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叶绿素荧光分析仪

仪器信息网叶绿素荧光分析仪专题为您提供2024年最新叶绿素荧光分析仪价格报价、厂家品牌的相关信息， 包括叶绿素荧光分析仪参数、型号等，不管是国产，还是进口品牌的叶绿素荧光分析仪您都可以在这里找到。 除此之外，仪器信息网还免费为您整合叶绿素荧光分析仪相关的耗材配件、试剂标物，还有叶绿素荧光分析仪相关的最新资讯、资料，以及叶绿素荧光分析仪相关的解决方案。

叶绿素荧光分析仪相关的论坛

  • 海水叶绿素现场分析仪定标问题

    我自己开发了一款海水水下叶绿素分析仪器，不知道如何对仪器进行定标，配置叶绿素标准曲线是采用丙酮为基体的叶绿素溶液呢还是培养活体藻类进行稀释测定？如果采用丙酮基体的溶液定标是不是会与实际值差距较大？

  • 叶绿素a的测定

    叶绿素a存在于一切独立营养植物中，是一种能将光合作用的光能传递给化学反应系统的惟一色素。因此，叶绿素a就成为水中有机物的源泉。通过测定叶绿素a，可以了解海洋、湖泊和河流中植物性浮游生物的现存量和基础生产量，可掌握水体中藻类现存量。因此，叶绿素a指标是评价水体富营养化程度最直接有效的方法，也是目前科学地预测其发展趋势的有效方法。根据实测资料分析，当叶绿素a含量从常量上升至10 mg／m3以上，并有迅速增加的趋势，就可预测水体即将发生富营养化。(一)叶绿素a的分光光度法测定在一定量的水样中添加1％碳酸镁悬浮液1 mL，充分搅匀，用玻璃纤维滤纸或微孔滤膜过滤。若不能立即提取，将带样品的滤膜放人冰箱保存(1～2 d)。将载有藻类的滤膜放人研钵中，加入90％丙酮6～7 mL，研磨至呈糊状，再用90％丙酮溶液洗入具塞刻度离心管中，密封，放置暗处静置萃取6～20 h。以3500～4000r／min转速离心lO～15 min，取上清液转入1 cm比色皿中，以90％丙酮溶液为参此，于波长665 nm和750 nm处测吸光度，然后加入几滴l mol／L盐酸酸化，于波长665 nm和750 nm处再测吸光值。叶绿素a浓度计算公式为：Chla=27．3×665一E750)一(A665一A750)]×V丙酮／V水样式中：Chla——叶绿素a含量(μg／L)；E665,E750——丙酮萃取液分别于波长665 nm和750 nm的吸光度；A665,A750——丙酮萃取液酸化后分别于波K 665 nm和750 nm的吸光度；V丙酮——丙酮萃取液的体积，mL；V水样——水样过滤的体积，L。(二)叶绿素a的荧光法测定适合于藻类较少的贫营养湖泊或外海洋中的叶绿素a的测定。基本原理是，当丙酮提取液经紫外线照射时，叶绿素a显现其固有的红色荧光特征，其浓度与荧光强度存在一定的规律性，因此可定量测定叶绿素a的含量。由于所用的光源强度高，故荧光法的灵敏度比分光光度法约高两个数量级。[/td][/tr][/table]

  • 叶绿素荧光原理及应用

    如题[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=24112]叶绿素荧光原理[/url]

  • 叶绿素荧光显微成像技术在光合作用研究中的应用

    [align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

  • 叶绿素a的检测问题

    各位大神，地表水同一个水样中叶绿素a含量，采用国标分析方法（分光光度法）的实验室检测结果，和市售自动检测仪器（传感器荧光法）的检测结果差好几个数量级，请问采用什么方法能够让国标方法的检测结果作为实验室真值，和自动检测仪器检测结果比对得上，或者说采用某种函数或算法，让两种方法的结果能够进行线性拟合，用来检验自动检测仪器的准确性？

