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调制叶绿素荧光仪

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  • 用途:FL 6000双调制叶绿素荧光仪测量叶绿素a(ChlA)的荧光强度。测量时,一组发光二极管发出持续几微秒、强度很低的测量光,激发叶绿素产生叶绿素荧光,叶绿素荧光由PIN光电二极管检测,并由16位A/D转换器数字化。该仪器支持脉冲光调制测量,同时可以捕捉快速的OJIP瞬态曲线、快速测量QA-再氧化动力学,S状态转换。FL 6000-F快速版双调制叶绿素荧光仪,可以进行闪光荧光诱导(FFI)实验,用于计算光合色素有效天线尺寸、天线连通性和快速光曲线。FL 6000-F的主要特点是配置有高功率的矩形光化光以及620nm的激发光源,特别适用于蓝藻的测量。QA受体的完全还原在25us内即可完成,仪器可以测量在单翻转饱和脉冲时的叶绿素荧光。该技术用于光系统II的有效天线尺寸及异质性和连接性的研究,不受DCMU或其它除草剂的干扰。FL 6000光学检测部件FL 6000-S,标准版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率4us 叶绿素a检测浓度:100ng/L 支持的荧光实验程序: -瞬时荧光 -QA再氧化 -Kautsky诱导效应 -淬灭分析 -快速OJIP曲线 -S状态转换FL 6000-F,快速版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率1us 叶绿素a检测浓度:1mg 支持标准版所有荧光实验程序 特殊实验程序:闪光荧光诱导(FFI) 特点:内置叶绿素荧光诱导测量、PAM脉冲调制测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA再氧化动力学、S状态转化、荧光淬灭测量测序,快速版具有闪光荧光诱导(FFI)测量功能;双调制技术,具备调制光化学光和持续光化学光;标准版时间分辨率达4us,快速版高达1us,是目前时间分辨率较高的叶绿素荧光仪;叶绿素检测灵敏度高,达1ug Chla/L;QA再氧化测量曲线应用领域:光合自养型微生物研究PSII光化学效率的测定水生生物初级生产力估算浮游植物光合性能和代谢扰动的研究光合突变体的筛选生物和非生物胁迫的检测;植物抗胁迫能力或者易感性研究;专业软件,内置淬灭分析、QA-再氧化、Kautsky诱导效应、OJIP等多种实验程序 技术规格:主体实验程序叶绿素荧光诱导测量、PAM(脉冲调制)测量、QA再氧化、OJIP曲线、S状态转换、叶绿素荧光淬灭分析PAM荧光淬灭测量FO;FM;FV;FO';FM';FV';FT;FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等50多个叶绿素荧光参数和曲线OJIP快速荧光动力学测量OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数QA再氧化动力学测量QA–再氧化动力学曲线,用于拟合QA–再氧化过程中快相(Fast phase)、中间相(Middle phase)和慢相(Slow phase)各自的振幅(A1,A2,A3)和时间常数(T1,T2,T3)S状态转换荧光衰减曲线,用于拟合计算无活性光系统II (PSIIX)反应中心数量测量光标准:620nm和460nm,其他波长可选单翻转饱和脉冲100000µ mol(photon).m-2.s-1,最大持续时间150us光化光最大光强3000µ mol(photons).m-2.s-1;检测器FL 6000-F:1µ sFL 6000-S:4µ s控制单元双通道通用高精度自动微处理器样品管10x10mm,容积4mlA/D16位;500kHz通讯方式USB控制盒尺寸29*20*11cm测量单元尺寸直径16cm*6cm高重量5kg功率20W测量室可选,定制测量光、光化光和饱和脉冲以及检测波段氧气测量模块可选,测量藻类氧气释放温度控制器TR 2000,0-70℃,精度0.1℃,可选电磁搅拌器密封不锈钢,IP64,手动调速100-1000rpm,8x3mm磁力棒,可选远红光LED中心波长730nm,用于光系统I激发,测量Fo’,可选软件功能创建和存储实验草案、可通过FluorWin向导功能自动建立实验方案、实验数据的获取和输出、数据处理和显示 产地:捷克
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  • Mini-PAM&mdash &mdash 外观Mini,但功能绝不Mini!PNAS、PlantCell、PlantPhysiology等顶级期刊上经常见到它的身影Schreiber教授因发明PAM系列调制叶绿素荧光仪而获得首届国际光合作用协会(ISPR)创新奖1983年,WALZ公司首席科学家、德国乌兹堡大学的UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台调制荧光仪&mdash &mdash PAM-101/102/103,并在植物生理、生态、农学、林学、水生生物学等领域得到广泛应用,出版了大量高水平研究文献。但该仪器比较笨重,不易带到野外。1992年,UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台便携式调制荧光仪&mdash &mdash PAM-2000(现已升级到PAM-2100),由于其既能在室内使用,也方便野外使用,因此在此后十几年中成为全球最畅销的调制荧光仪。1996年,WALZ公司在浓缩PAM-2000功能的基础上,设计制造了一台更加方便携带的超便携式调制荧光仪&mdash &mdash MINI-PAM。该仪器对PAM-2000的功能进行了浓缩,更加适合野外操作,同时价格也更加便宜。系统描述MINI-PAM采用了独特的调制技术和饱和脉冲技术,从而可以通过选择性的原位测量叶绿素荧光来检测植物光合作用的变化。MINI-PAM的调制测量光足够低,可以只激发色素的本底荧光而不引起任何的光合作用,从而可以真实的记录基础荧光Fo。MINI-PAM具有很强的灵敏度和选择性,使其即使在很强的、未经滤光片处理的环境下(如全日照甚至是10000&mu molm-2s-1的饱和光强下)也可测定荧光产量而不受到干扰。MINI-PAM是野外光合作用研究的强大工具。超便携式调制叶绿素荧光仪MINI-PAM的特点在于快速、可靠的测量光合作用光化学能量转换的实际量子产量。此外,MINI-PAM秉承了WALZ公司PAM系列产品的一贯优点,通过应用调制测量光来选择性的测量活体叶绿素荧光。基于创新性的光电设计和高级微处理器技术,MINI-PAM在达到超便携设计的同时可以得到灵敏、可靠的结果。同时,MINI-PAM的操作非常简单。测量光合量子产量只需一个按键(START)操作即可,仪器会自动测量荧光产量(F)和最大荧光(Fm),并计算光合量子产量(Y=&Delta F/Fm),得到的数据会在液晶显示屏上显示同时自动存储。此外MINI-PAM还有许多模式(MODE)菜单,包括荧光淬灭分析(qP、qN和NPQ)和记录光响应曲线等,以满足用户的特殊需要。连接光适应叶夹2030-B后,可以测量光合有效辐射(PAR)、叶片温度和相对电子传递速率(rETR)。内置电池可以满足1000次量子产量测量的需要,仪器内存可以存储4000组数据。Windows操作软件WinControl可以进行数据传输、数据分析和遥控操作。标准版的MINI-PAM采用红光作为测量光。根据用户需要,我们也可提供以蓝光(470nm)作为测量光的MINI-PAM。特点1)声誉卓著的PAM-2000的浓缩版2)精巧、准确、迅速、操作简便的高级光合作用检测设备3)可单机操作(采用内置电脑),可连接外置电脑操作(Windows操作软件WinControl)4)超便携式设计,带液晶显示屏和8个按键5)强大的数据收集、分析和存贮功能6)能耗低,内置锂电池可满足长时间野外工作需要,并可连接外置12V电池7)多种叶夹可供选择,专利设计的光适应叶夹2030-B可同时记录PAR和温度变化8)光源选择:自然光,内置光源(提供测量光、光化光和饱和脉冲),可选外置卤素灯光源(特别适合野外研究)功能1)可测荧光诱导曲线并进行淬灭分析(Fo,Fm,Fv/Fm,F,Fm' ,&Delta F/Fm&rsquo ,qP,qN,NPQ,rETR,PAR和叶温等)2)可测光响应曲线和快速光曲线(RLC)3)51个内置模式菜单,方便参数设置和标准测量4)可在线监测植物、微藻、地衣、苔藓等的光合作用变化5)功能强大,特别适合野外操作,实验室内利用WinControl控制时可自编程序应用领域仪器设计特别适合野外使用,可用于研究光合作用机理、各种环境因子(光、温、营养等)对植物生理状态的影响、植物抗逆性(干旱、冷、热、涝、UV、病毒、污染、重金属等)、植物的长期生态学变化等。在植物生理学、植物生态学、植物病理学、农学、林学、园艺学、水生生物学、环境科学、毒理学、微藻生物技术、极地植物光合作用研究等领域有着广泛应用。系统组成MINI-PAM的基本组成包括主机(1)和光纤(2)。主机内置大容量可充电锂电池(12V/2Ah),可供长时间野外操作(约1000次量子产量测定)。标准系统还包括一个电池充电器(3)和一个&ldquo 距离叶夹&rdquo (4),以及一个运输箱(5)。可选附件包括:可在测量荧光参数的同时测量PAR和温度的光适应叶夹2030-B(6);微型光量子/温度传感器2060-M(7),可用于测量非叶片状样品的PAR和温度;可安装2030-B或2060-M的三角架ST-2101A(8);暗适应叶夹DLC-8(9),带滑片开关,重4g;微光纤(10),可用于测量微型样品,或与便携式光合作用测量系统GFS-3000的叶室连用在自然光下同步测量气体交换和叶绿素荧光。可与光合仪连用,同步测量气体交换和荧光MINI-PAM可以利用微光纤与便携式光合作用测量系统GFS-3000连用,在完全不遮荫的自然光下同步测量气体交换与叶绿素荧光,特别适合野外生理、生态学研究。技术参数测量光:红色发光二极管(LED),650nm;标准光强0.15&mu molm-2s-1PAR;调制频率0.6或20kHz,自动转换。光化光:卤素灯,8V/20W,蓝色增强,&lambda 710nm;MINI-PAM/B:&lambda 650nm);选择性锁相放大器(专利设计)。数据存储:CMOSRAM128KB,可存储4000组数据测量参数:Fo,Fm,Fm&rsquo ,F,Fv/Fm(max.Yield),&Delta F/Fm&rsquo (Yield),qP,qN,NPQ,ETR,PAR和叶温等。环境温度:-5~+40℃,在极地研究中得到成功应用部分文献1.AnjumMA:ResponseofCleopatramandarinseedlingstoapolyamine-biosynthesisinhibitorundersaltstress.ActaPhysiologiaePlantarum2010:inpress.[MINI-PAM]2.BeniwalRS,Langenfeld-HeyserR,PolleA:EctomycorrhizaandhydrogelprotecthybridpoplarfromwaterdeficitandunravelplasticresponsesofxylemanatomyEnvironmentalandExperimentalBotany2010:inpress.[MINI-PAM,HCM-1000]3.DoyleSM,DiamondM,McCabePF:Chloroplastandreactiveoxygenspeciesinvolvementinapoptotic-likeprogrammedcelldeathinArabidopsissuspensioncultures.JournalofExperimentalBotany2010,61(2):473-482.[MINI-PAM]4.DuN,GuoW,ZhangX,WangR:MorphologicalandphysiologicalresponsesofVitexnegundoL.var.heterophylla(Franch.)Rehd.todroughtstress.ActaPhysiologiaePlantarum2010:inpress.[GFS-3000,MINI-PAM]5.FleckI,Peñ a-RojasK,ArandaX:MesophyllconductancetoCO2andleafmorphologicalcharacteristicsunderdroughtstressduringQuercusilexL.resprouting.AnnForSci2010,67(3):308.[MINI-PAM]6.Fü hrsH,
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  • FL6000双调制叶绿素荧光仪是FL3500双调制叶绿素荧光仪的最新升级版,专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻,叶绿体或类囊体悬浮物进行光合作用深入机理研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制,可控制测量样品的温度,并配备单翻转光(STF),内置多种可用户自行修改的测量程序,可进行目前国际上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头,内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs(快速版为1μs)。应用领域: 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 代谢混乱研究 光合系统工作机理研究 受胁迫植物光合生理应对策略研究典型样品: 蓝藻(蓝细菌) 绿藻 叶绿体悬浮物 类囊体悬浮物 植物碎片功能特点: 内置叶绿素荧光诱导测量、PAM(脉冲调制)测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等测量程序,是世界上公认的功能最为全面的叶绿素荧光仪 双调制技术,可双色调制测量光,具备调制光化学光和持续光化学光,可进行STF(单周转光闪)、TTF(双周转光闪)和MTF(多周转光闪)及定制FRR技术(Fast Repetition Rate)测量 标准版时间分辨率达4μs,快速版更高达1μs,是目前时间分辨率最高的叶绿素荧光仪 控制单元为双通道,可连接温度传感器用于温度控制、连接氧气测量单元用于希尔反应测量等 具备极高灵敏度,最低检测极限为1μg Chla/L 测量光、光化光、饱和单反转光光源颜色、强度均可定制 主机配备彩色触摸显示屏,可实时查看荧光曲线图技术参数: 实验程序:叶绿素荧光诱导测量;PAM(脉冲调制)测量;OJIP快速荧光动力学测量;QA–再氧化动力学;S状态转换;快速叶绿素荧光诱导 荧光参数:ú PAM荧光淬灭动力学测量:F0,Fm,Fv,F0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETR等50多项叶绿素荧光参数与曲线;ú OJIP快速荧光动力学测量:OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数;ú QA–再氧化动力学(QA- reoxidation kinetics):测量QA–再氧化动力学曲线,用于拟合QA–再氧化过程中快相(Fast phase)、中间相(Middle phase)和慢相(Slow phase)各自的振幅(A1,A2,A3)和时间常数(T1,T2,T3)ú S状态转换(S-state test):S-state test荧光衰减曲线,用于拟合计算无活性光系统II (PSIIX)反应中心数量ú 提供用户自定义protocol功能,可实现PSII天线异质性PSIIα与PSIIβ分析、PSII有效天线截面积(s PSII)等参数的测量(仅限快速版)QA–再氧化动力学曲线和S-state test荧光衰减曲线(Li,2010) 时间分辨率(采样频率):高灵敏度检测器,标准版时间分辨率为4μs,快速版为1μs 最低检测极限:1μg Chla/L 控制单元:配备彩色触摸显示屏,可实时查看荧光曲线图 Superhead测量室:o 测量光闪:617nm红橙光和455nm蓝光,光闪时间2–5μso 单周转饱和光闪:标准光源为630nm红光,可选配455nm蓝光,最大光强80000 μmol(photons)/m2.s,光闪时间20–50μs o 持续光化学光:标准光源为630nm红光,可选配455nm蓝光,任选其一,最大光强3000 μmol(photons)/m2.so 样品试管:底面积10×10mm,容积4mlo AD转换器:500 kHz/16–bit 定制superhead测量室(选配):可分别定制测量光、饱和光闪和光化学光颜色(蓝色、青色、琥珀色等)以及检测波段(ChlA,ChlB) 远红外光源(选配):用于激发光系统I,波长735nm 氧气测量模块(选配):测量藻类的氧气释放 温度控制(选配):TR 2000温度调节器,控温范围0–70℃,精确度0.1℃ 电磁搅拌(选配):密封不锈钢外壳,IP64防护等级,手动转扭调速100-1000rpm,8mm×3mm标准磁力棒 通讯接口:USB FluorWin软件:定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示典型应用:1. 中科院水生生物所王强研究员使用FL3500叶绿素荧光仪(FL6000之前型号)和TL植物热释光系统证明亚硝酸盐胁迫首先影响Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受体侧(Zhan X, et al, 2017)。这种光合作用深入机理的研究经常需要这两种仪器来配合完成。 2.中科院新疆生态与地理研究所潘响亮研究员及其课题组使用FL3500叶绿素荧光仪(FL6000之前型号)深入开展了环境中重金属、盐分、有毒化合物、除草剂、杀虫剂、抗生素等各种有害物质对藻类的毒理研究。通过FL3500独有的高分辨率OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换等叶绿素荧光测量程序,全面揭示了不同浓度与处理时间对藻类光合系统造成损伤的毒理机制及其生态影响。目前,潘响亮课题组已经使用FL3500(FL6000之前型号)在国际SCI期刊与国内核心期刊上发表了二十余篇高水平文章。 产地:捷克部分参考文献:1. Manaa A., et al. (2019) Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-1142. Sicora C. I., et al. (2019) Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–4733. Smythers A. L., et al. (2019) Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-7124. Albanese P., et al. (2018) Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non‐model organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal, Volume96, Issue4, Pages 786-8005. Antal T., Konyukhov I., Volgusheva A., et al. (2018) Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.126936. Antal T. K., Maslakov A., Yakovleva O. V., et al. (2018). Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2 7. Biswas S., Eaton-Rye J. J. (2018). PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209. 8. Bonisteel E. M., et al. (2018). Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.9. Fang X., et al. (2018). Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.10. Kuthanová Trsková E., Belgio E., Yeates A. M., et al. (2018) Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany, Volume 69, Issue 18, 14 August 2018, Pages 4483–4493
