蛋白质组修饰分析

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蛋白质组修饰分析相关的厂商

  • 北京百泰派克生物科技有限公司(Beijing Biotech Pack Scientific Co., Ltd. 简称BTP)成立于2015年,是国家级高新技术企业,业务范围主要围绕蛋白和小分子代谢物检测两大板块,从事蛋白质和小分子代谢物的理化性质分析及结构解析等相关技术服务,为客户提供高性价比、高效率的技术服务。深耕蛋白鉴定、定量蛋白组(iTRAQ/TMT、label free、DIA/SWATCH)、PRM靶蛋白定量、蛋白和抗体测序、蛋白修饰(二硫键、糖基化、磷酸化、乙酰化、泛素化等)、靶向和非靶向代谢物检测。百泰派克生物科技检测平台包括:检测分析平台、蛋白质组学分析平台、代谢组学分析平台、蛋白质从头测序平台、生物制药分析平台和流式细胞多因子检测平台。公司拥有独立的质谱实验室、色谱实验室、细胞培养室和免疫学实验室,以及高分辨率质谱仪和高效液相色谱。目前已与国内外多家药物研发企业,以及哈佛大学、北京大学在内的国内外高校建立了合作关系,协助客户发表了多篇中英文文章,包括Cell等多家高水平期刊。公司自主检测平台发展至今,已覆盖蛋白质组学、代谢组学、生物制药、生信分析等多组学检测平台,积累了丰富的实践经验,凭借专业的技术和优质的服务水平,客户覆盖北京大学、清华大学、中科院等多所知名院校,也与国内外多家药物研发企业建立合作关系。公司始终致力于为各科研院校、企业和机构提供高效、准确、高性价比的蛋白质(组)研究技术包裹,助力客户在基础研究、分子诊断及其他生命科学研究领域取得突破,为生命科学的发展做出贡献。百泰派克技术平台检测分析平台:多台高分辨率质谱仪、高效液相色谱、气相色谱,NMR。蛋白质组分析平台:Label-free、iTRAQ、SILAC、SWATH、MRM;蛋白质定性定量鉴定、蛋白质差异分析、发现疾病标记物、发现药物靶标。代谢组分析平台:靶向代谢组学、非靶向代谢组学、脂质组学分析;通量达1000种代谢分子、代谢通路分析、代谢靶标鉴定。流式细胞多因子检测平台:CBA、FlowCytomix;微量样品需求,分析多种细胞因子。 蛋白质从头测序平台:Obitrap Fusion Lumos质谱仪、PEAKS软件分析;100%序列测定,精准蛋白、抗体测序。生物制药分析平台:生物药物鉴定、变异性分析、纯度分析。流式细胞多因子检测平台:CBA、FlowCytomix;微量样品需求,分析多种细胞因子。
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  • ProteinSimple 金牌12年
    400-860-5168转2472
    ProteinSimple是美国纳斯达克上市公司Bio-Techne集团(NASDAQ:TECH)旗下行业领先的蛋白质分析品牌,致力于研发和生产更精准、更快速、更灵敏的创新性蛋白质分析工具,包括蛋白质电荷表征、蛋白质纯度分析、蛋白质翻译后修饰定量检测、蛋白质免疫实验如Western和ELISA定量检测蛋白质表达等技术,帮助生物制药、细胞治疗、生物医学和生命科学等领域科学家解决蛋白质分析问题,深度解析蛋白质和疾病相互关系。联系方式地址:上海市长宁路1193号来福士广场3号办公楼19层2001室热线:021-52293200 接通后请直接按 631邮箱:jing.li@bio-techne.com网址:www.bio-techne.com
  • 南宁市蓝光生物技术有限公司成立于2008年,坐落在广西南宁市高新技术开发区。是一家由活跃在美国、加拿大生物科技前沿的华人科学家和留学生创建的。其核心技术及研发平台由加拿大ICP免疫公司和美国、加拿大数家拥有一流科学家和设备的实验室提供。蓝光生物的产品和服务包括多肽合成、抗体制备、基因克隆和蛋白表达、免疫学和细胞生物学相关试剂以及技术支持等。目前,公司已开发出近百种用于基础生物医学研究的各种抗体、各种广泛应用于诊断的标记第二抗体、5种固相非放射性同位素蛋白激酶活性测试盒【PKC,PKA,AKT,SGK和S6K蛋白激酶测试盒】、及用于蛋白组学和药物筛选的甲基化、乙酰化、磷酸化等翻译后修饰蛋白质组学的抗体和填料。这些产品可应用于染色体修饰、细胞周期、细胞周期检验点、细胞凋亡、核因子、神经因子、细胞因子、酪氨酸激酶、翻译调控因子、淋巴细胞信号传导因子、糖代谢等细胞信号传导通路的科学研究。其中,用于药物筛选和基础科研的非放射性同位素蛋白激酶活性测试盒属世界首创;自主研发的甲基化、乙酰化、磷酸化特异性抗体及亲和色谱填料等翻译后修饰蛋白质组学抗体和填料等系列产品畅销国内外。客户用我们的产品进行科学研究,论文发表在SCIENCE、NATURE、CELL等高质量的学术杂志上。
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蛋白质组修饰分析相关的仪器