  • 【求助】用分子荧光法怎么测叶绿素含量，有标准方法吗

    原先用普通的可见分光光度法测了一系列的叶绿素含量。可老板不满意，叫用F-4500荧光仪测量。新手的我查了半天也没找到相关的标准方法，他又急着要，哭啊！不知道哪位大侠有这方面的资料，可否指点一下小弟。弟弟先在这儿谢谢您了！

  • 【求助】如何清洗测过叶绿素a的比色皿

    不好意思了，没找到分子荧光区只好来这里求问了，用分子荧光光度计测叶绿素a，那个比色皿用蒸馏水洗洗不干净，壁面有白白的一层附在上面，想请教下这种比色皿测完样品后怎么清洗？如果需要浸泡什么的话，是用？%的盐酸、？%的酒精还是什么？不胜感激，谢谢

  • 叶绿素检测法

    如何在水中提取叶绿素？利用某个波长检测叶绿素产生荧光，如何在水样中萃取叶绿素。

  • 叶绿素测定仪如何检测植物氮含量

    叶绿素测定仪如何检测植物氮含量

    [size=16px]　　叶绿素测定仪如何检测植物氮含量　　叶绿素测定仪通常用于测定叶片中的叶绿素含量，而不是植物的氮含量。要测定植物的氮含量，通常需要使用其他类型的仪器和方法，如Kjeldahl法、Dumas法或氮元素分析仪。　　以下是如何使用Kjeldahl法来测定植物的氮含量的基本步骤：　　样品准备：　　收集你要测定的植物样品，并将其剪碎成小块，以便更容易处理。　　将样品干燥，以去除多余的水分。　　氮的提取：　　将干燥的植物样品加入Kjeldahl消解管中。　　向样品中加入硫酸(H2SO4)和催化剂，通常是硒或汞的化合物。这些化学品将有机氮转化为无机氮。　　使用Kjeldahl消解仪将样品消解，通常是在高温下进行。　　蒸发和冷却：　　将消解后的样品加热以蒸发水分，直到样品中只剩下无机氮。　　将消解管中的液体冷却，使其凝结成液体。　　中和和滴定：　　向冷却的液体中加入氢氧化钠(NaOH)以中和其中的酸性。　　使用酸碱指示剂，如酚酞或溴甲酚绿，来监测酸性的中和点。　　然后，使用已知浓度的硫酸(H2SO4)溶液进行滴定，直到液体再次变酸，指示剂的颜色发生改变。滴定的体积可以用于计算氮的含量。　　计算氮含量：　　使用已知的滴定体积和硫酸浓度，计算出样品中的氮含量，通常以百分比或毫克/克的形式表示。　　需要注意的是，Kjeldahl法是一种相对复杂的化学分析方法，需要严格的实验室条件和设备，以确保准确性和安全性。测定氮含量的其他方法可能也可行，具体选择取决于你的实验室资源和样品类型。如果你没有化学分析的经验，云唐建议最好寻求专业的实验室支持或咨询专业化学家。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/09/202309181126073212_7562_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size]

  • 叶绿素测定仪优缺点以及考虑因素有哪些

    [size=16px]　　叶绿素测定仪是一种用于测量植物叶片中叶绿素含量的设备。它在植物生理学、生态学和农业研究中非常有用。然而，是否认为叶绿素测定仪好用取决于具体的使用情境和需求。　　以下是一些使用叶绿素测定仪的优点和考虑因素：　　优点：　　快速准确： 叶绿素测定仪能够快速测量叶片中的叶绿素含量，提供准确的结果，节省时间和人力成本。　　非破坏性： 使用叶绿素测定仪通常不需要摘取植物叶片，因此不会对植物造成破坏，可以进行长期监测。　　数据量大： 叶绿素测定仪能够高通量地收集数据，适用于大规模实验和研究。　　定量分析： 通过叶绿素测定仪，您可以获取叶绿素含量的定量数据，有助于更深入地理解植物生长和环境因素之间的关系。　　考虑因素：　　成本： 叶绿素测定仪可能需要较高的投资成本，包括设备购买和维护费用。　　操作复杂性： 操作叶绿素测定仪可能需要一定的技术培训，特别是对于没有相关经验的人员。　　适用范围： 叶绿素测定仪主要用于叶绿素含量的测量，如果您需要其他植物参数的数据，可能需要其他类型的设备或方法。　　样本处理： 样本的准备和处理可能会影响测量结果的准确性，需要注意标准化的操作步骤。　　综合考虑以上因素，如果您在植物研究、农业实验或环境监测等领域需要准确测量叶绿素含量，叶绿素测定仪可能会非常有用。然而，在购买之前，云唐建议您仔细评估您的研究需求、预算以及操作和维护的可行性。[/size]