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  • PAM-2500&mdash &mdash PAM-2100的升级版野外光合作用研究的首选仪器Schreiber教授因发明PAM系列调制叶绿素荧光仪而获得首届国际光合作用协会(ISPR)创新奖1983年,WALZ公司首席科学家、德国乌兹堡大学的UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台调制荧光仪&mdash &mdash PAM-101/102/103,使在自然光下测量叶绿素荧光成为现实,解决了科学界近50年的技术瓶颈。PAM-101/102/103迅速在植物生理、生态、农学、林学、水生生物学等领域得到广泛应用,出版了大量高水平研究文献。但该仪器比较笨重,不易带到野外。1992年,WALZ公司首席科学家、调制荧光仪发明人、德国乌兹堡大学的UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台便携式调制荧光仪&mdash &mdash PAM-2000,并且在植物生理生态学等科研领域得到广泛应用,此后十几年中成为全球最畅销的调制荧光仪。2003年,WALZ公司在保留PAM-2000所有功能和优点的基础上,结合最新技术,将PAM-2000升级到了PAM-2100。2008年,WALZ公司在保留PAM-2100所有功能和优点的基础上,结合最新的超便携个人电脑(UMPC)技术,将PAM-2100升级到了完全基于UMPC电脑Windows系统的PAM-2500。系统描述PAM-2500采用了独特的调制技术和饱和脉冲技术,从而可以通过选择性的原位测量叶绿素荧光来检测植物光合作用的变化。PAM-2500的调制测量光足够低,可以只激发色素的本底荧光而不引起任何的光合作用,从而可以真实的记录基础荧光Fo。PAM-2500具有很强的灵敏度和选择性,使其即使在很强的、未经滤光片处理的环境下(如全日照甚至是10000&mu molm-2s-1的饱和光强下)也可测定荧光产量而不受到干扰。因此,PAM-2500不但适合在实验室人工控制的环境下测量,还可以在自然环境中甚至是强烈的全光照条件下开展野外科学研究。PAM-2500不仅可以连接电脑通过WindowsXPSP2系统或Vista系统操作,还可连接UMPC通过WindowsXPTabletPCEdition来操作。UMPC带60G硬盘,1G内存,功能堪比笔记本电脑。PAM-2500除了标准的叶绿素荧光测量所需配置外,还额外增加了单周转饱和闪光(ST)和多周转饱和闪光(MT),为将来升级P700测量功能埋下了伏笔。特点*声誉卓著的PAM-2100的升级版 *精巧、准确、迅速、操作简便的高级光合作用检测设备 *利用强大的UMPC电脑进行操作,完全基于Windows操作系统,界面友好 *利用超强发光二极管(LED)提供光化光和饱和脉冲,不再使用散热量大的卤素灯 *强大的数据收集、分析和存贮功能 *内置锂电池可满足长时间野外工作需要,并可连接外置12V电池 *多种叶夹可供选择,专利设计的光适应叶夹2030-B可同时记录PAR和温度变化 *60G硬盘,无限量存储功能 *可测荧光诱导曲线的快速上升动力学O-I-D-P相和O-J-I-P相 *可测荧光诱导曲线的慢速下降动力学并进行淬灭分析(Fo、Fm、F、Fo&rsquo 、Fm&rsquo 、Fv/Fm、Y(II)=&Delta F/Fm&rsquo 、qL、qP、qN、NPQ、Y(NPQ)、Y(NO)、ETR、C/Fo、PAR和叶温等) *可测光响应曲线和快速光曲线(RLC) *可在线检测植物、微藻、地衣、苔藓等的光合作用变化 *操作功能强大,特别适合野外操作,野外操作也使用Windows系统应用领域仪器设计特别适合野外使用,可用于研究光合作用机理、各种环境因子(光、温、营养等)对植物生理状态的影响、植物抗逆性(干旱、冷、热、涝、UV、病毒、污染、重金属等)、植物的长期生态学变化等。在植物生理学、植物生态学、植物病理学、农学、林学、园艺学、水生生物学、环境科学、毒理学、微藻生物技术、极地植物光合作用研究等领域有着广泛应用。主要技术参数*测量光:红色LED,630cnm,FWHM20nm;调制频率测量Fo时5-5000Hz可选,打开光化光时1-100kHz可选,测量荧光诱导动力学的快相时200kHz;20级可调。*光化光源:蓝色光化光:LED,455nm,FWHM20nm,光强范围0-800&mu molm-2s-1PAR,20级可调。红色光化光:LED,630nm,FWHM15nm,光强范围0-5000&mu molm-2s-1PAR,20级可调。*饱和脉冲:红色LED,630nm,FWHM15nm,最大PAR25000&mu molm-2s-1,持续时间0.1-0.8s可调,光强20级可调。*远红光:LED,750nm,FWHM25nm,20级可调。*单周转饱和闪光:红色LED,630nm,FWHM15nm,最大PAR125000&mu molm-2s-1,持续时间5-50 s可调。*多周转饱和闪光:红色LED,630nm,FWHM15nm,最大PAR25000&mu molm-2s-1,持续时间1-300ms可调,光强20级可调。*信号检测:PIN-光电二极管,带长通滤光片(T(50%)=715nm),带选择性锁相放大器。*测量参数:Fo、Fm、F、Fo&rsquo 、Fm&rsquo 、Fv/Fm、Y(II)=&Delta F/Fm&rsquo 、qL、qP、qN、NPQ、Y(NPQ)、Y(NO)、ETR、C/Fo、PAR和叶温等。*耗电:基础操作1.6W,内置光源(测量光、红色和蓝色光化光、远红光)为最大输出时8W,饱和脉冲最大输出时37W。*充电时间:关机状态下约需6h。*微型光量子传感器:测量光合有效辐射(PAR),测量范围0~20000&mu molm-2s-1PAR*热电耦(温度传感器):Ni-CrNi,直径0.1mm,测量范围 20~+60℃*数据通讯:USB;蓝牙v2.0+EDRClass2*操作系统:WindowsXPTabletPCEdition,WindowsXPSP2或Vista*超移动个人电脑(UMPC)参数型号:三星Q1Ultra触摸屏UMPC处理器:IntelA110800MHzULV缓存:512Kb内存:1G的DDRII内存硬盘:60G,4200rpm显示器:7英寸WSVGA触摸屏显示器,1024x600像素图形卡:IntelGMA950,最大128M共享内存通讯方式:USB2.0(两个);有线LAN;无线LAN(802.11b/g);蓝牙2.0+EDR读卡插槽:SD/MMC电池:两块锂电池,一块为7.4V/4Ah,可工作3.5h,另一块为7.4V/7.8Ah,可工作6h供电:100-240VAC,50-60Hz部分文献(PAM-2000/PAM-2100/PAM-2500)1.AhmedH,Hä derD-P:RapidecotoxicologicalbioassayofnickelandcadmiumusingmotilityandphotosyntheticparametersofEuglenagracilisEnvironmentalandExperimentalBotany2010,69(1):68-75.[PAM-2000]2.delaPeñ aTC,RedondoFJ,ManriqueE,LucasMM,PueyoJJ:NitrogenfixationpersistsunderconditionsofsaltstressintransgenicMedicagotruncatulaplantsexpressingacyanobacterialflavodoxin.PlantBiotechnologyJournal2010:inpress.[PAM-2000]3.deOliveiraVC,JolyCA:FloodingtoleranceofCalophyllumbrasilienseCamb.(Clusiaceae):morphological,physiologicalandgrowthresponsesTrees-StructureandFunction2010,24(1):185-193.[PAM-2100]4.GladisF,KarstenEU,SchumannR:Preventionofbiofilmgrowthonman-madesurfaces:evaluationofantialgalactivityoftwobiocidesandphotocatalyticnanoparticlesBiofouling2010,26(1):89-101.[PAM-2000]5.GouldKS,DudleDA,NeufeldHS:Whysomestemsarered:caulineanthocyaninsshieldphotosystemIIagainsthighlightstress.JournalofExperimentalBotany2010:inpress.[IMAGING-PAM,PAM-2500,PAM-2000]6.GuadagnoCR,DeSantoAV,D' AmbrosioN:Arevisedenergypartitioningapproachtoassesstheyieldsofnon-photochemicalquenchingcomponentsBiochimicaetBiophysicaActa2010,1797(5):525-530.[PAM-2000]7.Iglesias-BaenaI,Barranco-MedinaS,Lá zaro-PayoA,Ló pez-JaramilloFJ,SevillaF,Lá zaroJ-J:Characterizationofplantsulfiredoxinandroleofsulphinicformof2-Cysperoxiredoxin.JournalofExperimentalBotany2010:inpress.[PAM-2000]8.Ilí kP,Kotabová E,&Scaron pundová M,Nová kO,KaňaR,Strzał kaK:Low-light-inducedViolaxanthinDe-epoxidationinShortlyPreheatedLeaves:Uncou
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  • 2014年,在畅销18年后,MINI-PAM升级到了全新版本MINI-PAM-II!MINI-PAM-II具有蓝色(470 nm)测量光、光化光、饱和脉冲以及远红光(735 nm)。MINI-PAM-II使用触摸屏操作,其半透LED显示屏在自然光下具有良好的可视效果。此外,通过USB接口实现MINI-PAM-II与Windows系统计算机连接,使用WinControl-3软件操作仪器。所有的饱和脉冲分析都可以由触摸屏或软件操作来完成,包括像诱导曲线和光响应曲线在内的自动执行程序。MINI-PAM-II标配6节AA电池(5号电池),在不外接电源的情况下可进行长达1000次饱和脉冲分析;备用电池组使得仪器可以在偏远地方进行长期研究。叶夹配件,可以测量PAR(光合有效辐射强度)、叶温、相对湿度,可推算自然辐射驱动下的电子传递速率。由MINI-PAM-II自动计算的参数有Fv/Fm、Y(II)、qL、qP、qN、NPQ、Y(NPQ)、Y(NO)和ETR等等。PAM系列调制叶绿素荧光仪已成为全球光合作用测量的行业标准,是目前发表文献最多的光合测量技术。Schreiber教授也因其卓越贡献而荣获第一届国际光合作用协会创新大奖(2007)。主要功能? 可测荧光诱导曲线并进行淬灭分析? 可测光响应曲线和快速光曲线(RLC)? 全部采用LED光源,全新触摸屏设计? 新增湿度测量功能,新增远红光源? 仪器更加便携,适合野外测量? 可通过微光纤与光合仪(如GFS-3000)联用? 采用5号电池供电,备用电池易获得,适合长期野外使用应用领域研究光合作用机理、各种环境因子(光、温、营养等)对植物生理生态的影响、植物抗逆性(干旱、冷、热、UV、病毒、污染等)、植物的长期生态学变化等。在植物生理学、植物生态学、植物病理学、农学、林学、园艺学、水生生物学、环境科学等领域有着广泛应用。 测量参数Fo, Fm, F, Fm' , Fo’, Fv/Fm, Y(II)=ΔF/Fm' , qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR, PAR、叶温和相对湿度等。 主要技术参数? 测量光:蓝色LED(470 nm),光强0.05 μmol m-2 s-1? 光化光:蓝色LED(470 nm),最大连续光强3000 μmol m-2 s-1。? 饱和脉冲:蓝色LED(470 nm),最大闪光强度6000 μmol m-2 s-1。? 远红光:发射峰值735 nm。? 信号检测:PIN-光电二极管,带长通滤光片,带选择性锁相放大器。? 数据存储:8M存储卡,可存储27000组数据。 ? 叶夹:2035-B叶夹包含MINI-PAM/ F光纤放置口和样品夹。叶夹上下两部分打开后可以夹住叶片。夹子上面部分提供了一个直径为1厘米圆形测量面积。光纤尖端与测量区域之间的标准距离为8 mm。光纤与测量平面呈60°角。叶片温度传感器安装在测量区域下方。湿度传感器安装在距离测量区域3cm的位置。内置芯片保存传感器的校准数据。饱和脉冲可以通过遥控触发按钮被释放。另外提供一个附加光传感器输入接口。PAR测量范围0-7000 μmol m-2 s-1,叶片温度测量范围-20至+60℃,湿度测量范围0 - 100%RH。? 供电:6节AA(5号1.2 V/2 Ah)可充电电池,充电一次可供1000 次饱和脉冲闪光。产地:德国WALZ
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  • OS5p+采用的是独特的调制-饱和-脉冲技术,可选择性的原位测量叶绿素荧光,以此来检测植物光合作用的变化。OS5p+的调制测量光足够低,可以只激发色素的本底荧光,而不引起植物任何的光合作用,这保证了基础荧光Fo的准确性。OS5p+具有很高的灵敏度和选择性,即使在野外或实验室内很高的外部光强下,也可准确测定叶绿素荧光参数。因此,OS5p+不但适合在条件可控的实验室内进行测量,还可在条件多变的自然环境中开展野外的试验研究。OS5p+广泛应用于植物生理、生态、农学、园艺、浮游植物、生物技术等学科的叶绿素荧光相关研究,特别是在植物逆境生理研究中应用广泛,几乎可以测量所有类型的植物胁迫。 1 特点◆可测量几乎所有类型的植物胁迫:OS-5p+通过Fo、Fm、Fv/Fm、Fod (or Fo’)、Fms (or Fm’)、qP、qN、NPQ、qE、qT、qI、Y 或ΔF/Fm’、以及 O、 J、 I、 P、 T等参数,测量绝大多数类型的植物胁迫。同时,OS-5p+独一无二的N-300或N-200氮(硫)胁迫测与硫胁迫量单元,还可获得叶绿素含量的参数。◆更新的测量协议Vredenberg OJIP淬灭协议:使用高时间分辨率,测量与OJIP相关的NPQ。 ◆叶绿体迁移测量Cazzaniga 2013和Dal’Osta 2014近期的文章表明,叶绿体迁移已经替代了在高光强水平下中间时间范围的荧光变化,之前该变化一直被认为是由于状态转换和严重的光抑制引起的。OS5p+是市面上唯一可测量叶绿体迁移引起的荧光淬灭的仪器。◆更加可靠的测量精度保证创新的PAR叶夹:采用独特的余弦校正技术,校正叶片朝向引起的误差;同时对传感器位置引起的误差、光谱的误差进行校正,相较于未校准的PAR传感器,测量结果更加准确。◆高光强下荧光测量的校正多次饱和光闪技术:采用非常短的饱和脉冲和回归模型方法,可以获得无穷大光强下的荧光,对具有高光强照射历史的植物,进行Y(II)和ETR测量的校正,用户自行决定是否开启该功能。◆更广泛的可自动编程测量协议:所有测量均可通过仪器的内置程序自动完成,并且可根据实际需要,更改测量参数。2 组成标准配件: OS5p+主机、光纤、暗适应叶夹、标准PAR叶夹、开放式叶夹、用户手册、1 GB MMC/SD存储卡、USB数据线、USB SD读卡器、便携箱。可选配件: 藻类测量单元、PAR调节支架、三脚架。3 技术参数◆测量和计算的参数:Y(II)或ΔF/Fm’或Y、ETR、PAR、T、Fv /Fm 、Fv /Fo 、Fo 、Fm、Fv 、Fms 或 Fm、Fs 或F、RLC、rETRMAX、Ik、Im; Hendrickson Quenching with NPQ (standard):Y(NPQ)、 Y(NO)、 Y(II)、 NPQ、 F v /F m;Kramer Quenching (standard):q L 、Y(NPQ)、Y(NO)、Y(II)、F v /F m;Puddle model parameters (standard):NPQ、q N、q P 、Y(II)、F v /F m;Quenching relaxation protocol (standard):q E、q T 、q I 以及 puddle model或Hendrickson model参数;OJIP - Vredenberg OJIP 淬灭协议;OJIP - Strasser 协议直接读出: OJIP、t100μs、t300μs (或K step)、tFm (or P or Fm )、 A (or area above the curve)、Mo (RC/ABS)、PlABS (performance index)、 Fo 、Fm、Fv 、Fv /Fm 、Fv /Fo;存储于数据文件内的Strasser OJIP参数:ABS/RC、TR o/RC、DIo /CS、ETo /RC、TRo /ABS、ETo /TRo、ETo /CS、RC/CSo 、RC/CSM、S、M、T。OJIP图形最多可有32条曲线重叠,每个数据文件最多可以存储32挑曲线的数据,存储的数据文件可达1G。◆光源: 饱和强度:690nm 短波滤波片LED,12000μmols;调制光源:红色:660 LED,690nm短波滤波片; 蓝色:450nm LED光化光源:3000μmols白色 LED; 可选:用于OJIP的红色光化光源远红外光源:高于740nm◆检测方法:脉冲调制式检测;◆检测器与过滤器:PIN 光敏二极管,具有700 ~ 750 nm 滤波片;◆采样速率:每秒1到1000000 个点,根据测量阶段自动转换;◆调制光调节:自动最优化调节调制光强,也可采用手动调节;◆Multi-flash:可应用与所有光适应测量协议,用于校正Fm’,也可以手动关闭;◆测量时间:从0.1s到12h可调;◆存储量: 1 GByte 非破坏性闪存;◆数据输出: USB、1 GB MMC/SD;◆用户界面:菜单式触摸屏;◆电源供给:可充电镍氢电池◆电池使用时间:8h到12h连续测量◆尺寸:17.8 cm x 14cm x 8.3cm◆重量:1.36 kg4 产地:美国5 参考文献 Brian Michael Leckie、C. Neal Stewart Jr. Agroin?ltration as a technique for rapid assays for evaluating candidate insect resistance transgenes in plants. Plant Cell Rep. 2011 (30): 325–334K Ghassemi-Golezani、M Taifeh-Noori、S Oustan、M Moghaddam、S Seyyed Rahmani. Physiological Performance of Soybean Cultivars Under Salinity Stress. Journal of Plant Physiology and Breeding. 2011、1(1): 1-7M.A. Sobrado. Leaf gas exchange and fluorescence of two teosinte species: Zea mays ssp. parviglumis and Z. Diploperennis . Journal of Tropical Agriculture. 2011 49 (1-2) : 91-94.Xiaoqing Yu、Guihua Bai、Na Luo、Zhenbang Chen、Shuwei Liu、Jianxiu Liu、Scott E. Warnke、Yiwei Jiang. Association of simple sequence repeat (SSR) markers with submergence tolerance in diverse populations of perennial ryegrass. Plant Science. 2011 (180): 391–398.........
