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双光子荧光成像

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双光子荧光成像相关的仪器

  • 多光子显微镜采用在生物组织中穿透性强的近红外/红外激光去激发样品中的荧光发光基团,进行荧光成像。该技术光毒性低,成像深度高,因此适用于厚的活体组织(如脑片、完整器官)甚至活体生物标本的成像及功能研究。2013年Bruker收购Prairie Technology公司,该公司于1996年开始生产双光子显微镜,是最早推出商业化双光子的厂家之一,在欧美市场的占有率极高。目前,Bruker的双光子产品主要有专注于高品质活体成像的Investigators系列以及专注于进行活体功能性研究的Ultima系列。20多年的技术沉淀,使得Bruker的双光子产品在仪器性能、使用便利性以及仪器应用拓展性方面都展现出无与伦比的优势。(1)三种成像扫描模式:常规的检流振镜扫描(Galvo Scanning),龙卷风扫描(Spiral Scanning)和快速振镜扫描(Resonant Scanning);(2)有多种旋转物镜可供选择(单轴手动,多轴手动旋转、多轴电动),进行离轴成像,可以从不同角度对实验样品进行成像;(3)可升级移动显微镜平台,结合旋转物镜,无需样品移动,使其保持在自然生理状态下,即可找到感兴趣的成像视野或进行多视野图像采集
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  • 多光子显微镜采用在生物组织中穿透性强的近红外/红外激光去激发样品中的荧光发光基团,进行荧光成像。该技术光毒性低,成像深度高,因此适用于厚的活体组织(如脑片、完整器官)甚至活体生物标本的成像及功能研究。Bruker的双光子产品主要有专注于高品质活体成像的Investigators系列以及专注于进行活体功能性研究的Ultima系列,2018年Bruker推出重磅新品Ultima 2Pplus。该套设备在仪器性能、使用便利性以及仪器应用拓展性方面都展现出无与伦比的优势。(1)三种成像扫描模式:常规的检流振镜扫描(Galvo Scanning),龙卷风扫描(Spiral Scanning)和快速振镜扫描(Resonant Scanning);(2)成像视野方面(FOV,Field of View),采用大尺寸的光学镜组和6mm的扫描振镜,成像视野是常规产品的3~4倍;(3) 有多种旋转物镜可供选择(单轴手动,多轴手动旋转、多轴电动),进行离轴成像,可以从不同角度对实验样品进行成像;可升级移动显微镜平台,结合旋转物镜,无需样品移动,使其保持在自然生理状态下,即可找到所需的成像视野或进行多视野图像采集。(5)镜下空间极大。有利于多种应用拓展。(6)有full-field LED illumination、1p/2p uncaging module、SLM等多种光刺激模块可选,能够进行刺激/成像序列实验、刺激/成像同步实验、多点同时刺激/成像同步实验。扫描光路在400nm-1700nm纳米范围内优化,在该范围内任意波长的光刺激实验均可灵活选择。(7)支持三光子成像。
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  • [ 产品简介 ]多光子成像与全息光刺激系统 DeepVision是神经科学、肿瘤免疫和药物代谢等相关研究领域进行活体显微成像的理想平台。DeepVision核心技术来自于复旦大学脑科学转化研究院李博团队及工程与应用技术研究院董必勤团队的多年研发成果。系统采用了创新的设计理念和先进技术,能够实现双光子、三光子快速深层成像,并可拓展实现单细胞精度的三维双光子全息光遗传操控。[ 产品特点 ]&bull 更大的样品空间:龙门架式结构,可放置猕猴等非人灵长类动物或搭载小动物VR装置,实现小鼠跑球等行为学实验。&bull 更深的成像深度:三光子成像深度最大超过1500 μm,能记录到活体小鼠海马区神经元钙信号。&bull 多脑区同步成像:同一视野下可对多个脑区同步成像或刺激,实现多脑区互作神经环路研究。&bull 同步高精度光遗传刺激:对分布在三维空间中的多个目标神经细胞进行单细胞精度的全息光遗传学操控。&bull 无荧光标记谐波成像:利用二次谐波(SHG)或三次谐波(THG)进行无需荧光标记的谐波信号成像。[ 应用领域 ]&bull 活体脑(鼠/猴等)深层成像、神经元功能钙成像、光遗传实验&bull 各类模式生物(果蝇/斑马鱼/线虫)活体深层成像、神经元功能钙成像&bull 多色样品深层成像、谐波成像&bull 各种类器官和血管深层成像、谐波成像&bull 行为学实验中的神经元功能钙成像 活体小鼠海马区神经元钙信号成像(复旦大学脑科学转化研究院李博实验室)小鼠活体皮层三维双色成像,绿色:小胶质细胞;红色:皮层血管 ((复旦大学脑科学转化研究院李博实验室))脑类器官三光子三次谐波(THG)信号成像,无需荧光标记 (复旦大学脑科学转化研究院李博实验室)在三维空间中的多个目标神经细胞进行单细胞精度的光遗传学操控(复旦大学脑科学转化研究院李博实验室)
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  • 单像素光子成像教学仪 单像素光子成像教学仪是基于压缩感知理论和光子计数成像技术,利用数字微镜器件完成随机空间光调制目标物进行快速成像的教学仪器。产品利用压缩感知技术信号稀疏的特性,超越传统香农采样定理,可以通过较少的测量值在极弱光条件下还原出高空间分辨率高信噪比的图像。 单像素光子成像教学仪具有丰富的硬件模块,支持学生动手调节和搭建,方便学生了解空间光调制技术及设备使用方法;理解压缩感知原理以及成像方式;知悉光子计数成像特点及噪声处理方法。 配备完整的压缩感知理论教学讲义和实验内容,帮助高校在近代物理实验课、通信类、计算数学等方向开设课程,推动学科建设发展。产品硬件可调,教学功能丰富桌面型设计,使用更加方便完善的配套教学资料 遮光性能优越,具有强光保护自由算法编码,可视化实验效果实验内容仪器调节实验光路搭建和仪器模块连接;单帧图像显示实验;光本底测量实验; 频率位移关系实验含目标靶成像实验;分辨率靶成像实验;自制目标靶成像实验;单像素光子成像调制方法实验不同矩阵调制成像实验;不同算法调制成像实验;实验原理图
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  • 荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2… 和三重态T1… ,每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下,大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上,当分子被光束照射,会吸收光子能量,电子被激发到更高的能态S1 或S2 上,在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间,便会通过内转换过程跃迁到S1 上,而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上,而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态,这个过程会释放一个光子,即荧光。此外,亦会有电子跃迁至三重态T1 上,再由T1 跃迁至基态,我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时,主要在以下几方面进行分析:激发光谱,发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命(Fluorescence Lifetime)是指荧光分子在激发态上存在的平均时间(纳秒量级)。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间,如今主要有两类测试方法:时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线:1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1,接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数,即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试,此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的第一个( 也是*一的一个) 光子与激发光之间的时间差,也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求,所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源,其重复至少要在100KHz 以上,多数的光源都会达到MHz 量级;同时,在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制,做到尽量满足在一个激发周期内,样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号,避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后,分子发出的荧光强度也会受到振幅调制,两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差,因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光(绿色)频域显示,发射光信号(红色)相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命,TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术(FLIM)显微荧光寿命成像技术(Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy,FLIM)是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术,由于其不受样品浓度影响,具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能,目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM(Wide Field FLIM,WFM)该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号,再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM(Laser Scanning FLIM,LSM)激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线,再经过拟合最终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM,其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种:一种是固定样品,移动激光进行扫描,一种是固定激光,电动位移台带动样品移动进行扫描。