  • 叶绿素测定仪怎么测量植物的叶绿素相对含量

    [size=16px]　　叶绿素测定仪是一种用于测量植物叶片中叶绿素含量的设备。叶绿素是植物中进行光合作用的关键色素，它们吸收光能并将其转化为化学能以支持植物的生长和发展。以下是一般情况下使用叶绿素测定仪测量植物叶绿素相对含量的步骤：　　样本准备： 从要测量的植物中选取代表性的叶片样本。这些叶片应该是健康的、没有损伤的，并且尽可能避免太老或太嫩的叶片。　　叶片处理： 如果需要，将叶片处理成较小的块状或碎片，以确保测量时样本的均匀性。同时，避免过度损伤叶片，因为这可能会影响叶绿素的测量结果。　　提取叶绿素： 使用适当的提取液(比如乙醇、乙醚等)将叶片中的叶绿素提取出来。提取的过程通常需要在低温下进行，以防止叶绿素的降解。　　测量光吸收： 将提取液中的叶绿素溶液置于叶绿素测定仪中。这种仪器通过照射样本并测量样本对不同波长光的吸收来确定叶绿素的含量。最常见的方法是使用分光光度计，它可以测量不同波长下样本吸收的光强度。　　建立标准曲线： 使用已知浓度的叶绿素标准溶液，进行一系列测量以建立标准曲线。标准曲线可以用来将样本吸收的光强度值转换为叶绿素浓度值。　　测量样本： 使用同样的方法测量你的样本，获取其吸收的光强度值。　　计算叶绿素含量： 根据标准曲线，将样本的光吸收值转化为叶绿素浓度。如果你感兴趣的是叶绿素的相对含量，可以将不同样本的叶绿素浓度与标准样本进行比较。　　请注意，使用叶绿素测定仪需要一定的实验操作技能和基本的化学常识。在操作之前，云唐建议仔细阅读仪器的操作手册，并根据实际情况调整实验步骤。另外，确保在实验过程中遵循安全操作规范，使用适当的防护措施。[/size]

  • 叶绿素a的检出限

    实验室检测水质叶绿素a的分析方法SL 88-1994，分光光度法。标准里没有说明叶绿素a的检出限，敢问此分析方法，叶绿素a的检出限。http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09511.gif