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  • 产品介绍PlantView230F调制叶绿素荧光活体成像系统是一款用于研究植物光合活性的科研仪器,采用脉冲-振幅-调制技术来实时测量叶绿素荧光发光值。系统配备超高速数码相机,成像面积达150mmX94mm,具备高时间分辨率和空间分辨率。系统高度集成化,可实现藻类细胞的微距测量到整株植物样品的荧光成像分析。通过专业的软件算法,系统可测量多个荧光参数,通过测量叶绿素荧光反映光合作用的过程和变化以及植物样品的生理状态。测量过程快速、简单,对样品无破坏和干扰。 产品特点● 专业相机具有极高的灵敏度和时间分辨率,用于叶绿素荧光瞬时表达检测;系统采用大功率脉冲式LED光源,保证样品在强激发光下受光均匀;系统配备近红外和红外光源,可测量叶片吸光系数(Abs),计算光合作用光系统II(PSII)电子传递速率。● 集成系统高度集成化,满足常见植物全株、叶片、果实、藻类等多种样本的荧光成像;高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像,系统功能涵盖从单细胞到生态学,应用广泛。● 智能一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数;全自动智能仪器控制,轻松上手,快速成像;可预设多种实验方案,模块化设计,流程式操作。● 灵活光源与样品的固定测量距离为170mm,相机和光源可沿Z轴自动升降,测量不同高度、大小的植物;测量的植株最高可达400mm。 智能软件1、测量参数:仪器软件能实时显示Ft、Fo、Fm、Fv/Fm、 Fm’、Y(II)、Y(NPQ)、NPQ、qP、ETR 等18种荧光参数,非计算参数。每个参数均可显示2维荧光彩色图像。2、程序测量功能:可程序测量荧光诱导曲线、快速光曲线和暗弛豫,也可手动测量;在测量过程中能自动分析所有荧光参数的变化趋势。3、感兴趣功能:可在测量前或测量后任意选择感兴趣的区域(ROI),程序将自动对选择的ROI的数据进行变化趋势分析,并在报告文件中显示相关ROI的数据。所有报告文件中显示的数据都可导出到EXCEL文件中。4、软件自动存储以拍摄时间加自定义命名内容为后缀的原始数据,即拍即存,无需繁琐的存储操作及担心数据丢失。5、可预设多种实验方案,模式化设计,流程式操作。6、用户可自定义设置程序,数据结果自动存储并分析。 应用领域叶绿素荧光监测、植物育种筛选、植物生物节律研究、光合作用研究、植物抗逆性研究、海洋湖泊藻类研究、植物生态学研究、植物抗病性研究、水生生态学研究等。 应用案例
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  • 专业□ 相机具有极高的灵敏度和时间分辨率, 用于叶绿素荧光 瞬时表达检测□ 系统采用大功率脉冲式LED光源,保证样品在强激发光下受光均匀□ 系统配备近红外和红外光源,可测量叶片吸光系数(Abs),计算光合作用光系统 II(PSII)电子传递速率集成□ 系统高度集成化,满足常足植物全株、叶 片、果实、藻类等多种样本的荧光成像□ 高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像,系统功能涵盖从单细胞到生态学,应用广泛智能□ 一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数□ 全自动智能仪器控制,轻松上手,快速成像□ 可预设多种实验方案,模块化设计,流程式操作灵活□ 光源与样品的固定测量距离为170mm,相机和光源可沿Z轴自动升降,测量不同高度、大小的植物□ 测量的植株最高可达400mm智能软件□ 可测量Fo, Fo’, Fm, Fm’, Fv, Fv'/ Fm',Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, qN, qP,ETR等多个叶绿素荧光参数□ 专用数据分析软件,智能中英文双语模式自由切换□ 用户可自定义设置程序,数据结果自动存储并分析□ 自带GLP协议,可对实验数据记录、追踪、溯源, 安全可靠,为您的数 据保驾护航□ 多用户登录功能,可对不同的实验室人员进行权限管理,确保实验数据的安全
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  • 天津瑞暄科技发展有限公司,专注于土壤、植物、水环境、环境气象、食品农产品分析、光谱设备、精准农业与物联网、实验室通用设备的研发和销售,代理国内外多个仪器品牌,提供专业的技术咨询和售后服务。 更多产品详情: 3D IMAGING-PAM 3D 调制叶绿素荧光成像系统:可测Fo, Fm, F, Ft, Fm' , Fv/Fm, Y(II), qL, qP, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), ETR, Abs, NIR 和Red、叶片数,角度,常态,形状,面积,莲座形态,结构,总面积,莲座周长等参数。测定调节性能量耗散Y(NPQ),反映植物光保护能力,测定非调节性能量耗散Y(NO),反映植物光损伤程度。应用领域:光合作用研究、植物表型研究、植物病理学、植物胁迫生理学、遗传育种、突变株筛选、微藻毒理学、分子生物学
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  • 1 引言叶绿素荧光是反应植物光合作用等生理功能的重要指标之一。通过分析植物叶绿素荧光参数,可以直接反应植物的光合能力、胁迫状况等重要的生理状态。因此,叶绿素荧光参数的测量一直为学者所重视。而调制-饱和-脉冲式荧光仪的出现,使得叶绿素荧光野外测量变得方便,但仍然存在着不能在线测量,每次只能测量一个样品、无法长期监测等问题针对上述问题,我们推出了在线式叶绿素荧光监测系统,可以长时期的连续监测植物的叶绿素荧光参数,并且可以配合无线传输模块,远程传送数据,单个仪器可同时测量多达32个样品,并且简单的编程设置,可以选择任意时间或不同时间重复测量相同的参数,对更深入的研究植物的光合作用机制及环境对植物的影响具有重要的意义。2 观测系统设计2.1 目标1) 坚固紧凑2) 低维护3) 多样品同时测量 4) 用户自定义设置5) 多种测量协议6) 远程数据传输7) 安装方便8) 适用野外长期监测 9) 标准数据输出 2.2 系统组成及技术指标2.2.1 系统由如下部分组成:1) 光适应与暗适应单元;2) 主机;3) 分线器;4) 供电单元;5) 支架等附件6) 远红光单元(可选);7) 在线数据传输单元(标配WIFI)8) 气象单元(可选) 2.2.2 技术指标:光适应测量参数:l Y(II): (相关参数采用Loriaux 2013 方法校正)PSII的光量子产额,或ΔF/F’或Yl ETR:相对电子传递速率 l PAR: 光合有效辐射l T:叶片温度l FMS:或FM’,光化光下使用饱和脉冲测的的最大荧光l F:光化光下的荧光信号(饱和脉冲照射之前)暗适应测量参数l FV/FM: PSII的最大光化学效率l FV/FO对胁迫更敏感的一个参数,但不测量植物效率l Fo最小荧光l FM最大荧光l FVl FO’可变荧光远红光(暗适应模块)照射后的最小荧光l FO’计算值淬灭参数:l Hendrickson参数Y(NPQ), Y(NO), Y(II), NPQ, FV/FMl Kramer参数qL, Y(NPQ), Y(NO), Y(II), FV/FMKramer new:NPQ(T), qE(T), & qI(T) (近红色光源)l Puddle参数NPQ, qN,qP,Y(II), FV/FMl 淬灭弛豫(可选)qE、qM、qT、qZ和qIl Ruban/ Murchie 参数pNPQ & qPd快速光曲线:l rETRMAX 最大电子传递速率 l α是通过将ETR与PAR关联而创建的低PAR值处的初始斜率。 它提供了量子效率的量度l Ik光化光强l Im 最佳光化光强硬件参数:光源:蓝色饱和脉冲LED:FM’校正时7000 μmols/m2/s具有方形顶部脉冲的10000 μmols/m2/s可选红色饱和脉冲LED:FM’校正时7000 μmols/m2/s具有方形顶部脉冲的10000 μmols/m2/s调制光源:Blue 455nm – 半波宽18nm的蓝色(455nm)光源可选的半波宽18nm的640nm红色光源光化光源 蓝色,可达5000 μmols红色可选,可达5000 μmols远红光源:用于Fo’测量或者暗适应模式中的预照射。检测方法: 脉冲调制式检测器&滤波器: 具有700 ~ 750带通滤波器的PIN光电二极管 采样速率:1~10000点每秒,根据不同测量自动选择测量时间:使用太阳能或交流电对电池进行供电 存储空间:2GB算法:25ms内8点平均值计算FM, FM' , FO, & FS,降低噪音值输出: CSV文件,可以通过wifi,手机、SD卡、无线点对点,以太网,卫星电话或者U盘传输 供电:可以根据要求提供各种外部12伏电池。可以使用太阳能电源和主电源。操作温度: -10℃~+50℃3 数据处理数据通过主控制器获取,可以通过多种方式下载,所有系统标配Wi-Fi模块,方便客户使用。系统界面为彩色触摸屏,可用于数据采集的编程,也可以使用PC和手机进行远程控制,获得的数据格式同Excel兼容,也可以导入各种数据处理软件进行分析,数采内部自带各种算法,用于计算各种模型参数。 5 产地: 美国
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  • CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观,内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像,从而计算植物生长、胁迫,育种,突变株筛选相关等科学研究;滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪,标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲,强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配:385nm紫外,455nm蓝色,530nm绿色,660nm红色,适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能,可以进行0-60摄氏度范围内进行控温,更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域,有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究,用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计;500万像素高清传感器;最大图像尺寸:2456x2054;快门模式:全局及卷帘快门;分辨率:约250DPI(10pix/mm);可测量参数:F0,Fm,Ft,Fm’,Fv/Fm,Yield,qP,qL,qN,NPQ,Y(NPQ),Y(NO),慢速诱导,rETR等。其它功能:ROI,尺寸测量,伪色遮罩,分级统计,自动暗适应等选配功能:385nm灯板,455nm灯板,530nm灯板,660nm灯板,底板控温组件。技术参数成像功能:叶绿素荧光成像及多光谱波段测量;调制叶绿素荧光成像参数:Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等;成像面积:≥20 cm x 20 cm;相机类型:CMOS传感器;相机分辨率:约500万像素颜色深度:12bit(软件扩展至16位);接口:2个USB3.0,1个以太网口;专用嵌入式控制器:提供硬件控制功能;供电:供电:110-230V,最大功耗500W,待机功耗50W;测量光:蓝色LED, 450nm,半峰全宽20nm,最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ,独立触发;饱和脉冲:蓝色LED, 450nm,半峰全宽20nm,最大光强3500 umol m-2 s-1,独立触发;近红外:LED,730nm,半峰全宽20nm,35W;可见光:LED,660nm,半峰全宽20nm,35W,可选蓝色、绿色LED;内置测量程序:内置多种测量功能可选,允许用户编辑设定测定参数 ;图像批处理:支持一键批处理,并可将数据导出至Excel;参数分级功能:支持对任意参数进行多区间分级,支持对分级区间自定义显示颜色,支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示;ROI功能:允许用户自定义多种ROI,并对ROI的数据自动分析;延时成像:支持设定暗适应延迟;支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套
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  • Aquation叶绿素荧光仪 400-860-5168转4713
    产品介绍 Aquation经典叶绿素荧光仪可作为台式使用,也可用于田间,防水设计传感器测量质包括水生植物和珊瑚等也非常方便,同时备选USB以及无线连接。此系列经典叶绿素荧光仪坚固耐用、操作简便、配置灵活多样,使之成为实验室、温室、田间、水下研究和教学实验的理想工具。本系列叶绿素荧光仪可实现全防水野外测量(乃至水下测量)甚至实现无线连接,将测量变的简单便捷。 Aquation经典叶绿素荧光仪使用PAM 测量技术来测量光合系统II的不同荧光,测量值为F,Fo,Fm′,Fm,Fv/Fm, ΦPSII以及其它计算值 (如ΦNO, ΦNPQ)。此类易于使用的PAM荧光仪用在陆生植物、海藻、珊瑚、大型海藻和小型海藻的生理研究,叶绿素浓度通过从获取的相对叶绿素指数进行估计。无线备选允许在无线范围内使计算机远离水;全防水荧光传感器可用于水下研究,可提供台式工作平台基座或将电缆从基座接入。所有命令均通过PC来实现。Aquation公司的经典叶绿素荧光仪使调制叶绿素荧光测量变得非常简单。它们采用饱和脉冲技术来测量较大光合效率和实际光合效率,并提供光化光和远红光。用户可以使用预置程序进行测量,也可编辑自己的程序进行测量。所有的程序测量过程都可以在软件中设置好进行自动重复。 技术参数 测量参数:F, Fo, Fo′, Fm, Fm′,rETR,PAR,T 计算参数:ΦII, Fv/Fm, NPQ,ΦNO, ΦNPQ, qP, qL,qN 光化光 (白 LED) :4500 Φmol.m-2.s-1 饱和光 (白LED):10500 Φmol.m-2.s-1 测量光 (470 nm LED) :0.1W 远红光 (735 nm LED) :40 Φmol.m-2.s-1 电压:110~240 VAC或 12 V DC 通讯:USB 或2.4 GHz 控制:Windows PC (或 Windows emulator) 温度范围:0~45°C (操作);-5~ 60°C (储存) 尺寸 (传感器):45mm (2.4”) 直径x 55mm (2.4”) 尺寸(接口盒):长127 x 63 x 30 mm (5” x 2.5” x 1.2”) 重量:传感器和电缆 250g/8.8oz 外壳材质:Acetal 塑料和316不锈钢 电池:可充电锂电池 内存:2GB产品特点 使用PAM方法测量叶绿素荧光 配置采用远红光 自动调量程以及自动归零 田间防水设计 无线或USB连接电脑 传感器采用平基座或从基座延伸的电缆 连接到电脑或数据采集仪可实现重复测量 易用软件、界面简洁 预编程光曲线产品应用 植物光合作用 植物生理、生态研究 监控叶绿素含量 各种生物和非生物逆境胁迫 水生植物、藻类、珊瑚研究Aquation经典在线叶绿素荧光仪参考文献 1.Nayar, S. and Bott, K. (2015). Uptake and translocation of ammonium and nitrate by temperate seagrass Zostera nigricaulis in Port Phillip Bay. South Australian Research and Development Institute (Aquatic Sciences), Adelaide. SARDI Publication No. F2014/000665-1. SARDI Research Report Series No. 819. 51pp.Procaccini, G., Ruocco, M., Marín-Guirao, L., et al. 2017. Depth-specific fluctuations of gene expression and protein abundance modulate the photophysiology in the seagrass Posidonia oceanica. Scientific Reports 2.Cui, Y., Tian, Z., Zhang, X. et al. 2015. Effect of water deficit during vegetative growth periods on post-anthesis photosynthetic capacity and grain yield in winter wheat (Triticum aestivum L.). Acta Physiol Plant. 37:196.Dudley, B.D., Hughes, R.F. and Ostertag, R. 2014. Groundwater availability mediates the ecosystem effects of an invasion of Prosopis pallida. Ecological Applications 24(8): 1954–1971
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  • FluorPen 叶绿素荧光仪 400-860-5168转4433