显微荧光寿命成像系统RTS2-FLIM应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS,铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移(FRET):纳米级尺度上的远差测量,环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像:NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像显微荧光寿命成像系统RTS2-FLIM应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞(宫颈癌细胞的一种) 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图,寿命范围1ns(蓝色)到2.5ns(红色);(b) 荧光寿命直方图,脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近,细胞中其他位置寿命较长,在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性,且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光:(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数;(b) 用绿色荧光蛋白(GFP)标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面,垂直比例尺:5m;(c) b 图的FLIM 图,金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中,展示了一种动态热风(DHA)制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性,该工艺不含有常规的有害反溶剂,可以在大气环境中制备。同时,钙钛矿掺有钡(Ba2+) 碱金属离子(BaI2:CsPbI2Br)。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶,从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件,在0.09cm小面积下,效率为14.85%,在1x1cm的大面积下,具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的最高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs,强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线,均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs,点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。显微荧光寿命成像系统FLIM参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术,配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线,再经过用数据拟合,得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的选择。参数指标:系统性能指标光谱扫描范围200-900nm最小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围(光源参数基于50MHz 重复频率)375nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:30ps,平均功率1.5mW,荧光波段:400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:25ps,平均功率2.5mW,荧光波段:430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:50ps,平均功率1.9mW,荧光波段:485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:70ps,平均功率1.3mW,荧光波段:500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:75ps,平均功率1.1mW,荧光波段:535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:65ps,平均功率4.3mW,荧光波段:670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:60ps,平均功率1.9mW,荧光波段:690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:40ps,平均功率0.8mW,荧光波段:700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明,12V,100W5 孔物镜转盘,标配明场用物镜:10×,50×,100×监视CCD:高清彩色CMOS 摄像头,像元尺寸:3.6μm*3.6μm,有效像素:1280H*1024V,扫描方式:逐行,快门方式:电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台,行程:75*50mm(120*80mm 可选),最小步进:50nm,重复定位精度:< 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪,双入口、狭缝出口、CCD 出口,配置三块68×68mm 大面积光栅,波长准确度:±0.1nm,波长重复性:±0.01nm,扫描步距:0.0025nm,焦面尺寸:30mm(w)×14mm(h),狭缝缝宽:0.01-3mm 连续电动可调探测器:制冷型紫外可见光电倍增管,光谱范围:185-900nm(标配,可扩展)光谱CCD(可扩展PLmapping)低噪音科学级光谱CCD(LDC-DD),芯片格式:2000x256,像元尺寸:15μm*15μm, 探测面:30mm*3.8mm,背照式深耗尽芯片,低暗电流,*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度,风冷,最高量子效率值95%时间相关单光子计数器(TCSPC)时间分辨率:16/32/64/128/256/512/1024ps… … 33.55μs,死时间< 10ns,*高65535 个直方图时间窗口,瞬时饱和计数率:100Mcps,支持稳态光谱测试;OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能:控制样品平移台移动,通过显微镜的明场光学像定位到合适区域,框选扫描区域进行扫描,逐点获得荧光衰减曲线,实时生成荧光图像等数据处理功能:自动对扫描获得的FLIM 数据,逐点进行多组分荧光寿命拟合(组分数小于等于4),对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能:直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑,Windows 10 操作系统软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路,用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤:包括控制样品平移台移动,通过显微镜的明场光学像定位到合适区域,框选扫描区域进行扫描,逐点获得荧光衰减曲线,实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件,充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据,逐点进行多组分荧光寿命拟合(组分数小于等于4),对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数(TCSPC)荧光寿命的拟合算法,可对荧光衰减曲线中最多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合,获得每个组分的荧光寿命,光子数比例,计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程,而是与光源及探测器相关的仪器响应函数(IRF)与荧光衰减过程相互卷积的结果,因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下, IRF 很难正确的从实验获得,针对这种情况,软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法:1.通过算法对数据上升沿进行拟合,获得时间响应函数IRF,然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。2.对于衰减时间远长于仪器响应时间的,可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试,可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像(3D 显示):
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  • 荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2…和三重态T1…,每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下,大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上,当分子被光束照射,会吸收光子能量,电子被激发到更高的能态S1 或S2 上,在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间,便会通过内转换过程跃迁到S1 上,而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上,而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态,这个过程会释放一个光子,即荧光。此外,亦会有电子跃迁至三重态T1 上,再由T1 跃迁至基态,我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时,主要在以下几方面进行分析:激发光谱,发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命(Fluorescence Lifetime)是指荧光分子在激发态上存在的平均时间(纳秒量级)。