  • 叶绿素测定仪怎么测量植物的氮含量有多少

    [size=16px]　　叶绿素测定仪通常用于测量植物叶片中的叶绿素含量，而不是直接测量氮含量。然而，叶绿素含量与植物的氮素含量之间存在一定的关联，因为氮是叶绿素分子中的一个重要组成部分。叶绿素测定可以作为一种间接方法来估计植物的氮含量。　　要测量植物的氮含量，通常可以使用以下方法之一：　　Kjeldahl法：这是一种传统的分析方法，可以测量有机物中的氮含量。样品首先被消化，然后氮被转化为氨，并通过滴定酸来测量氨的含量，从而计算样品中的氮含量。　　Dumas法：这是一种更现代的方法，类似于Kjeldahl法，但使用燃烧而不是消化来将样品中的有机氮转化为氨。然后通过化学反应测量氨的含量，从而计算氮含量。　　[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱[/color][/url]法：这是一种通过[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱仪[/color][/url]来分析样品中的氮化合物的方法。样品在高温条件下分解产生氮气，然后氮气被送入[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱仪[/color][/url]进行分析。　　光谱法：虽然叶绿素测定仪主要用于叶绿素含量测量，但某些光谱数据也可以用于估计氮含量。光谱数据中的某些特征可以与氮含量之间存在的关联进行校准，从而进行估算。　　请注意，这些方法可能需要特定的实验室设备和技术，并且样品的处理和分析可能会有一定的复杂性。云唐建议选择合适的方法取决于你的实验目的、设备可用性以及实验室的专业知识。如果你不熟悉这些分析方法，最好是在有经验的人的指导下进行实验。[/size]

  • 【原创大赛】光合活性分析仪在环境监测中的应用

    【原创大赛】光合活性分析仪在环境监测中的应用

    光合活性分析仪在环境监测中的应用前言植物作为光合生物，无论是陆生的花草树木还是水生的挺水植物（如荷花、香蒲）、浮水植物（如绿萍、满江红）、浮游植物（如微囊藻、甲藻），都是靠光合作用提供自身生长所需的能量的。换句话说，光合作用是植物生长最基本的生命特征指标。目前分析光合作用的仪器主要有两大类，一类是分析光合放氧或CO2感知的，另一类是利用叶绿素荧光分析植物光合活性。前者常用于农业上农作物或大型植物的分析，在水中由于O2和CO2除藻类外还存在很多影响因子（如温度变化，风力元素等等），其数据应用时偏差非常大。而光合活性由于是直接测试叶绿素荧光，所以有效避免了这个缺点。由于植物在不同环境状态下的光量子产率（光合活性）不同，这使得光合活性成为研究植物生长条件和影响因子的有力工具。一、光合活性分析仪原理http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210181638_397663_1653274_3.jpg☆这个是光合作用的原理图（光合活性主要是分析光反应阶段（PSII）的情况） 光合活性一般采用叶绿素荧光的变化来反映。打开饱和脉冲时，本来处于开放态的电子门将该用于光合作用的能量转化为了叶绿素荧光和热，F（荧光值）达到最大值。 经过充分暗适应后，所有电子门均处于开放态，打开测量光得到Fo，此时给出一个饱和脉冲，所有的电子门就都将该用于光合作用的能量转化为了荧光和热，此时得到的叶绿素荧光为Fm。根据Fm和Fo可以计算出PS II的最大量子产量Fv/Fm=(Fm-Fo)/Fm，它反映了植物的潜在最大光合能力。 在光照下光合作用进行时，只有部分电子门处于开放态。如果给出一个饱和脉冲，本来处于开放态的电子门将该用于光合作用的能量转化为了叶绿素荧光和热，此时得到的叶绿素荧光为Fm’。根据Fm’和F可以求出在当前的光照状态下PS II的实际量子产量Yield=ΦPSII=ΔF/Fm’=(Fm’-F)/Fm’，它反映了植物目前的实际光合效率。二、市售光合活性仪类型 目前，市售的可以测定光合活性的仪器大致可以分为探头型、实验室型、便携型三类。已有产品以WALZ公司的PAM系列最为成熟，当然强大如中国的研发团队也有自己的“自主研发”产品（如中科院最新研制的藻类光合作用活性原位测量仪）。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210181638_397664_1653274_3.jpg☆PAM荧光成像仪（可以做每个点的光合作用和荧光成像，理论上用这个就能分辨藻的死活）http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/10/201210181639_397665_1653274_3.jpg☆这款是朗石的叶绿素荧光探头，一个原理的（能实时读水下的叶绿素荧光信息，了解不同 水层的情况，不过由于探头大，很难放进小的容器里，也就不能测多个地点的样品了，除非你跑到当地去）[