    FluorPen 叶绿素荧光仪产品介绍: FluorPen 叶绿素荧光仪可在实验室、温室或野外快速测量植物受生物或非生物胁迫后的光合活性状态,具有携带方便、准确度高、性价比高等特点;测量参数包括Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、NPQ等,还可以进行OJIP分析和光响应曲线动力学研究。 测量的数据存储于仪器内部,通过蓝牙或USB与计算机连接,采用专业的软件进行数据传输和分析,数据可视化。植物光合特性和代谢筛选 植物抗胁迫能力或者易感性研究 生长长势与产量评估 植物——原生动物交互作用研究 软件: 实时及远程控制功能 可视化数据,可转换成Excel格式 参数介绍 :Ft——非光化光下的实时荧光,暗适应后Ft = Fo; OJIP——叶绿素荧光快速瞬态分析是一种简单、非侵入性测量叶绿体功能的方法。OJIP分析可以灵敏、准确的分析光化学系统的功能和活性。 NPQ测量是一种典型的量化暗适应后样品光化学和非光化学淬灭的工具。 PAR——光合有效辐射(PAR-FluorPen FP 110版本具有此功能) 技术规格:FP 110/SFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;标准叶夹FP 110/DFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;可拆卸叶夹,叶夹单独出售FP 110/PFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;室内长期测量FP 110/XFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;定制型开放叶夹,可在环境光下测量PAR-FP 110/SFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm);标准叶夹PAR-FP 110/DFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm);可拆卸叶夹,叶夹单独出售PAR-FP 110/XFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm);定制型开放叶夹,可在环境光下测量光化光0-100%可调,最大1000µ mol(photon)/m2/s饱和光0-100%可调,最大3000µ mol(photon)/m2/s调制测量光0-100%可调,最大0.09µ mol(photon)/m2/脉冲PAR测量精度 1%,最大3000µ mol(photon)/m2/s(PAR-FP 110版本具有)余弦校准80°入射角(PAR-FP 110版本具有)发射光源蓝色LED光源,470nm探测波长范围PIN光电二极管带667~750nm滤光器光学检测光圈直径5mm(标准和开放叶夹),6.5mm(可拆卸叶夹)NPQ1光环境60s,5个脉冲;暗适应恢复88s,3个脉冲。NPQ2光环境200s,10个脉冲;按适应恢复390s,7个脉冲。GPS内置GPS模块,输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表FluorPen 软件1.1版本,Windows 7或更高内存16Mb,可存储149000个数据显示2×8字符LCD显示屏按键密封2键自动关机无操作8分钟后自动关机电源可充电锂电池;2600mAh电池电量典型情况下可连续操作48个小时,低电量LCD显示通讯方式蓝牙和USB尺寸134mm×65 mm×33 mm重量188克样品固定器机械式叶夹——标准叶夹,可拆卸叶夹工作环境温度0~+55℃,相对湿度0~95%(非冷凝)存储环境温度-10~+60℃,相对湿度0~95%(非冷凝)
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  • Monitoring Pen 植物叶绿素荧光测量仪名称:植物叶绿素荧光测量仪 型号:MP 100-S; MP 100-E; MP 100-A 三种版本可选 产地:捷克 Monitoring Pen 物叶绿素荧光测量仪可用于田间或其他恶劣环境下进行植物胁迫后的光合状态监测。Monitoring Pen内置5个最常用的荧光测量程序:Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线。可用于光合作用研究,自然环境下的光合性能监测,植物胁迫监测,除草剂测试,温室或野外条件下植物生长监测等。 Monitoring Pen具备可编程自动程序运行功能,可通过电池供电长期监测,测量数据直接存储在仪器内存存储里,可通过USB或蓝牙传输到电脑,采用FluorPen软件进行表格或图形数据显示。 有三个版本可选Monitoring Pen MP 100-S,塑制外壳,内部电池供电,用于室内研究;Monitoring Pen MP 100-E,外接电池包及电池单独购买,防水金属外壳,可用于室内及野外监测;Monitoring Pen MP 100-A,外接电池包及电池单独购买,用于水生植物监测。 测量原理:利用调制荧光测量技术,内置LED光源,内设测量给光程序测量并计算叶绿素荧光响应的各种参数。 特点:内置5个参数测量程序:Ft、QY、NPQ、OJIP、和光响应曲线; 自动运行程序和存储数据;电池支持365天监测运行;坚固的设计,适合户外无人极端条件;在线数据采集(可选);FluorPen软件数据传送处理; 应用领域: 长期环境监控;光合作用研究、教学;在变化环境中环能性能调查; 恶劣条件下的无人荧光测定研究;植物筛选和土地研究;农艺、林业和生物工程学; 技术规格:测量和计算参数F0、FT、FM、FM'、QY、Fv/Fm、OJIP、NPQ1,2、LC1,2,3,饱和脉冲0~100 %可调节(较大3000μmol(photon)/m2/s)光化光0~100 %可调节(较大1000μmol(photon)/m2/s)测量光0~0.03μmol(photon)/m2探测波长范围PIN光电二极管带697~750nm滤光器FluorPen 2.0软件Windows 2000, XP或更高存储容量16MB内置数据记录10万个数据点显示2×8字符LCD显示屏按键密封,2个触屏按键自动关机无操作5分钟后自动关机电源4节AAA碱性或可充电电池(标准版)电池电量典型情况下可连续操作48小时,低电量LCD显示尺寸120 mm×57 mm×30 mm重量180克样品固定器机械式叶夹工作环境温度0~55℃,相对湿度0~95%(非冷凝)存储环境温度-10~+60℃,相对湿度0~95%(非冷凝)产地:捷克
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  • 1、 FluorCam叶绿素荧光成像技术功能特点由于叶绿素荧光技术本身在科学研究中有一系列的局限性。因此从上世纪八十年代末开始,随着Charge-Coupled Device(CCD)成像技术、LED光源板技术、图像分析技术的成熟,不断有科学家和工程师合作探索将这三项技术与PAM脉冲调制技术结合,进而将叶绿素荧光技术升级为叶绿素荧光成像技术(Daley et al. 1989 Raschke et al. 1990 Mott et al. 1993 Genty and Meyer 1994 Bro et al. 1995 Siebke and Weis 1995 Meyer and Genty 1998 Balachandran et al. 1994 Oxborough and Baker 1997)。20世纪90年代末,PSI首席科学家Nedbal和PSI总裁Trtilek等合作,成功研制了与PAM脉冲调制技术结合的FluorCam叶绿素荧光成像技术(Nedbal et al., 2000),并推出第一台商业化叶绿素荧光成像设备FluorCam。这一发明正式开启了叶绿素荧光研究的二维时代。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界,并得到了国际科学界的一致认可。FluorCam叶绿素荧光成像系统已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器。与之前的叶绿素荧光技术相比,FluorCam叶绿素荧光成像技术的主要优势有:• 能够全面反映整株植物、叶片、藻类群体等的不同位置荧光强度变化与分布。• 可测量叶片、果实、麦穗、大型藻/微藻、整株植物乃至植物冠层等各种样品。• 可同时测定几十、甚至上百株个样品。• 能够在显微水平研究叶绿体或藻类细胞。• 尤其适用于环境胁迫早期植物不同部位光合活性的变化规律、突变体不同部位的光合功能差异等研究。同时,FluorCam叶绿素荧光成像技术与同类技术相比具备以下国际领先优势:• 由真正的生物学家、数学家、电子工程师和光学工程师组成的研发团队所开发• FluorCam是脉冲调试式叶绿素荧光成像技术的最早实用化成果• 国际最权威的叶绿素荧光成像技术,仅2019-2021.3可查阅全文的SCI文献就有300篇以上• 可实现高通量植物表型分析、抗性筛选、种质资源检测等科研应用• 激发荧光的LED光源板和获取荧光数据的成像传感器不但技术国际领先,而且为PSI自行开发,具备完全自主知识产权• 测量及成像参数最多,具备叶绿素荧光显微成像、OJIP快速荧光动力学曲线、QA再氧化动力学、荧光蛋白活体成像、多光谱荧光成像、无人值守自动监测、图像阈值分割等世界独有的成像测量功能• 以FluorCam叶绿素荧光成像技术为核心的PlantScreen植物表型成像分析系统为目前国际最先进、安装最多的植物表型组学研究系统• 软件由PSI开发,为客户提供终身免费升级• PSI表型科研中心可进行科研合作并提供实验指导• 系统型号全面,适用于各种实验需求• 几乎无维护费用技术功能特点:1) 仪器型号和配置灵活多样,测量样品涵盖了从叶片、藻类、果实、花朵、整株植物、植物群体/冠层乃至单个微藻/植物细胞、叶绿体等几乎所有不同类型的宏观和微观植物样品,甚至还包括含有叶绿素的细菌和海洋生物;同时满足了从实验室光合机理精细研究到野外大田实地研究,从自然环境到精确可控环境等不同实验条件和尺度的要求。2) 高灵敏度CCD,时间分辨率可达50帧/秒,分辨率720×560像素;可选配高分辨率CCD,最高分辨率1360×1024像素,在最高图像分辨率下时间分辨率可达20帧/秒,用于稳态荧光如GFP荧光测量等;超高灵敏度成像传感器,最高分辨率1280×1024像素,最高时间分辨率高达16000帧/秒,真正实现了OJIP快速荧光诱导动力学曲线的成像测量3) 具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等b) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数d) 光响应曲线:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数e) PAR吸收率、NDVI成像测量(选配)f) GFP、YFP、EBFP、CFP、DsRed等荧光蛋白与DAPI等荧光染料的荧光定量测量(选配)g) 多光谱荧光测量(选配):F440、F520、F690、F740h) QA再氧化动力学曲线(选配)i) OJIP快速荧光诱导动力学曲线(选配):Fo,Fj,Fi,P或Fm,Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI等参数4) 自动重复实验功能,可无人值守自动循环完成选定的实验程序,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机5) 标配4个LED光源板,采用大型预封装LED光源,红/蓝或红/白双色光化光源,可选配其他不同颜色(波长)、不同光强LED光源6) 功能强大的FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单:7) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”两种功能模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差8) 输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2、 FluorCam叶绿素荧光成像系统型号1. FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪• 可测量叶绿素荧光成像,可选配GFP荧光蛋白成像功能• 成像面积:便携式FluorCam 31.5mm×41.5 mm、便携式GFPCam 35mm×46 mm• 配备专用支架和电池包,便携性强,实验室、野外均可使用• 可编辑测量实验程序(protocol)• 具备自动重复测量功能• 配备专用暗适应叶夹,便于在野外对样品进行暗适应无损测量2. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统• FluorCam系列中功能最全面,使用最便捷的型号• 系统集成于暗适应操作箱内,操作简便、便于移动,既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 • 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率达50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变;可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量;也可选配超高灵敏度成像传感器,实现真正的OJIP快速荧光诱导动力学曲线成像测量• 成像面积达13×13cm,可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析• 饱和光光强最高达6000 µmol(photons)/m².s,进行QA再氧化分析使用的单周转饱和光闪STF可达120000µmol(photons)/m².s• 世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序(Protocols),包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等• 可选配GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 可进行自动重复成像测量分析• 4块大型高强度封装LED光源板,具备双色光化光,标配为2红光+2白光,可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合3. FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统• 模块化设计,配置灵活,可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度,方便被测植物的处理、操作等• 4块大型高强度封装LED光源板,具备双色光化光,标配为2红光+2白光,可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合• 可自由选配多种备用不同波长LEDs光源板,用户可简便自行更换,如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多光谱荧光成像测量等• 可进行GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 标准版成像面积13×13cm,大型版成像面积达20×20cm,可对整株植物甚至多株植物(如拟南芥等小型植物)进行实验成像分析• 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率达50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变,可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量4. FluorCam多光谱荧光成像系统FluorCam多光谱成像系统是将稳态荧光成像技术与脉冲调制式叶绿素荧光成像技术完美融于一体,能够在一台仪器上实现GFP、BFP、CFP、YFP、RFP等荧光蛋白成像、DAPI等荧光染料成像、荧光素酶、脉冲调制式叶绿素荧光成像以及NDVI反射光谱成像分析功能,是真正功能全面的植物荧光活体成像系统。同时,除了植物样品外,植物荧光活体成像系统也可以进行藻类、珊瑚共生体、菌落乃至动物的荧光成像分析。• 1360×1024像素高分辨率CCD,可对样品荧光标记的分布进行精准成像分析• 标准版成像面积13×13cm,大型版成像面积达20×20cm,可对整株植物甚至多株植物(如拟南芥等小型植物)进行实验成像分析• 专用荧光激发光源组与滤波器组合,精确测量不同荧光蛋白标记• 软件配置多种用户自定义调色板,可生成真实色彩成像图或对比增强彩色成像图• 可选配新型FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统,一体化完成各种荧光成像测量5. FKM多光谱荧光动态显微成像系统• 目前唯一用于植物/藻类显微叶绿素荧光成像研究的成熟商用仪器• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序,如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等,可获得70余项参数• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜,可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等,通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光,能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量,提高实验精度,也可以进行高温/低温胁迫研究6. FluorCam大型叶绿素荧光成像平台• 世界上单幅成像面积最大的脉冲调制式(PAM)叶绿素荧光成像系统,成像光源板面积70×70cm,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性叶绿素荧光成像分析• LED激发光源、CCD叶绿素荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可自由移动的成像平台上,成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析• 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析• 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等• 可选配GFP绿色荧光蛋白成像分析功能,用于植物转基因研究三、FluorCam叶绿素荧光成像系统应用案例1. 拟南芥叶绿体R-loop调控机制2017年清华大学生命学院孙前文课题组通过分析获得一个新的定位于叶绿体中的核糖核酸酶H蛋白(AtRNH1C),发现该蛋白可以调节叶绿体中R-loop水平的变化,从而维持基因组的稳定性和发育。他们使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统,发现AtRNH1C对叶绿体的发育有重要作用。在使用喹诺酮类药物环丙沙星(CIP)处理后,通过FluorCam叶绿素荧光成像图可以直观发现野生型的生长被抑制,同时叶片变色。而atrnh1c突变体则加强了CIP的毒害效应。这更加证实了AtRNH1C的功能。本实验的荧光成像检测是在易科泰Ecolab实验室完成的。2020年,孙前文课题组又使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统结合分子实验结果,证实了R-loop解旋酶过表达能够拯救由于异常累积HO-TRC触发R-loop共同表达造成的缺陷,从而维持拟南芥叶绿体基因组完整性。