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间,如今主要有两类测试方法:时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线:1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1,接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数,即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试,此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的*一个( 也是唯一的一个) 光子与激发光之间的时间差,也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求,所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源,其重复至少要在100KHz 以上,多数的光源都会达到MHz 量级;同时,在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制,做到尽量满足在一个激发周期内,样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号,避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后,分子发出的荧光强度也会受到振幅调制,两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差,因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光(绿色)频域显示,发射光信号(红色)相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命,TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术(FLIM)显微荧光寿命成像技术(Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy,FLIM)是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术,由于其不受样品浓度影响,具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能,目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM(Wide Field FLIM,WFM)该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号,再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM(Laser Scanning FLIM,LSM)激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线,再经过拟合*终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM,其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种:一种是固定样品,移动激光进行扫描,一种是固定激光,电动位移台带动样品移动进行扫描。FLIM 应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS,铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移(FRET):纳米级尺度上的远差测量,环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像:NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞(宫颈癌细胞的一种) 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图,寿命范围1ns(蓝色)到2.5ns(红色);(b) 荧光寿命直方图,脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近,细胞中其他位置寿命较长,在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性,且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光:(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数;(b) 用绿色荧光蛋白(GFP)标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面,垂直比例尺:5 m;(c) b 图的FLIM 图,金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中,展示了一种动态热风(DHA)制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性,该工艺不含有常规的有害反溶剂,可以在大气环境中制备。同时,钙钛矿掺有钡(Ba2+) 碱金属离子(BaI2:CsPbI2Br)。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶,从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件,在0.09cm小面积下,效率为14.85%,在1x1cm的大面积下,具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的*高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs,强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线,均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs,点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。OmniFluo-FLIM系列显微荧光寿命成像系统参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术,配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线,再经过用数据拟合,得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的不二选择。参数指标:系统性能指标光谱扫描范围200-900nm*小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围(光源参数基于50MHz 重复频率)375nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:30ps,平均功率1.5mW,荧光波段:400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:25ps,平均功率2.5mW,荧光波段:430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:50ps,平均功率1.9mW,荧光波段:485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:70ps,平均功率1.3mW,荧光波段:500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:75ps,平均功率1.1mW,荧光波段:535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:65ps,平均功率4.3mW,荧光波段:670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:60ps,平均功率1.9mW,荧光波段:690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:40ps,平均功率0.8mW,荧光波段:700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明,12V,100W5 孔物镜转盘,标配明场用物镜:10×,50×,100×监视CCD:高清彩色CMOS 摄像头,像元尺寸:3.6μm*3.6μm,有效像素:1280H*1024V,扫描方式:逐行,快门方式:电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台,行程:75*50mm(120*80mm 可选),*小步进:50nm,重复定位精度:< 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪,双入口、狭缝出口、CCD 出口,配置三块68×68mm 大面积光栅,波长准确度:±0.1nm,波长重复性:±0.01nm,扫描步距:0.0025nm,焦面尺寸:30mm(w)×14mm(h),狭缝缝宽:0.01-3mm 连续电动可调探测器:制冷型紫外可见光电倍增管,光谱范围:185-900nm(标配,可扩展)光谱CCD(可扩展PLmapping)低噪音科学级光谱CCD(LDC-DD),芯片格式:2000x256,像元尺寸:15μm*15μm, 探测面:30mm*3.8mm,背照式深耗尽芯片,低暗电流,*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度,风冷,*高量子效率值95%时间相关单光子计数器(TCSPC)时间分辨率:16/32/64/128/256/512/1024ps……33.55μs,死时间< 10ns,*高65535 个直方图时间窗口,瞬时饱和计数率:100Mcps,支持稳态光谱测试;OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能:控制样品平移台移动,通过显微镜的明场光学像定位到合适区域,框选扫描区域进行扫描,逐点获得荧光衰减曲线,实时生成荧光图像等数据处理功能:自动对扫描获得的FLIM 数据,逐点进行多组分荧光寿命拟合(组分数小于等于4),对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能:直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑,Windows 10 操作系统 FLIM 软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路,用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤:包括控制样品平移台移动,通过显微镜的明场光学像定位到合适区域,框选扫描区域进行扫描,逐点获得荧光衰减曲线,实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件,充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据,逐点进行多组分荧光寿命拟合(组分数小于等于4),对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数(TCSPC)荧光寿命的拟合算法,可对荧光衰减曲线中*多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合,获得每个组分的荧光寿命,光子数比例,计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程,而是与光源及探测器相关的仪器响应函数(IRF)与荧光衰减过程相互卷积的结果,因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下, IRF 很难正确的从实验获得,针对这种情况,软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法:NO.1 通过算法对数据上升沿进行拟合,获得时间响应函数IRF,然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。NO.2对于衰减时间远长于仪器响应时间的,可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试,可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像(3D 显示):测试案例
