水下调制荧光仪

DIVING-PAM全球第一款水下调制荧光仪Schreiber教授因发明PAM系列调制叶绿素荧光仪而获得首届国际光合作用协会（ISPR）创新奖DIVING-PAM是全世界唯一的一款可以原位研究水下植物（大型海藻、水草、珊瑚、沉水植物、&ldquo 藻垫&rdquo 和附着藻类等）光合作用的仪器，可达50米深度。它开创了在现场研究这些植物的光合作用的先河。DIVING-PAM在世界各地甚至是南、北极地区都有广泛应用。DIVING-PAM是由超便携式调制叶绿素荧光仪MINI-PAM演化而来的，后者已被证明是野外光合作用研究的强大工具。DIVING-PAM的光电元件和操作软件与MINI-PAM相同，但DIVING-PAM的外壳采用了全防水设计，特别适合水下操作。DIVING-PAM的按键非常灵敏，在水下只需用指尖轻轻一摁即可。主机和样品之间通过非常柔软的光纤连接，有多种特制叶夹可选。DIVING-PAM可以存储4000组数据，利用Windows操作软件WinControl可以进行数据传输、数据分析和遥控操作。利用DIVING-PAM在海底原位测量澳洲大堡礁珊瑚的光合作用主要功能 *仪器全防水设计，耐受50m水压 *可测荧光诱导曲线并进行淬灭分析 *可测光响应曲线和快速光曲线（RLC） *51个内置模式菜单，方便参数设置和标准测量 *可测水温、水深和PAR *光感式按键，方便水下使用应用领域应用于水生生物学与海洋生物学、潮间带生态学、珊瑚研究、湖泊生态学等领域。原位测量珊瑚、大型海藻、沉水植物生理活性的唯一仪器。也可用于测量雨季陆生高等植物的光合活性。可测量微藻，但不太适合于自然水体中的浮游植物测量。测量参数Fo,Fm,F,Fm' ,Fv/Fm,Y(II)=&Delta F/Fm' ,qP,qN,NPQ,ETR,PAR,水深和温度等。系统组成①微型光量子探头适配器，用于水下原位测量PAR。⑵磁性样品架DIVING-MLC（可选附件），分上、下两部分，可以靠磁性夹住叶片进行暗适应。上部覆盖带弹性的橡胶皮，中间开一条缝。光纤可从缝中插入，光纤插入后缝自动闭合，不会漏进环境光。③暗适应叶夹DIVING-LC（可选附件），塑料制，重量轻。也可用PAM-2100和MINI-PAM的暗适应叶夹DLC-8代替。④暗适应适配器。光纤可深入暗适应适配器中固定好，测量时放到暗适应叶夹DIVING-LC的上部，打开DIVING-LC的滑片即可。⑤遮光板，装在光适应样品架DIVING-USH的底部，阻挡底部反射光。⑥水下样品架DIVIN-USH⑦全防水设计的主机⑧表面样品室DIVING-SH(可选附件)，特别适合测量珊瑚时用。改样品室四周有4个带橡皮筋的挂钩，可以牢牢固定在凹凸不平的珊瑚表面。主要技术参数测量光：红色发光二极管（LED），650nm；标准光强0.15&mu molm-2s-1PAR；调制频率0.6或20kHz，自动转换。光化光：卤素灯，8V/20W，蓝色增强，&lambda 710nm；选择性锁相放大器（专利设计）。数据存储：CMOSRAM128KB，可存储4000组数据测量参数：Fo,Fm,Fm&rsquo ,F,Fv/Fm(max.Yield),&Delta F/Fm&rsquo (Yield),qP,qN,NPQ,ETR,PAR和叶温等。环境温度：-5～＋40℃，在南、北极有成功应用。部分文献1.BorellEM,RomatzkiSBC,FerseSCA:DifferentialphysiologicalresponsesoftwocongenericscleractiniancoralstomineralaccretionandanelectricfieldCoralReefs2010,29(1):191-200.[DIVING-PAM]2.ChevalierEM,Gé vaertF,Cré achA:Insituphotosyntheticactivityandxanthophyllscycledevelopmentofundisturbedmicrophytobenthosinanintertidalmudflat.JournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2010,385:44-49.[DIVING-PAM]3.EdwardsMS,KimKY:DiurnalvariationinrelativephotosyntheticperformanceingiantkelpMacrocystispyrifera(Phaeophyceae,Laminariales)atdifferentdepthsasestimatedusingPAMfluorometryAquaticBotany2010,92(2):119-128.[DIVING-PAM]4.GreenDH,EdmundsPJ,PochonX,GatesRD:Theeffectsofsubstratumtypeonthegrowth,mortality,andphotophysiologyofjuvenilecoralsinSt.John,USVirginIslandsJournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2010,384(1-2):18-29.