全还原在25us内即可完成，仪器可以测量在单翻转饱和脉冲时的叶绿素荧光。该技术用于光系统II的有效天线尺寸及异质性和连接性的研究，不受DCMU或其它除草剂的干扰。FL 6000光学检测部件FL 6000-S，标准版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率4us 叶绿素a检测浓度：100ng/L 支持的荧光实验程序： -瞬时荧光 -QA再氧化 -Kautsky诱导效应 -淬灭分析 -快速OJIP曲线 -S状态转换FL 6000-F，快速版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率1us 叶绿素a检测浓度：1mg 支持标准版所有荧光实验程序 特殊实验程序：闪光荧光诱导(FFI) 特点：内置叶绿素荧光诱导测量、PAM脉冲调制测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA再氧化动力学、S状态转化、荧光淬灭测量测序，快速版具有闪光荧光诱导(FFI)测量功能；双调制技术，具备调制光化学光和持续光化学光；标准版时间分辨率达4us，快速版高达1us，是目前时间分辨率较高的叶绿素荧光仪；叶绿素检测灵敏度高，达1ug Chla/L；QA再氧化测量曲线应用领域：光合自养型微生物研究PSII光化学效率的测定水生生物初级生产力估算浮游植物光合性能和代谢扰动的研究光合突变体的筛选生物和非生物胁迫的检测；植物抗胁迫能力或者易感性研究；专业软件，内置淬灭分析、QA-再氧化、Kautsky诱导效应、OJIP等多种实验程序 技术规格：主体实验程序叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、QA再氧化、OJIP曲线、S状态转换、叶绿素荧光淬灭分析PAM荧光淬灭测量FO；FM；FV；FO'；FM'；FV'；FT；FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等50多个叶绿素荧光参数和曲线OJIP快速荧光动力学测量OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数QA再氧化动力学测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）S状态转换荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量测量光标准：620nm和460nm，其他波长可选单翻转饱和脉冲100000µ mol(photon).m-2.s-1，最大持续时间150us光化光最大光强3000µ mol(photons).m-2.s-1；检测器FL 6000-F：1µ sFL 6000-S：4µ s控制单元双通道通用高精度自动微处理器样品管10x10mm，容积4mlA/D16位；500kHz通讯方式USB控制盒尺寸29*20*11cm测量单元尺寸直径16cm*6cm高重量5kg功率20W测量室可选，定制测量光、光化光和饱和脉冲以及检测波段氧气测量模块可选，测量藻类氧气释放温度控制器TR 2000，0-70℃，精度0.1℃，可选电磁搅拌器密封不锈钢，IP64，手动调速100-1000rpm,8x3mm磁力棒，可选远红光LED中心波长730nm，用于光系统I激发，测量Fo’，可选软件功能创建和存储实验草案、可通过FluorWin向导功能自动建立实验方案、实验数据的获取和输出、数据处理和显示 产地：捷克

Mini-PAM&mdash &mdash 外观Mini，但功能绝不Mini！PNAS、PlantCell、PlantPhysiology等顶级期刊上经常见到它的身影Schreiber教授因发明PAM系列调制叶绿素荧光仪而获得首届国际光合作用协会（ISPR）创新奖1983年，WALZ公司首席科学家、德国乌兹堡大学的UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台调制荧光仪&mdash &mdash PAM-101/102/103，并在植物生理、生态、农学、林学、水生生物学等领域得到广泛应用，出版了大量高水平研究文献。但该仪器比较笨重，不易带到野外。1992年，UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台便携式调制荧光仪&mdash &mdash PAM-2000（现已升级到PAM-2100），由于其既能在室内使用，也方便野外使用，因此在此后十几年中成为全球最畅销的调制荧光仪。1996年，WALZ公司在浓缩PAM-2000功能的基础上，设计制造了一台更加方便携带的超便携式调制荧光仪&mdash &mdash MINI-PAM。该仪器对PAM-2000的功能进行了浓缩，更加适合野外操作，同时价格也更加便宜。系统描述MINI-PAM采用了独特的调制技术和饱和脉冲技术，从而可以通过选择性的原位测量叶绿素荧光来检测植物光合作用的变化。MINI-PAM的调制测量光足够低，可以只激发色素的本底荧光而不引起任何的光合作用，从而可以真实的记录基础荧光Fo。