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  • 手持式皮肤生物细胞成像仪手持式皮肤生物细胞成像仪是一款移动式微型化双光子显微成像系统,经设计用于皮肤生物细胞显微成像。双光子显微成像系统是结合了激光扫描共聚焦显微镜和双光子激发技术的一种新技术。生物组织中含有很多内源荧光团,分布于皮肤组织的NAD(P)H,FAD,胶原蛋白,弹性蛋白,黑色素等皮肤组分中,在适当的飞秒激光激发下可产生稳定的双光子荧光信号。此外,飞秒激光还会引起皮肤组织中的非对称结构产生二次谐波信号,因此通过合理设置收集通道的滤光片,即可在同一台光学显微镜下,同时获得双光子自发荧光图像和二次谐波图像,实现双模态信号检测。这种方法在皮肤衰老检测,皮肤疾病检测方面有着巨大的应用潜力。基于双光子显微成像原理,本产品根据预期用途实现了对体表上皮细胞及组织的自发荧光成像和二次谐波成像。双光子自发荧光(2PEF)指基态荧光分子或原子吸收两个光子激发至激发态,然后恢复到基态并发出荧光的过程。荧光分子先吸收一个光子后,将跃迁至一个虚态,需要第二个光子在几飞秒内与处于虚态的荧光分子作用,荧光分子才能从虚态跃迁到激发态。自发荧光物质是指生物细胞与组织内固有的荧光物质。当被合适波长的光激发时,一些细胞和组织的内容物能够发出稳定的荧光信号,它们也因此被称为内源荧光团。二次谐波成像(SHG)是一种非线性的光学过程,在此过程中,两个相同频率光子与非对称介质发生相互作用,将其从基态激发至虚态。在从虚态恢复到基态的过程中,释放频率增倍、波长减半的光子。由于其可将物质自发激发至虚态的特性,二次谐波成像不需要荧光标记,因此不会受到光漂白或光毒性的影响。手持式双光子皮肤生物细胞成像仪基本参数轴向分辨率≤2μm水平分辨率 ≤0.65μm脉冲宽度≤200fs激发光重复频率80mHz±10激发光中心波长780±10μm激发光输出功率50mW±10%扫描视场≥125μm x 125μm成像深度≥200μm图像分辨率512x512像素成像速度≥8帧/秒手持式双光子皮肤生物细胞成像仪特点手持式亚微米级皮肤生物细胞显微成像系统,2.2g超轻显微探头,实现便捷检测;特种超柔光纤,信号无损传输;飞秒脉冲激光器,高效、安全激发;航天级系统,快速采集,实时成像。细胞、弹性纤维、胶原纤维、代谢信息直观可见。安全可靠,简单便携,为您提供在体、原位、无创、无标记的微纳米级显微成像。在皮肤检测领域的应用化妆品评价应用方向化妆品人体功效评价化妆品人体功效开发评价化妆品成分作用机理的研究与探索医美功效评价应用方向激光美容功效评价人体细胞活性检测人体皮肤弹性纤维可视化、量化评估人体皮肤弹性胶原可视化、量化评估皮肤实际年龄检测医疗应用方向皮肤科皮肤疾病辅助诊断内分泌科糖尿病AGEs检测研究肾病血液透析中心个性化透析方案探索与研究烧伤整形皮肤移植活性实时评价人工皮肤状态评估应用实例1.化妆品人体功效评价检测角质层表面形态上图:使用产品28天后,皮肤角质层表层形态趋于平整(角质层可见空洞减少,角质层形成细胞排列趋于均匀),上皮表层逐渐增厚(上图虚线为真表皮交界处)。2.微针创伤检测利用医美微针压刺手臂皮肤之后,用皮肤双光子检测微针窗口上图:角质层存在明显的不规则创口;网状纤维层对应位置出现无信号区,说明微针刺穿了基底层。3.敏感皮肤状态检测对敏感皮肤的红敏区和正常区进行观测检查上图:在红敏区颗粒层、棘层所有细胞均发现细胞核周围“环状”荧光聚集;对照区仅颗粒层顶层细胞散发细胞核周环状荧光聚集更多详情欢迎直接联系昊量光电更多详情请联系昊量光电/欢迎直接联系昊量光电关于昊量光电:上海昊量光电设备有限公司是光电产品专业代理商,产品包括各类激光器、光电调制器、光学测量设备、光学元件等,涉及应用涵盖了材料加工、光通讯、生物医疗、科学研究、国防、量子光学、生物显微、物联传感、激光制造等;可为客户提供完整的设备安装,培训,硬件开发,软件开发,系统集成等服务。
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  • 该系统可长时间多次观察,动物实时成像,包括清醒的动物成像,活体双光子搭载zui新的COHERENT飞秒激光器,成像波长可达690-1050 nm,穿透深度可达1000 um 活体共聚焦成像模块搭载4色通道(405, 420, 445, 473, 488, 505, 514, 532, 561, 633, 642, 660, 685, 705, 730, 785 nm (可任选4通道)),成像速度高达100 fps @ 512 x 512 像素。1、IVIM 技术-超快旋转多面镜扫描仪-实现超高速体内成像(512x512像素,zui大100fps)-在整个成像视场(FOV)上实现均匀的激发照明-在FOV的中心区域没有降低的荧光信号和信噪比(SNR)-FOV边缘区域没有过度的光漂白-在整个FOV上均一的高信噪比-改善图像质量而不会浪费过多的光子2、IVIM技术-集成运动伪影补偿-自动无忧的高精度运动补偿-通过GPU辅助并行计算立即获取运动补偿的成像结果,以加快算法处理速度-超快的活体成像的协同效应-确保从慢速运动的组织(例如肝,肾,脾等腹腔器官)到快速运动的组织(例如心脏,肺等胸腔器官)的时空组织运动范围广泛的zui佳结果该系统应用范围为:小鼠模型中各个器官的体内成像:-肝脏,淋巴结,脾脏,皮肤,视网膜,肺,脑,结肠,胰腺,小肠,前列腺,肾脏,心脏,气管,食道,食道,骨髓,胸腺等。细胞水平的图像处理和分析:-细胞动力学(细胞运动,细胞运输,细胞运动,细胞归巢)-细胞-细胞/细胞微环境/细胞-分子相互作用-细胞死亡/存活,细胞分布,细胞分化多种人类疾病的小鼠模型:-使用荧光癌细胞系(肺癌/乳腺癌/结肠癌/胰腺癌,胶质母细胞瘤,白血病,黑素瘤等)的异种移植和同基因癌症模型-急性/慢性炎症模型(全身注射,器官/组织)损伤,缺血再灌注损伤)-嵌合体模型,用于特定细胞类型的活体内成像(干细胞移植,淋巴细胞的过继性细胞转移等)
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  • 紧凑制冷型双光子显微成像系统2PM-Cryo功能介绍提供激光器系统,激光器件,光学精密仪器设备,流动可视化测量和分析设备的最新进展和前沿应用信息 紧凑制冷型双光子显微成像系统2PM-Cryo基于近红外飞秒激光技术,高于亚微米分辨率,在冻结和加热条件下的成像测量-196°C - +600°C (77K – 873K)制冷速率: 0.01K/分钟-150K/分钟? 冻结样本的无标记自发荧光测量? 荧光寿命成像显微镜(FLIM)? 倍频(SHG)成像? 显微光谱学应用:超低温保存,热应力,气候变化,低温实验方法优化, 生物冷冻库的高技术工具,人类,动物,植物组织/细胞/矿物植物(阿拉伯芥)叶片的双光子制冷荧光寿命成像显微(FLIM)测量结果。内生的叶绿体中叶绿素荧光。高空间分辨率和时间分辨率(300 nm / 200 PS)。重要技术参数? 紧凑型即开即用的掺钛蓝宝石飞秒激光器激光输出脉冲宽度: 100 fs - 200 fs重复频率: 80 MHz激光输出功率: 1.3 W激光输出波长范围: 710-920 nm?全幅扫描,局部自定义(ROI)区域扫描,线扫描,单点照明(单点波长扫描)?典型测量视场(FOV): 250 μm x 250 μm (水平) 深度: 2 mm?典型空间分辨率: 0.5 μm (水平) 2 μm (垂直)?典型时间分辨率: 200 ps (时间相关单光子计数(TCSPC)方式, 最大可达256个时间通道)?聚焦光学元件: 40x NA 1.3 (标准配置), 可选其它参数物镜?控制和图像处理软件(JenLab Control, JenLab Image)?温度范围 -196°C (液氮) - +600°C (77K - 873K)?制冷速率: 0.01K/分钟 - 150K/分钟?电源需求: 230 VAC (50 Hz) 或 115 VAC (60 Hz)?符合CE认证标准?体积尺寸: 700x520x800mm3(不含激光器)备注说明:这些参数指标可能会有变化,恕不事先通知.参考文献:Breunig, Tümer, K?nig. Multiphoton imaging of freezing and heating effects in plant leaves.J Biophotonics (2012), 发行中
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  • 微型化双光子显微镜成像系统自主研制的快速微型化双光子显微成像系统FIRM-TPM,实现了自由运动小鼠单个树突棘水平神经元功能活动的高速高分辨实时成像。这款头戴式双光子显微镜可实时记录自由行为动物的大脑神经元和树突棘活动,支持钙成像,并可在同一视野长时程反复成像。系统能够配置移动的轴向扫描模块,实现三维成像和多平面快速切换实时成像,用于脑神经回路观察;还可配置光遗传模块,对神经元和大脑神经回路活动进行精确控制。目前该产品已在小动物活体光学成像,尤其是神经科学领域已经得到了广泛应用,并在皮肤成像,疾病诊疗,干细胞研究等领域开展了项目研究。FIRM-TPM微型化双光子显微镜大视场型1.FIRM-TPM微型化双光子显微镜大视场型探头重量约为2.8g, 可佩戴在动物头部2.成像视野400 μm×400 μm, 通过颅窗可记录数十个神经元、上千个神经突触的动态信号3.可传播920nm飞秒脉冲激光,对神经生物学常用探针GCaMp进行成像4.探头可拔插设计,简化实验并避免动物长时间运动而造成的光纤和电缆的缠绕5.可配置轴向扫描模块,进行三维成像和多平面切换成像,用于神经元网络结构研究6.可配置红色通道和绿色通道的荧光采集模块,实现双通道成像探头重量~2.8 g探头体积:10 mm×16 mm×21 mm分辨率 1.3 μm成像速度9Hz@512×512,18 Hz@256×256成像视野400 μm×400 μm工作距离~ 1 mm三维变焦模块变焦范围:0~100 μm;平面间切换速度: 4Hz飞秒脉冲激光器激发波长:920 nm/ 1030 nm;平均功率: 400 mW;脉冲宽度: 200 fs荧光采集模块接收范围:300~720 nm; 绿色通道:520/50 nm;红色通道:605/50 nm成像控制模块zui大采样率:≥ 120 MS/s;模拟输入分辨率:≥ 16- bit;模拟输入带宽:≥ 110 MHz成像处理模块系统: win 10操作系统 CPU内存: 32G 硬盘: 256固态硬盘和2T机械硬盘 显卡: 2GB DDR5专业显卡 成像分析系统: GINKGO-MTPM系统尺寸成像系统:955 mm×1380 mm×825 mm;行为学箱:1380 mm×1380 mm×2179 mm系统环境温度:24 ± 2 ℃;湿度: 60% FIRM-TPM微型化双光子显微镜高分辨型1. FIRM-TPM微型化双光子显微镜大视场型探头重量约为2.2g,可佩戴在小动物在头部2.分辨率850 nm, 能够清晰地看到小鼠树突棘结构,实现亚微米级别分辨率成像3.无失真传导920飞秒脉冲激光,对神经生物学常用的探针GCaMp、GFP进行成像4.探头整体可拔插,简化实验操作并避免动物长时间运动而造成的光纤和电缆的缠绕5.可配置轴向扫描模块进行三维成像和多平面切换成像,用于神经元网络结构的研究6.可配置红色通道和绿色通道的荧光采集模块,实现双通道成像成像视野180 μm×180 μm探头重量2.2 g成像速度9Hz @ 512×512, 18Hz @ 256×256分辨率 850 nm探头体积9.5 mm×15.5 mm×17 mm工作距离390 μm三维变焦模块变焦范围: 0~30 μm 平面间切换速度: 4Hz飞秒脉冲激光器激发波长: 920 nm/ 1030 nm 平均功率: 400 mW 脉冲宽度: 200 fs荧光采集模块接收范围: 300~720 nm 绿色通道: 520/50 nm 红色通道: 605/50 nm成像控制模块蕞大采样率: ≥ 120 MS/s 模拟输入分辨率: ≥ 16-bit 模拟输入带宽: ≥ 110MHz成像处理模块系统: win 10操作系统 CPU内存: 32G 硬盘: 256固态硬盘和2T机械硬盘 显卡: 2GB DDR5专业显卡 成像分析系统: GINKGO-MTPM系统环境温度:24 ± 2 ℃;湿度: 60%系统尺寸成像系统:955 mm×1380 mm×825 mm;行为学箱:1380 mm×1380 mm×2179 mm更多详情请联系昊量光电/欢迎直接联系昊量光电关于昊量光电:上海昊量光电设备有限公司是光电产品专业代理商,产品包括各类激光器、光电调制器、光学测量设备、光学元件等,涉及应用涵盖了材料加工、光通讯、生物医疗、科学研究、国防、量子光学、生物显微、物联传感、激光制造等;可为客户提供完整的设备安装,培训,硬件开发,软件开发,系统集成等服务。您可以通过我们昊量光电的官方网站www.auniontech.com了解更多的产品信息,或直接来电咨询4006-888-532。
