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荧光成像平台

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荧光成像平台相关的仪器

  • 多光子显微镜采用在生物组织中穿透性强的近红外/红外激光去激发样品中的荧光发光基团,进行荧光成像。该技术光毒性低,成像深度高,因此适用于厚的活体组织(如脑片、完整器官)甚至活体生物标本的成像及功能研究。Bruker的双光子产品主要有专注于高品质活体成像的Investigators系列以及专注于进行活体功能性研究的Ultima系列,2018年Bruker推出重磅新品Ultima 2Pplus。该套设备在仪器性能、使用便利性以及仪器应用拓展性方面都展现出无与伦比的优势。(1)三种成像扫描模式:常规的检流振镜扫描(Galvo Scanning),龙卷风扫描(Spiral Scanning)和快速振镜扫描(Resonant Scanning);(2)成像视野方面(FOV,Field of View),采用大尺寸的光学镜组和6mm的扫描振镜,成像视野是常规产品的3~4倍;(3) 有多种旋转物镜可供选择(单轴手动,多轴手动旋转、多轴电动),进行离轴成像,可以从不同角度对实验样品进行成像;可升级移动显微镜平台,结合旋转物镜,无需样品移动,使其保持在自然生理状态下,即可找到所需的成像视野或进行多视野图像采集。(5)镜下空间极大。有利于多种应用拓展。(6)有full-field LED illumination、1p/2p uncaging module、SLM等多种光刺激模块可选,能够进行刺激/成像序列实验、刺激/成像同步实验、多点同时刺激/成像同步实验。扫描光路在400nm-1700nm纳米范围内优化,在该范围内任意波长的光刺激实验均可灵活选择。(7)支持三光子成像。
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  • [ 产品简介 ]蔡司全自动活细胞成像平台Celldiscoverer 7 ,是一个高度集成的研究及成像系统,将操作简便的自动化箱式显微镜与研究级倒置显微镜的成像质量和灵活性相结合,在调节光学元件的同时可进行自动校正、检测和聚焦样品。无论是对细胞培养、组织切片,或是小的模式生物体进行 2D 或 3D分析,都能通过这个可靠的自动化活细胞成像平台在更短的时间内采集更多的数据。自动校准程序确保可重复的结果。[ 产品特点 ]&bull 灵活的全自动显微镜&bull 自动校准、自动聚焦样品,提供可重复实验结果&bull 适配不同厚度、材质培养皿&bull 独特的暗室和箱式结构,自动加水装置,长时间稳定培养活细胞&bull 可扩展性强[ 应用领域 ]&bull 细胞生物学,细胞器运动&bull 药理学,药物筛选&bull 模式生物,机体精细结构动态观察&bull 发育生物学,胚胎发育长时间观察&bull 基因/遗传学,荧光蛋白动态过程等生命科学领域研究HeLa Kyoto 细胞表达 H2B-mCherry Tubulin eGFP(Neumann et al., Nature 2010 Apr.1. 464(7289):721-7),每 15 分钟拍摄一次,连续拍摄 72 小时,使用自动加水 (Autoimmersion)功能;绿色(eGFP)单通道、红色(mCherry)荧光,phase-gradient-contrast(PGC,梯度相衬成像),以及三通道的叠加图像。样本由德国海德堡 EMBL 化学生物中心实验室的 I. Charapitsa 提供使用 Celldiscoverer 7 对 348 孔板培养的细胞进行高通量扫描。SH-SY5Y 细胞,Plan-Apo 5x/0.25 物镜搭配 0.5x 变倍体(相当于 2.5x/0.12 物镜)进 行大视野高分辨扫描。高效率成像,每孔一次性成像,无需拼图。成像分辨率高,放大图像可清晰分辨单个细胞。样品由德国波恩神经退行性疾 病中心核心研究实验室 P.Denner 提供。小鼠脑膨胀显微成像,上图:全脑,左下图:轴突束,右下图:锥体细胞。样品置于底部厚度为 1.2 mm 聚苯乙烯上, 使用 2.5× 物镜拍摄 Z 轴序列的景深扩展图 像。染色:YFP 表达神经元。样品由美国麻省理工学院 Boyden 实验室的 S. Asano 提供。用 mitotracker 红色(线粒体)和 DNA 标记(细胞核)的原代肺成纤维细胞,利用共聚焦荧光通道和相机梯度衬度通道混合成像。样品由德国柏林夏里特医院的 A.C. Hocke 提供。
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  • FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台 FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上,既可用于叶绿素荧光动态成像分析,又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量,成像面积35×35cm,是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域:实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析(Phenotyping)植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点:ü 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、滤波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和蓝光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等;ü UV紫外光激发多光谱荧光成像: UV紫外光对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为蓝光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等 技术指标: 1) 大型叶绿素荧光成像平台,成像面积达35×35cm2) 高分辨率CCD相机l 图像分辨率:1360×1024像素l 时间分辨率:在最 高图像分辨率下可达每秒20帧l A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)l 像元尺寸:6.45μm×6.45μm l 运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量l 通讯模式:千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源(可选配蓝色或其它波长的LED光源),具备735nm红外光源,LED光源板面积750×750mm4) PAR吸收/NDVI成像模块:680nm红色光源、735nm红外光源板及相应滤波器和功能程序模块(选配)5) 多光谱荧光成像模块:UV紫外光源及相应滤波器和功能程序模块(选配)6) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器7) 成像平台高度可调,调整高度范围350-1350mm8) 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ,Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,qL,QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数;R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数(选配);包括F440、F520、F690、F740等UV激发多光谱荧光参数(选配);荧光强度Ft等GFP绿色荧光蛋白成像参数(选配)。每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像9) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔,系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名10) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等,可对Protocols进行编辑,实时在线数据分析和二维显示11) 客户定制实验程序协议(protocols),可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序12) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?13) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等14) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),,成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等15) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线,可进行“选区操作”(参见上条)或“分级操作”(图像阈值分割功能);选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区(ROI),还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区;分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”,通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理,可设置不同的阈值进行图像阈值分割16) 结果展示报告功能:可展示所有选区(ROI)的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等,可对原数据(kinetic)、叶绿素荧光参数等导出到excel表,还可对每个参数成像图存储成位图17) 可自动测量多个样品(无限制)荧光动力学曲线及相应参数,程序软件可自动识别多个植物样品(数量不受限制)或多个区域(数量不受限制),也可手动选区(数量不受限制)18) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 19) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm,分辨率640x512,1-14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C,灵敏度30mK(0.03°C),传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换,标配9mm光学镜头、69°视野, 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol:一根电缆支持18通道;视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用,在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最小峰值温度等f) 32GB内存,可存储80000张图片或200分钟视频,图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片,图片采集间隔1-60s可调,带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等 产地:欧洲
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  • FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上,既可用于叶绿素荧光动态成像分析,又可用于长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量,成像面积35x35cm,是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域:实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析(Phenotyping)植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点:ü 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等; ü UV紫外光激发多光谱荧光成像:长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为兰光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置两个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 可选配RGB成像分析模块,用于植物颜色和形态测量分析等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标:1) 大型叶绿素荧光成像平台,成像面积达35x35cm2) 高分辨率CCD镜头,图像分辨率:1360×1024像素、时间分辨率:在最 高图像分辨率下可达每秒20帧、A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)、像元尺寸:6.45μm×6.45μm、运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量、通讯模式:千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源(可选配蓝色或其它波长的LED光源),具备735nm红外光源,LED光源板750x750mm4) PAR吸收/NDVI成像模块:680nm红色光源、735nm红外光源及相应滤波器和功能程序模块,700x725x45mm5) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器 6) 成像平台高度可调,成像距离(平台离植物顶部距离)350-1350mm7) 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ,Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,qL,QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数、R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数、及UV激发多光谱荧光包括F440、F520、F690、F740等,每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像8) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔,系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名9) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等,可对Protocols进行编辑,实时在线数据分析和二维显示 10) 客户定制实验程序协议(protocols),可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序11) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?12) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等13) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),,成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等14) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线,可进行“选区操作”(参见上条)或“分级操作”(图像阈值分割功能);选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区(ROI),还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区;分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”,通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理,可设置不同的阈值进行图像阈值分割15) 结果展示报告功能:可展示所有选区(ROI)的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等,可对原数据(kinetic)、叶绿素荧光参数等导出到excel表,还可对每个参数成像图存储成位图16) 可自动测量多个样品(无限制)荧光动力学曲线及相应参数,程序软件可自动识别多个植物样品(数量不受限制)或多个区域(数量不受限制),也可手动选区(数量不受限制)17) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 18) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm,分辨率640x512,1-14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C,灵敏度30mK(0.03°C),传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换,标配9mm光学镜头、69°视野, 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol:一根电缆支持18通道;视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用,在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最 小峰值温度等f) 32GB内存,可存储80000张图片或200分钟视频,图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片,图片采集间隔1-60s可调,带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等产地:欧洲