  • 仪器简介:作为全球最大的实验室过滤及超滤产品供应商,Millipore 可为您提供l. 0.5mL至1000L处理量的实验室除菌过滤装置,可用于血 清、组织培养基及其他溶液的除菌过滤。高通量,低吸附的除菌滤膜,使蛋白质损失最少。可选择即用式过滤器或可更换膜的过滤装置。2. 0.5mL至3000mL处理量的实验室超滤装置,用于蛋白质,核酸的分离、纯化、浓缩和脱盐,专利 的结构设计和新型的超滤膜,使超滤速度更快,产物回收率更高。单片超滤膜和膜包可清洗并反复使用。3. 高通量纯化系统,特别适合大规模样品纯化实验室的应用,可快速有效地同时处理多达96个样品,大大减轻了实验室的负担。主要产品包括:* Amicon 系列超滤离心装置: 浓缩,脱盐一部到位,* DNA Extraction Kit: 从琼脂糖凝胶中回收DNA,只需10分钟即可回收100bp-10,000kb DNA* Micropure -EZ:从DNA中去除常用的42种限制性内切酶,可与Amicon超滤离心装置连用,一步离心即可完成去酶,浓缩及脱盐。* Immobilon 系列转印膜: Ny+ 用于Southern和Northern Blotting PVDF 用于Western Blotting* ZipTip 微量固相萃取吸嘴:只需数秒即可纯化fmol至pmol的蛋白质样品,提高质谱分析的灵敏度* Montage Plasmid kit:用于质粒DNA纯化2 Montage BAC kit:用于BAC DNA纯化2 Montage SEQ kit:用于测序反应后PCR纯化* Montage In-Gel Digest Kit: 同时处理96个1-D或2-D胶中的蛋白质样品* Millex GP33: 超大面积,超高流速的针头式除菌过滤器。技术参数:1.96孔PCR 纯化板---纯化96个样品只需10分钟2.无须离心,只需真空抽干3.不需要使用任何有机试剂及任何盐溶液,也无须洗涤步骤4.纯化后的PCR样品回收率90%(500bp以上)5.纯化后的DNA纯度极佳--Primer的去除率98%主要特点:1.Albumin Deplete Kit--有效去除人血清中65%以上的白蛋2.预装好亲和层析小柱,只需15分钟离心,洗脱操作3.非特异性蛋白吸附极低4.提高低峰度蛋白质在电泳,层析及质谱分析中的解析度5.此Kit同样可适合于其他多种哺乳动物
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  • 青莲百奥自主研发蛋白质组学全流程全自动样本处理智能机器人拥有磁吸附模块、精准温控模块、微量移液工作站、配合青莲百奥自研MMB蛋白质组学前处理试剂盒,能够同时完成1-96例蛋白质样本的还原烷基化,蛋白质纯化,蛋白质酶解、修饰肽段的富集、同位素(TMT\iTRAQ)标记处理,内置一键非标记定量蛋白质组学功能、一键标记定量蛋白质组学前处理功能,一键微量样本修饰肽段富集功能,前处理样本与ThermoFisher、BRUKER、AB Sciex的LC-MS/MS设备兼容,实现临床质谱蛋白质样本处理的全自动化和标准化操作。 产品信息产品名称蛋白质组学全流程全自动样本处理智能机器人型号MagicOmics-AP-32/9设备尺寸长1100mm x宽750mm x高1100mm产品重量150KG仪器特点:1. 易操作:整个流程内置一键功能,无需设置程序,完成试剂盒放置即可,一键开启;2. 准确性:自动化机械臂精准移液;3. 重现性:完成统一标准化操作,避免手动产生的误差;4. 高通量:单次最高完成96例样本制备;5. 耗时短:无需除盐,冻干等步骤,可直接质谱上机;6. 无人值守; 工作原理4~7小时可完成整个酶解过程,包括还原烷基化,蛋白孵育纯化,蛋白酶解以及酶解终止。 Step1还原烷基化:首先将完成浓度归一化的蛋白溶液移液至青莲百奥MMB蛋白组学试剂盒中含MMB beads的96孔板中,再通过机械抓手将96孔板移至温控模块升温完成蛋白的还原烷基化过程,最后将96孔板移出温控模块至震荡模块。 Step2蛋白孵育纯化:加入孵育液,通过变速震荡孵育使蛋白完全结合在MMB beads上,配合磁吸附模块对原始溶液中的盐溶液及还原烷基化试剂进行去除,免除后续除盐步骤。 Step3蛋白酶解:加入酶解工作液,再通过机械抓手将96孔板移至温控模块进行酶解孵育。 Step4酶解终止:加入酶解终止液,终止酶解过程,将产物转移至新的96孔板中,可直接质谱上机。