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  • 时间相关单光子计数相机——宽场荧光寿命成像FLIM姓名:谷工(Givin) 电话: 邮箱:光子计数是获得尽可能多的光所带来的信息的方法。在这里,我们提出的时间相关单光子计数相机系统不仅可以检测单个光子的到达时间,而且可以像相机一样直观地定位。单光子计数相机LINCam可以将任何简单的广域显微镜扩展成强大的荧光寿命成像系统。时间相关单光子计数相机LINCam是一种解决无扫描时间相关的单光子计数问题的相机。这款时间相关单光子计数相机可以精确地分辨单个光子的X和Y位置,拥有1000*1000像素的CCD和50ps的精确时间分辨能力。与脉冲光源配合时,时间相关单光子计数相机LINCam使任何传统的荧光显微镜成为一个强大的寿命测量仪器。带有现成光学元件的单光子计数相机LINCam也是激光雷达等宏观应用的解决方案。应用领域:宽视场荧光寿命显微成像FLIM光照明3D FLIM时间相关拉曼显微时间飞行测量弱光观测宽场TCSPC荧光寿命显微成像FLIM谷百合样本荧光寿命成像的示例:强度图像(a)是获得光子的位置的直方图。荧光寿命分析揭示了四个组成部分:τ1=0.19ns;τ2=0.67ns;τ3 = 1.95ns;τ4 = 3.75ns。所得到的叠加图像(b)显示了强度图像和平均寿命。数据采集处理:采集系统集成了时幅转换器TAC、模数转换器ADC、电源供应、参考信号恒比鉴别器CFD等功能。技术参数:
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  • 多光子显微镜采用在生物组织中穿透性强的近红外/红外激光去激发样品中的荧光发光基团,进行荧光成像。该技术光毒性低,成像深度高,因此适用于厚的活体组织(如脑片、完整器官)甚至活体生物标本的成像及功能研究。Bruker的双光子产品主要有专注于高品质活体成像的Investigators系列以及专注于进行活体功能性研究的Ultima系列,2018年Bruker推出重磅新品Ultima 2Pplus。该套设备在仪器性能、使用便利性以及仪器应用拓展性方面都展现出无与伦比的优势。(1)三种成像扫描模式:常规的检流振镜扫描(Galvo Scanning),龙卷风扫描(Spiral Scanning)和快速振镜扫描(Resonant Scanning);(2)成像视野方面(FOV,Field of View),采用大尺寸的光学镜组和6mm的扫描振镜,成像视野是常规产品的3~4倍;(3) 有多种旋转物镜可供选择(单轴手动,多轴手动旋转、多轴电动),进行离轴成像,可以从不同角度对实验样品进行成像;可升级移动显微镜平台,结合旋转物镜,无需样品移动,使其保持在自然生理状态下,即可找到所需的成像视野或进行多视野图像采集。(5)镜下空间极大。有利于多种应用拓展。(6)有full-field LED illumination、1p/2p uncaging module、SLM等多种光刺激模块可选,能够进行刺激/成像序列实验、刺激/成像同步实验、多点同时刺激/成像同步实验。扫描光路在400nm-1700nm纳米范围内优化,在该范围内任意波长的光刺激实验均可灵活选择。(7)支持三光子成像。
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  • 双光子显微镜-IVIM 400-860-5168转2623
    双光子显微镜系统可长时间多次观察,动物实时成像,包括清醒的动物成像,活体双光子显微镜搭载zui新的COHERENT飞秒激光器,成像波长可达690-1050 nm,穿透深度可达1000 um 活体共聚焦成像模块搭载4色通道(405, 420, 445, 473, 488, 505, 514, 532, 561, 633, 642, 660, 685, 705, 730, 785 nm (可任选4通道)),成像速度高达100 fps @ 512 x 512 像素。1、IVIM双光子显微镜 技术-超快旋转多面镜扫描仪-实现超高速体内成像(512x512像素,zui大100fps)-在整个成像视场(FOV)上实现均匀的激发照明-在FOV的中心区域没有降低的荧光信号和信噪比(SNR)-FOV边缘区域没有过度的光漂白-在整个FOV上均一的高信噪比-改善图像质量而不会浪费过多的光子2、IVIM双光子显微镜技术-集成运动伪影补偿-自动无忧的高精度运动补偿-通过GPU辅助并行计算立即获取运动补偿的成像结果,以加快算法处理速度-超快的活体成像的协同效应-确保从慢速运动的组织(例如肝,肾,脾等腹腔器官)到快速运动的组织(例如心脏,肺等胸腔器官)的时空组织运动范围广泛的zui佳结果该系统应用范围为:小鼠模型中各个器官的体内成像:-肝脏,淋巴结,脾脏,皮肤,视网膜,肺,脑,结肠,胰腺,小肠,前列腺,肾脏,心脏,气管,食道,食道,骨髓,胸腺等。细胞水平的图像处理和分析:-细胞动力学(细胞运动,细胞运输,细胞运动,细胞归巢)-细胞-细胞/细胞微环境/细胞-分子相互作用-细胞死亡/存活,细胞分布,细胞分化多种人类疾病的小鼠模型:-使用荧光癌细胞系(肺癌/乳腺癌/结肠癌/胰腺癌,胶质母细胞瘤,白血病,黑素瘤等)的异种移植和同基因癌症模型-急性/慢性炎症模型(全身注射,器官/组织)损伤,缺血再灌注损伤)-嵌合体模型,用于特定细胞类型的活体内成像(干细胞移植,淋巴细胞的过继性细胞转移等)
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  • 活体双光子显微镜 400-860-5168转2623
    双光子显微镜系统可长时间多次观察,动物实时成像,包括清醒的动物成像,活体双光子显微镜搭载zui新的COHERENT飞秒激光器,成像波长可达690-1050 nm,穿透深度可达1000 um 活体共聚焦成像模块搭载4色通道(405, 420, 445, 473, 488, 505, 514, 532, 561, 633, 642, 660, 685, 705, 730, 785 nm (可任选4通道)),成像速度高达100 fps @ 512 x 512 像素。1、IVIM双光子显微镜 技术-超快旋转多面镜扫描仪-实现超高速体内成像(512x512像素,zui大100fps)-在整个成像视场(FOV)上实现均匀的激发照明-在FOV的中心区域没有降低的荧光信号和信噪比(SNR)-FOV边缘区域没有过度的光漂白-在整个FOV上均一的高信噪比-改善图像质量而不会浪费过多的光子2、IVIM双光子显微镜技术-集成运动伪影补偿-自动无忧的高精度运动补偿-通过GPU辅助并行计算立即获取运动补偿的成像结果,以加快算法处理速度-超快的活体成像的协同效应-确保从慢速运动的组织(例如肝,肾,脾等腹腔器官)到快速运动的组织(例如心脏,肺等胸腔器官)的时空组织运动范围广泛的zui佳结果该系统应用范围为:小鼠模型中各个器官的体内成像:-肝脏,淋巴结,脾脏,皮肤,视网膜,肺,脑,结肠,胰腺,小肠,前列腺,肾脏,心脏,气管,食道,食道,骨髓,胸腺等。细胞水平的图像处理和分析:-细胞动力学(细胞运动,细胞运输,细胞运动,细胞归巢)-细胞-细胞/细胞微环境/细胞-分子相互作用-细胞死亡/存活,细胞分布,细胞分化多种人类疾病的小鼠模型:-使用荧光癌细胞系(肺癌/乳腺癌/结肠癌/胰腺癌,胶质母细胞瘤,白血病,黑素瘤等)的异种移植和同基因癌症模型-急性/慢性炎症模型(全身注射,器官/组织)损伤,缺血再灌注损伤)-嵌合体模型,用于特定细胞类型的活体内成像(干细胞移植,淋巴细胞的过继性细胞转移等)
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  • 产品说明TVS-MMC系列双光子成像控制器是一个集高速同步采集、模拟输入输出、数字输入输出和低噪声电源于一体的双光子成像专用控制器,基于高性能FPGA和ARM微处理器架构开发,可以实现高达120MSPS、16bit的高速采集;优化设计的高速高精度模拟输出,可以控制Galvo振镜、共振振镜、MEMS扫描镜等器件实现二维面阵扫描,同时支持控制光电倍增管模块(PMT)、声光调制器(AOM)、电光调制器(Pockels cell)等双光子常用器件;另外,可实现高时间精度和同步要求,非常适合于光快门、PMT开关、行/场同步等需求;同时为超维景提供的AOM模块、光电倍增管采集模块和光快门驱动等供电。配合超维景双光子成像软件,可以大大简化双光子系统的搭建过程。产品应用多光子成像系统、共聚焦成像系统、拉曼成像系统产品优势高集成度:在一台控制器上,同时实现了高速采集、模拟输入输出、数字输入输出及低噪声电源等高采样率:集成双通道16bit,120MSPS高速采集多路低噪声模拟输出:8通道16bit模拟输出多路数字IO:多达32路数字输入输出接口技术参数型号TVS-PMT550-S高速模拟输入2通道16 bit / 120 MSPS-1 V-1 V50 Ω低速模拟输入4通道500 kSPS0~10 V模拟输出8路16 bit模拟输出,其中包含4路振镜控制信号、2路PMT增益及AOM调制控制数字输出32路数字输出,其中包含帧同步信号、行同步信号、采集同步信号、SHUTTER控制信号等扫描头可配置波形快轴100~25 kHz,正弦及三角波可选,-10 V~+10 V;慢轴自动生成,锯齿波,-10 V~+ 10 V核心处理器Altera cyclone IV + cyclone 10 FPGAPMT低噪声电源15 VDC集成跨阻放大低噪声电源土15 VDC集成AOM低噪声电源24 V/5 VDC尺寸(mm)250x300x120