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  • MacroPhor™ Flatbed高光谱荧光成像平台是一款平面高光谱扫描系统,长40英寸 宽4英寸 ,具有玻璃表面可用于放置样品,使用过程仅需要将样品放置于玻璃板上并开始扫描即可。利用光学相机对焦在玻璃板上,确保每次拍照都能形成清晰的图像。可以用于扫描的样品包括植物、矿物、食物、昆虫及小型动物。当扫描图像时,固定波长的激光以一条直线照亮样品,有405nm、488 nm、532 nm和640 nm多种波长的激光可供选择。激光的光源安装于可调换的底座中,用于切换激光光源。HSI平面成像系统可以使用两个相机同时成像,可组合的相机类型包括:荧光,可见光近红外(VNIR),近红外(NIR)或短波红外(SWIR)相机。近红外和荧光光谱相机带滤镜的激光调换模块主要参数1.样品台:平板式,玻璃板(长101.6cm,宽10.16cm);2.照明:卤素灯用于VNIR, NIR SWIR相机,LED用于RGB相机,激光用于荧光相机;3.相机和激光选项:相机1相机2VNIR-NIR可见光近红外-近红外VNIR 400-1000nmNIR 900-1700VNIR-SWIR可见光近红外-短波红外VNIR 400-1000nmSWIR 1000-2500Fluorescence -NIR荧光-近红外荧光 – 400-800nm激光波长选择405nm,488nm, 532nm,640nmNIR 900-1700Dual Fluorescence双重荧光 荧光 – 400-800nm激光波长选择405nm,488nm, 532nm,640nm荧光 – 400-800nm激光波长选择405nm,488nm, 532nm,640nmFluorescence – RGB荧光-RGB荧光 – 400-800nm激光波长选择405nm,488nm, 532nm,640nm高分辨率RGB (2400万像素)应用领域植物科学,小型动物拍照,地质学,食品科学及分析,昆虫学。产地与厂家:美国 MSV
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  • SeedSort是基于高光谱成像技术和机器视觉技术的在线分选平台,整合了Specim工业级高光谱成像技术、模型分类软件和图像处理单元、自动分选传送带等,基于其强大的光谱识别能力和灵活的分类模型,可实时输出精准的识别结果,使用户无需进行一系列复杂的编码和光谱图像解析工作,即可得到最终结果。 SeedSort种子高光谱成像在线分选平台采用模块化结构,既可选配易科泰设计生产的种子自动传送扫描平台或客户定制平台,也可根据客户需求采用客户种子分选平台(需事先考察并出具设计方案)。主要技术特点如下:1) 种子在传送带上自动运行至高光谱成像站,自动成像、在线分析分捡,高通量流水作业2) VNIR(400-1000nm)和NIR(900-1700nm)高光谱成像分析,高振频、高灵敏度、高信噪比3) 可选配FluorCam叶绿素荧光成像站,对种子萌发和种苗进行叶绿素荧光成像分析4) 强大的光谱识别能力和灵活的分类模型5) 软件支持查看光谱曲线和散点图及时空序列信息,还包含有偏最小二乘法判别分析(PLS-DA),主成分分析(PCA)和光谱角制图(SAM)多种算法,便于用户快速得到准确的运算结果6) 可选配基于WinSeedle分析软件的RGB成像分析(考种)
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  • 高通量植物荧光表型检测平台可以定制化的对小型样品进行荧光图像采集,通过定制化的数据分析软件连续720小时以上获取各类小型植物荧光图像参数以及动态参数,可用于拟南芥,烟草等小型植物的表型研究。应用领域:植物病理研究作物抗病研究植物动态生长发育研究成像单位像素:14μm成像单元类型:高分辨率CCD相机照明位置:顶部,侧部照明光源类型:紫外灯(荧光成像光源),日光灯(生长光源)尺寸:2000*2000*2000mm(长宽高)电源:单相 220VAC控制装置:WindowsPC控制机柜软件:在线控制,图像处理,数据分析 可测参数:荧光图像亮斑个数,纹理,面积变化趋势,荧光亮度变化趋势等效率:5s/株检测方式:在线实时采集数据存储:JPG格式实存储数据分析:EXCEL格式自动存储系统稳定性:连续工作720h以上工作环境温度:0-50℃ 高通量植物荧光检测平台、荧光图像采集软件图、数据分析图(a)为原始荧光图像,(b)为分割伪彩图。主营业务包含:水稻数字化考种机;经济型水稻数字化考种机;玉米籽粒数字化考种机;玉米果穗考种机;叶片表型快速分析仪;双目视觉植物表型分析系统;小型植物表型分析系统;高通量植物表型参数自动提取系统;高通量植物荧光表型检测平台;高光谱成像系统;水稻穗长测量系统;高通量植物分蘖测量系统;同时我们也提供作物考种服务,图像分析定制服务,表型仪器定制服务。谷丰光电将立足于高端农业科研仪器、植物表型系统,坚持高科技、高价值、高效益三大目标,打造实力品牌优势、系统优势和价值优势的知名光电企业。
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  • PlantScreen样带扫描式植物表型成像平台 PlantScreen样带扫描式植物表型成像平台为温室或大型培养室用植物表型成像分析系统,用于植物样带叶绿素荧光扫描成像、RGB彩色成像分析及红外热成像分析等,可用于植物沿样带梯度胁迫实验研究分析、梯度植物耐受性检测研究、作物遗传育种、基因组学与表型组学研究、不同植物的光合生理特性研究、植物高通量Phenotyping、生物多样性检测分析及污染生态学和生态毒理学研究检测等。功能特点:1) 具备世界上单幅成像面积最 大的叶绿素荧光成像系统,成像面积达35×35cm2) 可进行叶绿素荧光成像分析和RGB彩色成像分析,还可选配红外热成像分析等 3) 可选配小型蒸渗仪用于栽培作物控制实验测量4) 样带扫描成像位置精确定位、定时、程序控制,一次可对12个约30cm直径的植物培养盆或SoilTron多功能小型蒸渗仪依次扫描成像分析5) 具备7位绿波轮和相应滤波器组合,可进行GFP或其它选配的稳态荧光成像检测,从而用于转基因表达检测分析6) 整套系统装配在具备4个轮子的支架上,成像高度可调、可定制,非损伤原位对植物进行叶绿素荧光成像、GFP荧光成像和RGB成像分析等研究 7) 在线数据分析8) 根据客户需求,可定制高速以太网远程控制功能9) 在没有交流电的情况下,可选配直流供电单元供电技术指标:1) 具移动轮方便移到,可进行叶绿素荧光成像分析、RGB植物彩色成像分析、GFP(绿色荧光蛋白)成像,还可选配红外热成像等,单幅成像面积可达35×35cm2) 成像平台440cm长,由两部分组成(每部分2.2m长)以便于运输和组装等,镜头及光源等高度60cm–110cm可调,可客户定制其它高度范围,从而适于不同生长类型不同高度植物的原位非损伤成像分析测量3) 扫描样带区域(样带长度)400cm,可精确定位、定时、程序可调,定位精度可达0.1mm,成像平台运行速度可达150mm/s4) 1分钟之内即可对直径约30cm的12盆植物扫描成像完毕5) 叶绿素荧光成像:a) 高灵敏度CCD传感器镜头(如选配同时测量GFP稳态荧光,采样频率达50fps,有效像素720x560,A/D 12比特(4096灰阶),具备视频模式和快照模式 b) 可选配高分辨率叶绿素荧光与GFP荧光镜头,2/3”CCD,最 高可达1360x1024像素(20fps)c) 620nm红色LED脉冲调制测量光源d) 红色与蓝色或红色与冷白色LED双色光化学光e) 735nm LED红外光源用于测量Fo’等f) 参数包括Fo,Fo’,Fs,Fm,Fm’,Fp,FtDn,FtLn,Fv,NPQ_Dn,NPQ_Ln,Qp_Dn,Qp_Ln,qN,QY,QY_Ln,Rfd等50多个叶绿素荧光参数,用于分析植物光合效率、适合度、生物与非生物胁迫及作物抗性、恢复力等g) 叶绿素荧光数据在线分析,包括柱状图、测量参数图、数据表格等,具备自定义图像分割等功能6) RGB成像测量分析:高灵敏度成像传感器1/2.5”,分辨率2560×1920像素,像素大小2.2μm,自动或手动曝光和白平衡等,测量参数包括:叶面积、植物紧实度/紧密度、叶片周长、偏心率、叶圆度、叶宽指数、植物圆直径、凸包面积、植物质心、相对生长速率等,可进行颜色分割分析、植物适合度评价、实验生长期叶面积动态变化比较分析、绿度指数、颜色分级分析(健康绿色、亮绿色、暗绿色、其他颜色)等表型参数7) 红外热成像单元(选配):包括认证校准的红外热成像传感器镜头、热成像适配LED光源,分辨率640×480像素,温度范围20-120°C,灵敏度NETD0.05°C@30°C/50mK,成像面积35×35cm,用于气孔动态、干旱胁迫及病害胁迫研究分析等8) 系统自动控制与数据采集分析系统:a) 组成:控制调度服务器、应用服务器、数据库服务器、可编程序逻辑控制器及专用表型大数据分析软件等b) 自动控制与分析功能:具备用户定义、可编辑自动测量程序(protocols),根据用户设定程序自动完成全部实验。数据结果自动存储并分析,分析的数据结果可自动以动态曲线的形式显示。c) 用户可通过互联网远程访问,进行数据处理、下载及更改实验设计d) 具备用户权限分级功能,防止其他人员误操作影响实验e) 专家远程故障诊断,软件终身免费升级9) FS-WI步入式大型植物生长室(选配)a) 光源:冷白LED(6500K)+远红LED(735nm),其他光源如RGB三色光源板可定制,可0-100 %调控,专用光源制冷气流通道,可编程模拟昼夜周期变化、日升日落等自然界中光环境变化以及其他各种任意变化b) 均质光强:1000μmol(photons)/m2.s,可定制更高光强 c) 控温范围:10℃-40℃(控制效果与光强和环境温度有关,室温最 高为30℃),可定制更大控温范围,可编程模拟昼夜周期变化、日升日落等自然界中温度变化以及其他各种任意变化d) 控湿范围:40-80%±7%(控制效果与光强有关),可编程模拟昼夜周期变化、日升日落等自然界中湿度变化以及其他各种任意变化产地:欧洲PSI
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  • OASIS Macro和Micro旨在为研究人员提供宏观/微观光学成像平台,以实现细胞级分辨率和头固定实验中的成像和刺激实验。与传统的微观/宏观显微镜不同,OASIS平台为动物固定提供了充足的工作空间,平台的位置可以在动物周围轻松调整。OASIS平台的模块化设计可以根据研究人员的具体实验要求对大视场或小视场成像或照明进行定制。通过添加Mightex公司的Polygon光活化照明系统,该平台能够对感兴趣的区域或细胞进行目标模式化照明。其它主要功能如添加第二或第三照明光源,以及精巧的细节,例如用于特定型号显微镜物镜的适配器,都可以进行调整。总的来说,灵活的OASIS显微平台可以促进独特而多样的研究工作。特性:用于大视场的50mm管道透镜先进的模块化设计方案化(使用Polygon光活化照明系统)和/或宽场照明大视场下的高光功率耐用的精密手动或电动XYZ工作台倾斜机构,使系统相对于倾斜的试样表面旋转选项包括额外的宽视场照明或多个摄像头可接受任何C型接口摄像头可用的软件平台组成:OASIS显微平台由多个组件组成,为研究人员提供了极大的通用性。多端口照明根据成像和光遗传学应用,可以调整平台以适应多个光源。通过接收内芯3mm的液体光导进行落射荧光照明或通过耦合Mightex的Polygon光活化照明系统,研究人员可以完全控制照明。多个物镜OASIS 显微平台使用不同的商用的主流品牌显微物镜(Olympus,尼康、蔡司、徕卡)。另一方面,平台可以与我们的微距物镜(1X、2X和4X)一起使用。这些镜头可以互换。平移或立体定位根据研究人员感兴趣的动物模型和区域,有两种不同的平台可供选择。标准的平移型平台可以在XYZ方向进行调整。立体定位型平台提供额外的两个倾斜轴,允许物镜从多个角度围绕动物进行调整,获得对成像位置的最大控制。科研级摄像机OASIS 显微平台配备标准C型接口,与任何C型接口摄像头兼容。研究人员可以使用高速、高灵敏度的相机进行拍摄,获得可靠的定量分析的高质量图像。 研究应用运动和非运动脑皮层的靶向光遗传学刺激 Kauvar等人2020使用了Mightex的Polygon照明以及Macro显微平台对小鼠整个大脑皮层的多个区域同时进行光遗传学抑制。他们提供的证据表明非运动区域可能在运动计划实施中起到因果作用。嗅觉时空编码的感知不变性Chong等人2020利用集成到 Micro显微平台中的Polygon来提供编码的空间和时间照明模式,在活体清醒小鼠的嗅球制造合成的光遗传学气味,揭示控制嗅觉时空编码的新信息和原理。
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  • Entoscan X、Y、Z三轴自动定位 植物表型成像分析平台Entoscan植物表型成像系统(X Y Z 三轴自动定位)是由台湾海博特公司研发制造,整合了Hipoint智能环控系统(包含温湿度、CO2、水份、EC、PH、气象)高光谱LED光谱模拟系统,叶绿素萤光成像测量分析,植物热成像分析,植物近红外线成像分析,植物高光谱分析,RGB色彩成像及射频,条码管理系统等多项先进技术结合;以最(分割线)优化的方式实现在精(分割线)准环控条件进行高通量数据集成。提供阿拉伯芥(拟南芥)、玉米、甜椒、大豆、小麦、到各种其他植物的全面性形态构型、光谱资讯、叶绿素荧光等表型分析研究最(分割线)佳解决方案,透过高通量植物表形分析量测,协助研究人员快速、完整、全方位进行植物性状识别、植物生理、植物病理学、植物育种、目标成份、植物生态分析等尖(分割线)端研究。同时搭载Hipoint首(分割线)创发明案例结合环境分析探头自动化设备结合,成功利用精(分割线)准环控条件并模拟24节气各纬度光谱模拟条件,达到进行植物活体全方位律动及环境反馈研究。Entoscan X、Y、Z三轴自动定位 植物表型成像分析平台
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  • AlgaTech高通量藻类表型成像分析平台,采用PTS(Plant-To-Sensor)自动传送技术,集成了高光谱成像、叶绿素荧光成像等国际先进光谱成像技术,样品通过传送平台自动传送至相应成像工作站,实现高通量、无损伤高光谱成像、叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像分析。是目前国内功能完备、技术一流的藻类表型成像分析系统,可为藻类表型分析、生理生态研究、种质资源检测研究、遗传育种、抗性筛选、光生物学研究等领域提供全方位、一站式、高通量解决方案。主要技术特点:1.一站式藻类表型成像分析平台,集VISIR-NIR高光谱成像、叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像技术,可选配Thermo-RGB成像分析2.PTS(Plant-to-Sensor)技术平台,双轨式同步升降控制、SpectraScan© 高精度移动扫描平台,样品可放置在精准位移平台上自动运送至成像单元进行成像分析3.可选配UV、冷白、红、蓝、绿、青色等不同激发光源,以适应不同藻类不同激发光多光谱荧光成像分析4.可对海带等大型藻类、微藻(放置于培养皿或多孔板等)、附着于珊瑚等介质上面的藻类及土壤藻类等进行表型性状成像检测分析5.模块式结构设计,具备强大的系统扩展功能,可远程控制、自动运行数据采集存储6.触摸屏控制,嵌入式操作系统,全中文地面站软件,可无线操控平台运行7.内置温湿度、光照度、时钟(时钟可一键同步电脑时间,或根据GPS信息自动校准)8.支持组合命令(Protocols),可实现自动运行protocols9.主机系统带脚轮,方便移动,适应于实验室和温室等工作环境 主要技术指标:1.高光谱成像站:标配为400-1000nm可见光近红外和900-1700nm短波红外高光谱成像分析,可选配1000-2500nmSWIR高光谱成像传感器1)波段数:224通道2)光谱分辨率:FWHM 5.5nm(400-1000nm)、8nm(900-1700nm)3)空间分辨率:1024x(400-1000nm)、640x(900-1700nm),可选配其它分辨率高光谱成像4)信噪比600:1(400-1000nm)、1000:1(900-1700nm)5)测量参数:可成像测量分析生理生化指标、光利用效率、健康指数、叶绿素及类胡萝卜素等不同色素含量、胁迫等参数。2.叶绿素荧光成像站:1)专业高灵敏度叶绿素荧光成像CCD,帧频50fps,分辨率720x×560像素,像素大小8.6×8.3μm2)光化学光最大1000μmol.m-2. s-1可调,饱和脉冲3900μmol.m-2. s-13)可自动运行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线等protocols4)50多个叶绿素荧光自动测量分析参数,包括:Fv/Fm、Fv’/Fm’、Y(II)、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等,自动形成叶绿素荧光参数图5)自动同步显示叶绿素荧光参数及参数图、叶绿素荧光动态曲线、叶绿素荧光参数频率直方图3.多光谱荧光成像站:紫外光激发多光谱荧光成像,反映多酚与黄酮类等次级代谢产物动态变化、叶绿素动态变化、植物衰老、植物病虫害胁迫及非生物胁迫等1)高分辨率CCD镜头,1392x1040像素,有效像素大小为6.45μm,可像素叠加(binning)以提高灵敏度(2x2,3x3,4x4)2)7位滤波轮及滤波器,用于成像测量多光谱荧光F440、F520、F690、F740及其它生物荧光现象 4.自动测量分析功能(无人值守):可预设1个或2个试验程序,系统可自动测量储存,比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序,夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序 5.可选配GFP/YFP稳态荧光成像,或选配LUC荧光素酶成像 6.可选配紫外、红光、绿光、青光、蓝光、远红等不同波段光源 7.叶绿素荧光成像与多光谱荧光成像具Live(实况测试)、Protocol(实验程序选择)、Pre-processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等菜单,Protocol实验程序可自由编辑,也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序8.红外热成像(选配):1)分辨率:640×512像素,可选配其它高分辨率红外热成像传感器2)测量温度范围:-25℃-150℃3)灵敏度:0.03℃(30mK)@30℃4)光谱范围:7.5-13.5μm5)传感器:非制冷红外焦平面感应器,已多点校准(具校准证书)6)1-14倍数码变焦7)软件具备调色板(自然、彩虹、灰度、梯度等14种颜色组合)、差值技术、温度范围设置(以改变颜色分布或突出选择范围等)、等温线模式、ROI选区分析、温度扫描(显示所选线的温度分布曲线等)、剖面温度、时间图等;可显示图片信息;具备报告模式等; 9.RGB成像:高灵敏度,1-40倍放大,可进行micro和macro成像分析,可选配更高分辨率成像单元 易科泰生态技术公司提供藻类及海洋植物表型分析全面技术方案:1.藻类培养与在线监测技术2.Specim高光谱成像分析技术3.FluorCam叶绿素荧光成像分析技术4.FluorCam多光谱荧光成像分析技术5.FKM显微叶绿素荧光成像与光谱分析6.AlgaTech一站式高通量藻类表型成像分析平台7.藻类叶绿素荧光-热释光测量技术方案8.藻类光合作用、叶绿素荧光、高光谱测量便携箱9.Ecodrone无人机遥感技术,用于海水养殖遥感分析10.Ecolab实验室技术合作及技术服务方案
