荧光色素

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  • 荧光粉及荧光胶品管解决方案 白光LED 封装制程中,蓝光晶片的发光特性和荧光粉发光特性决定白光LED 的光色特性;特别是荧光粉的发光效率将直接影响白光LED 的光色坐标;本设备为封装厂家提供一个原料及荧光调胶制程的数字化管控工具;
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  • 主要特点● 为研究性实验室设计了精密的、高效的操作程序● 采用单激光或双激光激发方式,可进行5色分析● 配备共线性(collinear)第二激光,以便对抗体和荧光色素的选择具有更大的灵活性,排除延时计算的需要和伴随的空间-分离光束干扰● CXP软件可进行自动的数据获取和应用设置● 自动化调控装置● 多种进样方式(CL进样、MCL手动、MCL自动、单管手动进样,PL进样,可使用24孔、48孔、96孔板及EP管,同时可使用12X75试管)● 简明的补偿设置及其调节应用范围5色树状细胞分析、5色钙离子流动分析、可溶性细胞因子检测、5色白血病/淋巴瘤细胞分析、GFP应用、血小板GPIIb/IIIa受体定量分析技术参数
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  • FKM(Fluorescence Kinetic Microscope)多光谱荧光动态显微成像系统是目前功能最为强大全面的植物显微荧光研究仪器,是基于FluorCam叶绿素荧光成像技术的显微成像定制系统。它由包含可扩展部件的增强显微镜、高分辨率CCD相机、激发光源组、光谱仪、控温模块以及相应的控制单元和专用的工作站与分析软件组成。它不仅可以进行微藻、单个细胞、单个叶绿体乃至基粒-基质类囊体片段进行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等各种叶绿素荧光及MCF多光谱荧光(multicolor fluorescence)成像分析;还能通过激发光源组进行进行任意荧光激发和荧光释放波段的测量,从而进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料以及藻青蛋白、藻红蛋白、藻胆素等藻类特有荧光色素的成像分析;更可以利用光谱仪对各种荧光进行光谱分析,区分各发色团(例如PSI和PSII及各种捕光色素复合体等)并进行深入分析。 FKM多光谱荧光动态显微成像系统使荧光成像技术真正成为光合作用机理研究的探针,使科研工作者在藻类和高等植物细胞与亚细胞层次深入理解光合作用过程及该过程中发生的各种变化,为直接研究叶绿体中光合系统的工作机理提供了最为有力的工具。FKM作为藻类/植物表型和基因型显微研究的双重利器,得到了学界的广泛认可并取得了大量的科研成果。功能特点• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序,如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等,可获得70余项参数。• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜,可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光。• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等,通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光,能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图。• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量,提高实验精度,也可以进行高温/低温胁迫研究。 应用领域• 微藻、大型藻类/高等植物的单个细胞、单个叶绿体、基粒-基质类囊体片段等的显微结构植物光合生理研究• 藻类/植物逆境研究• 生物和非生物胁迫的研究• 藻类/植物抗胁迫能力及易感性研究• 突变体筛选及光合机理研究• 藻类长势与产量评估• 藻类特有色素与光合作用关系• 藻类/植物——微生物交互作用研究• 藻类/植物——原生动物交互作用研究• 基因工程与分子生物学研究测量样品• 植物活体切片• 植物表皮• 植物细胞• 绿藻、蓝藻等各种单细胞和多细胞微藻• 叶绿体提取液• 类囊体提取液• 含有叶绿体的原生动物工作原理 FKM分析过程中,通过连接在显微镜上的激发光源组和内置在6位滤波轮中的一系列滤波器、分光镜激发植物样品中各种发色团的动态荧光。样品激发出的荧光经显微镜放大后进行荧光光谱分析和荧光动力学成像分析。