参考文献:1. Yang Z, et al. 2017. RNase H1 Cooperates with DNA Gyrases to Restrict R-loops and Maintain Genome Integrity in Arabidopsis Chloroplasts. The Plant Cell, doi:10.1105/tpc.17.003052. Yang Z, et al. 2020. RHON1 Co-transcriptionally Resolves R-Loops for Arabidopsis Chloroplast Genome Maintenance. Cell Reports 30: 243–2562. 构建耐盐生菜品种表型鉴定体系目前,全球农业都受到土壤和灌溉水盐分升高的威胁。大约50%的灌溉农田都受到了盐分的影响。2013年的经济分析指出由于盐分诱发的土壤退化和作物产量损失在全球造成了273亿美元的损失。作为一种重要的蔬菜作物,生菜(Lactuca sativa L.)在世界范围内都进行了广泛的种植。生菜产量最高的国家为美国、欧盟和中国。而生菜对盐分胁迫非常敏感的。盐分胁迫会造成生菜生物量减少、诱发叶烧病和早衰等。美国农业部(USDA)的科学家尝试确定生菜盐胁迫的关键生理表型性状,用于筛选高耐盐的生菜品种,希望从这些数据中筛选出最灵敏的指标构建耐盐生菜品种表型鉴定体系。与传统作物表型测量相比,一方面光系统对各种生物和非生物胁迫因素都非常敏感,而叶绿素荧光成像分析可以无损地直接测量胁迫对光系统的损伤程度和机理,在胁迫初期乃至症状出现前即可检测到胁迫的发生;另一方面,叶绿素荧光成像分析技术与自动传送系统集合,能够实现对大量样品的高通量无损快速检测,非常适用于作物品种的筛选。他们使用的PlantScreen XYZ植物表型成像分析系统就能够将这两方面的优势完美地结合起来。其样带式FluorCam叶绿素荧光成像单元是目前唯一使用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术实现大型整株植物测量的商用化仪器。自动传送系统可以自动调整成像单元的位置与高度,结合专用软件可以对几十株乃至上百株样品进行自动叶绿素荧光成像分析。实验中使用了球生菜、奶油生菜、直立生菜、叶生菜等不同的栽培品种和生菜的野生亲缘种L. serriola L,共240株样品。这些品种中既有耐盐品种,也有盐胁迫敏感品种。所有样品在同样盐胁迫处理下进行了叶绿素荧光成像分析。研究者重点分析了QY_max(Fv/Fm)最大光化学效率、Fv/Fm_L(Fv’/Fm’)光适应最大光化学效率、NPQ非光化学淬灭(最大荧光)、qN非光化学淬灭(可变荧光)、qP光化学淬灭、QY实际光化学效率(量子产额)、Rfd荧光衰减比率等荧光参数。值得一提的是,叶绿素荧光成像图经过校准后,还可以直接获得整株植物具备光合活性的叶面积。结合荧光参数还可以对叶面积进行不同胁迫程度的定量分级和图像分割。本研究中直接使用叶绿素荧光成像获得的光合活性叶面积取代了传统测量的叶面积。荧光数据与鲜重等传统表型数据进行了相关性分析和主成分分析,结果表明敏感栽培种的叶绿素荧光特征是低QY,qN,NPQ和Rfd,而耐受栽培种的特征是高QY_max,Fv/Fm_L和QY_D。与叶绿素荧光参数的高灵敏度相比,大多数样品的叶绿素指数和CO2同化速率在盐胁迫处理前后都没有表现出显著的差异。因此,研究者建议在筛选高耐受品系时以较高的叶面积配合较高的Fv/Fm和QY作为初筛指标。后续,美国农业部又使用加装了高光谱成像单元的PlantScreen表型成像系统与FluorCam结合,通过叶绿素荧光成像数据与高光谱成像数据绘制了生菜水分胁迫响应基因位点的分子图谱。参考文献:1. Adhikari N D, et al. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors, 19: 48142. Kumar P, et al. 2021. Molecular Mapping of Water-Stress Responsive Genomic Loci in Lettuce (Lactuca spp.) Using Kinetics Chlorophyll Fluorescence, Hyperspectral Imaging and Machine Learning. Front. Genet. 12: 634554
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  • 产品介绍 叶绿素a荧光作为光合作用研究的有效指标,广泛应用于植物生理学、植物生态学、农学、林学、园艺学、水生生物学等领域,与光合放氧、气体交换并称为光合作用测量的三大技术。 叶绿素a荧光是研究各种逆境胁迫(干旱、高温、低温、营养状态、污染、病害等)对植物影响,以及对各种水生植物、大型海藻、珊瑚等进行生理生态测量的强大工具。叶绿素a荧光不仅能反映光能吸收、传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程,而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成CO2固定等过程有关。几乎所有光合作用过程的变化均可通过叶绿素a荧光反映出来,而荧光测定技术对生物可进行无损检测。因此通过研究叶绿素a荧光来间接研究光合作用的变化成为一种简便、快捷、可靠的方法。叶绿素a荧光的测量方法和参数分析方法已成为光合作用研究的一个重要领域。 Aquation手持式叶绿素荧光仪 Aquation手持叶绿素荧光仪以及便携式数据采集器用于田间测量植物胁迫(如,光化学有效量子产率ΦII),是一款特别适合野外现场测量的调制叶绿素荧光仪。该较便携手持式设计可快速实现对多个样品单手测量。可立即查看测量结果,也可下载导入到PC机中进行分析。特别适合在野外对样品进行快速、重复测量。Aquation手持式叶绿素荧光仪以及便携数据采集器可帮助实现对多个叶片的原位重复胁迫测量。一个操作员可单手轻松实现对多株植物的测量。该手持叶绿素荧光仪还可以测量环境辐射(如PAR)以及每次ΦIIΦI读数时的叶温度。由于配备易于使用的操作软件AQUATION DIRECT,可通过计算机对荧光传感器进行直接操作。在控制环境下,可在实验台面上进行多个植株胁迫检测。技术参数 测量光:LED,470 nm,小于1 μmol.m2.s-1 光化光:白光LED,较大光强3300 μmol.m2.s-1 饱和脉冲:白光LED,较大光强7800 μmol.m2.s-1 远红光:LED,735 nm,较大光强40 μmol.m2.s-1 工作温度:0°C~45°C 存储温度:-5°C~60°C 内存:2 GB 电池:可充电锂电池测定参数 Fo , Fm , Fv/Fm , F , Fm’, ΦII (△F/Fm’) , Fo’, qP , qL , qN, NPQ , Y(NPQ) , Y(NO) , rETR , PAR , T等。 应用领域 植物光合作用研究;植物生理学、生态学、农学、林学、园艺学、遗传育种、突变株和基因型筛选等;各种非生物逆境(冷、热、旱、涝、UV、营养缺失等)和生物逆境(病虫、病菌等)对植物的影响。
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  • 仪器简介:植物叶绿素荧光成像一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取,提供2维图像,计算常规的荧光参数。F0, FM, FV, F0&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , RFd, qN, qP,及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广,既可是单个叶绿体或单个细胞(用显微植物荧光成像系统),也可是小的冠层(用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统)。此外,除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外,该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统(植物荧光蛋白成像系统)。还有一种多功能荧光动态显微检测系统,它除具备显微叶绿素荧光成像系统的功能外,还集成了分光光度计SM-9000、PAM荧光测量技术及FL3500双调制荧光测量仪,用于高分辨率快速荧光动态测量和成像。多种激发光源可以激发不同的天线色素,从而分析出那些色素蛋白复合体对光化学荧光淬灭或非光化学荧光淬灭贡献更大。同时还可以对非叶绿素荧光(自发荧光及荧光染料等)动态进行测量分析,超高灵敏度镜头可以在很低的光线下(从而不干扰正常细胞代谢)成像,并且还可以对目前市场上其它镜头捕捉不到的快速过程如QA再氧化、天线联通性及天线大小等进行测量分析。技术参数:1)图象分辨率:12bit, 512x512像素 2)图象抓取速度:每秒50幅 3)数据传输:USB2.0 口 4)该系统的软件功能: 设置和修改实验要求,如控制时间,实验周期,光强和摄象机操作 智能分割图像,显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来,如FV, FV/FM, qP, qN, NPQ, Rfd等,作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块,熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5)分辨率: mm主要特点:植物叶绿素荧光成像采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。显微植物荧光成像系统可成像单个细胞和亚细胞的荧光。所有的常规荧光参数都可成像,分辨率达mm,可用于研究单个的叶绿体或是类囊体。该系统和配置多种显微镜。
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  • 产品介绍 叶绿素a荧光作为光合作用研究的有效指标,广泛应用于植物生理学、植物生态学、农学、林学、园艺学、水生生物学等领域,与光合放氧、气体交换并称为光合作用测量的三大技术。 叶绿素a荧光是研究各种逆境胁迫(干旱、高温、低温、营养状态、污染、病害等)对植物影响,以及对各种水生植物、大型海藻、珊瑚等进行生理生态测量的强大工具。叶绿素a荧光不仅能反映光能吸收、传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程,而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成CO2固定等过程有关。几乎所有光合作用过程的变化均可通过叶绿素a荧光反映出来,而荧光测定技术对生物可进行无损检测。因此通过研究叶绿素a荧光来间接研究光合作用的变化成为一种简便、快捷、可靠的方法。叶绿素a荧光的测量方法和参数分析方法已成为光合作用研究的一个重要领域。 Aquation手持式叶绿素荧光仪 Aquation手持叶绿素荧光仪以及便携式数据采集器用于田间测量植物胁迫(如,光化学有效量子产率ΦII),是一款特别适合野外现场测量的调制叶绿素荧光仪。该较便携手持式设计可快速实现对多个样品单手测量。可立即查看测量结果,也可下载导入到PC机中进行分析。特别适合在野外对样品进行快速、重复测量。Aquation手持式叶绿素荧光仪以及便携数据采集器可帮助实现对多个叶片的原位重复胁迫测量。一个操作员可单手轻松实现对多株植物的测量。该手持叶绿素荧光仪还可以测量环境辐射(如PAR)以及每次ΦIIΦI读数时的叶温度。由于配备易于使用的操作软件AQUATION DIRECT,可通过计算机对荧光传感器进行直接操作。在控制环境下,可在实验台面上进行多个植株胁迫检测。技术参数 测量光:LED,470 nm,小于1 μmol.m2.s-1 光化光:白光LED,较大光强3300 μmol.m2.s-1 饱和脉冲:白光LED,较大光强7800 μmol.m2.s-1 远红光:LED,735 nm,较大光强40 μmol.m2.s-1 工作温度:0°C~45°C 存储温度:-5°C~60°C 内存:2 GB 电池:可充电锂电池测定参数 Fo , Fm , Fv/Fm , F , Fm’, ΦII (△F/Fm’) , Fo’, qP , qL , qN, NPQ , Y(NPQ) , Y(NO) , rETR , PAR , T等。 应用领域 植物光合作用研究;植物生理学、生态学、农学、林学、园艺学、遗传育种、突变株和基因型筛选等;各种非生物逆境(冷、热、旱、涝、UV、营养缺失等)和生物逆境(病虫、病菌等)对植物的影响。
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  • FluoMini CF便携式叶绿素仪使用荷兰Sendot公司推出的蓝色调制脉冲LED光测量植物叶片、藻类、种子等的叶绿素荧光;此外,仪器还可根据测出的荧光值换算成植物的叶绿素含量。该仪器设计独特,具有具有高灵敏度,成为室内或野外实验中测定植物叶片、种子、藻类、以及含有叶绿素物质的荧光特征和叶绿素含量的理想工具。主要特点l 基于荧光光谱原理设计,测量准确且易于维护;l 可测量植物叶片、种子、藻类等的叶绿素荧光参数; l 根据测量的荧光参数直接计算植物的叶绿素含量;l 有两种传感器规格可选,分别为1mm和6mm;l 可单独测量或长期连续监测;最长可连续监测几周。主要参数1.测量范围:0 - 10 mg/g;2.工作温度:5 - 45 ℃;3.精确度(CF):量程(0 - 1 mg/g)— 0.1 mg/g;量程(1 - 5 mg/g)— 0.2 mg/g;量程(5 - 20 mg/g)— 0.3 mg/g;4.漂移/稳定性(工作频率0.1Hz): 0.1%每月;5.取样时间: 2 s;6.模拟型输出12 - 24 V AC/DC;7.连接:USB/4-20mA输出(3线程);8.电源电压:通过USB端口(5V, 200 mA);9.尺寸(l×b×h,单位mm):169×62×25;10.重量(单位g):235;11.外壳材料:铝制,ABS塑料覆膜;12.连接器:4针M5公头;13.防护等级:IP54;14.电池寿命:48 h(5秒间隔);2星期(60秒间隔);15.存储空间:2G。基本配置 仪器主机;叶绿素荧光传感器(1米光纤); 2米USB连接线;校准附件;软件和手册U盘;传感器支架;手提箱。可选:2种类型的叶绿素荧光传感器可选,需要在订购是说明。应用案例辣椒的顶叶和底叶在不同光照下的叶绿素荧光变化如下图所示,作物顶叶与底叶叶绿素荧光值(CF)在时间上的变化,两者之间的区别十分明显。叶绿素荧光值(CF)在白天有两个时间点为可预期的急剧变化。一点是早上转换至LED照明的时候,另一点开始日光照射的时候。结合与温室中监测的其它数据,叶绿素荧光值(CF)可以显示植物栽培策略的优化效果和限制。产地与厂家:荷兰 Sendot
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  • FluorPen手持式叶绿素荧光仪(分离叶夹) FluorPen手持式叶绿素荧光仪用于实验室和野外快速测量植物叶绿素荧光参数,具有便携性强、精确度高、性价比高等特点;双键操作,具显示屏,可以贮存1000次测量数据,广泛应用于研究植物的光合作用、胁迫监测、杀虫剂实验或变异筛选,还可用于生物检测,如通过不同植物对土壤或水质污染的叶绿素荧光响应,找出敏感植物作为生物传感器用于生物检测。其分离叶夹版配备多个暗适应叶夹,便于在白天光照下进行各种荧光测量。 应用领域 适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 代谢混乱研究 长势与产量评估 植物——微生物交互作用研究 植物——原生动物交互作用研究 功能特点: § 结构紧凑、便携性强,LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内,重量仅180g§ 功能强大,是叶绿素荧光技术的高端结晶产品,具备了大型荧光仪的所有功能,可以测量所有叶绿素荧光参数§ 内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序,包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP–test等§ 高时间分辨率,可达10万次每秒,自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数§ 可配备GPS模块,输出待时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表§ FluorPen专业软件功能强大,可下载、展示叶绿素荧光参数图表,还可实现遥控功能§ 配置灵活,可选配蓝牙通讯或USB通讯,标配叶夹为固定式,还可选配分离叶夹式(适合于白天多个叶夹暗适应)、透明叶夹式(无需暗适应的情况下)等§ 可选配野外自动监测式FluorPen,防水防尘设计工作原理 利用调制式荧光测量技术,采用LED光源,选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。 实验过程和测量参数 Ft:瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft=Fo QY:光量子效率,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv’/Fm’ (光适应完成的样品) OJIP:叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。 NPQ:非光化学淬灭,表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。 光曲线:Qy对不同光强的适应曲线。 PAR测量:可在荧光仪上显示PAR值,可计算20次检测值的平均。 可选配GPS模块 技术参数 测量参数包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、pAR、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶绿素荧光参数,及3种给光程序的光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等OJIP–test时间分辨率为10μs(每秒10万次),给出OJIP曲线和26个参数,包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等3种给光程序光响应曲线,20多个叶绿素荧光参数2种荧光淬灭曲线,20多个参数PAR传感器:读数单位μmol(photons)/m2.s,可显示读数,检测范围400-700 nm测量光:光强可调光化学光:0–1000μmol(photons)/m2.s可调饱和光:0–3000μmol(photons)/m2.s可调光源:标准配置蓝光470nm,可根据需求配备不同波长的LED光源检测器:PIN光电二极管,697–750nm滤波器尺寸大小:超便携,只有手机大小,300px×142.5px×75px,重量仅约180g存贮:容量4Mb,可内存100000数据点显示:2×8字符液晶显示屏,双键操作,待机5分钟自动关闭供电:4节AAA电池可持续使用70小时工作条件:0–55℃,0–95%相对湿度(无凝结水)存贮条件:-10–60℃,0–95%相对湿度(无凝结水)下载方式:可选配蓝牙或USBFluorPen软件,用于数据下载、分析和图表显示备选GPS定位模块操作软件与实验结果 产地:捷克 参考文献 1. Ptushenko V.V. et al. (2013): Biosystems (in press). 2. Samoilova O.P. et al. (2011): Biosystems 105 (1): 41-48. 3. Frolec J. et al. (2010): Plant Cell Rep. 29: 705–714. 4. Ruiz-Sanchez M. et al. (2010): J. Physiol. 167 (11): 862-869. 5. Fernandez-Marin Becerril J.M. et al. (2010): Planta 231: 1335–1342. 