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  • 倒置显微镜解决方案 德国徕卡DMi8 S 高速成像平台模块化的 DMi8 倒置显微镜是 DMi8 S 平台的核心。德国徕卡 DMi8 S 高速成像平台是适用于日常活细胞研究的完整解决方案。不管是精确跟踪培养皿中单个细胞的发育,筛选多个分析,获取单分子级的清晰度,还是梳理复杂过程的行为,DMi8 S 系统都能让您看得更多、看得更快,让您发现隐藏的信息。看得更多 – 观察面积最高增大到 10,000倍看得更快 – 实验速度加快 5 倍发现隐藏信息 – 在一个实验中进行光激活、光消融和光漂白适用于高级宽场研究的 德国徕卡DMi8 S 高速成像平台从发现和分析单个分子开始,到了解和治疗人类健康问题取得突破的巅峰,下一个科学发现的关键在于找到缺失的连接数据的环节。DMi8 S 是用于高级宽场研究的完整解决方案。新型 DMi8 S 平台增加了高速控制、Infinity TIRF 和 Infinity 光操作系统模块,加上无与伦比的软件功能,扩展了 DMi8 显微镜的灵活性,得到高级活细胞成像解决方案。“DMi8 S 是一种多功能用户友好型系统,具备超高清晰度、光操作和光遗传学等特性,让生物医学研究员在探测细胞内的分子机制时如虎添翼。”看得更多 – 观察面积最高增大到 10,000倍 从一张张图像搜索转变为看到样本的整个图像。软件模块 LAS X Navigator 就像是细胞的 GPS,为您开辟一条通往高质量数据的清晰路线图。创建样本的概览图,立即识别重要细节。然后使用载玻片、培养皿和多孔板模板,自动设置高分辨率图像摄取。找到您的答案不管您关注的是哪种实验,LAS X Navigator 始终是 DMi8 S 平台上通往所有应用的关键。生成实时概览图创建螺旋扫描,搜索当前位置的邻近区域在标本夹模板中显示图像,进行快速定向在相同工作空间中使用任何放大倍率、相机、检测器和反差方法定义高分辨率扫描或多孔板成像项目的无限多个区域和位置快速缩放标本通过鼠标单击即可移动到载物台上的任何位置看得更快 – 实验速度加快5倍配有 LAS X Synapse 高级同步快速板的 DMi8 S 成像解决方案消除了系统组件间的瓶颈,从而大大加快了成像速度。通过集成的实时控制器,直接与所有硬件组件、相机和外围设备关联,您可以毫秒级的精度控制您的整个系统。将多位置载物台实验与高速外部荧光转换功能相结合,发挥市场上配合高精度载物台控制的快速滤片转盘的优势。间歇摄取实验时间最高缩短5倍意味着您不但可以节省时间,还能获得更多细节。不管实验中使用了哪种仪器组件,系统都将以最高可能的速度运行。 精确控制 现在对于专业的活细胞应用,您可在系统中添加附加设备,使用第三方设备进行精确定时和控制,制定可完全高速控制的实验。DMi8 S 平台配有 LAS X Synapse 高级同步快速板,可自由指定连接方式,创建快速图像序列,分析由第三方设备提供的生物体对外部刺激物的响应。定义数字和模拟信号,独立于图像摄取,以准确的定时和完全的再现性设置触发器信号。看到隐藏信息 – 在一个实验中进行光激活、光消融和光漂白在 DMi8 S 平台上添加 Infinity TIRF 和 Infinity 光操作系统,增加系统的多功能性。您可使用 5 个激光器,在一个长时间成像实验中执行超高分辨率、TIRF 等多个光操作任务。 在执行高要求任务 (如 FRAP 或光消融) 的同时,可执行光敏感应用,如光遗传学或光转化任务。使用全自动、超高分辨率的 Infinity TIRF 分析膜动力学,进一步融合技术。
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  • 欧洲知名植物表型分析技术公司PSI与荷兰植物生态表型中心(NPEC)合作,隆重推出PlantScreen全自动高通量琼脂培养植物表型成像分析平台。PlantScreen全自动高通量琼脂培养植物表型成像分析平台是一套新型高通量、自动化的植物表型成像系统。植物样品种植于专门设计的方形琼脂培养皿中。该平台是一个开创性的解决方案,重新定义了植物表型的研究方法。全自动高通量琼脂培养植物表型成像分析平台为全自动机器人操作,包括倾倒琼脂、播种、层积催芽、接种、成像分析全自动运行。可容纳2160个特制培养皿的全自动全流程(倾倒琼脂、播种、培养、成像分析)高通量表型分析。该平台由具备GMO(转基因生物)控制区的环控室(可选配)、操作台、培养柜(包括层积催芽柜)、机器人及成像工作站等组成,可进行根系形态成像分析、GFP等荧光蛋白成像分析、叶绿素荧光成像分析、多光谱成像分析、高光谱成像(透射光)分析及香豆素荧光高光谱成像分析等。 系统组成:1. 植物(琼脂)培养柜2. 层积催芽柜3. 培养皿操作台4. 用户缓冲区5. 液体操作台6. 叶绿素荧光与多光谱荧光成像工作站7. VNIR高光谱成像工作站8. 机器人主要模块功能:§ 培养皿操作台:准备培养介质、自动浇注培养皿、机器人自动播种 § 层积催芽柜:精确控温5℃、暗培养、容量2×360培养皿§ 植物(琼脂)培养柜:多通道LED培养光源(白光/红光/远红光)、最大光强400µ mol/m² .s、可调控红光/远红光比例模拟光调控条件§ 表型成像工作站:根系形态、叶绿素荧光(光合表型)、荧光蛋白、多光谱荧光(次生代谢)、高光谱等表型成像分析§ 液体操作台:自动化液体操作、生物安全柜、机器人自动细菌接种 § 机器人:高精度SCARA机器人,完成培养皿在各功能模块间的全部自动化转运作业 技术指标:§ 植物(琼脂)培养柜布局:共3个培养柜,4培养架/柜,9培养盒/架,20培养皿/盒§ 系统通量:2160专用培养皿§ 样品托盘类型:专用培养皿,129×129×16.5mm§ 培养光源:每层培养架上均配备光源,每个培养架和LED通道均可独立调控§ 光质:配备冷白光、红光和远红光,红光/远红光比例调控范围:0.5-0.82§ 光强:距离光源30cm处最大光强400µ mol/m² .s § 层积催芽柜:精确控温5℃、暗培养、容量2×360培养皿§ 培养皿操作台容量:1500培养皿§ 无菌处理:HEPA高效空气过滤,UV-C紫外杀菌§ 成像站:2台叶绿素荧光与多光谱荧光成像站、形态成像站、VNIR高光谱成像站 § 成像传感器:&Yuml 传感器类型:CMOS &Yuml 分辨率:4112×3006,12.36MP;binning模式2056×1503,3.09MP&Yuml 位深度:12bit&Yuml 传感器尺寸:1.1”&Yuml 快门:全域快门&Yuml 自由运行模式最大fps:2&Yuml 像素尺寸:3.45µ m;binning模式6.9µ m&Yuml 通讯接口:GigE千兆以太网§ 叶绿素荧光测量光源:620nm红橙光、5700K冷白光、735nm远红光§ 多光谱荧光与荧光蛋白测量光源:365nm紫外光,445nm品蓝光,470nm蓝光,505nm青光,530nm绿光,590nm琥珀色光§ 形态测量光源:5700K冷白光§ 叶绿素荧光成像参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm, Fv', Ft, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数§ 荧光蛋白成像:GFP、YFP、RFP、BFP等§ 滤波器:F469、F483、F513、F565、F586、F593、F520、F635、glass等(选配)§ VNIR高光谱成像&Yuml 光谱范围:350-900nm&Yuml 谱带尺寸:520nm&Yuml 入射狭缝宽度:50μm&Yuml 像素色散:0.28nm/pixel&Yuml 波长分辨率:2nm FWHM&Yuml 光谱分辨率:480 pixels&Yuml 空间分辨率:500 pixels&Yuml 帧频:45fps&Yuml 传感器类型:CMOS &Yuml 图像分辨率:1920×1000&Yuml 位深度:12bit&Yuml 像素尺寸:5.86µ m&Yuml 动态范围:67dB&Yuml 光源:反射模式:白光;荧光模式:紫外光&Yuml 控制与数据接口:GigE千兆以太网安装实例:荷兰植物生态表型中心NPEC已与PSI公司合作建设了多套PlantScreen植物表型成像系统,应用于拟南芥、烟草、番茄、藜麦等植物的表型研究。PlantScreen全自动高通量琼脂培养植物表型成像分析平台是他们的最新合作成果,于2023年刚刚建设完成。产地:欧洲
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  • PhenoTron复式智能LED光源培养与光谱成像分析平台,是易科泰公司基于自主研发的智能LED光源培养及光谱成像扫描平台技术,推出的一款数字化、一体式植物培养与光谱成像分析检测平台,即可进行植物育种光照培养、模拟昼夜节律,同时也可以进行表型成像分析、光生物学研究,或植物工厂、垂直农业研究等。具体应用于:1.作物种质资源培育检测鉴定2.作物培育与不同生长期表型分析、表型大数据建库3.遗传育种、胁迫生理与抗性筛选4.光生物学研究5.作物如蔬菜、药用作物等色素、次级代谢产物成像分析6.植物工厂、垂直农业实验研究7.智慧农业、数字农业模拟、实验研究 主要特点:1) 标配双层多通道(波段)智能LED光源,可模拟昼夜节律并具备阴天、林下光照等不同光照配方数据库2) 高光谱成像分析3) 叶绿素荧光高光谱成像分析(选配)4) UV-MCF生物荧光高光谱成像分析(选配)5) 一体化复式智能LED光源培养与光谱成像分析专利技术(专利号:ZL 2021 2 1568461.0)6) 可联网自动获取当地时间及天气,并根据天气及时间自动调节LED光强,模拟昼夜节律7) 可对盆栽植物、组培苗、种苗等植物/作物进行活体表型成像测量分析及育种培养主要技术指标:1) 标配为双层种质资源培养与光谱成像检测平台,上下层独立控制2) 单层XYZ三轴有效行程:X轴80cm,Y轴180cm,Z轴可调3) 单层扫描成像及培养面积:180×80cm,可定制4) 智能LED光源:可实现RGB+远红、RGB+UV+远红等不同光源组合配方,255级或0-100%调制,每个通道独立控制,可选4、5、6、7通道5) 全波段光源:9*漫反射卤素灯光源,0-100%线性调控6) 400-1000nm高光谱成像:a) 光谱通道224(binning×2),具备多光谱波段自由选择功能,根据需求自由选择感兴趣光谱波段,最大称度减少数据冗余,提高光谱成像大数据处理分析效率,节省存储空间,可分段选择波段范围b) 帧率:330FPS,最大每秒扫描9900行,有效适配更大范围的扫描速度,适应多种测量场景,尤其对容易摆动的样品,能够得到锐利清晰的高光谱影像c) 光谱分辨率 FWHM:5.5nmd) 空间分辨率:1024像素e) 信噪比420:1f) 可成像分析作物生化、生理指标、光利用效率、健康指数、覆盖度、胁迫等近百种参数7) UV-MCF成像分析(选配):a) 可对植物包括藻类自发光荧光成像和光谱分析,包括叶绿素荧光成像及光谱分析、BGF蓝绿荧光成像及光谱分析b) 分析参数:①BGF蓝绿荧光Fb(或F440)和Fg(或F520);②叶绿素荧光Fr(或F690)和Ffr(或F740);③荧光比值,如Fb/Fg、Fb/Fr、Fb/Ffr、Fr/Ffr等,及F730-740/F680-690(反应叶绿素含量及植物长期胁迫等)、F735/F700(可精确反映叶绿素含量);④可获取高达数百个光谱维度的生物荧光成像数据c) 可扩展多激发光(绿色及红色激发光)植物荧光光谱成像分析(选配),并进一步测量分析花青素指数、黄酮指数及氮素平衡指数NBI8) 900-1700nm高光谱成像(选配):a) 光谱通道224,具备多光谱波段自由选择功能,根据需求自由选择感兴趣光谱波段b) 帧率:670FPS,最大每秒扫描15000行,有效适配更大范围的扫描速度,适应多种测量场景c) 光谱分辨率 FWHM:8nmd) 空间分辨率:640像素e) 信噪比1000:1f) 可成像分析评估作物N素含量、水分含量指标与水分胁迫等9) 叶绿素荧光成像(选配):a) FluorCam叶绿素荧光成像技术,专业高灵敏度CCD,帧频50fps,分辨率720×560像素b) 精准定位FC叶绿素荧光成像分析,单次叶绿素荧光成像分析面积35×45mmc) 3色4组LED激发光源,光化学光最大1000µ mol.m-2. s-1可调,饱和脉冲3900µ mol.m-2. s-1d) 可自动运行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线等protocolse) 自动测量分析Fv/Fm、Fv’/Fm’、Y(II)、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等50多个叶绿素荧光参数f) 自动同步显示叶绿素荧光参数及参数图、频率直方图、叶绿素荧光动态曲线10) Thermo-RGB成像(选配):7.5-13.5μm,同时具备红外热成像及RGB成像,10倍光学变焦,无线图像传输,实时监测RGB及温度信息,测量最大、最小、中心点温度,温度预警、等温区域等,实时监控全域植物状态,自动采集数据应用案例:
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  • 徕卡DMi8倒置显微镜DMi8 S 高速成像平台DMi8 显微镜配有从手动到电动的各种组件,可完全自由配置,让您创建满足研究和预算需求的理想成像系统。详细信息DMi8 显微镜DMi8 显微镜配有从手动到电动的各种组件,可完全自由配置,让您创建满足研究和预算需求的理想成像系统。它具备天生的灵活性,您可添加已被证实的同类理想选件 (如 DIC),用于未染色的标本以及进行智能自动化。对于长时间成像,可使用带自适应调焦控制和闭环调焦的卓越调焦控制系统。了解更多关于 DMi8 显微镜的信息Alessandro Esposito 博士,和记/ MRC 研究中心,英国剑桥大学适用于高级宽场研究的 DMi8 S从发现和分析单个分子开始,到了解和治疗人类健康问题取得突破,下一个科学发现的关键在于找到缺失的连接数据的环节。DMi8 S 是用于高级宽场研究的完整解决方案。新型 DMi8 S 平台增加了ge命性的高速控制、Infinity TIRF 和 Infinity 光操作系统模块,加上优良的软件功能,扩展了 DMi8 显微镜的灵活性,得到终极的高级活细胞成像解决方案。“DMi8 S 是一种多功能用户友好型系统,具备超高清晰度、光操作和光遗传学等特性,让生物医学研究员在探测细胞内的分子机制时如虎添翼。”看得更多 – 观察面积增大到 10,000倍从一张张图像搜索转变为看到样本的整个图像。软件模块 LAS X Navigator 就像是细胞的 GPS,为您开辟一条通往高质量数据的清晰路线图。创建样本的概览图,立即识别重要细节。然后使用载玻片、培养皿和多孔板模板,自动设置高分辨率图像摄取。经忽视的更多关联。 斑马鱼幼鱼。来源:Ravindra Peravali, Institute of Toxicology and Genetics, Eggenstein-Leopoldshafen, Germany.找到您的答案不管您关注的是哪种实验,LAS X Navigator 始终是 DMi8 S 平台上通往所有应用的关键。生成实时概览图创建螺旋扫描,搜索当前位置的邻近区域在标本夹模板中显示图像,进行快速定向在相同工作空间中使用任何放大倍率、相机、检测器和反差方法定义高分辨率扫描或多孔板成像项目的无限多个区域和位置快速缩放标本通过鼠标单击即可移动到载物台上的任何位置看得更快 – 实验速度加快5倍配有 LAS X Synapse 高级同步快速板的 DMi8 S 成像解决方案消除了系统组件间的瓶颈,从而大大加快了成像速度。通过集成的实时控制器,直接与所有硬件组件、相机和外围设备关联,您可以毫秒级的精度控制您的整个系统。将多位置载物台实验与高速外部荧光转换功能相结合,发挥市场上配合高精度载物台控制的快速滤片转盘的优势。间歇摄取实验时间最高缩短5倍意味着您不但可以节省时间,还能获得更多细节。不管实验中使用了哪种仪器组件,系统都将以最高可能的速度运行。 使用 DMi8 S 更快速地成像。标准实验在LAS X Synapse 控制前后总时间对比。DMi8 S 可更高效地处理数据,帮助您实现较高的摄取速度。精确控制现在对于专业的活细胞应用,您可在系统中添加附加设备,使用第三方设备进行精确定时和控制,制定可完全高速控制的实验。DMi8 S 平台配有 LAS X Synapse 高级同步快速板,可自由指定连接方式,创建快速图像序列,分析由第三方设备提供的生物体对外部刺激物的响应。定义数字和模拟信号,独立于图像摄取,以准确的定时和完全的再现性设置触发器信号。看到隐藏信息 – 在一个实验中进行光激活、光消融和光漂白在 DMi8 S 平台上添加 Infinity TIRF 和 Infinity 光操作系统,大程度增加系统的多功能性。您可使用 5 个激光器,在一个长时间成像实验中执行超高分辨率、TIRF 等多个光操作任务。 在执行高要求任务 (如 FRAP 或光消融) 的同时,可执行光敏感应用,如光遗传学或光转化任务。使用全自动、超高分辨率的 Infinity TIRF 分析膜动力学,进一步融合技术。Leica DMi8 的构建始终以灵活性为指导原则。DMi8 显微镜显微镜有多达两个无限远光路接口,可作为添加荧光设备的接入点,从而轻松调整,以此来适应从简单荧光成像到精密的超高分辨率应用。这种创新设计大大方便了高级应用中附加荧光光源和激光系统的集成,例如:FRAP光转化光消融光遗传学及更多DMi8 – 宽场成像的模块化DMi8 模块的研究型显微镜是 DMi8 S 系统的核心。显微镜配有从手动到电动的各种组件,可完全自由配置,让您创建满足研究和预算需求的理想成像系统。 另外,如果您的研究发生变更,也可以随时调整或升级系统。每台 DMi8 显微镜都可配备多达两个的无限远光路接口,以便直接访问荧光光路径,添加最新的荧光技术,例如, Infinity 光操作系统或 Infinity TIRF。联系我们,了解如何使用最新的 DMi8 S 平台选件升级您的 DMi8传统 16mm 视场 (虚线) 与 19mm 视场的对比。彩叶草叶子。去卷积自体荧光针对 sCMOS进行 优化每台 DMi8 标配适合所有摄像头端口的 19mm 视场 (FOV)。使用任何对比度方法配置您的系统,添加精密的方法 (如 TIRF),使用不会影响光学质量的最新成像技术 (如最尖端的大幅面 sCMOS 相机)。在每张图像中摄取更多细节此外,可通过目镜,经由大达 25 mm 的 FOV 看到更多细节。 (使用 Leica DFC9000 GT sCMOS 相机在 Leica DMi8 显微镜上摄取的图像)徕卡自适应调焦控制只需单击一次按钮,具有 LED 光束辅助功能的徕卡自适应调焦控制 (AFC) 即可自动实时维持对焦。节省时间,确保您的间歇成像摄取不受实验条件变化的影响。徕卡自适应调焦控制的工作原理智能自动化当更改对比度方法时,显微镜可根据该方法自动调整照明设置、等焦面、亮度和光圈位置。通过新型 LAS X Synapse 实时控制器,智能自动化更进一步。标准实验运行速度最多快了 5 倍,使用最新相机技术,集成第三方触发的组件。让每一个组件尽可能都以很高的速度和谐工作。Leica DMi8 调焦驱动器DMi8 系统的一大特色为以 20 nm 的重定位精度实现闭环调焦。在增大的 12 mm 调焦行程的基础上,选择闭环调焦,实现多点间歇摄取实验的高再现性。 Leica DMi8 调焦驱动器的12 mm 行程。无限远光路接口连接器,加上完整的光机设计文档,开启了 Leica DMi8 光路径,方便您添加任意附件。定制化只需连接到无限远光路接口连接器,就能将 Thorlabs Cage 系统或 Linos Microbench 或 Nanobench 组件直接添加到 Leica DMi8。荧光成像DMi8 具有许多荧光创新特性。对于高速成像,可使用外部荧光转换功能或专利型自动荧光照明强度管理系统 (FIM),实现快速、准确地荧光成像。对于标准应用,可通过 RFID 自动识别轻松安装荧光滤块。自动荧光照明强度管理系统Leica Application Suite X (LAS X) 是所有徕卡显微镜公共的软件平台。它集成了徕卡显微系统的共聚焦、宽场、体视、超高分辨率和光片成像仪器为一体。LAS X 软件用户有更多的时间用于研究成像任务十分直观从基本的归档到高级生命科学研究 – LAS X 引领您直接进入绚丽的成像世界!了解关于 LAS X 生命科学显微镜软件的更多信息高速图像采集领域的重大突破高速线性电动载物台以超乎想象的速度提供精确的定位,例如在 40 倍物镜下每秒定位 5 个位置。 振动传感器可确保载物台在图像采集过程中完全静止。 最终结果是:即使以最快图像采集速度,显微镜也能在成像的最佳时机拍摄到清晰的图像。 该性能的巨大提升源于优化了图像采集与载物台移动之间的同步。Quantum 载物台的优势:以小于 ±1 µ m 绝对精度高速定位随时手动移动载物台同时保持追踪载玻片的准确位置查看整个载玻片的高速采集