SM 9000光谱仪通过光纤与显微镜连接,以进行激发荧光光谱分析。安装在显微镜顶部的高分辨率CCD相机则用于荧光动力学成像分析。全部工作过程通过工作站和控制单元按照预先设定好的程序自动进行。测量过程中,可通过温控模块调控藻类、植物细胞等实验样品的温度。蠕动泵可以实现培养藻类的连续测量。仪器组成1. 增强显微镜 2. 高分辨率CCD相机 3. 激发光源组 4. SM 9000光谱仪 5. 主控制单元 6. 工作站及软件 7. 控温模块的控制单元8. 6位滤波轮技术参数• 测量参数?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' , Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数,每个参数均可显示2维荧光彩色图像?OJIP快速荧光曲线:测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括:Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N(QA还原周转数量)、Phi???_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC(单位反应中心的吸收光量子通量)、TRo/RC(单位反应中心初始捕获光量子通量)、ETo/RC(单位反应中心初始电子传递光量子通量)、DIo/RC(单位反应中心能量散失)、ABS/CS(单位样品截面的吸收光量子通量)、TRo/CSo、RC/CSx(反应中心密度)、PIABS(基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数)、PIcs(基于截面的“性能”指数或称生存指数)等(选配)?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白和荧光染料的成像分析(选配)?QA再氧化动力学曲线(选配)?Spectrum荧光光谱图(选配)• 具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑?Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等?Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数?荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数,2套制式程序?光响应曲线LC:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数?Dyes & FPs稳态荧光成像测量?OJIP快速荧光动力学分析:Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI等26个参数(选配)?QA再氧化动力学(选配)?Spectrum荧光光谱分析(选配)• 荧光激发光源:红外光、红光、橙光、蓝光、绿光、白光、紫外光等可选,根据客户要求定制光源组• 透射光源(选配):白光、远红光?高分辨率TOMI-2 CCD传感器:?逐行扫描CCD?最高图像分辨率:1360×1024像素?时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧?A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)?像元尺寸:6.45μm×6.45μm?运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量?通讯模式:千兆以太网• 显微镜:Axio Imager M2,可选配Axio Scope A1简洁版或Axio Imager Z2高级版?物镜转盘:研究级7孔自动物镜转盘?透射光快门?聚光器 Achr Apl 0.9 H?6位反光镜转盘?双目镜筒(100:0/30:70/0:100)?机械载物台:75×50mm,硬膜阳极氧化表面?样品架:76×26mm• 物镜:10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜(可选)• 6位滤波轮:叶绿素荧光、GFP/SYTOX、DAPI/CTC等• SM9000光谱仪?入射狭缝:70μm×1400μm ?光栅:平场型校正?光谱范围:200-980nm?波长绝对精确度:0.5nm?再现性:0.1nm?