系统优势1通量高:一次可以处理96例蛋白质组学样本的酶切工作;2用量少:500个细胞、20µ L尿液、1µ g蛋白质容液;3多功能性:蛋白质浓度归一、肽段同位素标记、修饰肽段富集、纯化蛋白质等;4效率高:96例蛋白质组学样本的酶切工作仅需要5小时;5重复性好:均相反应,测试结果之间CV值10%;6易用性高:内置一键完成SOP,配套对应试剂盒一键完成7稳定性高:步骤简化无需除盐,可直接质谱上机;应用领域1蛋白质纯化2蛋白质组学样本酶切3同位素标记 仪器相关性能指标与参数 性能指标参数磁吸附模块仪器通量96样本/批移液器类型单道/8通道固定间距移液器移液范围1-250μL移液精准度20~200μL 准确度±1%,CV≤1%;5~20μL准确度±2%,CV≤2%;1~5μL 准确度±5%,CV≤5%振荡模块温度范围:室温+3℃ -37℃;振荡速率:0-2000 RPM 可调; 振荡时间:通过软件可调制冷模块制冷温度: 4℃±2℃ 适配:48 x 200 μL 离心管;16 x 2ml 离心管;温度孵育模块4-100℃机械臂定位精度重复定位精度±0.1mm 软件功能具有流程运行与进度展示功能;具有样本数量设置功能;具有标品稀释策略功能;具有浓度归一化计算功能,并进行归一化操作;具有恒温振荡模块的温度、振荡速率和时间设置功能;具有孔板孔位选择功能;具有通讯故障提示功能;一键蛋白质组学非标记前处理功能;一键标记蛋白质组学处理功能;一键蛋白质纯化功能;一键修饰肽段富集功能;
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  • 欧奇奥 IPAC1 蛋白质聚集体成像计数分析仪粒度分析粒子计数(颗粒数/毫升)特殊细胞蛋白聚集体分析(最小体积100微升)生物技术专用特殊光学台欧奇奥 IPAC1 蛋白质聚集体成像计数分析仪 蛋白质是怎样构成的?蛋白质是以氨基酸为基本单位构成的生物高分子。蛋白质分子上氨基酸的序列和由此形成的立体结构构成了蛋白质结构的多样性。蛋白质具有一级、二级、三级、四级结构,蛋白质分子的结构决定了它的功能。一级结构:蛋白质多肽链中氨基酸的排列顺序,以及二硫键的位置。二级结构:蛋白质分子局区域内,多肽链沿一定方向盘绕和折叠的方式。三级结构:蛋白质的二级结构基础上借助各种次级键卷曲折叠成特定的球状分子结构的空间构象。四级结构:多亚基蛋白质分子中各个具有三级结构的多肽链,以适当的方式聚合所形成的蛋白质的三维结构。欧奇奥 IPAC1 蛋白质聚集体成像计数分析仪 蛋白质的氨基酸序列是由对应基因所编码。除了遗传密码所编码的20种“标准”氨基酸,在蛋白质中,某些氨基酸残基还可以被翻译后修饰而发生化学结构的变化,从而对蛋白质进行激活或调控。但是,如果蛋白质间发生非特异性结合,不仅蛋白质失去应有活性,而且易形成包涵体,导致蛋白基因工程成本增加。聚集体的结构包括淀粉样蛋白纤维结构和包涵体结构。生物医学工程中为什么必须研究和观测蛋白质聚集体?蛋白质聚集已经成为药物与生物学领域中的研究热点,其中蛋白质以非天然构象存在,还常伴随着β-折叠量的增加。老年痴呆症和II型糖尿病都与蛋白质聚集有关。研究蛋白质聚集体有助于理解体内分子病的形成。在蛋白质和药物的后基因组时代,寻找蛋白质晶体的优化条件一直是晶体生长工作者的目标。而成核前溶液中蛋白质形成的聚集体的状态(包括聚集体的大小,形貌,甚至于构象等)的变化会直接影响到成核的情况。因此,对于无序聚集体状态的变化研究,有助于分析有序聚集体的出现条件并提供蛋白质晶体生长的合适条件。清华大学生命科学学院生物膜与膜生物工程国家重点实验室购置“多角度激光光散射凝胶色谱系统”,用于生物样品溶液形态分析、蛋白质及其聚集体分子量和分布测定,蛋白质均一性、稳定性分析及其结晶状态和条件的筛选,研究蛋白质聚集体对膜污染过程的影响。蛋白聚集严重影响以蛋白为基础研发的药物。在药物制剂中,蛋白聚集在生物活性和免疫原性方面影响药效。蛋白聚集发生在生产过程的各个阶段包括细胞培养、纯化、生产、储存、运输等方面。制药工业希望在生物工艺中找到新的方法,可用于检测、追踪、定量分析影响蛋白聚集的因素。近年来以冻干稳定形式存在的蛋白聚集体作为标准品,可以准确地定量检测蛋白聚集,加上新颖的只需在酶标仪里即可实验的ProteoStat protein aggregation assay,可对蛋白检测方法进行优化。科学家目前并不确定为何不正确的蛋白质形式和聚集成团现象是神经变性疾病的重要标志,神经变性疾病包括肌萎缩侧索硬化(ALS)、阿尔兹海默氏症和疯牛病等。刊登在11月1日的国际杂志Molecular Cell上的研究报告中,来自耶鲁大学的研究者通过在细菌中研究疾病的发病过程来揭示不正确形式的蛋白质的聚集体的形成过程。蛋白质是由DNA编码控制并且在核糖体的装配下在细胞中形成,然而,有时候蛋白质并不会被正确地装配,这些错误折叠的蛋白质就趋向于聚集。错误折叠的蛋白质的聚集现象就在阿尔兹海默症患者大脑中表现尤为明显。来自耶鲁的研究团队揭示了抗生素链霉素可以诱发大肠杆菌蛋白质的聚集。使用大规模的蛋白质组学及遗传学筛选技术,研究者分析了蛋白质的聚集现象以及筛选了可以使得大肠杆菌对抗生素产生耐药性的细菌蛋白质,最终研究者发现细菌中一种特殊的蛋白质如何保护细菌免于过氧化氢的压力,以及这种蛋白质如何减弱由于链霉素所刺激引发的蛋白质的聚集。
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蛋白质组修饰分析相关的资讯