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  • [ 产品简介 ]多光子成像与全息光刺激系统 DeepVision是神经科学、肿瘤免疫和药物代谢等相关研究领域进行活体显微成像的理想平台。DeepVision核心技术来自于复旦大学脑科学转化研究院李博团队及工程与应用技术研究院董必勤团队的多年研发成果。系统采用了创新的设计理念和先进技术,能够实现双光子、三光子快速深层成像,并可拓展实现单细胞精度的三维双光子全息光遗传操控。[ 产品特点 ]&bull 更大的样品空间:龙门架式结构,可放置猕猴等非人灵长类动物或搭载小动物VR装置,实现小鼠跑球等行为学实验。&bull 更深的成像深度:三光子成像深度最大超过1500 μm,能记录到活体小鼠海马区神经元钙信号。&bull 多脑区同步成像:同一视野下可对多个脑区同步成像或刺激,实现多脑区互作神经环路研究。&bull 同步高精度光遗传刺激:对分布在三维空间中的多个目标神经细胞进行单细胞精度的全息光遗传学操控。&bull 无荧光标记谐波成像:利用二次谐波(SHG)或三次谐波(THG)进行无需荧光标记的谐波信号成像。[ 应用领域 ]&bull 活体脑(鼠/猴等)深层成像、神经元功能钙成像、光遗传实验&bull 各类模式生物(果蝇/斑马鱼/线虫)活体深层成像、神经元功能钙成像&bull 多色样品深层成像、谐波成像&bull 各种类器官和血管深层成像、谐波成像&bull 行为学实验中的神经元功能钙成像 活体小鼠海马区神经元钙信号成像(复旦大学脑科学转化研究院李博实验室)小鼠活体皮层三维双色成像,绿色:小胶质细胞;红色:皮层血管 ((复旦大学脑科学转化研究院李博实验室))脑类器官三光子三次谐波(THG)信号成像,无需荧光标记 (复旦大学脑科学转化研究院李博实验室)在三维空间中的多个目标神经细胞进行单细胞精度的光遗传学操控(复旦大学脑科学转化研究院李博实验室)
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  • 宽带飞秒光纤激光器SCH——多色双光子显微专用昊量光电新推出宽带飞秒光纤激光器SCH,是一种用于多色双光子显微镜的新型光纤激光器。基于独有的技术,宽带飞秒光纤激光器SCH能够同时激发蕞大种类的荧光探针,并提供优异的图像亮度,一种性价比高,免维护的飞秒激光光源。宽带飞秒光纤激光器SCH提供了非常宽的光谱带宽,在近红外光谱中扩展到900-1200nm光谱。 这与大多数绿色和红移荧光标记的双光子激发光谱重叠,包括eGFP、mRFP和dred。 这大大超过了传统飞秒激光器(包括宽调谐激光器和单线飞秒光纤激光器)可以同时激发的荧光标记的范围。宽带飞秒光纤激光器SCH提供了一种高度灵活的解决方案,增强了可以在样品上同时成像的特性,这对体内和体外显微镜特别重要。利用宽带飞秒光纤激光器SCH激光激发的花粉自荧光成像显示花粉粒在不同光谱通道同时激发,图像质量良好。不仅光谱更宽,而且宽带飞秒光纤激光器SCH还提供更短的脉冲。 结合一个专用的色散预补偿器,实现到达显微镜样品平面的脉宽达15-20fs量级。 这实现了一个非凡的峰值功率和样品平面上无与伦比的光子通量,达到了传统100-200fs飞秒激光的光子通量的7倍以上。更大的光子通量与卓越的宽带飞秒光纤激光器SCH峰值功率相关,使得每个区域和时间内到达样品的光子数量增加。 与传统的固定波长或宽调谐激光器相比,这将双光子激发效率提高了49倍。当使用荧光标签DsRED,能实现超过50%的效率。 宽带飞秒光纤激光器SCH的红移近红外波长与更高的激发效率相结合,可以获得更好的图像亮度和更深的穿透性。 宽带飞秒光纤激光器SCH激发一个200微米深的斑马鱼样本图像如下。 宽带飞秒光纤激光器SCH的宽谱带不仅可以激发大范围的探针,而且允许900-1200 nm范围内单次扫描进行多色激发,使不同探针的同时激发成为可能。 这消除了与宽调谐激光器相关的显微镜对准问题。 小鼠肠道和铃兰的图像说明了当用宽带飞秒光纤激光器SCH激光的宽带宽照射这些样品时,可以实现的卓越的图像质量。宽带飞秒光纤激光器SCH在900-1200nm光谱范围内提供200nm的带宽,脉冲为15fs,重复频率为75MHz,增强了双光子激发,并能够单独或同时激发丰富的荧光探针。更多详情请联系昊量光电/欢迎直接联系昊量光电关于昊量光电:上海昊量光电设备有限公司是国内知名光电产品专业代理商,代理品牌均处于相关领域的发展前沿;产品包括各类激光器、光电调制器、光学测量设备、精密光学元件等,涉及应用领域涵盖了材料加工、光通讯、生物医疗、科学研究、国防及更细分的前沿市场如量子光学、生物显微、物联传感、精密加工、先进激光制造等;可为客户提供完整的设备安装,培训,硬件开发,软件开发,系统集成等优质服务。您可以通过我们昊量光电的官方网站了解更多的产品信息,或直接来电咨询。
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  • 双光子3D组织切割成像系统 ——OCT图像引导的组织和材料的非接触精确切割,更适合切小鼠胫骨等小鼠骨骼系统,牙齿的激光切片设备 德国LLS ROWIAK公司的TissueSurgeon是一款专门设计的快速、方便、灵活的组织切片机设备。该设备使用高速高能激光系统,能够对样品实施如同外科手术般精准的非接触式切割。其独特的多光子切割技术有别于目前市场上的任何产品,能够从样品中的任意位置开始,直接在指定的样品部位直接进行切割并且不会对样品部位造成灼伤。双光子3D组织切割成像系统-TissueSurgeon是一种多用途切片制备仪器,可以精确和无接触地切割生物样品、生物材料及其他材料。基于飞秒激光技术,Tissuesurgeon可用于二维/三维组织和材料的切片、结构化或温和提取。设备克服了传统机械切割的限制,对硬组织、植入组织或难以切割的材料也能轻松应对。 应用领域■ 骨科方面,尤其是非脱钙硬组织和种植体界面研究■ 心脏病学和心血管研究与医学,尤其是软组织与生物材料和支架,钙化斑块研究■ 再生医学与组织工程学,尤其是植入物、支架等研究■ 口腔、面部和牙科医学,尤其是非脱钙硬组织,金属、陶瓷或聚合物植入物研究■ 耳鼻喉相关研究,如耳蜗、耳蜗植入物等■ 从小鼠到大型动物模型的临床前研究等 为何选用TissueSurgeon?■ 样本损失小:几乎连续切片非脱钙硬组织,无需大深度磨片,材料损失小;■ 难切割样本:硬组织、软组织、软硬结合组织切割,甚至脆弱的样本(如耳蜗)切割;■ 适合界面研究:种植体组织界面组织学(如牙钉、心血管支架、支架);■ 无接触切割:无接触激光切割组织可避免挤压、划伤或裂纹等;■ 用3D切片方法可以沿着牙钉种植体-组织界面对特定部位的样本进行定向、温和的分离;■ 切割过程不会污染、灼伤或机械力损伤样品,可用于生物化学分析的无污染和无接触样品的制备;■ 用于组织工程的生物材料切割(如支架、聚四氟乙烯、水凝胶);■ 组织,基质和材料的3D微结构切割;■ 薄切片厚度:硬组织切片10 µ m;■ 切片速度:≥1 mm² /s;■ 光源类型:红外飞秒脉冲激光;■ 光学相干断层扫描(OCT)引导切割,可以测量样品尺寸和层厚,并能够高效定位到病变部位,直接对病变部位进行切割,大大提高了切割效率。设备参数TissueSurgeon产品升级!激光组织学的新维度:超大尺寸和可调节可以实现最大6.6 cm样本切割SizeSlide SizeSample SizeExtra Large76 x 102 mm (3 inch x 4 inch)up to 66 x 66 mmDouble Standard76 x 52 mm (3 inch x 2 inch)up to 42 x 42 mmStandard76 x 26 mm (3 inch x 1 inch)up to 32 x 20 mm应用案例■ TissueSurgeon可视化切片系统,实现边看边切对于病理等多种研究来书,涉及到组织切片的内容, 困难的部分莫过于寻找病变部位。 相比一个完整组织来说, 有时候研究者所关注的部分仅仅是其中变异的一小部分组织的形态而已。 但是对于传统切片手段来说, 缺乏一种有效的手段来定位这个区域, 因此往往需要投入大量人力和物力去多次制样,大量切片来寻找这个部位。 TissueSurgeon 自身集成了适合深层组织细胞成像的光学相干断层扫描(OCT)成像功能, 帮助您直接定位到 ROI 区域。 让切片变得可视化, 实现更加和可控的切片。为研究者更加迅速直观的找到病变位置,大大提高了研究效率。 大鼠膝关节的OCT成像 大鼠膝关节的OCT 3D重构 对含有金属钉的骨骼进行成OCT成像,并引导切片■ 原位细胞3D切割成像技术基于青鳉胚胎组织的单细胞提取单细胞的原位组织提取一直以来都是一项十分困难的工作,这主要受制于组织之间连接致密难以消化,而机械力往往很难地将单个细胞与组织完整的分离。激光切割具有传统切割技术所难以匹及的切割精度,是目前一种比较理想的切割手段,因此围绕激光切割技术的相关显微产品也孕育而生,并在科研领域中越来越受到关注。但是激光切割也有其局限性,先显微激光切割往往要从表面开始,无法对深层组织进行切割;另一方面激光的光源往往采用紫外激光光源,这种类型的光源很容易造成组织灼伤,从而影响切割下来样品的品质,因此激光切割的应用发展也受到了诸多限制。如今ROWIAK公司推出的一款全新的单细胞分离系统有望解决这一难题。它采用了近红外双光子激光切割技术,在保留了激光切割精度优势的同时,采用近红外波长的激光从而避免了激光切中对组织灼烧的问题。因此能够实现的原位组织中的单个细胞的分离。 青鳉是一种成熟的模式生物,常用于分析发育和发育过程中的细胞信号神经生物学研究。其中使用表达荧光蛋白的转基因胚胎是一种揭示胚胎发育的良好方法。随着基因技术的发展,研究者们越来越多地开始关注这些标记细胞中转录组中的信息。虽然单细胞测序技术发展迅速,但是从组织中获得单细胞的手段却十分有限。目前几乎没有手段能够直接在组织的原位上快速获取一个细胞,但是基于ROWIAK双光子切割技术,研究者成功地在这方面取得了一些进展。青鳉胚胎中感知神经中表达mcherry的细胞成像研究者为了研究青鳉感觉神经分泌细胞细胞群中特定表达m-cherry的转基因细胞的内部遗传信息,将ROWIAK双光子3D组织切割成像系统与传统的显微操作系统进行结合,成功实现了对目标细胞的原位分离。研究者先利用双光子3D组织切割成像系统对青鳉胚胎中的mcherry细胞进行了定位,然后根据其细胞群的形态设定了切割部位,随后系统根据预先设定的范围进行切割。待切割完成后使用玻璃微管移液器将目标的细胞部位直接取出,即获得了目标组织区域。这种方法能够在不破坏样品原位信息的情况下将感兴趣的部位直接的分离,这对于揭示生物体的基因表达情况具有着深远的意义。从青鳉胚胎中分离特定表达mcherry的细胞团 参考文献:Wittbrodt, J. et al. Medaka — a model organism from the Far East. Nature Reviews Genetics 3, 53-64.Yamamoto, T. (ed.) MEDAKA (Killifish): Biology and strains. Yamamoto, T. (ed.) Keigaku Pub. Co., Tokyo, 1975, pp.365.Kristin Tessmar-Raible et al.Removal of fluorescently-labeled sensory-neurosecretory cells from forebrain of transgenic Medaka embryos, focusonmicroscop. 2011.