MINI-PAM具有很强的灵敏度和选择性，使其即使在很强的、未经滤光片处理的环境下（如全日照甚至是10000&mu molm-2s-1的饱和光强下）也可测定荧光产量而不受到干扰。MINI-PAM是野外光合作用研究的强大工具。超便携式调制叶绿素荧光仪MINI-PAM的特点在于快速、可靠的测量光合作用光化学能量转换的实际量子产量。此外，MINI-PAM秉承了WALZ公司PAM系列产品的一贯优点，通过应用调制测量光来选择性的测量活体叶绿素荧光。基于创新性的光电设计和高级微处理器技术，MINI-PAM在达到超便携设计的同时可以得到灵敏、可靠的结果。同时，MINI-PAM的操作非常简单。测量光合量子产量只需一个按键（START）操作即可，仪器会自动测量荧光产量（F）和最大荧光（Fm），并计算光合量子产量（Y＝&Delta F/Fm），得到的数据会在液晶显示屏上显示同时自动存储。此外MINI-PAM还有许多模式（MODE）菜单，包括荧光淬灭分析（qP、qN和NPQ）和记录光响应曲线等，以满足用户的特殊需要。连接光适应叶夹2030-B后，可以测量光合有效辐射（PAR）、叶片温度和相对电子传递速率（rETR）。内置电池可以满足1000次量子产量测量的需要，仪器内存可以存储4000组数据。Windows操作软件WinControl可以进行数据传输、数据分析和遥控操作。标准版的MINI-PAM采用红光作为测量光。根据用户需要，我们也可提供以蓝光（470nm）作为测量光的MINI-PAM。特点1）声誉卓著的PAM-2000的浓缩版2）精巧、准确、迅速、操作简便的高级光合作用检测设备3）可单机操作（采用内置电脑），可连接外置电脑操作（Windows操作软件WinControl）4）超便携式设计，带液晶显示屏和8个按键5）强大的数据收集、分析和存贮功能6）能耗低，内置锂电池可满足长时间野外工作需要，并可连接外置12V电池7）多种叶夹可供选择，专利设计的光适应叶夹2030-B可同时记录PAR和温度变化8）光源选择：自然光，内置光源（提供测量光、光化光和饱和脉冲），可选外置卤素灯光源（特别适合野外研究）功能1）可测荧光诱导曲线并进行淬灭分析（Fo,Fm,Fv/Fm,F,Fm' ,&Delta F/Fm&rsquo ,qP,qN,NPQ,rETR,PAR和叶温等）2）可测光响应曲线和快速光曲线（RLC）3）51个内置模式菜单，方便参数设置和标准测量4）可在线监测植物、微藻、地衣、苔藓等的光合作用变化5）功能强大，特别适合野外操作，实验室内利用WinControl控制时可自编程序应用领域仪器设计特别适合野外使用，可用于研究光合作用机理、各种环境因子（光、温、营养等）对植物生理状态的影响、植物抗逆性（干旱、冷、热、涝、UV、病毒、污染、重金属等）、植物的长期生态学变化等。在植物生理学、植物生态学、植物病理学、农学、林学、园艺学、水生生物学、环境科学、毒理学、微藻生物技术、极地植物光合作用研究等领域有着广泛应用。系统组成MINI-PAM的基本组成包括主机（1）和光纤（2）。主机内置大容量可充电锂电池（12V/2Ah），可供长时间野外操作（约1000次量子产量测定）。标准系统还包括一个电池充电器（3）和一个&ldquo 距离叶夹&rdquo （4），以及一个运输箱（5）。可选附件包括：可在测量荧光参数的同时测量PAR和温度的光适应叶夹2030-B（6）；微型光量子/温度传感器2060-M（7），可用于测量非叶片状样品的PAR和温度；可安装2030-B或2060-M的三角架ST-2101A（8）；暗适应叶夹DLC-8（9），带滑片开关，重4g；微光纤（10），可用于测量微型样品，或与便携式光合作用测量系统GFS-3000的叶室连用在自然光下同步测量气体交换和叶绿素荧光。可与光合仪连用，同步测量气体交换和荧光MINI-PAM可以利用微光纤与便携式光合作用测量系统GFS-3000连用，在完全不遮荫的自然光下同步测量气体交换与叶绿素荧光，特别适合野外生理、生态学研究。技术参数测量光：红色发光二极管（LED），650nm；标准光强0.15&mu molm-2s-1PAR；调制频率0.6或20kHz，自动转换。光化光：卤素灯，8V/20W，蓝色增强，&lambda 710nm；MINI-PAM/B：&lambda 650nm）；选择性锁相放大器（专利设计）。数据存储：CMOSRAM128KB，可存储4000组数据测量参数：Fo,Fm,Fm&rsquo ,F,Fv/Fm(max.Yield),&Delta F/Fm&rsquo (Yield),qP,qN,NPQ,ETR,PAR和叶温等。环境温度：-5～＋40℃，在极地研究中得到成功应用部分文献1.AnjumMA:ResponseofCleopatramandarinseedlingstoapolyamine-biosynthesisinhibitorundersaltstress.ActaPhysiologiaePlantarum2010:inpress.