  • “翻译后修饰蛋白质组技术及应用”专题学术研讨会召开
    仪器信息网讯,2009年11月24日由中国生物化学与生物学会蛋白质组学专业委员会、北京蛋白质组研究中心、岛津国际贸易(上海)有限公司共同主办的题为“翻译后修饰蛋白质组技术及应用”研讨会在北京蛋白质组研究中心成功举办,约200多位多从事相关研究的学者出席了此次研讨会 会议由钱小红教授、杨芃原教授共同主持。   在大会上做报告的专家有:Koichi Tanaka(田中耕一,岛津公司研究实验室,2002年诺贝尔化学奖获得者),Catherine Fenselau (University of Maryland),Robert J. Cotter (Johns Hopkins University), Emmanuel Raptakis (Kratos Analytical., Shimadzu Biotech), Pengyuan Yang(复旦大学),Siqi Liu (Beijing Institute of Genomics, Chinese Academy of Sciences), Xiaohong Qian (Bdijing Proteome Research Center) Fuquan Yang, Institute of Biophysics, Chinese Academy of Sciences) Koichi Tanaka(田中耕一,岛津公司研究实验室,2002年诺贝尔化学奖获得者)   Title:MALDI Matrix Development History   蛋白质是生命的物质基础,每一种生命运动形式,都是特定蛋白质群体发挥功能的结果;因而蛋白质组研究是人类研究细胞功能和疾病发生发展过程的中心环节。目前蛋白质组研究采用的主要技术是双向凝胶电泳和质谱法。具备测定大分子、快速、大规模分析的MALDI-TOF技术是用于蛋白质组分析的主要手段之一,并被认为是蛋白质分析领域的一项重大突破。在蛋白质组研究中,除了研究蛋白质一级结构外,还要对翻译后修饰的进一步分析,如蛋白质的糖基化、蛋白质的磷酸化等,MALDI-TOF在其中发挥了极其重要的作用。   田中耕一先生发明的“激光解吸附软电离技术”使分析生物大分子成为可能。MALDI是这一技术直接的商品化,广泛用于测定多肽和蛋白质的分子量、肽指纹图谱、以及氨基酸序列等。   Catherine Fenselau (University of Maryland)   Title: Proteomic Strategies for Longer Peptides: How and Way   Robert J. Cotter (Johns Hopkins University)   Titel: Characterization of Protein Post-Translational Modifications Using MALDI Mass   Emmanuel Raptakis (Kratos Analytical., Shimadzu Biotech)   Title: Using the Power of a MALDI-quadrupole Ion Trap-TOF to Elucidate Structures of Complex Biomolecules   Pengyuan Yang(复旦大学)   Titel:Mass Spectrometry Based Protein Glycosylation Analysis   Siqi Liu (Beijing Institute of Genomics, Chinese Academy of Sciences)   Title: Proteomic and Functional Analysis Towards the Nitrated Proteins in the Heart Mitochondria of db/db Diabetic Muse Model   Xiaohong Qian (Beijing Proteome Research Center)   Titel:Globel Analysis of Core-fucosylated Glycoprotein   Fuquan Yang, (Institute of Biophysics, Chinese Academy of Sciences)   Title: Phosphoproteome Analysis of Rat L6 Myotubes Using Reverse Phase C18 Prefractionation and Titanium Oxide Enrichment 大会现场
  • 张玉奎院士、张丽华研究员团队蛋白质组学最新成果:N-磷酸化蛋白质组的深度覆盖分析新方法
    仪器信息网讯 近日,中国科学院大连物理研究所生物分子高效分离与表征研究组(1810组)张丽华研究员和张玉奎院士团队,蛋白组组学分析最新成果发表于《自然-通讯》(Nature Communications)上。团队发展了N-磷酸化肽段高选择性富集新方法,并结合肽段的高效分离和高灵敏度鉴定,实现了N-磷酸化蛋白质组的深度覆盖分析。  与研究相对深入的发生在丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸侧链氨基上的蛋白质O-磷酸化修饰相比,发生在蛋白质组氨酸、精氨酸和赖氨酸上的N-磷酸化修饰,由于P-N酰胺键具有较高的吉布斯自由能,且易发生水解,目前仍缺乏有效的N-磷酸化蛋白质组分析方法,制约了人们对其生物学功能的认识。  团队研制了具有核壳结构的亚二微米硅球,并通过在硅球表面键合双二甲基吡啶胺双锌分子,在中性条件下实现了N-磷酸化肽段的高效、高选择性、快速富集 通过基于该材料的on-tip富集方法和液质联用分离鉴定的结合,不仅从HeLa细胞中鉴定到3384个N-磷酸化位点(目前最大的哺乳动物N-磷酸化数据集),而且还发现N-磷酸化位点附近亮氨酸高度表达 建立的N-磷酸化蛋白质组分析新方法不仅为深入研究其生物学功能提供了基础数据,而且也为推动精准医学、合成生物学等领域的发展提供了技术支撑。  上述工作得到国家自然科学基金、国家重点研发计划、中科院大连化物所创新基金等项目的资助。文章链接:《自然-通讯》(Nature Communications)。