[DIVING-PAM]5.MarquardtR,SchubertH,VarelaDA,HuovinenP,Henrí quezL,BuschmannAH:Lightacclimationstrategiesofthreecommerciallyimportantredalgalspecies.Aquaculture2010,299:140-148.[DIVING-PAM]6.OchiengCA,ShortFT,WalkerDI:Photosyntheticandmorphologicalresponsesofeelgrass(ZosteramarinaL.)toagradientoflightconditionsJournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2010,382(2):117-124.[DIVING-PAM]7.AbreuMH,VarelaDA,Henrí quezL,VillarroelA,YarishC,Sousa-PintoI,BuschmannAH:Traditionalvs.IntegratedMulti-TrophicAquacultureofGracilariachilensisC.J.Bird,J.McLachlan&E.C.Oliveira:ProductivityandphysiologicalperformanceAquaculture2009,293(3-4):211-220.[DIVING-PAM]8.AlmeidaCMR,DiasAC,MuchaAP,BordaloAA,VasconcelosMTSD:InfluenceofsurfactantsontheCuphytoremediationpotentialofasaltmarshplantChemosphere2009,75(2):135-140.[DIVING-PAM]9.CantinNE,vanOppenMJH,WillisBL,MieogJC,Negri2AP:Juvenilecoralscanacquiremorecarbonfromhigh-performancealgalsymbiontsCoralReefs2009,28(2):405-414.[DIVING-PAM]10.ChartrandKM,DurakoMJ,BlumJE:EffectofhyposalinityonthephotophysiologyofSiderastrearadiansMarineBiology2009,156(8):1691-1702.[DIVING-PAM]11.CollierCJ,LaveryPS,RalphPJ,MasiniRJ:Shade-inducedresponseandrecoveryoftheseagrassPosidoniasinuosaJournalofExperimentalMarineBiologyandEcology2009,370(1-2):89-103.[DIVING-PAM]12.DavoultD,Migné A,Cré achA,Gé vaertF,HubasC,SpilmontN,BoucherG:Spatio-temporalvariabilityofintertidalbenthicprimaryproductionandrespirationinthewesternpartoftheMontSaint-MichelBay(WesternEnglishChannel,France)Hydrobiologia2009,620(1):163-172.[DIVING-PAM]13.DownsCA,Kramarsky-WinterE,WoodleyCM,DownsA,WintersG,LoyaY,OstranderGK:Cellularpathologyandhistopathologyofhypo-salinityexposureonthecoralStylophorapistillataScienceofTheTotalEnvironment2009,407(17):4838-4851.[DIVING-PAM]14.Enrí quezS,Á vilaE,CarballoJL:PhenotypicplasticityinducedintransplantexperimentsinamutualisticassociationbetweentheredalgaJaniaadhaerens