温度漂移:0.01nm/K• 温度调控模块:温度调节范围 5℃-70℃,精确度0.1℃• 蠕动泵(选配):流速10-5600μl/min,用于藻类连续培养测量• FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单 • 客户定制实验程序协议(protocols):可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),具备专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序• 自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)• 快照(snapshot)模式:通过快照成像模式,可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片• 成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000)• 数据分析模式:具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算”模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差• 输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等叶绿素荧光与光谱分析结果典型应用:产地:捷克参考文献:1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-3812.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 494.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-705.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.1626.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-12587.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-2368.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.01143219.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.023410.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. Metallomics, 6: 444-45411.Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-9112.Andresen E, et al. 2013. Effects of Cd & Ni toxicity to Ceratophyllum demersum under environmentally relevant conditions in soft & hard water including a German lake. Aquatic Toxicology. 142–143, 15: 387–402
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  • 【分享】OLYMPUS荧光显微镜操作规程

    仪器名称 OLYMPUS荧光显微镜 型  号 BX51TF 主要指标 1、目镜放大倍数10X; 2、物镜放大倍数分别为 4,10,20,40,100X(油镜); 3、制冷CCD摄像头(300万像素)与IBM电脑连机操作; 4、除明场(Bright Field)外,还可产生四种激光(蓝Blue,绿Green,紫外UV,黄Yellow)。 功能范围 1、用于明场下染色标本的观察和拍照; 2、主要用于荧光染色标本和免疫杂交标本的观察和拍照。 荧光显微镜操作步骤 1、使用前确保你已经熟悉显微镜的基本操作,否则不允许操作。 2、先开电源(ON),启动发光器,再开照相机电源。以免先照相机再开荧光显微镜电源时,强大电源将照相机电子零件烧损。 3、在显微镜下找到需要的物象后,打开电脑的成像系统。需要使用荧光时,请务必预热荧光灯电源15分钟。 4、选择滤镜,将滤镜推入(以免光线向外散失)后,于暗室下开始观察。应一次把全部玻片观察完毕,勿中途切断电源,否则须待冷却后(约30分钟)才能再开电源。最少开机30分钟才可关机,以免缩短灯泡寿命。 5、荧光色素于普通光线照射下易消失,故未观察之标本宜置不透光盒内储存于冰箱(4~5℃)。而在荧光显微镜之紫外线照射下亦易使荧光消失,故照像宜速。 6、等冷却后,再将防尘罩罩上。 7、测试完毕后,请认真填写登记表格。 8、本区春夏气候潮湿,存放荧光显微镜暗室应有除湿设备,并每星期将荧光显微镜至少开机一次,以免显微镜发霉损及镜头与滤光镜。