  • 智能数据采集FLASHIda应用于自上而下蛋白质组学分析
    大家好,本周为大家分享一篇发表在Nature communications上的文章,FLASHIda enables intelligent data acquisition for top–down proteomics to boost proteoform identification counts [1],文章的通讯作者是德国图宾根大学的Oliver Kohlbacher教授。自上而下蛋白质组学(TDP)能够对完整的proteoform进行全面和深入的分析,目前已广泛应用于生物医学研究领域。proteoform在不同的生物系统中具有高度异质性,proteoform水平的信息可以为了解生物生化功能或疾病表型提供重要的信息。近年来,随着TDP样品处理方法、分离技术、碎裂技术和生物信息学方法的进步,proteoform变得更容易被检测和表征。在复杂样本的大规模研究,如微生物或人类细胞裂解液中,proteoform的鉴定数量已达到4000-6000(对应500-1000个蛋白质)。在单次TDP实验中,在大肠杆菌裂解液中可以鉴定出约800种proteoform,在人脑样本中可以鉴定出约1800种proteoform。由于proteoform的多样性和复杂性,完整蛋白质的DDA采集是非常重要的。然而目前的仪器软件在DDA采集中实施的碎裂技术优化主要针对自下而上蛋白质组学(BUP),而不是TDP。尽管这些方案在BUP研究中有效地捕获了各种高质量的肽段离子,但这些选择标准对于TDP中的proteoform离子选择并不是最优的。与BUP中的肽段离子相比,单个proteoform由于其高质量和高电荷会产生许多峰,Top-N采集往往会导致从一个丰度较高的proteoform中选择多个峰,而不是从多个不同的proteoform中进行选择,这会导致proteoform的覆盖率较低。此外,基于强度进行选择可能不会选到能产生多种独特片段的高质量前体。目前,大多数大规模TDP研究使用具有特定调优参数的DDA采集,例如,Top-N采用相对较低的N值(3-5)和相对较高的隔离窗口(1.2-15 Th,超宽隔离)。然而对所选前体离子的分析表明,对proteoform的选择依然不理想。因此,采用更智能的数据采集方式(Intelligent data acquisition,IDAs)是非常有必要的。本文中作者提出了一种用于TDP的基于机器学习的智能在线数据采集算法FLASHIda,该算法可以确保实时选择不同proteoform的高质量前体,最大化TDP中的proteoform覆盖。FLASHIda通过iAPI与tribrid Thermo Scientific质谱仪连接,允许对MS数据进行实时访问。在LC-MS运行期间,将实时去卷积算法和评估前体同位素质量的机器学习技术结合,非冗余选择高质量前体离子,从而提高蛋白质的覆盖率。FLASHIda流程如图1所示,该算法能在20毫秒内处理每个MS全扫描,并优化下一个采集周期,以最大限度地提高采集中的异型多样性。FLASHIda包括以下3个关键步骤,第一步是将输入的m/z-强度谱转换为mass-quality谱图,第二步是在转换谱图中选择前体离子,最大化唯一识别的proteoform离子数量,最后,动态确定每个选定质量的电荷态和隔离窗口大小,以尽量减少噪声或共洗脱的干扰。确定的隔离窗口m/z范围通过Thermo iAPI连接提供给仪器。  图1.FLASHIda总览  在对大肠杆菌裂解液的分析中,与标准DDA模式相比,FLASHIda在三分之一的仪器时间内将proteoform鉴定数量从800增加到1500,或产生几乎相同的鉴定数量。此外,FLASHIda能够灵敏地绘制翻译后修饰和检测化学加合物。作为仪器的软件扩展模块,FLASHIda可以方便地用于复杂样品的TDP研究,以提高proteoform的鉴定率。  图2. Proteoform分析  这项研究展示了IDA在TDP研究中的应用,目前作者依然在开发该算法的不同变体,用于靶向proteoform分析,深度表征,甚至从头测序。此外,由于FLASHIda能够选择无干扰的前体离子,因此它可以用于提高proteoform定量准确性。作者预计,未来在FLASHIda内开发的高级数据采集方法将有助于通过TDP探索proteoform的异质性。  撰稿:张颖编辑:李惠琳  原文:FLASHIda enables intelligent data acquisition for top–down proteomics to boost proteoform identification counts  李惠琳课题组网址www.x-mol.com/groups/li_huilin   参考文献  Jeong K, Babović M, Gorshkov V, Kim J, Jensen ON, Kohlbacher O. FLASHIda enables intelligent data acquisition for top-down proteomics to boost proteoform identification counts. Nat Commun. 2022 Jul 29 13(1):4407.