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  • 全球首款移动式(Mobile)PlantScreen植物表型分析平台在荷兰植物生态表型中心(NPEC)安装运行,这是该中心成立后安装运行的首套植物表型分析系统,整个平台采用可移动式设计,有轮子可以方便在温室内移动,被称为“可移动的高通量植物表型成像分析平台”。 该表型平台包括3个功能模块:自动叶绿素荧光成像测量、3D激光三角测量、RGB 3D成像测量。Automated Chlorophyll Fluorescence, 3D laser triangulation and RGB imaging. The data looks promising !主要功能特点? 自动叶绿素荧光成像:PSI于上世纪90年代首次将叶绿素荧光脉冲调制技术(PAM)与CCD技术结合,研制成功叶绿素荧光成像技术并商业化生产(FluorCam)(Ladislav Nedbal, etc. Kinetic imaging of chlorophyll fluorescence using modulated light. Photosynthesis Research, 2000),开创了叶绿素荧光技术的二维甚至三维时代,FluorCam叶绿素荧光成像技术成为植物生理性状表型分析的必选技术,也是目前灵敏度高、应用广泛、发表论文多的植物生理生态与表型分析技术,脉冲调制叶绿素荧光成像技术是目前被学术界广泛认可和应用的植物生理性状表型分析技术(Henning Tschiersch, etc. Establishment of integrated protocols for automated high throughput kinetic chlorophyll fluorescence analyses. Plant Methods, 2017),适用于从拟南芥、种苗(种子萌发幼苗)到水稻、小麦等中型作物及玉米等大型作物(可高达300cm)的光合作用效率、胁迫与抗胁迫等生理性状表型高通量分析与筛选。 ? 3D激光扫描成像测量:可对植株进行 3D建模;并自动获得叶面积、植株总叶面积、叶片投影面积、植株叶片投影总面积、叶面积指数、植株总叶面积指数、叶片紧实度、植株紧实度、株高、数字生物量、茎秆高度、茎秆长度、分枝数量等形态学参数。并可将叶绿素荧光成像、高光谱成像、红外热成像等在激光3D模型上进行投射,生成叶绿素荧光、高光谱、温度3D图像,实现真正的3D表型成像分析。? RGB 3D成像:对植株进行形态结构分析测量和颜色分割测量并计算相应参数指数等。独有的叶片生长追踪分析技术(leaf tracking protocol)和RGB“面具”功能,可为其它叶绿素荧光成像、高光谱成像、热成像等设置精准的ROI或者定义边界。 运行leaf tracking protocol叶片追踪分析功能、叶片分割分析功能、颜色分析? 可选配VNIR高光谱(光谱范围350-900nm或400-950nm)或SWIR高光谱(900-1700nm或1000-2350nm)成像分析单元,在线分析归一化指数NDVI、简单比值指数SR、改进的叶绿素吸收反射指数MCARI、改进的叶绿素吸收反射指数1MCARI1、优化土壤调整植被指数OSAVI、绿度指数G、转换类胡罗卜素指数TCARI、三角植被指数TVI、ZMI指数、简单比值色素指数SRPI、归一化脱镁作用指数NPQI、光化学植被反射指数PRI、归一化叶绿素指数NPCI、Carter指数、Lichtenthaler指数、SIPI指数、Gitelson-Merzlyak指数、花青素反射指数等 ? 可选配标配版红外热成像(分辨率640x480像素,灵敏度0.03摄氏度)或高分辨率高灵敏度红外热成像分析单元(分辨率1024x768像素,灵敏度0.02摄氏度)? 可选配3D NIR红外热成像单元,以研究分析植物水分分布情况,波段范围900-1700nm,分辨率638x500像素? 可选配可移动(集装箱式)生长舱/气候舱(Growth Capsule)。该生长舱/气候舱采用集装箱式设计,可方便移动运输,由一个独立的单元或两个单元组成其主要技术特点:1) 每个单元可独立调节环境条件,温度、湿度、光照及CO2调控并在线监测显示在触摸屏上2) 光照调控采用智能多通道LED光源,可选配冷白光、RGB三色光源、近红外等多色光源,不同波段光源可按不同比例搭配组成不同光质条件,可模拟昼夜节律、有云天气等,具备day/night、dawn/dusk、cloudy/sky等protocols3) 温度控制范围:-5~40摄氏度或10~40摄氏度(不受光照影响)4) 湿度控制范围:40%~80%5) 大小(双座):12.2m(L) x 2.45m(W) x 2.9m(H)6) 可遥控、远程数据下载7) 应用于植物培养监测:可选配叶绿素荧光、植物生理生态、光合作用监测8) 应用于植物表型分析:可选配XYZ三维扫描式PlantScreen植物表型成像分析系统 易科泰生态技术公司为您提供植物表型分析全面解决方案:? 手持式或便携式叶绿素荧光测量与成像技术? 手持式或便携式植物光谱与高光谱成像测量技术? 手持式或便携式红外热成像技术 ? FluorCam叶绿素荧光成像全面解决方案? FluorCam多光谱荧光成像技术全面解决方案? FKM多光谱荧光动态显微成像技术方案——细胞亚细胞水平分析植物性状? Specim高光谱成像技术全面解决方案? PlantScreen高通量植物表型成像分析技术? 叶绿素荧光成像、高光谱成像、红外热成像、多光谱成像、RGB成像综合集成技术方案
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  • 德国徕卡 MICA全场景显微成像分析平台迈入人人皆享的时代现在,每个人都可以利用显微镜获得更多发现消除超过 85% 的需要特殊专业知识的繁琐设置步骤大鼠大脑的组织切片。细胞核用 DAPI 染色(蓝色)、STL 用 FITC 染色(绿色)、星形胶质细胞 (GFAP) 用 Cy3 染色(黄色),新生神经元 (NeuN) 用 Cy5 染色(红色)。10x 宽场平铺扫描,同时采集 4个标记。减少 85% 的步骤,轻松获得首张图像获得首张图像的时间减少 1/3训练时间减少 1/2 技术支持:智能自动化所有光电数字元件均为全电动化和智能自动化。多模态显微成像分析中枢上只保留一个按钮,即打开按钮。所有过程都快速融入软件的工作流程中。智能成像只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。迈入触手可及的时代多模态显微成像分析中枢:观察样本所需的一切都集中在一个易于使用的系统中4 倍数据信息 100% 相关性通过绝对的时空相关性获取关键情境信息使用传统显微镜依次采集 & 使用 MICA 同时采集MICA 提供绝对相关标记,避免时空失配U2OS 细胞用 MitoTracker Green(线粒体结构,青色)和 TMRE(活性线粒体,品红色)染色。使用 63x/1.20 CS2 Water MotCORR 物镜在 2 分钟 100 帧依次采集两个通道。 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台 技术支持:4 个标记同时获取在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到不同结构的全部 4 个标记。同时采集多个标记可将采集速度至少提高 4 倍,并确保 100% 的时空分辨率。4 个标记 100% 相关在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到全部 4 个标记。这样就避免了依次采集过程中移动对象的标记之间发生时空失配——数据现在 100% 相关!FluoSync 专利技术FluoSync 是一种新的光谱分解方法,可快速实现同时成像。它可以检测多达 4 个不同的标记,实现真正的染料分离,并且不会出现时空失配。FluoSync 以独特的方法将专用硬件与新的混合分解方法结合在一起。 实时调节成像参数实验中需要时,可以从快速总览无缝切换到高分辨率细节创建总览在载体上找到样本结构,并观察结肠切片的总体形态。确定感兴趣区域以进行更详细的检查。获得更多的亚结构细节切换到下一个更高的放大倍率让您能够评估组织的完整性,并可定位适合进一步分析的区域。选择感兴趣的细胞开始查看更多细节,并选择单个细胞以获取亚细胞信息。但是,有些细节仍然模糊不清。选择感兴趣的细胞THUNDER 是获得更强对比度并看到更多细节的首选方法。这样您就可以做出正确的选择,进一步观察样本细节。获取亚细胞信息只需点击一下鼠标,即可从宽场模式切换到共聚焦模式来获取更多亚细胞信息。从亚细胞信息中发现更多添加 LIGHTNING 功能可获取亚细胞结构的更多细节,而且无缝集成到从快速总览到高分辨率细节的整个工作流程。使用:一致的成像参数MICA 将 IMC、 THUNDER 和 LIGHTNING 等透射光和荧光成像模式统一到一台多模态显微成像分析中枢中,适用于固定样本和活样本。点扫描共聚焦采用点扫描共聚焦和光学切片技术,在所有 3 个维度上都达到最高分辨率。针孔以物理方式阻挡非焦面信号,产生最佳的轴向分辨率,特别适合厚样本的 3D 成像。MICA 也是一台细胞培养装置被封闭的整个环境舱中可进行环境控制(温度、二氧化碳和湿度调节),为短期和长期活细胞观察提供理想条件。 由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(左半)和每孔 1000 个 U2OS 细胞 孔(右半)形成 3D 球状体。延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。黑白综合调制对比度。在整个实验过程中提供近似生理环境的条件由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(上排)和每孔 1000 个 U2OS 细胞(下排)在 5 个不同的时间点形成 3D 球状体。 延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。 绿色, GFP。 灰色,综合调制对比度。MICA 是一台细胞培养装置,可将样本保持处于最佳条件下并最大限度减少溶液挥发通过系统智能减少超过 60% 的流程步骤传统显微镜使用传统显微镜,您需要定义从样本到分析的各个实验设置步骤。MICA 自动化使用 MICA,系统智能可极大简化工作流程,从样本到获得发现只需 8 个步骤,省时省力。使用:Sample FinderMICA 的 Sample Finder 可快速、自动生成相关区域的焦面总览。手动定位并手动聚焦已经成为历史。OneTouch 自动照明只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。基于人工智能的分析MICA 利用人工智能识别图像中的对象,可使每一位研究人员高效、准确、放心地进行成像、分析并获得清晰的可视化结果。无需掌握成像处理技能。 简化整个工作流程 ,减少从样本到获得洞察所需的时间和工作量利用您的科学专业知识进行基于人工智能的线粒体图像分割训练U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素。63 倍放大,宽场模式13 小时延时。在整个实验过程中实现 100% 的可重现性和可重复性使用:像素分类器轻松训练 MICA 来识别图像中的对象,无需掌握图像处理技能。只需在图像上绘制示例,像素分类器即可学习再现输入信息并分割图像中的所有对象。在用户界面上进行注释利用简单易用的绘图工具直接在 MICA 用户界面的图像上训练人工智能。可重复使用的 AI 模型和项目参数默认在不同的项目中重复使用相同的采集设置,提高可再现性和可重复性。重复使用 AI 模型可确保不同项目和不同使用者之间的一致性和无偏分析。认识 MICA多模态显微成像分析中枢时代已经到来!体验未来。在关键应用中认识 MICA荧光多孔板测定MICA 可同时对 4 个标记成像,实现 100% 时空相关性。该关键应用展示了 MICA 如何用于荧光多孔板测定细胞凋亡中的 Caspase 3/7 活性。 U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素 (3μM) 。63 倍放大,宽场模式。13 小时延时。3D 组织成像MICA 可使您在实验需要时从快速总览无缝切换到高分辨率观察。了解 MICA 如何帮助您识别去酪氨酸化微管蛋白阳性细胞,以及如何从微管蛋白网络的总览进入图像分割。使用宽场和共聚焦成像,以 20x 和 63x 放大倍率采集的肠组织切片图像。使用 LIGHTNING 处理的 20 倍宽场图像,使用 THUNDER 处理的 63 倍共聚焦图像。细胞核以蓝色标记,线粒体以绿色标记,去酪氨酸化微管蛋白以红色标记。长期延时MICA 是一台活细胞培养系统,可将样本保持在生理条件下,并最大限度减少蒸发。了解 MICA 如何帮助您测量球状体生长和分析蛋白质表达水平。由每孔 1000 个稳定转染 MX1-GFP 细胞形成 3D 球状体。延时采集超过 72 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。灰色,综合调制对比度。
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  • 牛津仪器-科学相机、量子信息处理及光谱光学探测解决方案研发和制造商,开拓电子倍增CCD (EMCCD)技术推进弱光下工作的界限,专注台式共聚焦,显微成像,高速共聚焦成像系统。Andor的Dragonfly和Fusion软件结合提供的超分辨率技术,可以超越显微镜的衍射极限进行成像。 将您的研究从单分子扩展到整个生物体。 一体化系统选择基于相机的超分辨率技术—SRRF-Stream,迭代ClearView-GPU&trade 反卷积或称为dSTORM的定位技术。各项技术都为纳米级别的高分辨率成像提供了不同的视角。根据您的实验需要选择您的技术。Dragonfly得益于安道尔EMCCD和sCMOS技术,拥有自动变焦功能。该系统注重信噪比和图像还原性,因其出色的速度和灵敏度,应用范围从单分子到活细胞共聚焦、全内反射荧光显微镜到整个胚胎和厚组织成像等。Dragonfly提供3D实时可视化图像浏览,GPU加速反卷积,由此提高分辨率和去卷积速度。实力体现:生产力速度灵敏度扩展光谱范围量化结果厚样品成像Dragonfly成像平台的核心是一个新型微透镜共聚焦扫描头,与我们的高灵敏度相机紧密结合,并通过成像软件Fusion呈现。 其结果是速度比传统的共聚焦快10到20倍,无需等待逐点逐线形成图像。共聚焦并不总是合适的成像模式,有些标本例如酵母和其他非常薄的样品更加适合宽场荧光成像。Dragonfly利用激光宽场和ClearView&trade 反卷积在Fusion软件中提供高对比度和高分辨率成像。ClearView&trade 是CUDA-GPU加速,比常规解决方案快10-20倍。我们的创新设计(专利申请中)为同深度的同时多色TIRF成像提供色差矫正TIFR照明,使准确的空间信息能为您的实验结果提供详细的解释。你可以在样品中控制TIRF的临界角度和激发深度,也可以选择在更好的信噪比下,在斜照明或HILO模式中操作以获取更加微弱的信号。Dragonfly 200紧凑型200系列,适用于倒置和正置显微镜。200系列提供了Dragonfly的关键功能:共聚焦速度高达400 fps:Borealis&trade 增强型照明,适用于大而平坦的视野:ClearView-GPU&trade 去卷积 双相机采集:选择变焦和针孔尺寸。如您需要一台能够推进成像新技术的共聚焦产品时, 各项关键功能齐全的200系列即可满足您的需求。Dragonfly 500500系列提供所有成像模式和扩展功能。选择此型号能获得可扩展的成像范围: 使用TIRF观测细胞膜上的蛋白,或者使用SRRF-Stream和dSTORM超分辨率功能进行细胞中更深层的观测 满足大尺寸组织或活体样品的观测。500系列适合成像需求广泛的科研, 对于他们而言,将相关技术应用于同一样本的能力是一个很重要的功能。如果需要三种独立的成像技术,Dragonfly 500即可满足。
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  • [ 产品简介 ]蔡司全自动活细胞成像平台Celldiscoverer 7 ,是一个高度集成的研究及成像系统,将操作简便的自动化箱式显微镜与研究级倒置显微镜的成像质量和灵活性相结合,在调节光学元件的同时可进行自动校正、检测和聚焦样品。无论是对细胞培养、组织切片,或是小的模式生物体进行 2D 或 3D分析,都能通过这个可靠的自动化活细胞成像平台在更短的时间内采集更多的数据。自动校准程序确保可重复的结果。[ 产品特点 ]&bull 灵活的全自动显微镜&bull 自动校准、自动聚焦样品,提供可重复实验结果&bull 适配不同厚度、材质培养皿&bull 独特的暗室和箱式结构,自动加水装置,长时间稳定培养活细胞&bull 可扩展性强[ 应用领域 ]&bull 细胞生物学,细胞器运动&bull 药理学,药物筛选&bull 模式生物,机体精细结构动态观察&bull 发育生物学,胚胎发育长时间观察&bull 基因/遗传学,荧光蛋白动态过程等生命科学领域研究HeLa Kyoto 细胞表达 H2B-mCherry Tubulin eGFP(Neumann et al., Nature 2010 Apr.1. 464(7289):721-7),每 15 分钟拍摄一次,连续拍摄 72 小时,使用自动加水 (Autoimmersion)功能;绿色(eGFP)单通道、红色(mCherry)荧光,phase-gradient-contrast(PGC,梯度相衬成像),以及三通道的叠加图像。样本由德国海德堡 EMBL 化学生物中心实验室的 I. Charapitsa 提供使用 Celldiscoverer 7 对 348 孔板培养的细胞进行高通量扫描。SH-SY5Y 细胞,Plan-Apo 5x/0.25 物镜搭配 0.5x 变倍体(相当于 2.5x/0.12 物镜)进 行大视野高分辨扫描。高效率成像,每孔一次性成像,无需拼图。成像分辨率高,放大图像可清晰分辨单个细胞。样品由德国波恩神经退行性疾 病中心核心研究实验室 P.Denner 提供。小鼠脑膨胀显微成像,上图:全脑,左下图:轴突束,右下图:锥体细胞。样品置于底部厚度为 1.2 mm 聚苯乙烯上, 使用 2.5× 物镜拍摄 Z 轴序列的景深扩展图 像。染色:YFP 表达神经元。样品由美国麻省理工学院 Boyden 实验室的 S. Asano 提供。用 mitotracker 红色(线粒体)和 DNA 标记(细胞核)的原代肺成纤维细胞,利用共聚焦荧光通道和相机梯度衬度通道混合成像。样品由德国柏林夏里特医院的 A.C. Hocke 提供。