6. Harding S.A. et al. (2009): J. Exp. Botany 60 (12): 3443-3452. 7. Kuvykin I.V. et al. (2009): Cell Biophysics 54 (4): 455-464. 8. Macek P. et al. (2009): J. Exp. Botany 60 (12): Acta Oecologica 35: 778–785. 9. Rosescu M.R. et al. (2009): Annals, Food Science and technology 10: 115-119. 10. Zhang M. et al. (2009): Ecology and Environmemtal Sciences 18 (6): 2272-2277. 11. Woo N.S. et al. (2009): Plant methods 4 (27). 12. Klem K. and Bajerova E. (2008): AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete. 附:OJIP参数及计算公式 Bckg = background Fo: = F50μs fluorescence intensity at 50 μs Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms) Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms) Fm: = maximal fluorescence intensity Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence) Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo) Fm / Fo = Fm / Fo Fv / Fo = Fv / Fo Fv / Fm = Fv / Fm Mo = TRo / RC - ETo / RC Area = area between fluorescence curve and Fm Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over) Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over) N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm) Phi_o = I - Vj Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm) Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM) tFM = time to reach Fm (in ms) ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po) TRo / RC = Mo . (I / Vj) ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o) DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)
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  • 产品介绍 Aquation经典叶绿素荧光仪可作为台式使用,也可用于田间,防水设计传感器测量质包括水生植物和珊瑚等也非常方便,同时备选USB以及无线连接。此系列经典叶绿素荧光仪坚固耐用、操作简便、配置灵活多样,使之成为实验室、温室、田间、水下研究和教学实验的理想工具。本系列叶绿素荧光仪可实现全防水野外测量(乃至水下测量)甚至实现无线连接,将测量变的简单便捷。 Aquation经典叶绿素荧光仪使用PAM 测量技术来测量光合系统II的不同荧光,测量值为F,Fo,Fm′,Fm,Fv/Fm, ΦPSII以及其它计算值 (如ΦNO, ΦNPQ)。此类易于使用的PAM荧光仪用在陆生植物、海藻、珊瑚、大型海藻和小型海藻的生理研究,叶绿素浓度通过从获取的相对叶绿素指数进行估计。无线备选允许在无线范围内使计算机远离水;全防水荧光传感器可用于水下研究,可提供台式工作平台基座或将电缆从基座接入。所有命令均通过PC来实现。Aquation公司的经典叶绿素荧光仪使调制叶绿素荧光测量变得非常简单。它们采用饱和脉冲技术来测量较大光合效率和实际光合效率,并提供光化光和远红光。用户可以使用预置程序进行测量,也可编辑自己的程序进行测量。所有的程序测量过程都可以在软件中设置好进行自动重复。 技术参数 测量参数:F, Fo, Fo′, Fm, Fm′,rETR,PAR,T 计算参数:ΦII, Fv/Fm, NPQ,ΦNO, ΦNPQ, qP, qL,qN 光化光 (白 LED) :4500 Φmol.m-2.s-1 饱和光 (白LED):10500 Φmol.m-2.s-1 测量光 (470 nm LED) :0.1W 远红光 (735 nm LED) :40 Φmol.m-2.s-1 电压:110~240 VAC或 12 V DC 通讯:USB 或2.4 GHz 控制:Windows PC (或 Windows emulator) 温度范围:0~45°C (操作);-5~ 60°C (储存) 尺寸 (传感器):45mm (2.4”) 直径x 55mm (2.4”) 尺寸(接口盒):长127 x 63 x 30 mm (5” x 2.5” x 1.2”) 重量:传感器和电缆 250g/8.8oz 外壳材质:Acetal 塑料和316不锈钢 电池:可充电锂电池 内存:2GB产品特点 使用PAM方法测量叶绿素荧光 配置采用远红光 自动调量程以及自动归零 田间防水设计 无线或USB连接电脑 传感器采用平基座或从基座延伸的电缆 连接到电脑或数据采集仪可实现重复测量 易用软件、界面简洁 预编程光曲线产品应用 植物光合作用 植物生理、生态研究 监控叶绿素含量 各种生物和非生物逆境胁迫 水生植物、藻类、珊瑚研究参考文献 1.Nayar, S. and Bott, K. (2015). Uptake and translocation of ammonium and nitrate by temperate seagrass Zostera nigricaulis in Port Phillip Bay. South Australian Research and Development Institute (Aquatic Sciences), Adelaide. SARDI Publication No. F2014/000665-1. SARDI Research Report Series No. 819. 51pp.Procaccini, G., Ruocco, M., Marín-Guirao, L., et al. 2017. Depth-specific fluctuations of gene expression and protein abundance modulate the photophysiology in the seagrass Posidonia oceanica. Scientific Reports 2.Cui, Y., Tian, Z., Zhang, X. et al. 2015. Effect of water deficit during vegetative growth periods on post-anthesis photosynthetic capacity and grain yield in winter wheat (Triticum aestivum L.). Acta Physiol Plant. 37:196.Dudley, B.D., Hughes, R.F. and Ostertag, R. 2014. Groundwater availability mediates the ecosystem effects of an invasion of Prosopis pallida. Ecological Applications 24(8): 1954–1971
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  • PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起,于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统(Heck等,1999;Nedbal等,2000;Govindjee and Nedbal, 2000)。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备,高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内,植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上,隔板7级高度可调;光源由高稳定性供电单元提供电源,4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上,成像面积可达13×13 cm;控制系统通过千兆以太网与计算机相联,并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等,广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内,操作简便、便于移动,既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI(Performance Index)等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可运行单周转饱和光闪(STF)叶绿素荧光诱导动态,光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序(Protocols),包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析(quenching)protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析,预设一个实验程序(Protocols)、测量次数及间隔,系统将自动循环运行成像测量,并自动将数据按时间日期存入计算机(带时间戳)6.具备双色光化学光激发光源,标准配置为红色和白色,可选配红色与蓝色等双波段光化学光,双色光化学光可按不同比例搭配使用,以便实验不同光质对作物/植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块,最大成像面积20×25cm,用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数: 1.测量光为617nm可调制红光,持续时间10µ s–100µ s可调; 2.双色光化光,标配为2红光+2白光,可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合, Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s,Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s;最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用,以便实验不同光质对作物/植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s,可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s,QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板:4块大型高强度封装LED光源板,每个光源板由36颗LED阵列组成,光源板有效面积与成像面积相同13×13cm,另外还具备一个顶部双色光源(735nm红外光源和650nm红色光源)用于PAR吸收和NDVI成像测量;高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源,不会因为用大量光强弱的LEDs(比如几百个)造成光源不稳定、寿命短等问题(使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足,会造成系统出错率的提高,任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用)5.测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm',Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数(选配),每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等b) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数d) 光响应曲线LC:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI(选配)f) QA再氧化动力学(选配)g) GFP等静态荧光成像测量(选配)h) OJIP快速荧光动力学分析(选配):Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率:1360×1024像素c) 时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)e) 像元尺寸:6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式:千兆以太网8.成像面积:13×13cm,可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器(选配),可根据需要选配其它滤波器(选配)10.QA再氧化动力学成像分析(选配):可进行STF荧光动力学分析测量,单周转光闪(STF)光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块(选配):时间分辨率达1µ s,可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括:Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N(QA还原周转数量)、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC(单位反应中心的吸收光量子通量)、TRo/RC(单位反应中心初始捕获光量子通量)、ETo/RC(单位反应中心初始电子传递光量子通量)、DIo/RC(单位反应中心能量散失)、ABS/CS(单位样品截面的吸收光量子通量)、TRo/CSo、RC/CSx(反应中心密度)、PIABS(基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数)、PIcs(基于截面的“性能”指数或称生存指数)12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单13.客户定制实验程序协议(protocols):可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),具备专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)15.快照(snapshot)模式:通过快照成像模式,可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000)17.数据分析模式:具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算”模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱,内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等,方便暗适应操作,样品平台36x30cm,高度7级可调,样品(整株植物)最大高度可达12cm 20.给光制式:静态或动态21.Bios:固件可升级22.尺寸:471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量:Appr. 40 kg 24.电源输入:Appr. 1100 W 25.供电电压:90–240 V 配置组成:1.主机系统,包括暗适应操作箱,内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地:欧洲 附:其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统:可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统:成像面积3.5x3.5cm,具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架,可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统:为便携式荧光成像系统的扩展版,可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统:LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统,是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统,成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统:为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版,可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统:模块式,具备高度可扩展性,可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析,镜头高度可调,成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统:成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统:多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析,可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析,还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统:大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上,方便移动,成像平台可上下移动,成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统:大型成像平台可在100-500cm的支架上对样带进行扫瞄成像,标配扫瞄区域长度为400cm,成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄,可选配RGB真彩扫瞄成像,从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统:属多激发光、多光谱荧光成像系统,不仅可对叶绿素荧光进行成像分析,还可对UV紫外光激发F440(蓝色荧光)、F520(绿色荧光)、F690(红色荧光)和F740(红外荧光)进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性,有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统:是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版,可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析,以分析检测植物的功能表型和形态表型,自动扫瞄范围为60x129cm,定位定时并得到4维(XYZ三维位置信息和时间信息)测量数据