[MINI-PAM]2.BeniwalRS,Langenfeld-HeyserR,PolleA:EctomycorrhizaandhydrogelprotecthybridpoplarfromwaterdeficitandunravelplasticresponsesofxylemanatomyEnvironmentalandExperimentalBotany2010:inpress.[MINI-PAM,HCM-1000]3.DoyleSM,DiamondM,McCabePF:Chloroplastandreactiveoxygenspeciesinvolvementinapoptotic-likeprogrammedcelldeathinArabidopsissuspensioncultures.JournalofExperimentalBotany2010,61(2):473-482.[MINI-PAM]4.DuN,GuoW,ZhangX,WangR:MorphologicalandphysiologicalresponsesofVitexnegundoL.var.heterophylla(Franch.)Rehd.todroughtstress.ActaPhysiologiaePlantarum2010:inpress.[GFS-3000,MINI-PAM]5.FleckI,Peñ a-RojasK,ArandaX:MesophyllconductancetoCO2andleafmorphologicalcharacteristicsunderdroughtstressduringQuercusilexL.resprouting.AnnForSci2010,67(3):308.[MINI-PAM]6.Fü hrsH,

FL6000双调制叶绿素荧光仪是FL3500双调制叶绿素荧光仪的最新升级版，专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻，叶绿体或类囊体悬浮物进行光合作用深入机理研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制，可控制测量样品的温度，并配备单翻转光（STF），内置多种可用户自行修改的测量程序，可进行目前国际上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头，内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs（快速版为1μs）。应用领域： 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 代谢混乱研究 光合系统工作机理研究 受胁迫植物光合生理应对策略研究典型样品： 蓝藻（蓝细菌） 绿藻 叶绿体悬浮物 类囊体悬浮物 植物碎片功能特点： 内置叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等测量程序，是世界上公认的功能最为全面的叶绿素荧光仪 双调制技术，可双色调制测量光，具备调制光化学光和持续光化学光，可进行STF（单周转光闪）、TTF（双周转光闪）和MTF（多周转光闪）及定制FRR技术（Fast Repetition Rate）测量 标准版时间分辨率达4μs，快速版更高达1μs，是目前时间分辨率最高的叶绿素荧光仪 控制单元为双通道，可连接温度传感器用于温度控制、连接氧气测量单元用于希尔反应测量等 具备极高灵敏度，最低检测极限为1μg Chla/L 测量光、光化光、饱和单反转光光源颜色、强度均可定制 主机配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图技术参数： 实验程序：叶绿素荧光诱导测量；PAM（脉冲调制）测量；OJIP快速荧光动力学测量；QA–再氧化动力学；S状态转换；快速叶绿素荧光诱导 荧光参数：ú PAM荧光淬灭动力学测量：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项叶绿素荧光参数与曲线；ú OJIP快速荧光动力学测量：OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数；ú QA–再氧化动力学（QA- reoxidation kinetics）：测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）ú S状态转换（S-state test）：S-state test荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量ú 提供用户自定义protocol功能，可实现PSII天线异质性PSIIα与PSIIβ分析、PSII有效天线截面积（s PSII）等参数的测量（仅限快速版）QA–再氧化动力学曲线和S-state test荧光衰减曲线（Li，2010） 时间分辨率（采样频率）：高灵敏度检测器，标准版时间分辨率为4μs，快速版为1μs 最低检测极限：1μg Chla/L 控制单元：配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图 Superhead测量室：o 