  • 【原创大赛】AOA在线藻类分析仪比对结果和误差来源分析

    【原创大赛】AOA在线藻类分析仪比对结果和误差来源分析

    地表水体的富营养化引起藻类及其它浮游生物迅速繁殖，导致溶解氧下降，水质恶化，鱼类和其它生物大量死亡，甚至引发供水危机。色素是藻类光合作用时吸收、转化和传递光能的主要物质，叶绿素以多种形式存在于藻类植物中，大约占有机物干重的1-2%，是估算其生物量的重要指标，快速准确测定水体中叶绿素a浓度对于评价水体营养状态和水质管理具有重要意义。 叶绿素测定方法有很多，大致分为萃取测定、荧光活体测定及水华遥感监测。萃取分析利用有机溶剂萃取植物细胞叶绿素进行光谱光度测定，根据分析技术的不同分为分光光度法、荧光法和高效液相色谱法。萃取分析只要操作准确，提取完全，可以得到准确和重复性好的结果，但是过程繁琐，不方便用于连续监测。 AOA在线藻类分析仪利用叶绿素荧光特性进行分类定量分析，活体测量，无需样品预处理，仪器操作简单，可以快速地获得大量叶绿素数据，广泛运用在在线监测。为保证在线分析仪的有效运行，需要用标准样品来校准、性能考核和日常数据质量控制，但国内还未开发叶绿素的标准样品和质控样品，已知叶绿素含量（用萃取方法测定）的浮游植物悬浮液被认为是最好的标样替代品。当水体发生水华，生物多样性下降，往往是一种藻类成为绝对优势，可作为纯种藻类标准样品，本文将几个代表性的比对实验整理分析，探讨误差原因。[b]1.比对方法[/b]1.1清洗AOA在线藻类分析仪蠕动泵、测量室及其底盖，检查纯水透光率值。1.2水样不经任何处理，测量叶绿素浓度值。1.3剩余水样酌量加入1%碳酸镁悬浊液(按1升水量加入1ml)，防止酸化。1.4带回实验室，尽快分析，实验室分析方法依据《无水乙醇热浴超声法测定淡水中的叶绿素a》[sup][/sup]。[b]2实验2.1微囊藻水样2.1.1样品来源[/b] 2014年8-10月某水库出现铜绿微囊藻水华，采集水华“浓密”处水样作为标准储备液，分别取0、2、5、10、15、20、25、50、100ml，用纯水稀释成500ml，检查两种方法叶绿素a和藻密度线性。取水库水华严重区、进水口、湖心和出水口四个水样，做实际水样比对分析。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011537059882_3331_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img][b]2.1.2实验结果[img=,690,361]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011538312332_220_3247383_3.png!w690x361.jpg[/img][/b]表1微囊藻稀释水样比对结果[b][img=,622,352]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011539397062_938_3247383_3.png!w622x352.jpg[/img][/b]图2微囊藻水样线性比对[img=,690,215]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011611492722_7678_3247383_3.png!w690x215.jpg[/img]表2含微囊藻实际水样比对表1、表2和图2表明，两种测量方法的结果与藻类数量之间存在非常显著的相关性，但AOA在线分析仪测量结果低于分光光度法，浓度越高，差异性越大。[b]2.1.3结果分析[/b]2.1.3.1分光光度法误差分析 萃取后叶绿素，对光照和氧气很敏感，极易造成不可逆的分解，因此，节时高效是分光光度法的质量保证，而温度是质控措施的关键。在超声波萃取过程，提高温度加快叶绿素溶出速度，同时，叶绿素降解的速度也是加快的，最佳超声波萃取条件：60℃萃取25分钟，2小时内完成测定。另外，实验室遮光也是必要。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011541253150_3659_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img]2.1.3.2AOA荧光法误差来源 AOA在线藻类分析仪原理：叶绿素具有荧光特性，一定的激励光，任何一种藻产生的荧光强度与其所含叶绿素a成正比，几种不同藻混合体产生的荧光强度等于各自荧光的总和。