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  • 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台迈入人人皆享的时代现在,每个人都可以利用显微镜获得更多发现消除超过 85% 的需要特殊专业知识的繁琐设置步骤大鼠大脑的组织切片。细胞核用 DAPI 染色(蓝色)、STL 用 FITC 染色(绿色)、星形胶质细胞 (GFAP) 用 Cy3 染色(黄色),新生神经元 (NeuN) 用 Cy5 染色(红色)。10x 宽场平铺扫描,同时采集 4个标记。减少 85% 的步骤,轻松获得首张图像获得首张图像的时间减少 1/3训练时间减少 1/2 技术支持:智能自动化所有光电数字元件均为全电动化和智能自动化。多模态显微成像分析中枢上只保留一个按钮,即打开按钮。所有过程都快速融入软件的工作流程中。智能成像只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。迈入触手可及的时代多模态显微成像分析中枢:观察样本所需的一切都集中在一个易于使用的系统中4 倍数据信息 100% 相关性通过绝对的时空相关性获取关键情境信息使用传统显微镜依次采集 & 使用 MICA 同时采集MICA 提供绝对相关标记,避免时空失配U2OS 细胞用 MitoTracker Green(线粒体结构,青色)和 TMRE(活性线粒体,品红色)染色。使用 63x/1.20 CS2 Water MotCORR 物镜在 2 分钟 100 帧依次采集两个通道。 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台 技术支持:4 个标记同时获取在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到不同结构的全部 4 个标记。同时采集多个标记可将采集速度至少提高 4 倍,并确保 100% 的时空分辨率。4 个标记 100% 相关在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到全部 4 个标记。这样就避免了依次采集过程中移动对象的标记之间发生时空失配——数据现在 100% 相关!FluoSync 专利技术FluoSync 是一种新的光谱分解方法,可快速实现同时成像。它可以检测多达 4 个不同的标记,实现真正的染料分离,并且不会出现时空失配。FluoSync 以独特的方法将专用硬件与新的混合分解方法结合在一起。 实时调节成像参数实验中需要时,可以从快速总览无缝切换到高分辨率细节创建总览在载体上找到样本结构,并观察结肠切片的总体形态。确定感兴趣区域以进行更详细的检查。获得更多的亚结构细节切换到下一个更高的放大倍率让您能够评估组织的完整性,并可定位适合进一步分析的区域。选择感兴趣的细胞开始查看更多细节,并选择单个细胞以获取亚细胞信息。但是,有些细节仍然模糊不清。选择感兴趣的细胞THUNDER 是获得更强对比度并看到更多细节的首选方法。这样您就可以做出正确的选择,进一步观察样本细节。获取亚细胞信息只需点击一下鼠标,即可从宽场模式切换到共聚焦模式来获取更多亚细胞信息。从亚细胞信息中发现更多添加 LIGHTNING 功能可获取亚细胞结构的更多细节,而且无缝集成到从快速总览到高分辨率细节的整个工作流程。使用:一致的成像参数MICA 将 IMC、 THUNDER 和 LIGHTNING 等透射光和荧光成像模式统一到一台多模态显微成像分析中枢中,适用于固定样本和活样本。点扫描共聚焦采用点扫描共聚焦和光学切片技术,在所有 3 个维度上都达到最高分辨率。针孔以物理方式阻挡非焦面信号,产生最佳的轴向分辨率,特别适合厚样本的 3D 成像。MICA 也是一台细胞培养装置被封闭的整个环境舱中可进行环境控制(温度、二氧化碳和湿度调节),为短期和长期活细胞观察提供理想条件。 由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(左半)和每孔 1000 个 U2OS 细胞 孔(右半)形成 3D 球状体。延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。黑白综合调制对比度。在整个实验过程中提供近似生理环境的条件由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(上排)和每孔 1000 个 U2OS 细胞(下排)在 5 个不同的时间点形成 3D 球状体。 延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。 绿色, GFP。 灰色,综合调制对比度。MICA 是一台细胞培养装置,可将样本保持处于最佳条件下并最大限度减少溶液挥发通过系统智能减少超过 60% 的流程步骤传统显微镜使用传统显微镜,您需要定义从样本到分析的各个实验设置步骤。MICA 自动化使用 MICA,系统智能可极大简化工作流程,从样本到获得发现只需 8 个步骤,省时省力。使用:Sample FinderMICA 的 Sample Finder 可快速、自动生成相关区域的焦面总览。手动定位并手动聚焦已经成为历史。OneTouch 自动照明只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。基于人工智能的分析MICA 利用人工智能识别图像中的对象,可使每一位研究人员高效、准确、放心地进行成像、分析并获得清晰的可视化结果。无需掌握成像处理技能。 简化整个工作流程 ,减少从样本到获得洞察所需的时间和工作量利用您的科学专业知识进行基于人工智能的线粒体图像分割训练U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素。63 倍放大,宽场模式13 小时延时。在整个实验过程中实现 100% 的可重现性和可重复性使用:像素分类器轻松训练 MICA 来识别图像中的对象,无需掌握图像处理技能。只需在图像上绘制示例,像素分类器即可学习再现输入信息并分割图像中的所有对象。在用户界面上进行注释利用简单易用的绘图工具直接在 MICA 用户界面的图像上训练人工智能。可重复使用的 AI 模型和项目参数默认在不同的项目中重复使用相同的采集设置,提高可再现性和可重复性。重复使用 AI 模型可确保不同项目和不同使用者之间的一致性和无偏分析。认识 MICA多模态显微成像分析中枢时代已经到来!体验未来。在关键应用中认识 MICA荧光多孔板测定MICA 可同时对 4 个标记成像,实现 100% 时空相关性。该关键应用展示了 MICA 如何用于荧光多孔板测定细胞凋亡中的 Caspase 3/7 活性。 U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素 (3μM) 。63 倍放大,宽场模式。13 小时延时。3D 组织成像MICA 可使您在实验需要时从快速总览无缝切换到高分辨率观察。了解 MICA 如何帮助您识别去酪氨酸化微管蛋白阳性细胞,以及如何从微管蛋白网络的总览进入图像分割。使用宽场和共聚焦成像,以 20x 和 63x 放大倍率采集的肠组织切片图像。使用 LIGHTNING 处理的 20 倍宽场图像,使用 THUNDER 处理的 63 倍共聚焦图像。细胞核以蓝色标记,线粒体以绿色标记,去酪氨酸化微管蛋白以红色标记。长期延时MICA 是一台活细胞培养系统,可将样本保持在生理条件下,并最大限度减少蒸发。了解 MICA 如何帮助您测量球状体生长和分析蛋白质表达水平。由每孔 1000 个稳定转染 MX1-GFP 细胞形成 3D 球状体。延时采集超过 72 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。灰色,综合调制对比度。
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  • PlantScreen高通量植物表型成像分析平台由国际知名公司PSI公司研制生产,整合了LED植物智能培养、自动化控制系统、叶绿素荧光成像测量分析(可扩展多光谱荧光成像)、植物热成像分析、植物近红外成像分析、RGB真彩3D成像、高光谱成像、3D激光扫描成像分析、RhizoTron根系成像分析、自动条码识别管理、自动称重与浇灌系统等多项先进技术,以最优化的方式实现大量植物样品的全方位生理功能与形态结构自动成像分析,用于玉米、水稻、小麦、大豆及椰树等热带作物高通量表型成像分析测量、胁迫响应成像分析测量、生长分析测量、生态毒理学研究、性状识别、抗性筛选、作物遗传育种及植物生理生态分析研究等。PlantScreen技术特点:1.模块式结构,配置灵活,可选配不同的功能模块,系统具备强大的可扩展性2.全球领先的FluorCam叶绿素荧光成像技术,是作物生理生态功能性状的必备分析技术,配备独有的高灵敏度叶绿素荧光成像镜头,成像面积可选配35cm x 35cm或80cm x 80cm3.可选配不同的表型成像分析模块:1)叶绿素荧光成像单元,单幅成像面积35cm x 35cm或选配80cm x 80cm2)多激发光、多光谱荧光成像模块,包括GFP等荧光蛋白成像、多光谱荧光成像分析等3)3D RGB可见光成像分析单元,包括顶部和侧面两个高分辨率RGB镜头、0-360度旋转平台、光源灯4)高光谱成像分析单元,有VNIR高光谱和SWIR高光谱供选配5)红外热成像分析单元(标配顶部2维成像分析,可选配顶部与侧面3D成像分析),用于对植物干旱胁迫、气孔导度成像分析6)3D激光扫描单元,用于对作物3D点云模型和形态结构分析,PSI专业技术,可以把叶绿素荧光成像、高光谱成像等投射到3D点云模型上进行3D分析、作物生长模型研究等7)根系成像分析单元,RhizoTron根窗技术8)NIR(近红外)成像单元,用于对植物水分状态分析,可选配3D近红外成像9)自动称重与浇灌系统4.世界独创的智能LED光适应室,确保作物表型成像分析前稳定可比的光适应和暗适应5.Shoot & Root Phenotyping全面分析植物表型6.植物传送系统可根据客户需求定制、扩展7.客户定制智能LED温室或作物生长室(选配),可模拟昼夜节律、多云天气等,传送系统可自动将植物从生长室中传送至光适应室然后进入成像室进行成像分析,并远程在线浏览分析8.功能强大的操作系统及作物表型大数据平台,具备叶片跟踪监测功能、3D投射功能9.PSI表型研究中心专家团队技术支持,每年在美国和欧洲分别组织举办一次世界植物表型研讨会国际植物表型分析技术应用情况作为全球第一家研制生产FluorCam植物叶绿素荧光成像系统的厂家,PSI公司在植物表型成像分析领域处于全球的技术前列,其FluorCam叶绿素荧光成像系统最先应用于植物表型分析研究,代表性论文如Celine Rousseau等(High throughput quantitative phenotyping of plant resistance using chlorophyll fluorescence image analysis, Plant Methods 2013)。在FluorCam技术基础上集成RGB 3D成像分析、高光谱成像分析、近红外成像分析、红外热成像分析及激光雷达扫描分析等先进技术的PlantScreen全自动高通量植物表型成像分析平台,成为目前世界上最先进的表型组学和作物遗传育种研究设备(应用案例另附)。系统配置与工作原理:整套系统由自动化植物传送系统、光适应室、FluorCam叶绿素荧光成像、RGB成像、高光谱成像、根系成像、植物红外热成像、植物近红外成像、自动浇灌与称重系统、植物标识系统、控制系统及表型大数据平台等组成,温室或生长室内植物通过自动识别传送系统运送到光适应室内,然后进行必要的浇灌称重,再由传送带到成像室进行成像分析等,最后植物自动返回原位。系统服务器及数据分析平台在线采集分析并自动存储至数据库系统技术指标:1. 光适应室:对作物成像分析前进行均一稳定的光适应或暗适应,以确保植物表型分析数据的可靠性智能冷白LED(6500K)+远红LED(735nm)光源,对植物无辐射升温效应,光强1000 μmoles /m2/s 0-100%(步进增幅1%)可调适应室内由通风系统保持空气交流通风具备植物高度激光监测系统,以根据高度调整成像高度等具备激光定位系统,以调整控制植物移动与成像程序(imaging protocols)的同步性垂直帘门确保与环境光线及成像系统的隔离具备IP监测镜头以始终保持对系统运行和植物移动状况的监视规格容量8盆/培养托2.RGB 3D结构成像分析单元?a)2个高分辨率RGB镜头(顶部和侧面),新一代CMOS彩色传感器,分辨率12.8Mpix(4096x3000),像素大小3.45μmb)成像高度可客户定义或设置,范围0-1050mm,精确度3mmc)360度旋转平台、LED均一光源照明d)数据传输:千兆以太网e)测量参数:叶面积、植物紧实度/紧密度、叶片周长、偏心率、叶圆度、叶宽指数、植物圆直径、凸包面积、植物质心、生长高度、植物最大高度和宽度、相对生长速率等f)可进行颜色分割分析、植物适合度评价、实验生长期叶面积动态变化比较分析、绿度指数、颜色分级分析(健康绿色、亮绿色、暗绿色、其他颜色)等表型参数3.FluorCam叶绿素荧光成像单元a)成像面积:35×35cm或选配80x80cmb)橙色620nm LED脉冲调制测量光源c)双色光化学光,橙色620nm LED和冷白LED光源d)冷白LED饱和光闪,最大光强4000 μmol(photons)/m2.se)735nm LED红外光源用于测量Fo’等f)可选配蓝色光源与7位滤波轮,用于GFP稳态荧光测量g)高灵敏度叶绿素荧光成像专业CCD传感器,1.4M分辨率, A/D 16比特,具备视频模式和快照模式h)测量参数:Fo、Fm、Fv、Fo' 、Fm' 、Fv' 、Ft、Fv/Fm、Fv' /Fm' 、PhiPSII、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等,用于分析植物光合效率、适合度、生物与非生物胁迫及作物抗性、恢复力等i)Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等完备自动化测量程序(protocols)与测量参数,如Fv/Fm程序测量时间仅需10sj)叶绿素荧光数据在线分析,包括柱状图、测量参数图、数据表格等,具备自定义图像分割等功能4. 多光谱荧光成像模块不仅可以运行PAM叶绿素荧光成像,还可以进行GFP/YFP等荧光蛋白成像、多光谱荧光成像9种LED激发光源:UV(365nm)、青色光源(440nm)、蓝色光源(470nm)、绿色光源(530nm)、琥珀色光源(590nm)、橙色光源(630nm)、深红色光源(660nm)、远红光源(730nm)及冷白光源(5700K)可成像分析多酚类(黄酮醇类、花青素等)、N素指数等分辨率1360x1024像素,binning 2x2、680x512像素5. 红外热成像单元成像传感器:焦平面阵列微测热辐射计,分辨率 640×480 像素,灵敏度30mK(0.03°C),波段7.5-13μm;可选配高分辨率红外热成像,分辨率可达1024x768像素,灵敏度20mK(0.02°C)温度范围 -20 – 120℃,分辨率0.03℃@30℃/30mK专用成像光源:冷白LED光源板,用于给测量植物提供稳定热环境,6500K,最大光强 1000 μmol(photons)/m2.s,0-100%可调具备温度动态Protocols,光照强度、持续时间、热成像分布数据同步获取,以研究分析植物温度分布动态等具备温度参考传感器(reference sensors)测量参数:植物每一点的实际温度,植物表面温度分布图专业分析软件用于数据获取、分析、存储等6. NIR成像分析单元(选配):用于成像监测分析植物水分状态分布,具备假彩调色板,可以方便对比分析,快速监测脱水植物,因而可以监测评估干旱胁迫条件下植物水分的动态变化响应及水分利用效率等可与RGB成像形态结构参数及FluorCam光合效率参数进行相关分析等;可完整记录追溯干旱过程与复水过程的动态响应等通过测量水分吸收光谱和940nm参考光谱,有效避免环境光及阴影效应InGaAs传感器,有效芯片大小9.6x7.7mm,波段范围900-1700nm,分辨率638x510像素,帧频118fps,A/D 14比特可选配顶部与侧面双镜头三维成像分析选配根系成像分析单元,以对根系进行近红外成像分析7. 可见光-近红外高光谱成像单元 成像波长范围:400-950nm(或350-900nm)成像传感器:推扫式线性扫描传感器,配备专用扫描光源像素色散:0.28nm/pixel光谱分辨率0.8nm FWHM光谱带数(波段数):1920个波段空间分辨率:1000入射狭缝宽度:25μm帧频:45fpsCMOS检测器,光圈F/2.0,GigE网络接口自动参考校准,线性扫描,高度可调测量参数:每个波段的反射光谱成像图及全光谱曲线,并可自动计算以下植被指数:归一化指数NDVI、简单比值指数SR、改进的叶绿素吸收反射指数MCARI、改进的叶绿素吸收反射指数1MCARI1、最优化土壤调整植被指数OSAVI、绿度指数G、转换类胡罗卜素指数TCARI、三角植被指数TVI、ZMI指数、简单比值色素指数SRPI、归一化脱镁作用指数NPQI、光化学植被反射指数PRI、归一化叶绿素指数NPCI、Carter指数、Lichtenthaler指数、SIPI指数、Gitelson-Merzlyak指数、花青素反射指数等等8. 短波红外高光谱成像单元成像波长范围:900-1700nm成像传感器:推扫式线性扫描传感器,配备专用扫描光源光谱分辨率:2nm(FWHM)光谱带数:510个波段空间分辨率636测量参数:每个波段的反射光谱成像图及全光谱曲线,无损测量植物整体及不同部位水分含量变化(右图中蓝色越深含水量越高)9. 3D激光扫描单元:顶部与侧面激光扫描,660nm激光,用于植物精确3D模型构建,分辨率低于1mm顶部扫描距离60cm,客户定义侧面扫描距离3D点云模型,RGB成像、叶绿素荧光成像数据等可与3D模型叠加分析植物结构、生物量、叶片数量、叶面积、叶片倾斜角度、植物高度等结构形态参数10.根系成像分析RhizoTron根窗技术,全自动成像分析,标配根窗44x29.5x5.8cm(高x宽x厚度)不仅可对根系成像分析,还可对地上苗(shoot)进行成像分析,苗高最大50cm新一代CMOS传感器,分辨率12.3MP均一LED光源3层定位(顶部、中部、底部)根系浇灌系统(选配),3个水箱独立运行测量参数包括:根深(或高度)、根冠宽度、高度与宽度比值、根冠面积、根冠紧实度、根系总长、轴对称性、根尖数、根节数等11.自动浇灌与称重单元测量参数:实际重量、浇水体积、最终重量、每个培养盆的相对重量操作指令:每个培养盆浇相同量的水(绝对克数或者实际重量的百分比);保持相对重量;自定义每个培养盆的浇灌量模拟不同干旱或者内涝胁迫;称重前自动零校准,还可通过已知重量(如砝码)物品自动进行再校准每个培养盆的浇水量、日期、时间可分别程序控制记录以创建不同干旱胁迫梯度等,并且与整个系统的表型大数据无缝结合分析称重精度:大型植物±2g,小型植物±0.2g浇灌单元:流速3L/min,浇灌口高度可自动上下前后调整,保证最佳浇灌位置12.自动化植物传送系统传送植物大小:根据客户需求,最高可达200cm传送带容纳量:50盆植物(1000株小型植物),可扩展100盆、200盆、400盆等更大容量 ;表型分析通量依不同的protocol而定,100分钟可以完成整个系统载荷植物样品的表型分析,可随机传送至成像室进行成像分析、随机浇灌培养盆:防UV聚丙烯材料,标准5L(口径24cm)培养盆,可通过适配器应用3L培养盆,可360度旋转具备手动载样环(manual loading loop)以便在系统待机模式下手动载样分析实验、小组实验分析等具备激光植物高度测量监测系统和激光定位系统环形传送通道:具变速箱的三相异步马达,功率200-1000W,最大负载500kg,速度150mm/s,传送带材料为防UV高耐用PVC移动控制系统:中央处理单元CJ2M-CPU33;数字输入/输出最大2560点;输入/输出单元最大40;温度传感器Pt1000,Pt100,PTC;PLC通讯百兆以太网;OMRON MECHATROLINK-II 最大16轴精确定位RFID标签和QR植物辨识系统,自动读取每个样品托盘上的二维编码;辨识距离2-20cm;通讯RS485;可读取1维、2维和QR码;配备LED光源便于弱光下辨识环境监测传感器:温湿度传感器、PAR光合有效辐射传感器由主控制系统分别自动调控每一个样品托盘的测量时间、测量顺序、测量参数、浇灌时间和浇灌量,从测量单元到培养室的样品运转整个过程可实现完全自动控制,在无人值守情况下根据预设程序自行完成全部实验测量工作。13.主控制表型大数据平台组成:控制调度服务器、客户端应用服务器、数据服务器、可编程序逻辑控制器及专业分析软件等,数据容量12TB自动控制与分析功能:具备用户定义、可编辑自动测量程序(protocols),根据用户设定程序自动完成全部实验。