  • “荧光假单胞菌”是“发光猪肉”的元凶

    猪肉为何会在黑夜里发出荧荧蓝光?昨天下午,北京市工商局对外揭晓“谜底”:通过抽检发现,这是一种叫荧光假单胞菌的细菌在“作祟”,与猪肉安全无关。  专家介绍称,该细菌并不可怕,对正常人群不具有致病性。  抽检未发现荧光增白物  近期,有几位消费者反映在建欣苑菜市场、八里桥市场等处购买的猪肉,夜晚会发出荧光,担心吃了可能对身体有害。而这些肉都是从正规屠宰场批发,且肉身上有检验检疫章(本报12月12日曾报道)。  近日,北京工商部门组织了抽检,由北京市食品安全监控中心对送检样本进行荧光增白物质和荧光假单胞菌检测,结果显示,送检样本均未检出荧光增白物质,不过都检出了荧光假单胞菌。  猪肉煮熟可杀灭该细菌  “荧光假单胞菌能产生黄绿色荧光色素而使猪肉发光”,中国农业大学微生物系教授王贺祥介绍,这种细菌在肉及肉制品、禽蛋类等蛋白质丰富的食品中,易生长繁殖。  王贺祥说,荧光假单胞菌属于革兰氏阴性嗜冷菌,广泛存在于土壤、水、植物、动物活动环境中,也是存在于人类肠道的正常细菌,对正常人群不具有致病性,不必对其恐慌。  如何杀灭猪肉上的细菌呢?王贺祥介绍,该菌在42℃就会停止生长,超过70℃,只需数秒即可杀死。  市工商局也表示,消费者购买到的“发光猪肉”,可能在屠宰、储存、运输、销售等过程中污染了荧光假单胞菌,只要猪肉本身没有腐败变质,可以通过焯、炒、煮等方式将猪肉熟制后食用,不会对人体健康产生影响。

  • 萤光显微镜介绍

    在萤光显微镜上,必须在标本的照明光中,选择出特定波长的激发光,以产生萤光,然后必须在激发光和萤光混合的光线中,单把萤光分离出来以供观察。因此,在选择特定波长中,滤光镜系统,成为极其重要的角色。    萤光显微镜原理:    光源:光源辐射出各种波长的光(以紫外至红外)。    (B) 激励滤光源:透过能使标本产生萤光的特定波长的光,同时阻挡对激发萤光无用的光。    (C) 萤光标本:一般用萤光色素染色。    (D) 阻挡滤光镜:阻挡掉没有被标本吸收的激发光有选择地透射萤光,在萤光中也有部分波长被选择透过。 以紫外线为光源,使被照射的物体发出荧光的显微镜。电子显微镜是在1931年在德国柏林由克诺尔和哈罗斯卡首先装配完成的。这种显微镜用高速电子束代替光束。由于电子流的波长比光波短得多,所以电子显微镜的放大倍数可达80万倍,分辨的最小极限达0.2纳米。1963年开始使用的扫描电子显微镜更可使人看到物体表面的微小结构。    显微镜被用来放大微小物体的图像。一般应用于对生物、医药、微观粒子等观测。   利用微微动载物台之移动,配全目镜之十字座标线,作长度量测。   利用旋转载物台与目镜下端之游标微分角度盘,配全合目镜之址字座标线,作角度量测,令待测角一端对准十字线与之重合,然后再让另一端也重合。   利用标准检测螺纹的节距、节径、外径、牙角及牙形等尺寸或外形。   检验金相表面的晶粒状况。   检验工件加工表面的情况。   (6)检测微小工件的尺寸或轮廓是否与标准片相符。

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  • 活体成像中荧光色素标记细胞的方法举例
    活体光学成像(Optical in vivo Imaging)主要采用生物发光(bioluminescence)技术与荧光(fluorescence)技术。生物发光是用荧光素酶(Luciferase)基因标记细胞或DNA,今天,生物发光标记物可以标记到任何一种基因上,使对基因功能的全面细致研究成为现实。而荧光技术则采用荧光报告基团(GFP、RFP, Cyt及dyes等)进行标记,利用荧光蛋白在外源光源或是内源发光照射下被激发产生的荧光作为检测信号。研究人员能够利用一套非常灵敏的光学检测仪器直接监控活体生物体内的细胞活动和基因行为。 该技术可被广泛应用于标记细胞或基因的示踪及检测;基因治疗在活体动物体内直接的观察和检测;基因组、蛋白组学、药学及生物技术在活体动物内的研究;药物及化学合成药物的药物代谢及毒理学监测;食品菌落生长成像;皮肤医学中皮肤疾病的体内成像;法医鉴定;微孔板成像,例如:免疫分析、报告基因、基因探针和嗜菌作用分析等;荧光团的体内成像,例如:Alzheimer疾病研究中结合嗪的β-淀粉沉淀物分析;转基因植物中通过报告基因对生理周期节奏的研究;凝胶成像分析等等。 但在研究过程中,研究者们必须事先用基因技术进行荧光素酶基因标记,或者某种荧光报告基团标记。目前活体光学成像系统的知名制造商,如Berthold、GE、Xenogen、Photometrics、Carestream Health等,不仅为客户提供先进的仪器,也提供具体实验所需的整套解决方案,包括试剂、实验手册、特殊用途的质粒、细胞株、转基因动物、细胞处理和动物处理设施等配套技术支持。