蛋白质组修饰分析相关的方案

  • 内标掺入SILAC法用于小量组织的蛋白质组及磷酸化蛋白质组定量
    在这篇工作中,我们采用内标掺入 SILAC 的定量方法对大鼠胰岛进行了蛋白质组以及磷酸化蛋白质组的定量研究。通过对 SILAC 培养基的成分比例调整,我们优化了 INS-1E 细胞的标记方法。胰岛内包含多种细胞类型,如α 细胞,β 细胞,δ 细胞等,我们发现采用 INS-1E 细胞系(一种β 细胞系)已经可以较好的覆盖胰岛的全蛋白质组和磷酸化蛋白质组。若关心胰岛中的α 细胞的话,则可以标记α 细胞系来作为内标掺入胰岛。此外,我们还可以采用多种细胞系作为内标,这种称为“Super SILAC”的方法来完成对复杂组织蛋白质的全覆盖。 在磷酸化蛋白质组学流程中,我们采用了自制的基于StageTip 的TiO2萃取小柱来灵活的实现小量样品的磷酸化肽段富集。样品量始终是磷酸化以及其他一些翻译后修饰研究绕不过去的话题,一般来说只有增加样品量,并采取适当的预分级手段才能更深度的去覆盖这些翻译后修饰蛋白质组。ThermoFisher 也提供了商业化的 IMAC 试剂盒(Cat # 88300),鉴于 IMAC 和 TiO2 对磷酸化肽段富集有着较好的互补性,这两者联用会对磷酸化蛋白质组的深度覆盖达到更好的效果。
  • 重组蛋白表征——完整蛋白质的鉴定、纯度和杂质分析
    尽管蛋白质生物制品总体来说是相对稳定的分子,但是在生产、制剂和储存过程中,还是会发生一些化学修饰和降解反应。许多蛋白质在纯化过程中可能发生水解断裂,而断裂形成的片段污染物可能会导致患者免疫反应的不良后果。由于存在化学修饰和降解反应,因此需要可靠而且灵敏的方法来评价研发和生产过程中蛋白质的纯度和结构完整性。 完整蛋白质、完整亚基或结构域的精确质量测定对于蛋白质序列组成的快速确认和翻译后修饰、降解和样品处理引起的分子变异的鉴定非常有帮助。电泳、色谱和质谱 (MS) 技术是完整蛋白质及其降解物分子量测定的最常用技术。其中一种最常用的分析是体积排阻色谱 (SEC),它用于测定蛋白质是否为单体结构,并且在生产和制剂过程中是否始终保持这一结构。
  • 定量蛋白质组学质谱采集技术进展
    质谱是定量蛋白组学的主要工具。 近年来随着定量蛋白质组学研究的深入,传统质谱定量技术面临着复杂基质干扰、分析通量限制等诸多问题。 而最近一系列质谱新技术的发展,包括同步母离子选择(SPS)、质量亏损标记、平行反应监测(PRM)、多重累积(MSX)和多种全新数据非依赖性采集(DIA)等,为解决目前蛋白质组学在相对定量和绝对定量分析方面的局限提供了有效途径。 本文对定量蛋白质组学目前遇到的瓶颈问题进行了分析,总结了质谱定量采集技术的最新进展,并评述了这些新技术的特点以及在定量蛋白质组学应用中的优势。