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  • 一.叶绿素荧光仪用途植物养分测定仪可以即时无损测量植物的叶绿素相对含量(单位 SPAD)或绿色程度、氮含量、叶面湿度、叶面温度,从而了解植物真实的硝基需求量并且了解土壤硝基的缺乏程度或是否过多地施加了氮肥。可以通过此款仪器来增加氮肥的利用率,并可保护环境。可广泛应用于农林相关科研单位和高校对植物生理指标的研究和农业生产的指导。二.叶绿素荧光仪技术指标1.检测项目:叶绿素含量、氮含量、叶面温度、叶面湿度2.测量范围 叶绿素:0.0-99.99SPAD 氮含量:0.0-99.99mg/g叶面湿度:0.0-99.9RH% 叶面温度:-10-99.9℃3.测量面积:2mm*3mm4.测量精度 叶绿素:±1.0 SPAD单位以内 (室温下,SPAD值介于0-50) 氮含量: ±5% 叶面湿度:±5% 叶面温度:±0.5℃5.叶绿素荧光仪重复性 叶绿素:±0.3 SPAD单位以内 (SPAD值介于0-50) 氮含量:±0.5mg/g 叶面湿度:±0.5RH% 叶面温度:±0.2℃6.测量时间间隔:小于0.8秒7.数据存储:16GB 可根据用户需求进行分组存储8.电源:4.2V可充电锂电池9.电池容量:3000mah10.重量:230g11.工作及存储环境:-10℃~50℃ ≤85%相对湿度三.叶绿素荧光仪功能特点1.快速无损植物活体检测,测量时只需将叶片插入即可,不需要采摘叶片,不影响作物正常生长,可以在作物生长过程中全程对叶片进行监测,从而得到更科学的分析结果2.测量精度高(精度:± 1.0 SPAD,重复性:±0.3 SPAD) ,,内置防强光干扰系统3.一次操作可同时测定所有参数,叶绿素、氮含量、叶面温度、叶面湿度四种参数同一屏幕同时显示,且可同时储存4.16GB大存储空间,数据可进行分组存储、查看、导出5.多功能USB接口,可实现数据导出与充电功能,可将仪器与电脑直接联机,数据导出无需上位机软件,还可选择使用内存卡直接导出数据,操作简单方便6.数据浏览:可在仪器上浏览、转存、清空历史数据7.GPS定位功能:可以实时显示卫星定位经纬度,明确当前检测位置。8.叶绿素荧光仪器内置4G无线传输模块,支持野外环境实时上传数据,检测结果可直接传至专属云农业数据中心,分配企业专属云农业数据中心账户,该账户中心可查看不同检测人员的上传数据。9.云农业数据中心可按照任意时间段检索历史数据,可查看测量时间、叶绿素含量、氮含量、叶面温度、叶面湿度、GPS定位信息等数据,显示每种参数过程曲线趋势,最大值、最小值查看,放大、缩小功能,支持在线下载、EXCEL导出、分析、打印10.高对比度LCD显示屏,强光下也可清晰显示数据11.低功耗模式设计,内置大容量锂离子充电电池,具有防过充功能,节能环保并方便进行户外操作12.内置中英文双语显示,一键切换,无缝对接13.叶绿素荧光仪标准配置: 主机、充电器、USB数据线、内存卡、读卡器、便携铝箱,合格证、说明书等
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  • FluorPen叶绿素荧光仪 400-860-5168转4470
    用途: FluorPen FP 110叶绿素荧光仪可在实验室、温室或野外快速测量植物受生物或非生物胁迫后的光合活性状态,具有携带方便、精确度高、性价比高等特点;测量参数包括Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、NPQ等,还可以进行OJIP分析和光响应曲线动力学研究。 PAR-FluorPen FP 110是FP 110的升级版,可以直接测量400-700nm范围内光合有效辐射PAR(umol/m2/s),光量子传感器对400-700nm波段的光具有均匀的响应,实时读数为20个测量值的平均值。 测量的数据存储于仪器内部,通过蓝牙或USB与计算机连接,采用专业的软件进行数据传输和分析,数据可视化。 测量原理:利用调制-饱和-脉冲荧光技术,测量并计算叶绿素荧光参数。 应用领域: 适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变体筛选等。 植物光合特性和代谢筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 代谢紊乱研究 生长长势与产量评估 植物——微生物交互作用研究 植物——原生动物交互作用研究 软件: FluorPen 1.1版本,支持windows 7及更高版本 实时及远程控制功能 蓝牙和USB通讯 可视化数据,可转换成Excel格式 GPS地图 参数介绍 Ft——非光化光下的实时荧光,暗适应后Ft = Fo; QY——PSII量子产量。暗适应QY = Fv/Fm,光适应QY = Fv’/Fm’ Fv/Fm是使用频繁的荧光参数。 OJIP——叶绿素荧光快速瞬态分析是一种简单、非侵入性测量叶绿体功能的方法。OJIP分析可以灵敏、准确的分析光化学系统的功能和活性。 NPQ——仪器提供2组测量程序,每组程序均有持续照光和黑暗恢复阶段。NPQ测量是一种典型的量化暗适应后样品光化学和非光化学淬灭的工具。 LC——仪器内置3组光曲线测量程序,每组程序的脉冲数量、持续时间以及光强均不同。LC光曲线程序对连续光照下不同光强照射的样品光合作用进行连续测量,将光合作用速率与光强联系起来。 PAR——光合有效辐射(PAR-FluorPen FP 110版本具有此功能) 技术规格:FP 110/SFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;标准叶夹FP 110/DFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;可拆卸叶夹,叶夹单独出售FP 110/PFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;室内长期测量FP 110/XFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve;定制型开放叶夹,可在环境光下测量PAR-FP 110/SFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm);标准叶夹PAR-FP 110/DFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm);可拆卸叶夹,叶夹单独出售PAR-FP 110/XFo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm);定制型开放叶夹,可在环境光下测量光化光0-100%可调,最大1000µ mol(photon)/m2/s饱和光0-100%可调,最大3000µ mol(photon)/m2/s调制测量光0-100%可调,最大0.09µ mol(photon)/m2/脉冲PAR测量精度 1%,最大3000µ mol(photon)/m2/s(PAR-FP 110版本具有)余弦校准80°入射角(PAR-FP 110版本具有)发射光源蓝色LED光源,470nm探测波长范围PIN光电二极管带667~750nm滤光器光学检测光圈直径5mm(标准和开放叶夹),6.5mm(可拆卸叶夹)NPQ1光环境60s,5个脉冲;暗适应恢复88s,3个脉冲。NPQ2光环境200s,10个脉冲;按适应恢复390s,7个脉冲。GPS内置GPS模块,输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表FluorPen 软件1.1版本,Windows 7或更高内存16Mb,可存储149000个数据显示2×8字符LCD显示屏按键密封2键自动关机无操作8分钟后自动关机电源可充电锂电池;2600mAh电池电量典型情况下可连续操作48个小时,低电量LCD显示通讯方式蓝牙和USB尺寸134mm×65 mm×33 mm重量188克样品固定器机械式叶夹——标准叶夹,可拆卸叶夹工作环境温度0~+55℃,相对湿度0~95%(非冷凝)存储环境温度-10~+60℃,相对湿度0~95%(非冷凝) 叶绿素荧光反射比OD680/720PAR光谱吸收/透射/反射光谱叶面积指数GPSFluorPenllPAR FluorPenlllMonitoring PenlllAquaPen-ClllAquaPen-PllPlantPen NDVI&PRIllN-PenllPolyPenlllPolyPen-AqualllSpectraPen LMlSpectraPen LMlllSpectraPen SPllLaiPenlll 案例介绍:案例1:正常浇水与干旱胁迫下接种固氮螺菌属及丛枝菌对水稻光合活性(Fv/Fm)的影响WW:正常浇水 D:干旱胁迫M:Glomus intraradicesA:Azospirillum brasilense无论是正常浇水会干旱胁迫,接种两种菌后水稻的光合效率均显著增加,而两种菌都接种的样品,光合效率增加较多,水分条件对水稻的光合效率没有显著影响。 案列2:盐胁迫对接种丛枝菌的莴苣光合活性(Fv/Fm)的影响无论接种丛枝菌与否,随着盐度的增加,莴苣光合活性菌降低,80mM时的显著低于0和40mM,表明高浓度盐迫降低莴苣光合效率;无论什么盐浓度下,接种丛枝菌的莴苣光合活性菌显著高于未接种的,表明丛枝菌对莴苣的光合效率有显著促进作用,增加了莴苣的耐盐性。 近期发表文献:AJIGBOYE O. O., LU CH., MURCHIE E. H., ET AL. (2017). Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology. Volume 137. Pages 49-61. DOI: 10.1016/j.pestbp.2016.09.008CHEKANOV К., SCHASTNAYA E., SOLOVCHENKO A., ET AL. (2017). Effects of CO2 enrichment on primary photochemistry, growth and astaxanthin accumulation in the chlorophyte Haematococcus pluvialis. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. Volume 171. DOI 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.028DUARTE B., PEDRO S., MARQUES J. C., ET AL. (2017). Zostera noltii development probing using chlorophyll a transient analysis (JIP-test) under field conditions: Integrating physiological insights into a photochemical stress index. Ecological Indicators. Volume 76. DOI: 10.1016/j.ecolind.2017.01.023HERNÁ NDEZ-CLEMENTE R., NORTH P.R.J., HORNERO A., ET AL. (2017). Assessing the effects of forest health on sun-induced chlorophyll fluorescence using the FluorFLIGHT 3-D radiative transfer model to account for forest structure, Remote Sensing of Environment,. Volume 193. Pages 165-179. DOI: 10.1016/j.rse.2017.02.012LEE M. W., HUFFAKER A., CRIPPEN D., ET AL. (2017). Plant Elicitor Peptides Promote Plant Defenses against Nematodes in Soybean. Molecular Plant Pathology. DOI: 10.1111/mpp.12570MARTEL A. B. AND QADERI M. M. (2017). Light quality and quantity regulate aerobic methane emissions from plants. Physiol Plantarum. Volume 159. DOI:10.1111/ppl.12514
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  • KNF-109叶绿素仪,叶绿素测定仪,叶绿素荧光仪KNF-109叶绿素仪,叶绿素测定仪,叶绿素荧光仪用于各种水处理(河流/湖泊/饮用水水源地/地下水/海洋水质等)、水产养殖、环境监测、CIP等行业的叶绿素A测定。量程范围0~400ug/L分辨率0.1 ug/L,0.1℃精度±3%,±0.5℃校准方式两点校准防护等级IP68最深深度水下20米温度范围0~50℃传感器接口RS-485(Modbus/RTU)电源信息12~24VDC ±10%功耗0.5W线缆长度5米,其它长度可定制外壳材质POM
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  • FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上,既可用于叶绿素荧光动态成像分析,又可用于长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量,成像面积35x35cm,是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域:实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析(Phenotyping)植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点:ü 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等; ü UV紫外光激发多光谱荧光成像:长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为兰光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置两个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 可选配RGB成像分析模块,用于植物颜色和形态测量分析等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标:1) 大型叶绿素荧光成像平台,成像面积达35x35cm2) 高分辨率CCD镜头,图像分辨率:1360×1024像素、时间分辨率:在最 高图像分辨率下可达每秒20帧、A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)、像元尺寸:6.45μm×6.45μm、运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量、通讯模式:千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源(可选配蓝色或其它波长的LED光源),具备735nm红外光源,LED光源板750x750mm4) PAR吸收/NDVI成像模块:680nm红色光源、735nm红外光源及相应滤波器和功能程序模块,700x725x45mm5) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器 6) 成像平台高度可调,成像距离(平台离植物顶部距离)350-1350mm7) 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ,Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,qL,QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数、R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数、及UV激发多光谱荧光包括F440、F520、F690、F740等,每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像8) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔,系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名9) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等,可对Protocols进行编辑,实时在线数据分析和二维显示 10) 客户定制实验程序协议(protocols),可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序11) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?12) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等13) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),,成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等14) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线,可进行“选区操作”(参见上条)或“分级操作”(图像阈值分割功能);选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区(ROI),还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区;分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”,通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理,可设置不同的阈值进行图像阈值分割15) 结果展示报告功能:可展示所有选区(ROI)的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等,可对原数据(kinetic)、叶绿素荧光参数等导出到excel表,还可对每个参数成像图存储成位图16) 可自动测量多个样品(无限制)荧光动力学曲线及相应参数,程序软件可自动识别多个植物样品(数量不受限制)或多个区域(数量不受限制),也可手动选区(数量不受限制)17) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 18) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm,分辨率640x512,1-14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C,灵敏度30mK(0.03°C),传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换,标配9mm光学镜头、69°视野, 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol:一根电缆支持18通道;视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用,在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最 小峰值温度等f) 32GB内存,可存储80000张图片或200分钟视频,图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片,图片采集间隔1-60s可调,带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等产地:欧洲