测试数据染色(缩写)染色图像描述ABFR阿尔新蓝-核固红狗,唾液腺:核仁:红色微酸粘蛋白:蓝色ABFR阿尔新蓝-核固红大鼠股骨(未脱钙):软骨细胞外基质:蓝色CF纤维蛋白-卡斯塔莱斯兔血管:纤维蛋白:亮红色血小板:灰到深蓝色胶原:亮蓝色肌肉:红色红细胞:明黄色EVGElastica Van Gieson染色兔,带支架血管:核:褐色结缔组织:黄色弹性纤维:紫色肌肉:红色Plasma:红色EO伊红狗爪(未脱钙):骨细胞,荧光HE苏木精和伊红带支架兔冠状动脉:核:蓝色其余组织:红色LLLevai-Laczko染色羊骨连接处(未脱钙):核:violett-blue细胞质:蓝色红细胞:深蓝色软骨基质:亮蓝色骨基质:鲜红色类骨质:紫色纤维:蓝紫色McNMcNeil Tetra Chrome染色狗胫骨(未脱钙):骨:粉红色/红色细胞和细胞核:蓝色软骨:紫色结缔组织:红/粉红色MGMasson Goldner Trichchrome with light green and anilin blue染色小鼠股骨(未脱钙),生长板:骨:绿色类骨质:橙色软骨:粉红色肌肉纤维:红色胶原蛋白:绿色细胞质:粉红色核:棕色MPMovat Pentachrome染色狗爪(未脱钙):核仁:蓝-黑色肌肉组织:红色基质:蓝色胶原:蛋白:黄色软骨::蓝-绿色弹性纤维:黑色骨:黄-红色Nissl尼氏染色法人脑:核和尼氏体:红紫罗兰色/紫罗兰色细胞质和其他组织:亮蓝色到亮紫罗兰色Sirius天狼星红人主动脉斑块:纤维组织:红色 SRSSanderson Rapid Stain染色鼠下颌骨(未脱钙):骨和细胞核:蓝色SRS + VGSanderson Rapid Stain + van Gieson染色大鼠股骨(未脱钙),生长板:骨:粉红色骨髓细胞:蓝色到紫色生长板软骨:红色VELVerhoeffs Elastica染色兔,带支架血管:弹性纤维:黑色其余组织:红色发表文章1. Nolte, P. Brettmacher M. Grö ger, C. J. Gellhaus, T. Svetlove A. Schilling, A. F. Alves, A. Ruß mann, C. Dullin, C. (2023) Spatial correlation of 2D hard tissue histology with 3D microCT scans through 3D printed phantoms Sci Rep 13, 18479 2. Kevin Janot, Grégoire Boulouis, Géraud Forestier, Fouzi Bala, Jonathan Cortese, Zoltán Szatmáry, Sylvia M. Bardet, Maxime Baudouin, Marie-Laure Perrin, Jérémy Mounier, Claude Couquet, Catherine Yardin, Guillaume Segonds, Nicolas Dubois, Alexandra Martinez, Pierre-Louis Lesage, Yong-Hong Ding, Ramanathan Kadirvel , Daying Dai, Charbel Mounayer, Faraj Terro, Aymeric Rouchaud. (2023) WEB shape modifications: “angiography–histopathology correlations in rabbits” J NeuroIntervent Surg 2023 0:1–7. 3. Géraud FORESTIER, Jonathan CORTESE, Sylvia M. BARDET, Maxime BAUDOUIN, Kévin JANOT, Voahirana RATSIMBAZAFY, Marie-Laure PERRIN, Jérémy MOUNIER, Claude COUQUET, Catherine YARDIN, Yan LARRAGNEGUY, Flavie SOUHAUT, Romain CHAUVET, Alexis BELGACEM, Sonia BRISCHOUX, Julien MAGNE, Charbel MOUNAYER, Faraj TERRO, Aymeric ROUCHAUD. (2023) “Comparison of Arterial Wall Integration of different Flow Diverters in rabbits” the CICAFLOW study Journal of Neuroradiology, In press. 4. Donath, Sö ren, Leon Angerstein, Lara Gentemann, Dominik Müller, Anna E. Seidler, Christian Jesinghaus, André Bleich, Alexander Heisterkamp, Manuela Buettner, and Stefan Kalies. (2022). “Investigation of Colonic Regeneration via Precise Damage Application Using Femtosecond Laser-Based Nanosurgery” Cells 11, no. 7: 1143. https://doi.org/10.3390/cells11071143 5. Müller, Dominik, Sö ren Donath, Emanuel G. Brückner, Santoshi Biswanath Devadas, Fiene Daniel, Lara Gentemann, Robert Zweigerdt, Alexander Heisterkamp, and Stefan M.K. Kalies. (2021). “How Localized Z-Disc Damage Affects Force Generation and Gene Expression in Cardiomyocytes” Bioengineering 8, no. 12: 213. https://doi.org/10.3390/bioengineering8120213 6. Müller D, Klamt T, Gentemann L, Heisterkamp A, Kalies SMK (2021) Evaluation of laser induced sarcomere micro-damage: Role of damage extent and location in cardiomyocytes. PLoS ONE 16(6): e0252346. https://doi.org/10.1371/journal.pone.02523467. Bouyer M Garot C Machillot P Vollaire J Fitzpatrick V Morand S Boutonnat J Josserand V Bettega G Picart C (2021) 3D-printed scaffold combined to 2D osteoinductive coatings to repair a critical-size mandibular bone defect Materials Today Bio 11 100113 8. Verhaegen C, Kautbally S, Zapareto D C, Brusa D, Courtoy G, Aydin S, Bouzin C, Oury C, Bertrand L, Jacques P J, Beauloye C, Horman S, Kefer J (2020) Early thrombogenicity of coronary stents: comparison of bioresorbable polymer sirolimus-eluting and bare metal stents in an aortic rat model. Am J Cardiovasc Dis. 10(2):72-83 9. Zeller-Plumhoff B, Malicha C, Krüger D, Campbella G, Wiesea B, Galli S, Wennerberg A, Willumeit-Rö mer R, Wieland F (2020) Analysis of the bone ultrastructure around biodegradable Mg–x Gd implants using small angle X-ray scattering and X-ray diffraction Acta Biomaterialia 101 637–64510. Rousselle S D , Wicks J R, Tabb B C, Tellez A, O’Brien M (2019) Histology Strategies for Medical Implants and Interventional Device Studies Toxicologic Pathology Vol. 47(3) 235-249 11. Neuerburg C, Mittlmeier L M, Keppler A M, Westphal I, Glass Ä , Saller M M, Herlyn P K E, Richter H, Bö cker W, Schieker M, Aszodi A, Fischer D C (2019) Growth factor-mediated augmentation of long bones: evaluation of a BMP-7 loaded thermoresponsive hydrogel in a murine femoral intramedullary injection model. Journal of Orthopaedic Surgery and Research 14 297 12. Kunert-Keil C, Richter H, Zeidler-Rentzsch I, Bleeker I, Gredes T (2019) Histological comparison between laser microtome sections and ground specimens of implant-containing tissues. Annals of Anatomy 222 153–157 13. Gabler C, Saß JO, Gierschner S, Lindner T, Bader R, Tischer T (2018) In Vivo Evaluation of Different Collagen Scaffolds in an Achilles Tendon Defect Model. BioMed Research International 20814. Wolkers W, Vásquez-Rivera A, Oldenhof H, Dipresa D, Goecke T, Kouvaka A, Will F, Haverich A, Korossis S, Hilfiker A (2018) Use of sucrose to diminish pore formation in freeze-dried heart valves. Scientific Reports 8 12982 15. Albers J, Markus MA, Alves F, Dullin C (2018) X-ray based virtual histology allows guided sectioning of heavy ion stained murine lungs for histological analysis. Scientific Reports 8(1) 771216. Boyde A (2018) Evaluation of laser ablation microtomy for correlative microscopy of hard tissues. Journal of Microscopy 271(8) 1-1417. Pobloth AM, Checa S, Razi H, Petersen A, Weaver JC, Schmidt-Bleek K, Windolf M, Tatai AÁ , Roth CP, Schaser KD, Duda GN, Schwabe P (2018) Mechanobiologically optimized 3D titanium-mesh scaffolds enhance bone regeneration in critical segmental defects in