蛋白质组修饰分析相关的资料

蛋白质组修饰分析相关的试剂

蛋白质组修饰分析相关的论坛

  • 蛋白质组,蛋白质组学及研究技术路线

    基因组(genome)包含的遗传信息经转录产生mRNA,一个细胞在特定生理或病理状态下表达的所有种类的mRNA称为转录子组(transcriptome)。很显然,不同细胞在不同生理或病理状态下转录子组包含的mRNA的种类不尽相同。mRNA经翻译产生蛋白质,一个细胞在特定生理或病理状态下表达的所有种类的蛋白质称为蛋白质组(proteome)。同理,不同细胞在不同生理或病理状态下所表达的蛋白质的种类也不尽相同。蛋白质是基因功能的实施者,因此对蛋白质结构,定位和蛋白质-蛋白质相互作用的研究将为阐明生命现象的本质提供直接的基础。生命科学是实验科学,因此生命科学的发展极大地依赖于实验技术的发展。以DNA序列分析技术为核心的基因组研究技术推动了基因组研究的日新月异,而以基因芯片技术为代表的基因表达研究技术为科学家了解基因表达规律立下汗马功劳。在蛋白质组研究中,二维电泳和质谱技术的黄金组合又为科学家掌握蛋白质表达规律再铸辉煌。蛋白质组学(proteomics)就是指研究蛋白质组的技术及这些研究得到的结果。蛋白质组学的研究试图比较细胞在不同生理或病理条件下蛋白质表达的异同,对相关蛋白质进行分类和鉴定。更重要的是蛋白质组学的研究要分析蛋白质间相互作用和蛋白质的功能。蛋白质组学的研究内容包括:1.蛋白质鉴定:可以利用一维电泳和二维电泳并结合Western等技术,利用蛋白质芯片和抗体芯片及免疫共沉淀等技术对蛋白质进行鉴定研究。2.翻译后修饰:很多mRNA表达产生的蛋白质要经历翻译后修饰如磷酸化,糖基化,酶原激活等。翻译后修饰是蛋白质调节功能的重要方式,因此对蛋白质翻译后修饰的研究对阐明蛋白质的功能具有重要作用。3.蛋白质功能确定:如分析酶活性和确定酶底物,细胞因子的生物分析/配基-受体结合分析。可以利用基因敲除和反义技术分析基因表达产物-蛋白质的功能。另外对蛋白质表达出来后在细胞内的定位研究也在一定程度上有助于蛋白质功能的了解。Clontech的荧光蛋白表达系统就是研究蛋白质在细胞内定位的一个很好的工具。4.对人类而言,蛋白质组学的研究最终要服务于人类的健康,主要指促进分子医学的发展。如寻找药物的靶分子。很多药物本身就是蛋白质,而很多药物的靶分子也是蛋白质。药物也可以干预蛋白质-蛋白质相互作用。在基础医学和疾病机理研究中,了解人不同发育、生长期和不同生理、病理条件下及不同细胞类型的基因表达的特点具有特别重要的意义。这些研究可能找到直接与特定生理或病理状态相关的分子,进一步为设计作用于特定靶分子的药物奠定基础。不同发育、生长期和不同生理、病理条件下不同的细胞类型的基因表达是不一致的,因此对蛋白质表达的研究应该精确到细胞甚至亚细胞水平。可以利用免疫组织化学技术达到这个目的,但该技术的致命缺点是通量低。LCM技术可以精确地从组织切片中取出研究者感兴趣的细胞类型,因此LCM技术实际上是一种原位技术。取出的细胞用于蛋白质样品的制备,结合抗体芯片或二维电泳-质谱的技术路线,可以对蛋白质的表达进行原位的高通量的研究。很多研究采用匀浆组织制备蛋白质样品的技术路线,其研究结论值得怀疑,因为组织匀浆后不同细胞类型的蛋白质混杂在一起,最后得到的研究数据根本无法解释蛋白质在每类细胞中的表达情况。虽然培养细胞可以得到单一类型细胞,但体外培养的细胞很难模拟体内细胞的环境,因此这样研究得出的结论也很难用于解释在体实际情况。因此在研究中首先应该将不同细胞类型分离,分离出来的不同类型细胞可以用于基因表达研究,包括mRNA和蛋白质的表达。LCM技术获得的细胞可以用于蛋白质样品的制备。可以根据需要制备总蛋白,或膜蛋白,或核蛋白等,也可以富集糖蛋白,或通过去除白蛋白来减少蛋白质类型的复杂程度。相关试剂盒均有厂商提供。蛋白质样品中的不同类型的蛋白质可以通过二维电泳进行分离。二维电泳可以将不同种类的蛋白质按照等电点和分子量差异进行高分辨率的分离。成功的二维电泳可以将2000到3000种蛋白质进行分离。电泳后对胶进行高灵敏度的染色如银染和荧光染色。如果是比较两种样品之间蛋白质表达的异同,可以在同样条件下分别制备二者的蛋白质样品,然后在同样条件下进行二维电泳,染色后比较两块胶。也可以将二者的蛋白质样品分别用不同的荧光染料标记,然后两种蛋白质样品在一块胶上进行二维电泳的分离,最后通过荧光扫描技术分析结果。胶染色后可以利用凝胶图象分析系统成像,然后通过分析软件对蛋白质点进行定量分析,并且对感兴趣的蛋白质点进行定位。通过专门的蛋白质点切割系统,可以将蛋白质点所在的胶区域进行精确切割。接着对胶中蛋白质进行酶切消化,酶切后的消化物经脱盐/浓缩处理后就可以通过点样系统将蛋白质点样到特定的材料的表面(MALDI-TOF)。最后这些蛋白质就可以在质谱系统中进行分析,从而得到蛋白质的定性数据;这些数据可以用于构建数据库或和已有的数据库进行比较分析。实际上像人类的血浆,尿液,脑脊液,乳腺,心脏,膀胱癌和磷状细胞癌及多种病原微生物的蛋白质样品的二维电泳数据库已经建立起来,研究者可以登录www.expasy.ch/www/tools.html等网站进行查询,并和自己的同类研究进行对比分析。Genomic Solution可以为研究者提供除质谱外的所有蛋白质组学研究工具,包括二维电泳系统,成像系统及分析软件,胶切割系统,蛋白质消化浓缩工作站,点样工作站等;同时还可以提供相关试剂和消耗品。LCM-二维电泳-质谱的技术路线是典型的一条蛋白质组学研究的技术路线,除此以外,LCM-抗体芯片也是一条重要的蛋白质组学研究的技术路线。即通过LCM技术获得感兴趣的细胞类型,制备细胞蛋白质样品,蛋白质经荧光染料标记后和抗体芯片杂交,从而可以比较两种样品蛋白质表达的异同。Clontech最近开发了一张抗体芯片,可以对378种膜蛋白和胞浆蛋白进行分析。该芯片同时配合了抗体芯片的全部操作过程的重要试剂,包括蛋白质制备试剂,蛋白质的荧光染料标记试剂,标记体系的纯化试剂,杂交试剂等。对于蛋白质相互作用的研究,酵母双杂交和噬菌体展示技术无疑是很好的研究方法。Clontech开发的酵母双杂交系统和NEB公司开发的噬菌体展示技术可供研究者选用。关于蛋白质组的研究,也可以将蛋白质组的部分或全部种类的蛋白质制作成蛋白质芯片,这样的蛋白质芯片可以用于蛋白质相互作用研究,蛋白表达研究和小分子蛋白结合研究。Science,Vol.293,Issue 5537,2101-2105,September 14,2001发表了一篇关于酵母蛋白质组芯片的论文。该文主要研究内容为:将酵母的5800个ORF表达成蛋白质并进行纯化点样制作芯片,然后用该芯片筛选钙调素和磷脂分子的相互作用分子。最后有必要指出的是,传统的蛋白质研究注重研究单一蛋白质,而蛋白质组学注重研究参与特定生理或病理状态的所有的蛋白质种类及其与周围环境(分子)的关系。因此蛋白质组学的研究通常是高通量的。适应这个要求,蛋白质组学相关研究工具通常都是高度自动化的系统,通量高而速度快,配合相应分析软件和数据库,研究者可以在最短的时间内处理最多的数据。