出色的多任务处理能力,人性化的整体设计,便捷精确的操作系统,使实验室影像分析领域进入了一个全新的时代。 下面以研究干细胞活体移植后的存活率为例,简介一两种内源性荧光色素标记的实验方法,供专业人士参考。 用荧光色素DiD标记 间充质干细胞 1. 先用胰蛋白酶消化待标记材料,使之成为一定密度的悬浮液; 2. 从细胞培养箱中取出间充质干细胞,吸取含原有培养基的细胞悬浮液进行标记; 3. 用10 ml Mg/Ca-free PBS (不含钙镁离子的磷酸缓冲液)清洗细胞,吸去PBS, 钙镁离子会影响胰蛋白酶的活性,必须小心; 4. 加入预热的0.05% 胰蛋白酶液,加液量以T75型瓶为例,每瓶加5ml, 确保瓶的表面被完全覆盖; 5. 在细胞培养箱中37° C 孵育约 5 分钟; 6. 然后在显微镜下确认细胞已经完全分散,如果有细胞贴壁情况,轻拍若干次或延长孵育时间直至酶解消化完全成功; 7. 加入等量含 10% FCS的培养基中和胰蛋白酶; 8. 用移液器反复吸取几次确保细胞均匀分散; 9. 然后移取细胞悬浮液至15ml 已灭菌的有盖聚丙烯离心管中; 10. 400 RCF离心5 分钟; 11. 小心移去上清液,不要扰动细胞; 12. 将细胞重新悬浮于DMEM 并进行计数; 13. 需要待标记细胞在无血清DMEM溶液中的密度应为1x106 /ml ; 14. 每ml细胞悬浮液加入5 ?L DiD 染色液; 15. 用移液器将染色液与细胞悬浮液混合均匀; 16. 在6孔低附着性细胞板上37 °C 孵育20分钟; 17. 孵育完全后移取细胞悬浮液至15ml 已灭菌的有盖聚丙烯离心管中; 18. 400 RCF离心5 分钟; 19. 小心移去染色液,不要扰动细胞; 20. 用PBS清洗细胞,用移液器反复吸取几次确保细胞均匀分散; 21. 重复洗三次; 22. 细胞重新计数并用台盼蓝染色法检测细胞活性; 23. 可以进行活细胞成像了! 用荧光色素ICG标记 人胚胎干细胞 1. 必须先准备好吲哚菁绿溶液(血容量、心输出量、肝功能测定剂)作为对照品 ,然后使之与转染试剂鱼精蛋白(抗凝血作用)混合; 2. 测出1ml吲哚菁绿溶液的活力,然后在100 ?L DMSO中溶解ICG; 3. 向混合物中加入 400 ?L Dulbecco的改良Eagles 培养基 (DMEM + 10% 胎牛血清), 震荡均匀,吲哚菁绿溶液终浓度为2mg/ml; 4. 加入转染试剂鱼精蛋白,鱼精蛋白作为对照品的载体,使之能够有效进入细胞; 5. 在300 ?L ICG 和 300 ?L 无血清Dulbecco改良 Eagles 培养基中混入 5 ?L 硫酸鱼精蛋白溶液, 使之终浓度为 10mg/ml,; 6. 震荡5分钟使之形成复合物,标记溶液制备完毕; 7. 从 hESC 10mm Petri 培养皿中移去原有培养基; 8. 加入5ml预热的 DMEM; 9. 加入制备好的鱼精蛋白/ICG 溶液, 37 °C下孵育1h; 10. 孵育完全后移去染色液; 11. 用5 ml PBS漂洗培养皿以清除染色液; 12. 移去 PBS 再加入 5ml 0.25 % 胰蛋白酶液,37 °C下孵育5分钟使之酶解,适当震摇培养皿效果会更好; 13. 用移液器反复吸取几次确保细胞均匀分散; 14. 加入等量含 10% KSR的培养基中和胰蛋白酶; 15. 然后移取细胞悬浮液至15ml 已灭菌的有盖聚丙烯离心管中,400 RCF离心5 分钟; 16. 在全培养基中悬浮细胞; 17. 如果还有细胞团块,可以移去原有培养基用10ml预热的全ESC培养基重新悬浮细胞,重复酶解再离心; 18. 在这一点上,鼠源饲喂细胞需从hESCs中分离; 19. 然后将细胞悬浮液移至涂布琼脂的10 cm 培养皿中; 20. 37 °C 孵育 45 分钟,注意不要晃动培养皿,如此鼠源饲喂细胞会贴壁而干细胞保持悬浮; 21. 从Petri 培养皿中移出已标记的单细胞人胚胎干细胞悬浮液; 22. 细胞重新计数并用台盼蓝染色法检测细胞活性; 23. 可进行活细胞成像了!
  • 北京工商局检测发现“发光猪肉”因含“荧光假单胞菌”