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  • AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。应用领域 适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究典型样品地表结皮地衣、苔藓表层水体藻类其它工作原理利用调制式荧光测量技术,采用LED光源,选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。功能特点:实验过程和测量参数测量光密度OD680和OD720Ft:瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft=FoQY:光量子效率,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv&rsquo /Fm&rsquo (光适应完成的样品)OJIP:叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。NPQ:非光化学淬灭,表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。光曲线:Qy对不同光强的适应曲线。PAR测量:可在荧光仪上显示PAR值,可计算20次检测值的平均。另外还具有GPS定位功能技术参数测量参数:Fo, Ft, Fm, Fm´ ,QY, OJIP, NPQ 1,2和光曲线1,2,3。测量光:蓝光(可选红光或白光)光化学光和饱和光:0&ndash 3000µ mol.m-2.s-1可调波长检测范围:697nm-750nm· 光曲线测量方案BOIS:可升级通讯:可选蓝牙、USB或串行接口存储:4M数据存储:100,000个显示:2 x 8字符黑白液晶屏键盘:密封防水设计2键自动关机:5分钟无操作电源:4 AAA碱性电池或充电电池电池寿命:持续测量70 h低电报警尺寸:120 x 57 x 30 mm 4.7" x 2.2" x 1.2"重量:180 g, 6.5 oz操作条件:温度:0 ~ 55 º C;相对湿度:0 ~ 95 %非冷凝存储条件:温度:-10 to +60 º C;相对湿度:0 ~ 95 %非冷凝软件:FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*,实时显示和遥控,植入GPS绘图,EXCEL输出PAR传感器:读数单位µ mol(photons)/m² .s,可显示读数,检测范围400-700 nm操作软件与实验结果配置型号指南:标准配置&mdash &mdash AP-C100 + GPS模块 + PAR传感器:功能完备简化配置&mdash &mdash AP-C100:无PAR数据+ 无GPS数据 产地: 欧洲
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  • 全球唯一可同步测量P700与气体交换的系统全球唯一可同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的系统便携式光合-荧光测量系统&mdash &mdash GFS-3000是一台配备高精度4通道绝对开路式非扩散红外气体分析器的光合仪,是目前世界上功能最强大、操作最简单、界面最人性化的光合仪,有多种方式可以进行气体交换与叶绿素荧光的同步测量,包括在人工光下同步测量气体交换与叶绿素荧光、在自然光下同步测量气体交换与叶绿素荧光、同步测量气体交换与荧光成像等。双通道PAM-100荧光仪&mdash &mdash Dual-PAM-100是大名鼎鼎的PAM-101/102/103的升级版,是全球唯一一台可同步测量叶绿素荧光(PS II活性)与P700(PS I活性)的仪器,代表了调制叶绿素荧光与P700测量的最高水平。2009年,WALZ公司设计出一个特制的Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL,可以将Dual-PAM-100与GFS-3000结合起来,在世界上第一次做到了同步测量植物叶片的P700、叶绿素荧光与气体交换!主要功能 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的暗-光诱导曲线 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的光响应曲线和CO2响应曲线 * 典型的气体交换测量,如光合作用、蒸腾作用、呼吸作用 * 典型的叶绿素荧光测量,如诱导曲线、快速光曲线、淬灭分析、暗驰豫等 * 典型的P700曲线测量 * 叶绿素荧光与P700的快速诱导动力学等 * 编程进行复杂的同步或独立测量应用领域植物生理学、植物病理学、农学、林学、园艺学等,特别适合于进行深入的光合作用机理研究,可深入探讨植物光合机构对各种环境胁迫的复杂的变化响应机理。测量参数 * PS II参数:Fo, Fm, F, Fm&rsquo , Fv/Fm, Y(II)=△F/Fm&rsquo , Fo&rsquo , qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO)和ETR(II)等* PS I参数:P700, Pm, Pm&rsquo , P700red, Y(I), Y(ND), Y(NA)和ETR(I)等* 气体交换参数:参比室和样品室的CO2绝对值(CO2abs,CO2sam),参比室和样品室的H2O绝对值(H2Oabs,H2Osam),流速(gas flow),环境气压(Pamb),叶室温度(Tcuv),叶片温度(Tleaf),环境温度(Tamb),环境PAR(PARamb),叶室内叶片正面PAR(PARtop),叶室内叶片背面PAR(PARbot),叶室相对湿度(rH),蒸腾速率(E),水气压饱和亏(VPD),叶片气孔导度(GH2O),净光合速率(A),胞间CO2浓度(Ci),环境CO2浓度(Ca),植物水分利用效率,CO2响应曲线,光响应曲线等Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL 专为DUAL-PAM-100与GFS-3000的同步测量设计,由特制叶室(带温度和PAR传感器)、风扇、导光杆、电子盒与支架构成。同步测量时,光源完全由DUAL-PAM-100的测量头提供,气体交换由GFS-3000的红外分析器检测,P700和叶绿素荧光由DUAL-PAM-100的检测器测量。需要注意的是,3010-DUAL可以连接DUAL-PAM-100的DUAL-DB测量头,但不能连接DUAL-DR测量头。DUAL-DR的光学单元太复杂,连接3010-DUAL容易损伤DUAL-DR。主要技术参数 1)Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL * 设计:专为GFS-3000与Dual-PAM-100或KLAS-100的同步测量设计,叶室上下可通过导光杆与Dual-PAM-100的测量头DUAL-DB(不可连接DUAL-DR!)和DUAL-E连接,叶室的气路与电子盒连接到GFS-3000的主控单元3000-C上。* 叶室温度测量:Pt 100 A型热电阻,测量范围-10~+50℃,精度± 0.1℃* 温度控制:低于环境温度10℃~+50℃* 叶片温度测量:热电耦,测量范围-10~+50℃,精度± 0.2℃* 外置微型光量子传感器:测量PAR,范围0~2000 &mu mol m-2 s-1,精度± 5%* 叶面积:1.3 cm2* 工作温度:-5~+45℃* 尺寸:叶室10 cm x 4 cm 12 cm;电子盒7 cm x 7 cm x 15 cm* 重量:包括叶室、电子盒、电缆与安装架,1.7 kg;工作台ST-101,2 kg2)Dual-PAM-100* P700双波长测量光:LED,830 nm和870 nm* PSII荧光测量光:LED,460 nm(DUAL-DB)或620 nm(DUAL-DR)* 红色光化光:LED阵列,635 nm;最大连续光强2000 &mu mol m-2 s-1* 蓝色光化光:LED,460 nm;最大连续光强700 &mu mol m-2 s-1* 单周转饱和闪光(ST):200000 &mu mol m-2 s-1,5~50 &mu s可调* 多周转饱和闪光(MT):20000 &mu mol m-2 s-1,1~1000 ms可调3)GFS-3000* CO2测量:0~3000 ppm,分辨率:0.01ppm* CO2控制:0~2000 ppm* H2O测量:0~75000 ppm,分辨率:0.01ppm* H2O控制:0~100% rh(可加湿)* 温度测量:-10℃ ~ +50℃* 温度控制:低于环境温度10℃ ~ +50℃* PAR测量:0~2500 &mu mol m-2 s-1* PAR控制:0~2000 &mu mol m-2 s-1* 气压测量:60~110 kPa
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  • 产品介绍 Aquation经典叶绿素荧光仪可作为台式使用,也可用于田间,防水设计传感器测量质包括水生植物和珊瑚等也非常方便,同时备选USB以及无线连接。此系列经典叶绿素荧光仪坚固耐用、操作简便、配置灵活多样,使之成为实验室、温室、田间、水下研究和教学实验的理想工具。本系列叶绿素荧光仪可实现全防水野外测量(乃至水下测量)甚至实现无线连接,将测量变的简单便捷。 Aquation经典叶绿素荧光仪使用PAM 测量技术来测量光合系统II的不同荧光,测量值为F,Fo,Fm′,Fm,Fv/Fm, ΦPSII以及其它计算值 (如ΦNO, ΦNPQ)。此类易于使用的PAM荧光仪用在陆生植物、海藻、珊瑚、大型海藻和小型海藻的生理研究,叶绿素浓度通过从获取的相对叶绿素指数进行估计。无线备选允许在无线范围内使计算机远离水;全防水荧光传感器可用于水下研究,可提供台式工作平台基座或将电缆从基座接入。所有命令均通过PC来实现。Aquation公司的经典叶绿素荧光仪使调制叶绿素荧光测量变得非常简单。它们采用饱和脉冲技术来测量较大光合效率和实际光合效率,并提供光化光和远红光。用户可以使用预置程序进行测量,也可编辑自己的程序进行测量。所有的程序测量过程都可以在软件中设置好进行自动重复。技术参数 测量参数:F, Fo, Fo′, Fm, Fm′,rETR,PAR,T 计算参数:ΦII, Fv/Fm, NPQ,ΦNO, ΦNPQ, qP, qL,qN 光化光 (白 LED) :4500 Φmol.m-2.s-1 饱和光 (白LED):10500 Φmol.m-2.s-1 测量光 (470 nm LED) :0.1W 远红光 (735 nm LED) :40 Φmol.m-2.s-1 电压:110~240 VAC或 12 V DC 通讯:USB 或2.4 GHz 控制:Windows PC (或 Windows emulator) 温度范围:0~45°C (操作);-5~ 60°C (储存) 尺寸 (传感器):45mm (2.4”) 直径x 55mm (2.4”) 尺寸(接口盒):长127 x 63 x 30 mm (5” x 2.5” x 1.2”) 重量:传感器和电缆 250g/8.8oz 外壳材质:Acetal 塑料和316不锈钢 电池:可充电锂电池 内存:2GB产品特点 使用PAM方法测量叶绿素荧光 配置采用远红光 自动调量程以及自动归零 田间防水设计 无线或USB连接电脑 传感器采用平基座或从基座延伸的电缆 连接到电脑或数据采集仪可实现重复测量 易用软件、界面简洁 预编程光曲线产品应用 植物光合作用 植物生理、生态研究 监控叶绿素含量 各种生物和非生物逆境胁迫 水生植物、藻类、珊瑚研究参考文献 1.Nayar, S. and Bott, K. (2015). Uptake and translocation of ammonium and nitrate by temperate seagrass Zostera nigricaulis in Port Phillip Bay. South Australian Research and Development Institute (Aquatic Sciences), Adelaide. SARDI Publication No. F2014/000665-1. SARDI Research Report Series No. 819. 51pp.Procaccini, G., Ruocco, M., Marín-Guirao, L., et al. 2017. Depth-specific fluctuations of gene expression and protein abundance modulate the photophysiology in the seagrass Posidonia oceanica. Scientific Reports 2.Cui, Y., Tian, Z., Zhang, X. et al. 2015. Effect of water deficit during vegetative growth periods on post-anthesis photosynthetic capacity and grain yield in winter wheat (Triticum aestivum L.). Acta Physiol Plant. 37:196.Dudley, B.D., Hughes, R.F. and Ostertag, R. 2014. Groundwater availability mediates the ecosystem effects of an invasion of Prosopis pallida. Ecological Applications 24(8): 1954–1971
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  • PSP32在线叶绿素荧光观测系统1 引言叶绿素荧光是反应植物光合作用等生理功能的重要指标之一。通过分析植物叶绿素荧光参数,可以直接反应植物的光合能力、胁迫状况等重要的生理状态。因此,叶绿素荧光参数的测量一直为学者所重视。而调制-饱和-脉冲式荧光仪的出现,使得叶绿素荧光野外测量变得方便,但仍然存在着不能在线测量,每次只能测量一个样品、无法长期监测等问题针对上述问题,我们推出了在线式叶绿素荧光监测系统,可以长时期的连续监测植物的叶绿素荧光参数,并且可以配合无线传输模块,远程传送数据,单个仪器可同时测量多达32个样品,并且简单的编程设置,可以选择任意时间或不同时间重复测量相同的参数,对更深入的研究植物的光合作用机制及环境对植物的影响具有重要的意义。2 观测系统2.1 特点1) 坚固紧凑2) 低维护3) 多样品同时测量 4) 用户自定义设置5) 多种测量协议6) 远程数据传输7) 安装方便8) 适用野外长期监测 9) 标准数据输出2.2 系统组成及技术指标2.2.1 系统由如下部分组成:1) 标准光适应探头或带暗适应单元的探头;2) 主机;3) 分线器(探头较多时配置);4) 供电单元(交流或太阳能板供电);5) 安装支架等附件6) 在线数据传输单元(标配WIFI)7) 远红光单元(可选); 8)气象单元(可选)带暗适应模块的探头(闭合的状态)带暗适应模块的探头(打开的状态)主机太阳能供电系统可选部件:叶绿素含量传感器,用于监测植物营养胁迫NDVI、NDRE、PPR & CCCI传感器,用于监测植物干旱&氮胁迫地面安装方式带活动臂地面安装方式带活动臂4探头接线盒 8探头接线盒 智能手机modem(可选) 利用测量结果进行外部控制连接的部件 用于外部气象数据输入土壤水分探头和土壤温度探头接入盒 允许PSP32控制液体养分和水的分配2.2.2 技术指标:光适应测量参数:l Y(II): (相关参数采用Loriaux 2013 方法校正)PSII的光量子产额,或ΔF/Fm’l ETR:相对电子传递速率 l PAR: 光合有效辐射l T:叶片温度l FMS:或FM’,光适应样品使用饱和脉冲测得的最大荧光l F:或Fs,光化光下的荧光信号(饱和脉冲照射之前)暗适应测量参数l FV/FM: PSII的最大光化学效率l FV/FO对胁迫更敏感的一个参数,但不测量植物效率l Fo最小荧光l FM最大荧光l FVl FO’可变荧光远红光(暗适应模块)照射后的最小荧光淬灭参数:l Hendrickson参数Y(NPQ), Y(NO), Y(II), NPQ, FV/FMl Kramer参数qL, Y(NPQ), Y(NO), Y(II), FV/FMKramer new:NPQ(T), qE(T), & qI(T) (近红色光源)l Puddle参数NPQ, qN,qP,Y(II), FV/FM以下参数需要配置暗适应模块l 淬灭弛豫参数(可选)qE、qM、qT、qZ和qIl Ruban/ Murchie 参数pNPQ & qPd快速光曲线:l rETRMAX 最大电子传递速率(Eiler and Peeters) l α是通过将ETR与PAR关联而创建的低PAR值处的初始斜率。 它提供了量子效率的量度l Ik最低饱和光强l Im 最佳光化光强硬件参数:光源:蓝光饱和脉冲强度: FM’校正,7000 μmols/m2/s 方形顶部脉冲,10000 μmols/m2/s可选红光饱和脉冲强度: FM’校正,7000 μmols/m2/s 方形顶部脉冲,10000 μmols/m2/s调制光源: Blue 455nm – 半波宽21nm的蓝色光源 Red 640nm—半波宽17nm的红色光源光化光源 蓝光,可达5000 μmols m-2 s-1红光,可达5000 μmols m-2 s-1远红光源: 结合暗适应模块用于Fo’测量或者暗适应模式中Fv/Fm测量前的预照射。检测方法: 脉冲调制式检测器&滤波器: 具有700 ~ 750带通滤波器的PIN光电二极管 采样速率: 1~10000点每秒,根据不同测量自动选择存储空间: 2GB算法: 25ms内8点平均值计算FM, FM', FO, & FS,降低噪音值输出: CSV文件,可以通过wifi,以太网、U盘传输;可选手机、无线点对点、卫星电话传输方式供电:可以根据要求提供外部12伏电池。可以使用太阳能电源和主电源。操作温度: -10℃~+50℃3 数据处理数据通过主控制器获取,可以通过多种方式下载,所有系统标配Wi-Fi模块,方便客户使用。系统界面为彩色触摸屏,可用于数据采集的编程,也可以使用PC和手机进行远程控制,获得的数据格式同Excel兼容,也可以导入各种数据处理软件进行分析,数采内部自带各种算法,用于计算各种模型参数。智能手机和电脑上软件控制和数据截图 数据采集器上界面5 产地: 美国
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