  • 蛋白修饰与蛋白质鉴定

    现在,在实验研究基础上,借助多方面的生物信息学方法,可以快速高通量的预测和进行蛋白质鉴定蛋白翻译后修饰。分泌蛋白和膜相关蛋白附着于细胞膜上的或将被排泄出去的蛋白质是由细胞内质网膜上附着的核糖体合成。附着有核糖体的内质网被称为糙面型内质网。这类蛋白质都含有一个N-末端(或氨基端),我们称之为信号序列或信号肽。这个信号肽通常情况下含有13-36个主要疏水性残基,同时它含有多蛋白复合物,我们称之为信号识别粒子(SRP)。这种信号肽在通过内质网膜之后会被去除。信号肽的去除过程是在信号肽酶催化作用下完成的。含有一个信号肽的蛋白质被称为前蛋白,有别于原蛋白。然而,某些用于分泌的蛋白在分泌之后会进一步被蛋白水解,因此包含有原蛋白的序列。这类蛋白质被称为前原蛋白。蛋白水解性裂解许多蛋白质在翻译之后会经历水解性裂解过程。其中最为简单的形式是去除起始蛋氨酸。许多蛋白质合成了不活跃的前体细胞,这些细胞只能在合适的生理条件下通过限制性蛋白水解过程产生活性。在凝血过程中使用到的胰腺酶和酶类就是后者的例证。多肽去除时产生活性的不活跃的前体蛋白,我们称之为原蛋白。前原蛋白的翻译后加工过程的一个复杂的例子就是脑垂体分泌合成的前阿黑皮素原的裂解过程(有关前阿黑皮素原的讨论,见肽类激素页)。这类前原蛋白经过复杂的裂解,根据合成的前阿黑皮素原的细胞定位而不同,其路径也有所不同。另一个前原蛋白的例子就是胰岛素。由于胰岛素是由胰腺分泌的,因此它有一个前肽。随着含24个氨基酸的信号肽的裂解,这类蛋白也折叠成了胰岛素原。胰岛素原进一步分裂,产生活跃的胰岛素,它包含两个肽链,由二硫键进行连接。但仍有其他的蛋白(酶类)被合成为非活跃的前体细胞,被称为酶原。酶原在蛋白水解性裂解时会产生活性,在凝血串联蛋白质链的若干蛋白质中都会发生这种现象。甲基化作用蛋白翻译后的甲基化过程主要发生在氮原子和氧原子上。活性甲基供体是活性腺苷甲硫胺酸(SAM)。最常见的甲基化作用发生在赖氨酸残基的ε-amine上。脱氧核糖核酸组蛋白中赖氨酸残基的甲基化作用可调节核染色质结构,因此可调节其转录活性。赖氨酸原本被认为是一种常设共价标记,可提供长期信号,甚至包括转录记忆时的组蛋白依赖机制。然而,最近的临床研究表明赖氨酸甲基化作用与其他共价修饰体相似,作用时间短,并能通过反脱甲基化活动进行动态调节。最近的组学研究发现表明,赖氨酸残基的甲基化作用不仅发生在核染色质层面,而且还通过修订转录因子影响基因表达。组氨酸的咪唑环,精氨酸的胍基部分以及谷氨酸盐和天冬氨酸盐的R组酰胺(R-group amides )上,都发现了额外的氮甲基化作用。谷氨酸盐和天冬氨酸盐的R组羧化物也会发生氧甲基化作用并形成甲基酯。蛋白可能在半胱氨酸的R[

  • 【金秋计划】常见的蛋白质修饰总结

    [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333](1)磷酸化修饰。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]蛋白质磷酸化是由蛋白激酶催化的磷酸基转移反应,是最常见、最重要的蛋白质修饰方式之一。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]蛋白质磷酸化修饰的具体生物效应包括:改变被修饰蛋白质的活性、改变蛋白的亚细胞内定位、改变蛋白与其他蛋白或其他生物分子的相互作用。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]①催化蛋白质磷酸化的蛋白激酶,根据底物的磷酸化位点可分为三大类,蛋白质丝氨酸/苏氨酸激酶、蛋白质酪氨酸激酶、双专一性蛋白激酶。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]②催化蛋白质去磷酸化的蛋白磷酸酶,根据磷酸化的氨基酸残基不同可分为两类,蛋白质丝氨酸/苏氨酸磷酸酶和蛋白质酪氨酸磷酸酶。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333](2)甲基化修饰。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]蛋白质甲基化是指在甲基转移酶催化下,甲基基团由S-腺苷甲硫氨酸转移至相应蛋白质的过程。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]蛋白质甲基化修饰可产生多种不同的生物效应,包括影响蛋白质间的相互作用、蛋白质和RNA间的相互作用、蛋白质的定位、RNA加工、细胞信号转导等。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]催化蛋白质甲基化的酶:甲基转移酶。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333](3)乙酰化修饰。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]蛋白质乙酰化是指在乙酰基转移酶的催化下,在蛋白质特定的位置添加乙酰基的过程。蛋白质乙酰化修饰所产生的生物效应,主要包括促进基因转录、诱导细胞自噬、调节代谢酶的活性及代谢通路。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]催化蛋白质乙酰化的酶:组蛋白乙酰基转移酶。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333](4)类泛素化修饰。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]小泛素相关修饰物(SUMO)是类泛素蛋白家族的重要成员之一,可与多种蛋白结合发挥相应的功能。SUMO化修饰可参与转录调节、核转运、维持基因组完整性及信号转导等多种细胞内活动。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]①SUMO的分类:SUMO蛋白分布广泛,人类基因组编码了4种不同SUMO蛋白,分别为:SUMO1、SUMO2、SUMO3和SUMO4。其中,SUMO1-3在各种组织中均有表达,而SUMO4则主要在肾脏、淋巴结和脾脏中表达。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]②催化蛋白质SUMO化修饰的酶。SUMO化修饰需要一系列酶的参与,包括E1活化酶,E2结合酶以及E3连接酶。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333](5)巴豆酰化修饰。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]作为一种新型组蛋白翻译后修饰方式,蛋白质巴豆酰化是一种进化上高度保守,且在细胞生物学功能上完全不同于组蛋白赖氨酸乙酰化的蛋白质修饰方式。[/color][/size][/font] [font=system-ui, -apple-system, &][size=16px][color=#333333]蛋白质巴豆酰化是指在巴豆酰基转移酶的催化下,在蛋白质特定的位置添加巴豆酰基的过程。组蛋白赖氨酸巴豆酰化修饰与基因的活化密切相关。此外,催化蛋白质巴豆酰化的酶是巴豆酰基转移酶。[/color][/size][/font]

蛋白质组修饰分析相关的耗材

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