仪器可测参数 Yield或F/Fm&rsquo ，ETR，PAR，Tleaf，Fv/Fm，Fo，Fm，Fv，Fms (or Fm&rsquo )，Fs (or F)，qL，Y(NPQ)，Y(NO)，Y(II)，NPQ 仪器用途OS1P是一种轻便的便携式调制叶绿素荧光仪，系统使用脉冲调制技术来测量样品在自然光照条件下进行正常的光合作用时所激发的叶绿素荧光，可以在自然光下对样品组织进行无损测量，在光照条件下测量感应期间的Fo、Fm、Fv/Fm、光化学淬灭、非光化学淬灭及电子传输率 (需要PAR协同测量)等参数，从而判断PSII效率。 仪器工作原理根据叶绿素的荧光效应， 使用脉冲调制技术来测量样品在周围光照条件下进行正常的光合作用时所激发的叶绿素荧光。 仪器技术参数u 激发光源：饱和脉冲，0-11000uE ；调制光660nm---690nmLED；活化光：3000uEu 检测模式：脉冲调制法u 检测器和过滤器：带有700 ~ 750 nm带通滤波器的PIN光敏二极管u 采样率： 10-10000点/秒 自动转换（取决于测试相位）u 采样周期：2s &ndash 16hu 数据存储：1G内存，无限存储数据u 数据输出：USB接口、RS232标准接口、SD/MMC数据存储卡u 主机显示屏：彩色触摸屏，也有对应的按键操作u 供电：12V 1.2AH 可充电蓄电池，支持达8小时连续测量u 操作温度：5 - 45℃u 大小：8.3cm× 14cm× 17.8cmu 重量：1.62kg 产地：美国

用途：FL 6000双调制叶绿素荧光仪测量叶绿素a（ChlA）的荧光强度。测量时，一组发光二极管发出持续几微秒、强度很低的测量光，激发叶绿素产生叶绿素荧光，叶绿素荧光由PIN光电二极管检测，并由16位A/D转换器数字化。该仪器支持脉冲光调制测量，同时可以捕捉快速的OJIP瞬态曲线、快速测量QA-再氧化动力学，S状态转换。FL 6000-F快速版双调制叶绿素荧光仪，可以进行闪光荧光诱导(FFI)实验，用于计算光合色素有效天线尺寸、天线连通性和快速光曲线。FL 6000-F的主要特点是配置有高功率的矩形光化光以及620nm的激发光源，特别适用于蓝藻的测量。QA受体的完全还原在25us内即可完成，仪器可以测量在单翻转饱和脉冲时的叶绿素荧光。该技术用于光系统II的有效天线尺寸及异质性和连接性的研究，不受DCMU或其它除草剂的干扰。FL 6000光学检测部件FL 6000-S，标准版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率4us 叶绿素a检测浓度：100ng/L 支持的荧光实验程序： -瞬时荧光 -QA再氧化 -Kautsky诱导效应 -淬灭分析 -快速OJIP曲线 -S状态转换FL 6000-F，快速版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率1us 叶绿素a检测浓度：1mg 支持标准版所有荧光实验程序 特殊实验程序：闪光荧光诱导(FFI) 特点：内置叶绿素荧光诱导测量、PAM脉冲调制测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA再氧化动力学、S状态转化、荧光淬灭测量测序，快速版具有闪光荧光诱导(FFI)测量功能；双调制技术，具备调制光化学光和持续光化学光；标准版时间分辨率达4us，快速版高达1us，是目前时间分辨率较高的叶绿素荧光仪；叶绿素检测灵敏度高，达1ug Chla/L；QA再氧化测量曲线应用领域：光合自养型微生物研究PSII光化学效率的测定水生生物初级生产力估算浮游植物光合性能和代谢扰动的研究光合突变体的筛选生物和非生物胁迫的检测；植物抗胁迫能力或者易感性研究；专业软件，内置淬灭分析、QA-再氧化、Kautsky诱导效应、OJIP等多种实验程序 技术规格：主体实验程序叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、QA再氧化、OJIP曲线、S状态转换、叶绿素荧光淬灭分析PAM荧光淬灭测量FO；FM；FV；FO'；FM'；FV'；FT；FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等50多个叶绿素荧光参数和曲线OJIP快速荧光动力学测量OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数QA再氧化动力学测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）S状态转换荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量测量光标准：620nm和460nm，其他波长可选单翻转饱和脉冲100000µ mol(photon).m-2.s-1，最大持续时间150us光化光最大光强3000µ mol(photons).m-2.s-1；检测器FL 6000-F：1µ sFL 6000-S：4µ s控制单元双通道通用高精度自动微处理器样品管10x10mm，容积4mlA/D16位；500kHz通讯方式USB控制盒尺寸29*20*11cm测量单元尺寸直径16cm*6cm高重量5kg功率20W测量室可选，定制测量光、光化光和饱和脉冲以及检测波段氧气测量模块可选，测量藻类氧气释放温度控制器TR 2000，0-70℃，精度0.1℃，可选电磁搅拌器密封不锈钢，IP64，手动调速100-1000rpm,8x3mm磁力棒，可选远红光LED中心波长730nm，用于光系统I激发，测量Fo’，可选软件功能创建和存储实验草案、可通过FluorWin向导功能自动建立实验方案、实验数据的获取和输出、数据处理和显示 产地：捷克