采用325纳米、450纳米、525纳米、570纳米、590纳米和610纳米作为激励光,其中325纳米是用来补偿黄色物质（有机物），测定685nm的光强，计算总叶绿素a值和不同藻的浓度。（1）水样原始性状发生变化暗室环境下，激励光照到藻上，能量分成三部分：光合作用、叶绿素自发荧光和热能辐射。如果藻的活性强，光合作用消耗的能量就越多，产生荧光的强度越小，反之，如果藻的活性弱，荧光强度就强。荧光能量和光合作用的能量是相互竞争的，叶绿素荧光常常被认为光合作用无效指标的依据。比对实验的样品，从采样经实验室样品处理，到水质自动监测站仪器分析，剩余样品送回实验室做分光光度法比对，再紧凑也需要3-4天完成，运输、保存过程，叶绿素在活体内也和其它物质处于不断更新变化中，可能衰老、也可能分解破坏，比对实验要求的同步水平也不可能实现，这是比对误差不可忽视的部分。（2）微囊藻特殊的细胞结构使水样分布不均匀微囊藻群体有胶鞘和伪空泡，可以自由漂浮在水中，水样在实验室静置一天后，出现明显的分层，测量过程难以保证均匀分布。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011542423667_4598_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img]（3）工作温度与校准温度不一致参考各类荧光法仪器说明书，浮游生物悬浊液的荧光反应受温度的影响很大，有些仪器的温度补偿2%⁄ ℃,但这种经验补偿不能保证准确的现场测量，因为每一种浮游植物的荧光强度随温度变化程度不同。这台AOA藻类分析仪安装测试在冬季，这次比对实验在9月份进行，温差亦有影响。（4）浊度的影响 实验室分光光度法经过0.8um滤纸过滤，比色扣除750nm吸光度值，只要操作正确，浊度的影响很小。水中的悬浮颗粒物对激励光和产生的荧光有反射、散射和阻挡的作用，造成激励光和荧光产量的下降，YSI3026传感器检测结果：1NTU的 浊度影响大约是0.03ug/L叶绿素。 除色素以外的细胞结构（细胞壁、胶被、储藏物质）以溶解有机碳为主要成分，对紫外光和蓝光具有强烈的吸收，也可视为影响测定的悬浮物，AOA在线藻类分析仪称之为黄色物质，用325纳米补偿。铜绿微囊藻细胞壁分为两层，内层是纤维素，外有胶鞘，有相当的厚度，互相溶合形成多细胞群体。图5显示黄色物质与叶绿素含量相关，AOA的测量结果反映了铜绿微囊藻细胞群体特征。分光光度法和AOA扣除浊度方法各有不同，是否有可比性，有待进一步了解。[img=,586,305]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011543564741_5446_3247383_3.png!w586x305.jpg[/img]图5（5）水样镜检微囊藻绝对优势，视野内不见其它藻类，AOA分析结果有少量绿藻、硅藻，其它的比对实验也出现藻类识别错误。[b]2.2薄甲藻水样[img=,690,920]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011545089042_4958_3247383_3.jpg!w690x920.jpg[/img][/b]图6[b]2.2.1实验结果[/b][img=,690,289]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011547036798_1735_3247383_3.png!w690x289.jpg[/img]表3薄甲藻水样比对结果2.2.2结果分析2.2.2.1镜检视野内为单一薄甲藻，与AOA定性结果相差较大。从图7可知，绿藻和硅甲藻的光谱图很相似，从光谱图识别绿藻和硅甲藻是困难的，AOA的藻类分类和藻密度估量值仅能作为参考，要将监测数据做水体生态评估的依据，必须结合实验室镜检和萃取分析方法。[img=,690,496]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011547417547_4700_3247383_3.png!w690x496.jpg[/img]图72.2.2.2薄甲藻AOA测量值约为光度法的1/3，薄甲藻有鞭毛，可以自由游动，离开有利的生活条件则很快失去活性，沉入水底不再活动，且细胞内容物溶出。不能保证水样原始性状，是叶绿素a比对测定误差的主要来源。