数据结果自动存储并分析,分析的数据结果可自动以动态曲线的形式显示。MySQL数据库管理系统,可以处理拥有上千万条记录的大型数据库,支持多种存储引擎,相关数据自动存储于数据库中的不同表中植物编码注册功能:包括植物识别码、所在托盘的识别码等存储在数据库中,测量时自动提取自动读取条形码或RFID标签触摸屏操作界面,在线显示植物托盘数量、光线强度、分析测量状态及结果等,轻松通过软件完全控制所有的机械部件和成像工作站可用默认程序进行所有测量,也可通过开发工具创建自定义的工作过程,或者手动操作LED光源开启或关闭、RGB成像、叶绿素荧光成像、高光谱成像、红外热成像、3D激光扫描、称重及浇灌等叶片跟踪监测功能(leaf tracking)模块,可以持续跟踪监测叶片的生长、变化等等3D投射技术,可以通过高分辨率RGB镜头 或激光扫描构建3D模型,通过投射技术,将与其它传感器所得数据如叶绿素荧光、红外热成像温度数据、近红外数据、高光谱数据等投射在3D模型上一起进行对比分析等允许用户通过互联网远程访问,进行数据处理、下载及更改实验设计所测量的所有数据都是透明的、可以追溯的具备用户权限分级功能,防止其他人员误操作影响实验厂家远程故障诊断,软件终身免费升级执行标准:CE认证标准CSN EN 60529 防护等级标准CSN 33 01 65 导体侧识别标准CSN 33 2000-3 基础特性标准CSN 33 2000-4-41ed.2 电击保护标准CSN 33 2000-4-43 电源过载保护标准CSN 33 2000-5-51ed.2 通用规则标准CSN 33 2000-5-523 容许电流标准CSN 33 2000-5-54ed.2 接地与保护导体标准CSN EN 55011 工业、科学与医学设备测量电磁干扰的范围与方法2006/42/EG 机械指令标准73/23/EEG 低电压指令标准2004/108/EG 电磁相容性指令标准附:部分参考文献1.M. Sorrentino, G. Colla, Y. Rouphaelouphael, K. Panzarová, M. Trtílek. 2020. Lettuce reaction reaction to drought stress: automated high-throughput phenotyping of plant growth and photosynthetic performance. ISHS Acta Horticulturae 1268.2.Adhikari, P., Adhikari, T. B., Louws, F.F. J., & Panthee, D. R. 2020. Advances and Challenges in Bacterial Spot Resistance Breeding in Tomato (Solanum lycopersicum L.). International Journal of Molecular Sciences, 21(5), 1734.3.Yang, W., Feng, H., Zhang, X., Zhang, J., Doonan, J. H., Et Al. 2020. Crop Phenomics and High-throughput Phenotyping: Past Decades, Current rent Challenges and Future Perspectives. Molecular Plant, 13(2), 187-2144.Husi?ková, A., Humplík, J. F., Hybl, M.,M., Spíchal, L., & Lazár, D. 2019. Analysis of Cold-Developed vs. Cold-Acclimated Leaves Reveals Various Strategies of Cold Acclimation of Field Pea Cultivars. Remote Sensing, 11(24), 29645.Singh, A.K., Yadav, B.S., Dhanapal, S., Berliner, M., Finkelshtein, A., Chamovitz, D.A. 2019. CSN5A Subunit of COP9 Signalosome Temporally Buffers Response to Heat in Arabidopsis. Biomolecules 2019, 9, 805.6.Jane?ková, H., Husi?ková, A., Lazár, D., Ferretti, U., Pospí?il, P., & ?pundová, M. 2019. Exogenous application of cytokinin during dark senescence eliminates the acceleration of photosystem II impairment caused by chlorophyll b deficiency in barley. Plant Physiology and Biochemistry, 136, 43–517.Marchetti, C. F., Ugena, L., Humplík, J. F., Polák, M., et al. 2019. A Novel Image-Based Screening Method to Study Water-Deficit Response and Recovery of Barley Populations Using Canopy Dynamics Phenotyping and Simple Metabolite Profiling. Frontiers in Plant Science, 10, 1252.8.Rungrat T., Almonte A. A., Cheng R.,R., et al. 2019. A Genome-Wide Association Study of Non-Photochemical Quenching in response to local seasonal climates in Arabidopsis thaliana, Plant Direct, 3(5), e001389.Pavicic M, et al. 2019. High throughput invitro seed germination screen identifed new ABA responsive RING?type ubiquitin E3 ligases inArabidopsis thaliana. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 139: 563-57510.Wen Z., et al. 2019. Chlorophyll fluorescence imaging for monitoring effects of Heterobasidion parviporum small secreted protein induced cell death and in planta defense gene expression. Fungal Genetics and Biology 126: 37-4911.Gao G., Tester M. A., Julkowska M. 2019. The use of high throughput phenotyping for assessment of heat stress-induced changes in Arabidopsis. Biorvix, 838102.12.Paul K., Sorrentino M., Lucini L., Rouphaelouphael Y. F., Cardarelli M., Bonini P., Begona M., Reyeynaud H.E., Canaguier R., Trtílek M., Panzarová K., Colla G. 2019. A Combined Phenotypic and Metabolomic Approach for Elucidating the Biostimulant Action of a Plant-derived Protein Hydrolysate on Tomato Grown un under Limited Water Availability. Frontiers in Plant Science, 10:49313.Wang L., Poque S., Valkonen J. P. T. 2019. Phenotyping viral infection in sweetpotato using a high-throughput chlorophyll fluorescence and thermal imaging platform. Plant Methods, 15, 11614.Paul K, Sorrentino M, Lucini L, Rouphaelouphael Y, Cardarelli M, Bonini P, Reynaud H,H, Canaguier R, Trtílek M, Panzarová K, Colla G. 2019. Understanding the Biostimulant Action of Vegetal-Derived Protein Hydrolysates by High-Throughput Plant Phenotyping and Metabolomics: A Case Study on Tomato. Frontiers in Plant Science, 10:47.15.Gonzalez-Bayon, R., Shen, Y., Groszman, M., Zhu, A., Wang, A., et al. 2019. Senescence and defense pathways contribute to heterosis. Plant Physiology, 180, 240–252.16.Julkowska, M. M., Saade, S., Agarwal Al, G., Gao, G., Pailles, Y., et al. 2019. MVApp–Multivaria analysis application for streamlined data analysis and curation. Plant Physiology, 180, 1261–1276.17.Ganguly D. R., Stone B. A B., Eichten S. E., Pogson B. J. 2019. Excess light priming in Arabidopsis thaliana genotypes with altered DNA methylomes, G3: Genes, Genomes, Genetics, 9(11), 3611-362118.Ameztoy, K., Baslam, M., Sánchez-Lópeópez, á. M., Mu?oz, F. J., et al. 2019. Plant responses to fungal volatiles involve global post-translational thiol redox proteome changes that affect photosynthesis. Plant, Cell & Environment, 42(9), 2627-2644.19.Adhikari N. D., Simko I., Mou B. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors 19, 4814.20.Ugena L, Hylová A, Podle?áková K,K, Humplík J.F., Dole?al K, Diego N, Spíchal L. 2018. Characterization of Biostimulant Mode of Action Using Novel Multi-Trait High-Throughput Screening of of Arabidopsis Germination and Rosette Growth. Frontiers in Plant Science, 9:1327.21.Lyu, J. I., Kim, J. H., Chu, H., Taylor, M.M. A., Jung, S., et al. 2018. Natural allelic variation of GVS1 confers diversity in the regulation of leaf senescence in Arabidopsis. New Phytologist, 221(4), 2320-233422.Ganguly D. R., Crisp P. A., Eichten S. R., et al. 2018. Maintenance of pre-existing DNA methylation states through recurring excess-light stress. Plant Cell and Environment. 41(7), 1657-1672.23.Rouphael Y., Spíchal L., Panzarová K.,K., et al. 2018. High-throughput Plant Phenotypin ping for Developing Novel Biostimulants: From Lab to Field or FroFrom Field to Lab? Front. Plant Sci., 9:1197.24.Coe R. A., Chatterjee J., Acebron K., et al. 2018. High-throughput chlorophyll fluorescence screening of Setaria viridis for mutants with altered CO2 compensation points. Functional Plant Biology. 45(10), 1017-102525.Fichman Y., Koncz Z., Reznik N., et al. 2018. SELENOPROTEIN O is a chloroplast protein involved in ROS scavenging and its absence increases dehydration tolerance in Arabidopsis thaliana. Plant Science. 41(7), 1657-167226.Sytar O., Zivcak M., Olsovska K., Brestic M. 2018. Perspectives in High-Throughput Phenotyping of Qualitative Traits at the Whole-Plant Level. In: Sengar R., Singh A. eds Eco-friendly Agro-biological Techniques for Enhancing Crop Productivity. Springer, Singapore, 213-243.27.De Diego N., Fürst T., Humplík J. F., et al. 2017. An Automated Method for High-Throughput Screening of Arabidopsis Rosette Growth in Multi-Well Plates and Its Validation in Stress Conditions. Frontiers in Plant Science. 8.28.Lobos G. A., Camargo A. V., del Pozo A., et al. 2017. Editorial: Plant Phenotyping and Phenomics for Plant Breeding. Front. Plant Sci. 8.29.Pavicic M., Mouhu K., Wang F., et al. 2017. Genomic and Phenomic Screens for Flower Related RING Type Ubiquitin E3 Ligases in Arabidopsis. Frontiers in Plant Scienc. Volume 8.30.Rungrat T., Awlia M., Brown M. et al. 2017. Monitoring Photosynthesis by In Vivo Chlorophyll Fluorescence: Application to High-Throughput Plant Phenotyping. The Arabidopsis Book 14: e0185. 201631.Simko I., Hayes R. J. and Furbank R. T. 2017. Non-destructive Phenotyping of Lettuce Plants in Early Stages of Development with Optical Sensors. Frontiers in Plant Science. 2016 7:1985.32.Sytar O., Brestic M., Zivcak M., et al. 2017. Applying hyperspectral imaging to explore natural plant diversity towards improving salt stress tolerance. In Science of The Total Environment, 578, 90-99.33.Sytar O., Brücková K., Kovár M., et al. 2017. Nondestructive detection and biochemical quantification of buckwheat leaves using visible VIS and near-infrared NIR hyperspectral reflectanceimaging. Journal of Central European Agriculture. 