测量光闪：617nm红橙光和455nm蓝光，光闪时间2–5μso 单周转饱和光闪：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，最大光强80000 μmol(photons)/m2.s，光闪时间20–50μs o 持续光化学光：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，任选其一，最大光强3000 μmol(photons)/m2.so 样品试管：底面积10×10mm，容积4mlo AD转换器：500 kHz/16–bit 定制superhead测量室（选配）：可分别定制测量光、饱和光闪和光化学光颜色（蓝色、青色、琥珀色等）以及检测波段（ChlA，ChlB） 远红外光源（选配）：用于激发光系统I，波长735nm 氧气测量模块（选配）：测量藻类的氧气释放 温度控制（选配）：TR 2000温度调节器，控温范围0–70℃，精确度0.1℃ 电磁搅拌（选配）：密封不锈钢外壳，IP64防护等级，手动转扭调速100-1000rpm，8mm×3mm标准磁力棒 通讯接口：USB FluorWin软件：定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示典型应用：1. 中科院水生生物所王强研究员使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）和TL植物热释光系统证明亚硝酸盐胁迫首先影响Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受体侧(Zhan X, et al, 2017)。这种光合作用深入机理的研究经常需要这两种仪器来配合完成。 2.中科院新疆生态与地理研究所潘响亮研究员及其课题组使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）深入开展了环境中重金属、盐分、有毒化合物、除草剂、杀虫剂、抗生素等各种有害物质对藻类的毒理研究。通过FL3500独有的高分辨率OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换等叶绿素荧光测量程序，全面揭示了不同浓度与处理时间对藻类光合系统造成损伤的毒理机制及其生态影响。目前，潘响亮课题组已经使用FL3500（FL6000之前型号）在国际SCI期刊与国内核心期刊上发表了二十余篇高水平文章。 产地：捷克部分参考文献：1. Manaa A., et al. (2019) Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-1142. Sicora C. I., et al. (2019) Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–4733. Smythers A. L., et al. (2019) Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-7124. Albanese P., et al. (2018) Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non‐model organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal, Volume96, Issue4, Pages 786-8005. Antal T., Konyukhov I., Volgusheva A., et al. (2018) Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.126936. Antal T. K., Maslakov A., Yakovleva O. V., et al. (2018). Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2 7. Biswas S., Eaton-Rye J. J. (2018). PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209. 8. Bonisteel E. M., et al. (2018). Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.9. Fang X., et al. (2018). Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.10. Kuthanová Trsková E., Belgio E., Yeates A. M., et al. (2018) Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany, Volume 69, Issue 18, 14 August 2018, Pages 4483–4493