[img=,690,690]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011548482013_3683_3247383_3.jpg!w690x690.jpg[/img][color=#423B3B]2.2.2[/color][color=#423B3B].3[/color][color=#423B3B]薄甲藻细胞内容物溶出后，显微镜照片清楚看到细胞壁很薄，AOA测量结果印证黄色物质影响极小。[/color][b]2.3小球藻[img=,690,920]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011550015246_3694_3247383_3.jpg!w690x920.jpg[/img]图9 小球藻[/b]垃圾渗滤液水样，实验室放置几周，变绿，镜检结果：小球藻绝对优势，少量硅藻。[b]2.3.1实验结果[/b][img=,690,367]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011551332128_4472_3247383_3.png!w690x367.jpg[/img]表4小球藻水样比对[b]2.3.2结果分析[img=,537,303]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011552368052_2948_3247383_3.png!w537x303.jpg[/img][/b]图10小球藻水样线性分析2.3.2.1藻类分类与实验室镜检结果基本吻合；2.3.2.2低浓度出现少量蓝藻，因为仪器刚做完微囊藻样品，检测室可能有少量残留，比对实验之前彻底清洗检测室很有必要；2.3.2.3分光光度法相关系数小于AOA，并非方法不可行，而是叶绿素萃取太依赖分析人员的操作，稍有疏忽就会造成萃取损失，相比之下仪器要稳定可靠些。2.3.2.4小球藻叶绿素a测量结果AOA/分光光度法比值0.7-1.5，高于铜绿微囊藻和薄甲藻。两种方法测量结果比较接近的原因是因为小球藻不会运动，活体样品保持比较稳定的悬浮液状态，而AOA测量结果高于分光光度法的误差，一方面来自叶绿素和藻密度系数的确定，一方面来自萃取的损失。[img=,601,407]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011554177672_7731_3247383_3.png!w601x407.jpg[/img]图11AOA仪器校正界面 荧光测定仪校准即确定叶绿素和藻密度相关系数，可以给活体叶绿素传感器提供的最好标准物是浮游植物悬浮液，此悬浮液亦有部分用萃取方法测定叶绿素含量，并且应该从监测地点获得，这样的标准物质产生的荧光可以尽可能接近现场的生物体。荧光测定同时受浊度、温度、细胞活性、不同藻的种类、大小、形状、和叶绿素种类的影响，这些都大大限制活体测量的准确度。2.4不同水体样品分析[img=,690,267]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011555277271_2806_3247383_3.png!w690x267.jpg[/img]表5不同水体样品分析2.4.1与单一藻类样品结果一致，绿藻含量高的水样AOA测量值偏高，微囊藻水样上浮分层、甲藻和裸藻活性降低下沉造成水样不均匀分布，是比对结果偏低的一个因素。而在线监测时，水样中的藻类足够鲜活，吻合度会好些。2.4.2按照AOA提供的分类方法（图12），绿藻和蓝藻分类结果与镜检匹配，单一种类薄甲藻检测结果显示为绿藻、隐藻、蓝藻、极少量甲藻，镜检中数量可观的硅藻、裸藻在AOA测量结果中未见。[img=,600,350]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807011602453540_1118_3247383_3.jpg!w600x350.jpg[/img]图122.4.3水库水质良好，杂质少，其它水体有机杂质含量相对高，AOA黄色物质测量结果与水体洁净程度吻合。[b]小结[/b]：萃取分析耗时长，不方便用于连续监测，需要有经验、高效率的分析人员才能得到准确、重复性好的结果。活体荧光法简便易操作，但准确度受更多因素的限制。两种方法不可互相替代，而应该取长补短，互为参照。参考文献 王丽娟，章岳蓬，郭步平等. 无水乙醇热浴超声法测定淡水中的叶绿素a.当代环保，2010，2（4）：14-17.

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