    工商局称与猪肉安全无关,未检出荧光增白物质 专家称加热数秒能杀死细菌   ■ “市场买回猪肉 半夜发出蓝光”追踪   猪肉为何会在黑夜里发出荧荧蓝光?昨天下午,北京市工商局对外揭晓“谜底”:通过抽检发现,这是一种叫荧光假单胞菌的细菌在“作祟”,与猪肉安全无关。   专家介绍称,该细菌并不可怕,对正常人群不具有致病性。   抽检未发现荧光增白物   近期,有几位消费者反映在建欣苑菜市场、八里桥市场等处购买的猪肉,夜晚会发出荧光,担心吃了可能对身体有害。而这些肉都是从正规屠宰场批发,且肉身上有检验检疫章(本报12月12日曾报道)。   近日,北京工商部门组织了抽检,由北京市食品安全监控中心对送检样本进行荧光增白物质和荧光假单胞菌检测,结果显示,送检样本均未检出荧光增白物质,不过都检出了荧光假单胞菌。   猪肉煮熟可杀灭该细菌   “荧光假单胞菌能产生黄绿色荧光色素而使猪肉发光”,中国农业大学微生物系教授王贺祥介绍,这种细菌在肉及肉制品、禽蛋类等蛋白质丰富的食品中,易生长繁殖。   王贺祥说,荧光假单胞菌属于革兰氏阴性嗜冷菌,广泛存在于土壤、水、植物、动物活动环境中,也是存在于人类肠道的正常细菌,对正常人群不具有致病性,不必对其恐慌。   如何杀灭猪肉上的细菌呢?王贺祥介绍,该菌在42℃就会停止生长,超过70℃,只需数秒即可杀死。   市工商局也表示,消费者购买到的“发光猪肉”,可能在屠宰、储存、运输、销售等过程中污染了荧光假单胞菌,只要猪肉本身没有腐败变质,可以通过焯、炒、煮等方式将猪肉熟制后食用,不会对人体健康产生影响。
  • 索尼以蓝光光盘技术开发两种细胞分析仪
    索尼意欲扩大其医疗业务,在最近接连发布了两款细胞分析仪。与其他公司的同类产品不同的是,索尼充分利用了该公司擅长的蓝光技术,实现了产品的差异化。   索尼新开发的是完全以光学测量手段对细胞的种类及大小实施分析的、名为流式细胞仪(Flow Cytometer)的设备。流式细胞分析术是一种基于细胞的尺寸、数量、外表层以及内部元素(如结构、功能和生物指标等)、利用光学测量对各种不同的细胞进行分析和分选的技术。该技术在血液学、免疫学和肿瘤学领域以及干细胞(如诱导性多能干细胞和胚胎干细胞)和再生医学等前沿研究领域发挥着重要的作用。鉴于在上述和其他临床领域的研究持续扩大,流式细胞分析术将有望得以进一步传播。   流式细胞仪通过向高速流过微细流路的细胞照射激光,检测细胞发出的散射光及荧光来掌握细胞的状态。其原理与利用激光读取高速旋转的光盘上的微细凹坑的光盘检测原理相似,所以索尼认为可在这一领域应用自已的技术资产。2010年,索尼收购了总部位于美国的从事细胞分析仪业务送往iCyt Mission Technology公司,开始涉足流式细胞术业务,开发融合两公司技术的新一代机型,Cell Sorter SH800是索尼的蓝光光盘技术与iCyt的细胞分选技术相结合的首个商业化产品。   将于2012年秋季开始受理订单的“Cell Sorter SH800”通过运用索尼的激光聚集技术及小型机构设计技术,实现了体积仅为以往产品约1/3的小型化(宽55mm x深55cm x高72cm),而且还为实现低价格化及作业自动化等进行了改进,相比现有的同类器材,SH800在价格上更具竞争力,它拥有实现基本细胞分选功能所需使用的最多四束激光和六色荧光的检测功能,具备完全自动化的激光束光轴调节和细胞分选电子计时功能,无需专业操作者进行复杂的设置和调整。索尼宣称即使没有专职操作人员的研究室也可轻松导入。采用一次性塑料芯片,而非原来那种又贵又难清洗的石英固定式芯片。   与使用价格昂贵的、固定的石英零部件且每次使用完毕都需进行清洗的常规细胞分选仪不同,SH800的测量通道中采用一种新研发的塑料细胞分选芯片。该芯片的生产基于索尼在光盘领域研发的精密加工技术。SH800还可以让操作者根据待测细胞的类型及大小而选择不同喷嘴直径、易于更换和安装的芯片。由于流过细胞的流路部分芯片采用便宜的一次性塑料产品,不但成本降低,而且使用更加方便,原来的产品大多使用昂贵的石英产品,而且使用后的清洗也很麻烦。   这一塑料芯片是应用了在蓝光光盘等领域培育出的微细加工技术开发而成的。据索尼介绍,其制造工序与采用层构造的光盘极为相似,比如将1mm厚的成型基板精密地贴合起来,等等。索尼医疗事业部生命科学事业部门生物科学事业室高级产品主管、部长篠田昌孝介绍说,实际上,该芯片“就是利用与蓝光光盘相同的设备制作的”。   除Cell Sorter SH800以外,索尼开发的另一款细胞仪是可分离众多荧光波形的细胞分析仪,无需原来必需的修正作业,提高了分析精度、再现性及处理速度等,是最高档机型。索尼医疗事业部生命科学事业部门生物科学事业室高级产品主管古木基裕表示,该产品“有望在不远的将来实现实用化”。   以前的流式细胞仪为了检测众多细胞发出的荧光等,需要使用满足数量要求的光学滤波器、检测器及荧光色素,而且还需要对混合在一起的荧光色素信息进行修正,将各个色素分离出来。此次索尼通过将新开发的棱镜与光电子倍增管组合使用,实现了荧光色素信息的自动分离。其原理是,用棱镜按照各色对混合在一起的荧光信息进行分离,然后通过光电子倍增管高精度测定各荧光色素的波形形状。   在使用这些仪器的再生医疗领域,随着技术的进步,研究活动日趋活跃,而且研究人员的数量也在迅猛增加。因此,索尼打算乘着这一势头,向再生医疗领域大力推广其产品及品牌。
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