184, 864-87834.Tschiersch H., Junker A., Meyer R. C., & Altmann, T. 2017. Establishment of integrated protocols for automated high throughput kinetic chlorophyll fluorescence analyses. Plant Methods, 13, 54.35.Weber J., Kunz, C., Peteinatos, G., et al. 2017. Utilization of Chlorophyll Fluorescence Imaging Technology to Detect Plant Injury by Herbicides in Sugar Beet and Soybean. Weed Technology, 1-13.36.Awlia M., Nigro A., Fajkus J., Schm?ckel S.M., Negr?o S., Santelia D., Trtílek M., Tester M., Julkowska M.M. and Panzarová K. 2016: High-throughput non-destructive phenotyping of traits contributing to salinity tolerance in Arabidopsis thaliana. Submitted Frontiers in Plant Sciences.37.Bell J. and Dee M. H. 2016. The subset-matched Jaccard index for evaluation of Segmentation for Plant Images. Front Plant Sci. 2016 7: 1985.38.Bell J. and Dee M. H. 2016. Watching plants grow – a position paper on computer vision and Arabidopsis thaliana. IET Computer Vision. Volume 11, Issue 2, March 2017, p. 113 – 121.39.Bush M.S., Pierrat O, Nibau C, et al.2016. eIF4A RNA Helicase Associates with Cyclin-Dependent Protein Kinase A in Proliferating Cells and is Modulated by Phosphorylation. Plant Physiol. 2016 Jul 7,40.Cruz J. A., Savage L. J., Zegarac R., et al. 2016. Dynamic Environmental Photosynthetic Imaging Reveals Emergent Phenotypes. Cell Systems, Volume 2, Issue 6, 2016, Pages 365-377.41.Sytar O., Brestic M., Zivcak M . 2016. Noninvasive Methods to Support Metabolomic Studies Targeted at Plant Phenolics for Food and Medicinal Use. Plant Omics: Trends and Applications.42.Humplik J.F., Lazar D., Husickova A. and Spichal L. 2015: Automated phenotyping of plant shoots using imaging methods for analysis of plant stress responses – a review. Plant Methods 11:29.43.Humplik J.F., Lazar D., Fürst, T., Husickova A., Hybl, M. and Spichal L. 2015: Automated integrative high-throughput phenotyping of plant shoots: a case study of the cold-tolerance of pea Pisum sativum L.. Plant Methods 19 11:20.44.Brown T.B., Cheng R., Sirault R.R., Rungrat T., Murray K.D., Trtilek M., Furbank R.T., Badger M., Pogson B.J., and Borevitz J.O. 2014: TraitCapture: genomic and environment modelling of plant phenomic data. Current Opinion in Plant Biology 18: pp. 73-79.45.Mariam Awlia, et.al, 2016, High-Throughput Non-destructive Phenotyping of Traits that Contribute to Salinity Tolerance in Arabidopsis thaliana, Frontiers in Plant Science, DOI: 10.3389/fpls.2016.0141446.Ivan Simko, et.al, 2016, Phenomic approaches and tools for phytopathologists, Phytopathology, DOI: 10.1094/PHYTO-02-16-0082-RVW47.Tepsuda Rungrat, et.al, 2016, Using Phenomic Analysis of Photosynthetic Function for Abiotic Stress Response Gene Discovery, The Arabidopsis Book 14: e0185, The American Society of Plant Biologists, DOI: http://dx.doi.org/10.1199/tab.018548.Jorge Marques da Silva, 2016, Monitoring Photosynthesis by In Vivo Chlorophyll Fluorescence: Application to High-Throughput Plant Phenotyping, Applied Photosynthesis - New Progress, Edition 1, Chapter 1, pp:3-22, DOI: http://dx.doi.org/10.5772/6239149.Maxwell S. Bush, et.al, 2016, eIF4A RNA Helicase Associates with Cyclin-Dependent Protein Kinase A in Proliferating Cells and is Modulated by Phosphorylation. Plant Physiol., DOI: 10.1104/pp.16.0043550.ángela María Sánchez-López, et.al, 2016, Volatile compounds emitted by diverse phytopathogenic microorganisms promote plant growth and flowering through cytokinin action, Plant, Cell and Environment, DOI: 10.1111/pce.1275951.Jan Humplík, et.al, 2015, Automated phenotyping of plant shoots using imaging methods for analysis of plant stress responses – a review, Plant Methods, 11: 2952.Jan Humplík, et.al, 2015, Automated integrative high-throughput phenotyping of plant shoots: a case study of the cold-tolerance of pea Pisum sativum L., Plant Methods, 11: 2053.Pip Wilson, et.al, 2015, Genomic Diversity and Climate Adaptation in Brachypodium, Chapter Genetics and Genomics of Brachypodium, Volume 18 of the series Plant Genetics and Genomics: Crops and Models, pp:107-12754.Tim Brown, et.al, 2014, TraitCapture: genomic and environment modelling of plant phenomic data, Current Opinion in Plant Biology, 18: 73-7955. Jan Humplík, et.al, 2014, High-throughput plant phenntyping facility in Palacky University in Olomouc, International Symposium on Auxins and Cytokinins in Plant Development附:其它表型分析平台:1、FKM多光谱荧光动态显微成像系统右图引自《Nature Plants》2016, Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency by Heather M. Whitney等2、PlantScreen-R移动式表型分析平台(下左图):用于大田植物叶绿素荧光成像分析、RGB成像分析、红外热成像分析、3D激光扫描测量分析等3、PlantScreen台式及移动式植物表型分析平台(参见上右图)1)3D RGB彩色成像分析2)FluorCam叶绿素荧光成像分析3)FluorCam多光谱荧光成像分析4)高光谱成像分析5)红外热成像分析6)PAR吸收/NDVI成像分析7)近红外3D成像分析4、PlantScreen样带式表型分析平台5、PlantScreen 植物表型三维自动扫描成像分析平台
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  • 荧光小动物活体成像 400-860-5168转3078
    活体成像技术是肿瘤生长观察和迁移监控的理想方法,可以实现对同一生物个体的长时间示踪,提高了实验数据的可比性,提供了最为直接的生物个体水平的证据。荧光蛋白法是使用得最为成熟和普遍的方法,即建立转基因表达GFP/RFP的肿瘤细胞系,植入裸鼠体内,通过终端的检测设备激发GFP/RFP即可示踪肿瘤的生长和迁移。荧光探针法是近年来较为流行的方法,即向肿瘤动物模型直接注射NIR(近红外)染料标记的探针,由于肿瘤所特有的生物学特性,探针会富集在肿瘤生长的区域,通过终端的检测设备激发NIR染料即可观察肿瘤。FluorVivo系列:从个体到细胞的体内成像 FluorVivo系列是专注于荧光检测的小动物活体成像系统,其产品线提供了一套从个体水平到细胞水平的体内成像的解决方案。 FluorVivo系列的技术优势 全波长范围内用户定制通道,通道数量1或3可选。同时成像GFP和RFP。毫秒级快速成像,实时动态监测,可生成Video。实时光谱分离,去除背景荧光,有效提升信噪比。配备脚踏板成像装置,方便易用,可开门操作。标配FluorVivo成像与分析软件。全波长范围内用户定制通道 不同的用户有不同的检测需求,而市面上大多数的相关设备均是预制通道,限制了用户对染料的选择。FluorVivoTM系列可以在全光谱范围内(从蓝光至近红外),由用户根据自身的需求定制通道,有效节约您的硬件投资。 毫秒级快速成像,可生成Video FluorVivoTM系列可以实现毫秒级曝光,快速生成图像,并且可以长时间动态示踪,生成Video 实时光谱分离 动物体在可见荧光的范围内本身具有比较强的自发荧光,FluorVivoTM系列的软件预制了光谱分离 (Spectral Separation/Unmixing)的算法,能够有效去除杂光的干扰,凸显靶标物的信号。 方便快捷,可开门操作 由于具有光谱分离的技术,FluorVivoTM系统可以实现开门操作,这样则无需麻醉动物,用双手固定动物即可快速拍照。同时,FluorVivoTM系统配备有脚踏板成像装置,在双手固定动物的同时,用脚触动脚踏板即可拍照,无需双人配合。 FluorVivo成像与分析软件 FluorVivo系列的所有型号都标配有FluorVivo软件,界面友好,提供图像捕获、视频录制、信号区域快速识别与定量、背景扣除与光谱分离等操作 FluorVivo Pathfinder——荧光介导的小动物手术操作平台 在活体成像观察完成后,需要切取动物模型的病灶(包括原发灶和转移灶)进行组织化学等分析。FluorVivoTM Pathfinder是荧光介导的小动物手术操作平台,使得这一过程变得“特异性可视化”,借助光源的照明能够准确地区分出病灶与健康组织,且不易遗漏微小的转移灶。 FluorVivoTM Mag 体内细胞成像系统——in vivo Cell Imaging FluorVivo Mag 体内细胞成像系统——in vivo Cell Imaging 利用FluorVivoTMMag可以在活体内观察到单细胞,有助于深入了解肿瘤细胞与宿主微环境的相互作用,提供更多的信息。同时,FluorVivoTMMag也可以作为一个具有放大作用的外科手术操作平台。FluorVivoTMMag通过FluorVivo软件驱动第三方的体视显微镜/荧光显微镜,同时再加配INDEC Biosystems的数码彩色相机。 用户可以根据自身的需求选择不同的显微镜。一份单拷贝的FluorVivo软件即可分别驱动FluorVivoTM 100/300的暗箱和FluorVivoTM Mag,构成一个从个体到细胞的体内成像平台。用户可根据预算构建平台,例如,先购买暗箱式的成像系统,再升级连接到第三方的显微镜设备。 INDEC Biosystems和AntiCancer属于合作伙伴关系,前者制造小动物活体成像的硬件检测设备和数据分析软件,后者提供各种荧光转染的细胞系和转基因动物模型,且为INDEC Biosystems提供应用服务。
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  • 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台迈入人人皆享的时代现在,每个人都可以利用显微镜获得更多发现消除超过 85% 的需要特殊专业知识的繁琐设置步骤大鼠大脑的组织切片。细胞核用 DAPI 染色(蓝色)、STL 用 FITC 染色(绿色)、星形胶质细胞 (GFAP) 用 Cy3 染色(黄色),新生神经元 (NeuN) 用 Cy5 染色(红色)。10x 宽场平铺扫描,同时采集 4个标记。减少 85% 的步骤,轻松获得首张图像获得首张图像的时间减少 1/3训练时间减少 1/2 技术支持:智能自动化所有光电数字元件均为全电动化和智能自动化。多模态显微成像分析中枢上只保留一个按钮,即打开按钮。所有过程都快速融入软件的工作流程中。智能成像只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。迈入触手可及的时代多模态显微成像分析中枢:观察样本所需的一切都集中在一个易于使用的系统中4 倍数据信息 100% 相关性通过绝对的时空相关性获取关键情境信息使用传统显微镜依次采集 & 使用 MICA 同时采集MICA 提供绝对相关标记,避免时空失配U2OS 细胞用 MitoTracker Green(线粒体结构,青色)和 TMRE(活性线粒体,品红色)染色。使用 63x/1.20 CS2 Water MotCORR 物镜在 2 分钟 100 帧依次采集两个通道。 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台 技术支持:4 个标记同时获取在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到不同结构的全部 4 个标记。同时采集多个标记可将采集速度至少提高 4 倍,并确保 100% 的时空分辨率。4 个标记 100% 相关在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到全部 4 个标记。这样就避免了依次采集过程中移动对象的标记之间发生时空失配——数据现在 100% 相关!FluoSync 专利技术FluoSync 是一种新的光谱分解方法,可快速实现同时成像。它可以检测多达 4 个不同的标记,实现真正的染料分离,并且不会出现时空失配。FluoSync 以独特的方法将专用硬件与新的混合分解方法结合在一起。 实时调节成像参数实验中需要时,可以从快速总览无缝切换到高分辨率细节创建总览在载体上找到样本结构,并观察结肠切片的总体形态。确定感兴趣区域以进行更详细的检查。获得更多的亚结构细节切换到下一个更高的放大倍率让您能够评估组织的完整性,并可定位适合进一步分析的区域。选择感兴趣的细胞开始查看更多细节,并选择单个细胞以获取亚细胞信息。但是,有些细节仍然模糊不清。选择感兴趣的细胞THUNDER 是获得更强对比度并看到更多细节的首选方法。这样您就可以做出正确的选择,进一步观察样本细节。获取亚细胞信息只需点击一下鼠标,即可从宽场模式切换到共聚焦模式来获取更多亚细胞信息。从亚细胞信息中发现更多添加 LIGHTNING 功能可获取亚细胞结构的更多细节,而且无缝集成到从快速总览到高分辨率细节的整个工作流程。使用:一致的成像参数MICA 将 IMC、 THUNDER 和 LIGHTNING 等透射光和荧光成像模式统一到一台多模态显微成像分析中枢中,适用于固定样本和活样本。点扫描共聚焦采用点扫描共聚焦和光学切片技术,在所有 3 个维度上都达到最高分辨率。针孔以物理方式阻挡非焦面信号,产生最佳的轴向分辨率,特别适合厚样本的 3D 成像。MICA 也是一台细胞培养装置被封闭的整个环境舱中可进行环境控制(温度、二氧化碳和湿度调节),为短期和长期活细胞观察提供理想条件。 由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(左半)和每孔 1000 个 U2OS 细胞 孔(右半)形成 3D 球状体。延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。黑白综合调制对比度。在整个实验过程中提供近似生理环境的条件由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(上排)和每孔 1000 个 U2OS 细胞(下排)在 5 个不同的时间点形成 3D 球状体。 延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。 绿色, GFP。 灰色,综合调制对比度。MICA 是一台细胞培养装置,可将样本保持处于最佳条件下并最大限度减少溶液挥发通过系统智能减少超过 60% 的流程步骤传统显微镜使用传统显微镜,您需要定义从样本到分析的各个实验设置步骤。MICA 自动化使用 MICA,系统智能可极大简化工作流程,从样本到获得发现只需 8 个步骤,省时省力。使用:Sample FinderMICA 的 Sample Finder 可快速、自动生成相关区域的焦面总览。手动定位并手动聚焦已经成为历史。OneTouch 自动照明只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。基于人工智能的分析MICA 利用人工智能识别图像中的对象,可使每一位研究人员高效、准确、放心地进行成像、分析并获得清晰的可视化结果。无需掌握成像处理技能。 简化整个工作流程 ,减少从样本到获得洞察所需的时间和工作量利用您的科学专业知识进行基于人工智能的线粒体图像分割训练U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素。63 倍放大,宽场模式13 小时延时。在整个实验过程中实现 100% 的可重现性和可重复性使用:像素分类器轻松训练 MICA 来识别图像中的对象,无需掌握图像处理技能。只需在图像上绘制示例,像素分类器即可学习再现输入信息并分割图像中的所有对象。在用户界面上进行注释利用简单易用的绘图工具直接在 MICA 用户界面的图像上训练人工智能。可重复使用的 AI 模型和项目参数默认在不同的项目中重复使用相同的采集设置,提高可再现性和可重复性。重复使用 AI 模型可确保不同项目和不同使用者之间的一致性和无偏分析。认识 MICA多模态显微成像分析中枢时代已经到来!体验未来。在关键应用中认识 MICA荧光多孔板测定MICA 可同时对 4 个标记成像,实现 100% 时空相关性。该关键应用展示了 MICA 如何用于荧光多孔板测定细胞凋亡中的 Caspase 3/7 活性。U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素 (3μM) 。63 倍放大,宽场模式。13 小时延时。3D 组织成像MICA 可使您在实验需要时从快速总览无缝切换到高分辨率观察。了解 MICA 如何帮助您识别去酪氨酸化微管蛋白阳性细胞,以及如何从微管蛋白网络的总览进入图像分割。使用宽场和共聚焦成像,以 20x 和 63x 放大倍率采集的肠组织切片图像。使用 LIGHTNING 处理的 20 倍宽场图像,使用 THUNDER 处理的 63 倍共聚焦图像。细胞核以蓝色标记,线粒体以绿色标记,去酪氨酸化微管蛋白以红色标记。长期延时MICA 是一台活细胞培养系统,可将样本保持在生理条件下,并最大限度减少蒸发。了解 MICA 如何帮助您测量球状体生长和分析蛋白质表达水平。由每孔 1000 个稳定转染 MX1-GFP 细胞形成 3D 球状体。延时采集超过 72 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。灰色,综合调制对比度。
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  • 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台迈入人人皆享的时代现在,每个人都可以利用显微镜获得更多发现消除超过 85% 的需要特殊专业知识的繁琐设置步骤大鼠大脑的组织切片。细胞核用 DAPI 染色(蓝色)、STL 用 FITC 染色(绿色)、星形胶质细胞 (GFAP) 用 Cy3 染色(黄色),新生神经元 (NeuN) 用 Cy5 染色(红色)。10x 宽场平铺扫描,同时采集 4个标记。减少 85% 的步骤,轻松获得首张图像获得首张图像的时间减少 1/3训练时间减少 1/2 技术支持:智能自动化所有光电数字元件均为全电动化和智能自动化。多模态显微成像分析中枢上只保留一个按钮,即打开按钮。所有过程都快速融入软件的工作流程中。智能成像只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。迈入触手可及的时代多模态显微成像分析中枢:观察样本所需的一切都集中在一个易于使用的系统中4 倍数据信息 100% 相关性通过绝对的时空相关性获取关键情境信息使用传统显微镜依次采集 & 使用 MICA 同时采集MICA 提供绝对相关标记,避免时空失配U2OS 细胞用 MitoTracker Green(线粒体结构,青色)和 TMRE(活性线粒体,品红色)染色。使用 63x/1.20 CS2 Water MotCORR 物镜在 2 分钟 100 帧依次采集两个通道。 德国徕卡 MICA宽焦全场景显微成像分析平台 技术支持:4 个标记同时获取在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到不同结构的全部 4 个标记。同时采集多个标记可将采集速度至少提高 4 倍,并确保 100% 的时空分辨率。4 个标记 100% 相关在同一次采集中可为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到全部 4 个标记。这样就避免了依次采集过程中移动对象的标记之间发生时空失配——数据现在 100% 相关!FluoSync 专利技术FluoSync 是一种新的光谱分解方法,可快速实现同时成像。它可以检测多达 4 个不同的标记,实现真正的染料分离,并且不会出现时空失配。FluoSync 以独特的方法将专用硬件与新的混合分解方法结合在一起。 实时调节成像参数实验中需要时,可以从快速总览无缝切换到高分辨率细节创建总览在载体上找到样本结构,并观察结肠切片的总体形态。确定感兴趣区域以进行更详细的检查。获得更多的亚结构细节切换到下一个更高的放大倍率让您能够评估组织的完整性,并可定位适合进一步分析的区域。选择感兴趣的细胞开始查看更多细节,并选择单个细胞以获取亚细胞信息。但是,有些细节仍然模糊不清。选择感兴趣的细胞THUNDER 是获得更强对比度并看到更多细节的首选方法。这样您就可以做出正确的选择,进一步观察样本细节。获取亚细胞信息只需点击一下鼠标,即可从宽场模式切换到共聚焦模式来获取更多亚细胞信息。从亚细胞信息中发现更多添加 LIGHTNING 功能可获取亚细胞结构的更多细节,而且无缝集成到从快速总览到高分辨率细节的整个工作流程。使用:一致的成像参数MICA 将 IMC、 THUNDER 和 LIGHTNING 等透射光和荧光成像模式统一到一台多模态显微成像分析中枢中,适用于固定样本和活样本。点扫描共聚焦采用点扫描共聚焦和光学切片技术,在所有 3 个维度上都达到最高分辨率。针孔以物理方式阻挡非焦面信号,产生最佳的轴向分辨率,特别适合厚样本的 3D 成像。MICA 也是一台细胞培养装置被封闭的整个环境舱中可进行环境控制(温度、二氧化碳和湿度调节),为短期和长期活细胞观察提供理想条件。 由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(左半)和每孔 1000 个 U2OS 细胞 孔(右半)形成 3D 球状体。延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。黑白综合调制对比度。在整个实验过程中提供近似生理环境的条件由每孔 1000 个稳定转染 MDCK MX1-GFP 细胞(上排)和每孔 1000 个 U2OS 细胞(下排)在 5 个不同的时间点形成 3D 球状体。 延时采集超过 60 小时,间隔 30 分钟。 绿色, GFP。 灰色,综合调制对比度。MICA 是一台细胞培养装置,可将样本保持处于最佳条件下并最大限度减少溶液挥发通过系统智能减少超过 60% 的流程步骤传统显微镜使用传统显微镜,您需要定义从样本到分析的各个实验设置步骤。MICA 自动化使用 MICA,系统智能可极大简化工作流程,从样本到获得发现只需 8 个步骤,省时省力。使用:Sample FinderMICA 的 Sample Finder 可快速、自动生成相关区域的焦面总览。手动定位并手动聚焦已经成为历史。OneTouch 自动照明只需轻触一下 OneTouch,所有设置都会根据应用要求和当前样本进行自动优化。从“样本保护”到“图像质量”的范围中选择一个等级,所有照明和检测参数就会轻松进行相应的调整。基于人工智能的分析MICA 利用人工智能识别图像中的对象,可使每一位研究人员高效、准确、放心地进行成像、分析并获得清晰的可视化结果。无需掌握成像处理技能。 简化整个工作流程 ,减少从样本到获得洞察所需的时间和工作量利用您的科学专业知识进行基于人工智能的线粒体图像分割训练U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素。63 倍放大,宽场模式13 小时延时。在整个实验过程中实现 100% 的可重现性和可重复性使用:像素分类器轻松训练 MICA 来识别图像中的对象,无需掌握图像处理技能。只需在图像上绘制示例,像素分类器即可学习再现输入信息并分割图像中的所有对象。在用户界面上进行注释利用简单易用的绘图工具直接在 MICA 用户界面的图像上训练人工智能。可重复使用的 AI 模型和项目参数默认在不同的项目中重复使用相同的采集设置,提高可再现性和可重复性。重复使用 AI 模型可确保不同项目和不同使用者之间的一致性和无偏分析。认识 MICA多模态显微成像分析中枢时代已经到来!体验未来。在关键应用中认识 MICA荧光多孔板测定MICA 可同时对 4 个标记成像,实现 100% 时空相关性。该关键应用展示了 MICA 如何用于荧光多孔板测定细胞凋亡中的 Caspase 3/7 活性。 U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。在时间点 0 时加入细胞凋亡诱导剂星形孢菌素 (3μM) 。63 倍放大,宽场模式。13 小时延时。3D 组织成像MICA 可使您在实验需要时从快速总览无缝切换到高分辨率观察。了解 MICA 如何帮助您识别去酪氨酸化微管蛋白阳性细胞,以及如何从微管蛋白网络的总览进入图像分割。使用宽场和共聚焦成像,以 20x 和 63x 放大倍率采集的肠组织切片图像。使用 LIGHTNING 处理的 20 倍宽场图像,使用 THUNDER 处理的 63 倍共聚焦图像。细胞核以蓝色标记,线粒体以绿色标记,去酪氨酸化微管蛋白以红色标记。长期延时MICA 是一台活细胞培养系统,可将样本保持在生理条件下,并最大限度减少蒸发。了解 MICA 如何帮助您测量球状体生长和分析蛋白质表达水平。由每孔 1000 个稳定转染 MX1-GFP 细胞形成 3D 球状体。延时采集超过 72 小时,间隔 30 分钟。绿色, GFP。灰色,综合调制对比度。
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  • 产品简介高通量植物荧光表型检测平台可以定制化的对小型样品进行荧光图像采集,通过定制化的数据分析软件连续720小时以上获取各类小型植物荧光图像参数以及动态参数,可用于拟南芥,烟草等小型植物的表型研究。应用领域 植物病理研究作物抗病研究植物动态生长发育研究主要配置成像单位像素:14μm成像单元类型:高分辨率CCD相机照明位置:顶部,侧部 照明光源类型:紫外灯(荧光成像光源),日光灯(生长光源)尺寸:2000*2000*2000mm(长宽高)电源:单相 220VAC控制装置:WindowsPC控制机柜软件:在线控制,图像处理,数据分析主要性能参数可测参数:荧光图像亮斑个数,纹理,面积变化趋势,荧光亮度变化趋势等效率:5s/株检测方式:在线实时采集数据存储:JPG格式实存储数据分析:EXCEL格式自动存储系统稳定性:连续工作720h以上工作环境温度:0-50℃产品图片 高通量植物荧光检测平台、荧光图像采集软件图、数据分析图(a)为原始荧光图像,(b)为分割伪彩图。 公司简介谷丰光电(GREENPHENO)致力于植物表型,农业科研和机器视觉系统集成领域,具备核心图形处理、光机电控制、以及系统集成技术,掌握一批自主知识产权。主营业务包含:水稻数字化考种机;玉米在体、离体数字化考种机;全自动银染显影仪;双目视觉谷粒检测仪;叶片表型快速分析仪;水稻穗长测量系统;高通量植物分蘖测量系统;高通量植物表型参数自动提取系统等光机电一体化仪器设备定制,应用软件及算法开发。谷丰光电将立足于高端农业科研仪器、植物表型系统,坚持高科技、高价值、高效益三大目标,打造实力品牌优势、系统优势和价值优势的知名光电企业。
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  • 温室盆栽高通量植物表型成像系统集光电技术、自动化控制技术和计算机图形处理技术于一体,实现水稻、玉米、小麦、油 菜、棉花、烟草、柑橘等盆栽植物表型参数全自动、无损、高通量准确提取。系统整体包括栽培单元、输送单元、成像单元、 图形工作站,根据用户选配情况可在线获取植物RGB可见光图像(VISI)、远红外图像(FIRI)、近红外图像(NIRI)、荧光图像 (FLUI)、高光谱图像(HYPSI)、3D激光图像(3D-LSI)、CT断层图像(CT-I)、多光谱图像(MSI),通过数据软件分析可 得到盆栽植物的株高、株宽、叶片面积、叶片角度等株型参数、鲜重干重等生物量参数、分蘖参数,此外还可根据用户需要定 制化感兴趣的二级性状参数。成像暗室单元 暗室尺寸: 2000mm×3300mm×2000mm (可定制)最大植物尺寸:幼苗至 8m 自动传送单元传送速度:0-2m/s传送线宽度:500mm定位精度:≤±2mm承重:50-300kg/ 盆(可定制) 控制/采集单元控制/采集单元由高性能自动化控制系统和植物图形采集工作站组成,为植物表型成像系统的大脑中枢;可编程序控制器、工 业通讯系统、变频器等均采用国际名牌产品,提供符合Windows标准的友好的人机界面,方便人员操作;单元中充分考虑环 境对设备的影响,保证意外状态下不影响正常运行:故障单元的停机、离线对系统没有任何影响,运用自动均载技术,保证运 行平稳;按照设计规范安装各种探测开关和限位装置防止越程、误操作,并进行信息反馈;采用标准开发协议,支持自有或第 三方平台实时获取植物扫描图像、监控等数据;储存空间无限扩容,以应对不同阶段对数据库性能和存储空间的需求。 成像传感器单元RGB可见光成像单元:可测参数:持绿性,卷叶程度,枯死叶比例,生物量,高度等 远红外成像单元:可测参数:作物冠层温度分布、叶片蒸腾作用、作物干旱胁迫等相关性状高光谱成像单元:可测参数:无损动态提取海量光谱特征性状,获取不同波段下高光谱图像参数的光谱指数、并基于模型计算植株叶片营养元素含量(N、P、K)、叶绿素含量、水分含量等相关性状。CT成像单元:可测参数:主要用于测量温室盆栽的禾本科植物的分蘖数、分蘖角度、分蘖大小、分蘖形状等分蘖参数、作物植株的茎秆壁粗、壁厚、维管束等茎秆相关参数以及植株内部形态结构、成分含量变化等。 多光谱成像单元:三维多光谱冠层扫描仪适用于室外自然光照条件下 农作物冠层的三维多光谱表型数据快速采集,可在 室外自然光条件下采集多光谱数据时,同步测量农 作物冠层的三维点云数据。 选型配置表河南大学抗逆改良中心高通量作物表型平台集成高通量表型检测平台、植物生长平台、根系生长平台、植物春化平台,快速高通量计算样品相应表型信息,获取大量高价值 的表型数据,建立表型数据库。
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  • 实验室传送带植物表型平台是一种在温室或实验室中,利用复杂传送带系统运送植物样本,将植物样本送入安装有一种或多种表型信息获取模块的暗室,从而采集表型信息的植物表型平台系统。传送带植物表型平台适用于几乎所有类型的植物样品的表型信息获取。通过调整花盆规格尺寸、表型信息获取设备的拍摄位置,可适应不同大小、不同株型、不同种类的植物样品的表型信息获取需求。系统中的浇灌称量系统减轻人力养护植物样品的劳动,在表型信息获取过程中也基本上无需人工干预。成像暗室使相机的安装角度更为灵活,并且排除了外部光线对成像效果的影响,允许用户获取更丰富、更准确的表型信息成像系统:成像系统中包含可见光相机、多光谱/高光谱相机、热红外相机、激光扫描仪、叶绿素荧光仪等表型测量设备,补光卤素灯,工控机控制系统等子系统。整个成像系统根据表型信息获取方式不同,分为多间独立的成像暗室,各表型测量设备在独立的暗室中,在标准化光源的帮助下获取植物表型信息。软件分析系统:软件分析系统中包含成像设备控制系统、数据采集与存储系统、数据分析系统、数据统计与可视化展示系统、报警监控系统等。多光谱/高光谱成像:可获取归一化指数(NDVI)、简单比值指数(SR)、优化土壤调整植被指数(OSAVI)、绿度指数(G)、比值植被指数(RVI)、差值环境植被指数(DVIEVI)、绿光归一化差值植被指数(GNDVI)等植被指数信息。改进的叶绿素吸收反射指数(MCARI)、改进的叶绿素吸收反射指数(1MCARI1)转换类胡罗卜素指数(TCARI)、三角植被指数(TVI)、ZMI指数、简单比值色素指数(SRPI)、归一化脱镁作用指数(NPQI)、光化学植被反射指数(PRI)、归一化叶绿素指数(NPCI)Carter指数、SIPI指数、Gitelson-Merzlyak指数、花青素反射指数1。可获取植物含水量、植物含氮量、植物叶绿素含量等植物生理指标信息。热红外成像: 可获取植物表面温度信息与温度分布情况信息,进而分析植物蒸腾等问题。激光扫描成像: 可获取植物3D点云模型,进而获取植物高度、3D叶面积、投影叶面积、数字生物量、叶片角度、叶面积指数、叶片覆盖率等植物株型信息。叶绿素荧光成像: 叶绿素荧光作为光合作用研究的探针,得到了广泛的研究和应用。通过叶绿素荧光仪,可获取Chl荧光参数(F0,FM,FV,F0' ,FM' ,FV' ,QY(II))、Abs PAR值、根据荧光发射计算的参数(例如NPQ,FV / FM,FV ' / FM' ,Rfd,qN,qP)、PAR吸收率、光合电子传输速率(PS)叶绿素相关参数信息。
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  • SpecimONE高光谱成像系统拓宽了高光谱技术在工业分选上的应用场景。借助SpecimONE高光谱成像平台,机器制造商,视觉系统集成商和其他OEM原始设备制造商可基于离线光谱特征对不同材料进行分类,并将这些分类模型实时应用于在线系统中,从而形成一套全新的工业分类应用程序。使得用户无需深入了解光谱成像技术和编程技术的情况下,也可获得最终结果。SpecimONE系统包括:&bull 经过工业验证的Specim FX系列高光谱相机&bull SpecimINSIGHT建模软件为您搭建分类应用程序&bull 强大的图像处理硬件平台SpecimCUBE产品优点:&bull 缩短上市时间、可减少原型/概念验证阶段&bull 高光谱成像技术的灵活性使得其可应用于各种应用场景&bull 与主流工业标准相兼容,可与机器视觉系统(如Halcon,Sherlock)无缝衔接&bull 为客户提供全球化的一站式软硬件解决方案&bull 自有Specim专属平台、不依赖于第三方硬件或软件
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  • 用PL APO 20x/0.75 CS2物镜采集的小鼠胚胎(E15.5)冷冻切片。光学切片显示了用CF488A标记的Tbr2细胞、用CF555标记的Satb2胞,以及用CF633标记并用DAPI进行细胞核对比染色的Ctip2细胞。采集两个光学切片的时间不到5分钟,而以前需要在实验室的同类设备上花费2个小时。样本和图像由德国海德堡DKFZ的Pei-Chi Wei博士实验室Giulia Di Muzio提供。人人皆享现在,每个人都可以利用显微镜获得更多发现。Mica 提供清晰的样本概览,只需点击几下即可轻松改变观察条件。 减少 85% 的步骤,轻松获得首张图像 获得首张图像的时间减少 33% 训练时间减少 50%触手可及 - 100% 相关的 4 倍数据信息使用多模态显微成像分析中枢,您能够在同一次采集中为宽场和共聚焦两种模式同时捕捉到全部 4 个标记或不同结构,而无需移动样本。 这样就避免了依次采集过程中移动对象的标记之间发生时空失配。触手可及 - 实时调节成像参数Mica将透射光和荧光成像模式统一到一台多模态显微成像分析中枢中。 在一台多模态显微成像分析中枢内,您可以从多种成像模式中进行选择,包括宽场、共聚焦、THUNDER 成像、LIGHTNING、Z轴层扫、延时等。例如,您能够在低放大倍数下生成宽场成像快速概览,逐渐放大感兴趣的区域,并在需要的时间和位置上切换到共聚焦模式,而无需将样本移动到另一个系统。触手可及 - 在整个实验过程中提供近似生理环境的条件活细胞实验要求细胞处于最佳状态。 通常,介质中的2D和3D细胞要求控制环境中的温度和pH值(通过调节二氧化碳)。 必须最大限度减少溶液挥发才能确保营养物和离子浓度处于稳定状态。 有些实验还要求将氧气水平模拟得更接近生理水平。 Mica可在活细胞配置中提供合适的条件。 U2OS 细胞用 SiR-Actin、TMRE(线粒体活性)、 CellEventTM(半胱天冬氨酸酶活性)和 DAPI(细胞核)标记。 63 倍放大,宽场模式。极致简化工作流程智能自动化和人工智能支持的分析可以提高效率,加快发表研究成果。 通过系统智能减少超过 60% 的流程步骤 简化整个工作流程 ,减少从样本到获得洞察所需的时间和工作量 在整个实验过程中实现 100% 的可重现性和可重复性
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