sheep. Science Translational Medicine 10 42318. Joner M, Nicol P, Rai H, Richter H, Foin N, Ng J, Cuesta J, Rivero F, Serrano R, Alfonso F (2018) Very Late Scaffold Thrombosis: Insights from Optical Coherence Tomography and Histopathology. EuroIntervention 13(18)19. Boyde A, Staines KA, Javaheri B, Millan JL, Pitsillides AA, Farquharson C (2017) A distinctive patchy osteomalacia characterises Phospho1 deficient mice. Journal of Anatomy 231 298-30820. Kowtharapu BS, Marfurt C, Hovakimyan M, Will F, Richter H, Wree A, Stachs O, Guthoff RF (2017) Femtosecond laser cutting of human corneas for the subbasal nerve plexus evaluation. Journal of Microscopy 265(1) 21–2621. Will F, Richter H (2015) Laser-based Preparation of Biological Tissue. Laser Technik Journal 12(5) 44-4722. Richter H, Ratliff J, Will F, Stolze B (2015) Time- and material saving laser microtomy for hard tissue and implants. European Cells and Materials 29 Suppl.2 423. Richter H, Ramirez Ojeda DF, Will F (2014) Lasergesteuerte Probenprä paration von Hartgeweben und Biomaterialien. BIOspektrum 05 1424. Bourassa D, Gleber S-C, Vogt S, Yi H, Will F, Richter H, Shin CH, Fahrni CJ (2014) 3D Imaging of Transition Metals in the Zebrafish Embryo by X-ray Fluorescence Microtomography. Metallomics 6 1648-165525. Schimek K, Busek M, Brincker S, Groth B, Hoffmann S, Lauster R, Lindner G, Lorenz A, Menzel U, Sonntag F, Walles H, Marx U, Horland R. (2013) Integrating biological vasculature into a multi-organ-chip microsystem. Lab Chip 13 3588-359826. Richter H, Ratliff J (2012) A Non-Contact Method of Sectioning Cardiovascular Arteries Containing Metallic Stents Using Laser Technology. J Histotechnol 35 (4) 20527. Richter H, Lubatschowski H, Will F (2011) Laser in Medizin & Biologie: Laser-Mikrotomie mit ultrakurzen Pulsen – Neue Perspektiven für die Gewebe- und Biomaterialbearbeitung. Biophotonik 09 50-5228. Lubatschowski H, Will F, Przemeck S, Richter H (2011) Laser Microtomy. Handbook of Biophotonics Vol. 2: Photonics for Health Care Wiley-VCH 151-157 29. Kermani O, Will F, Massow O, Oberheide U, Lubatschowski H (2010) Control of Femtosecond Thin-flap LASIK Using OCT in Human Donor Eyes. Journal of Refractive Surgery 26(1) 57-6130. Baumgart J, Bintig W, Ngezahayo A, Lubatschowski H, Heisterkamp A (2010) Fs-laser-induced Ca2+ concentration change during membrane perforation for cell transfection. Optics Express 18 (3) 221931. Kermani O, Will F, Massow O, Oberheide U, Lubatschowski H. (2009) Echtzeitsteuerung einer Femtosekundenlaser Sub-Bowman-Keratomileusis an humanen Spenderaugen mittels optischer Kohä renztomographie. Klin Monatsbl Augenheilkd 226 965-96932. Kütemeyer K, Baumgart J, Lubatschowski L, Heisterkamp A (2009) Repetition rate dependency of low density plasma effects during femtosecond-laser-based surgery of biological tissue. Appl. Phys. B 97(3) 69533. Baumgart J, Kuetemeyer K, Bintig W, Ngezahayo A, Ertmer W, Lubatschowski H, Heisterkamp A (2009) Repetition rate dependency of reactive oxygen species formation during femtosecond laser-based cell surgery. J Biomed Opt 14(5) 05404034. Kermani O, Will F, Lubatschowski H (2008) Real-Time Optical Coherence Tomography-Guided Femtosecond Laser Sub-Bowman Keratomileusis on Human Donor Eyes. Am J Ophthalmol 146 42–45.35. Kermani O (2008) &bdquo Sehendes Skalpell” schon heute realisierbar. Ophthalmologische Nachrichten 09 (Kongressausgabe)36. Baumgart J, Bintig W, Ngezahayo A, Willenbrock S, Murua Escobar H, Ertmer W, Lubatschowski H, Heisterkamp A (2008) Quantified femtosecond laser based opto-perforation of living GFSHR-17 and MTH53a cells. Opt. Express 16(5) 3021-303137. Baumgart J, Kuetemeyer K, Bintig W, Ngezahayo A, Ertmer W, Lubatschowski H, Heisterkamp A (2008) Investigation of reactive oxygen species in living cells during femtosecond laser based cell surgery. Proc. SPIE Optical Interactions with Tissue and Cells XIX Vol 685438. Heisterkamp A, Baumgart J, Maxwell IZ, Ngezahayo A, Mazur E, Lubatschowski H (2007) Fs-Laser Scissors for Photobleaching, Ablation in Fixed Samples and Living Cells, and Studies of Cell Mechanics. Laser Manipulation of Cells and Tissues Elsevier Inc. 293-30739. Will F, Block T, Menne P, Lubatschowski H (2007) Laser Microtome: all optical preparation of thin tissue samples. Proceedings of SPIE 6460 646007-140. Lubatschowski H (2007) Laser Microtomy – Opening a new Feasibility for Tissue Preparation. Optic & Photonic WILEY-VCH 49 – 5141. Menne P (2007) Microtomy with Femtosecond Lasers. Biophotonics International Laurin Publishing Co. Inc. May 2007 35 – 37 用户单位中国人民解放军军事医学科学院University of Iowa Carver College of MedicineHAWK University of Applied Sciences and ArtsGerman Heart Centre of the Technical University MunichGeorgia Institute of Technology, School of Chemistry and BiochemistryRostock University Medical Center, Department of Ophthalmology-1,-2Rostock University Medical Center, Experimental Pediatrics Group-3Queen Mary University of LondonUniversity of Gothenburg, BIOMATCELL VINN Excellence Center of Biomaterials and Cell Therapy-1University of Gothenburg, Department of Clinical Chemistry and Transfusion-2alizée pathology, LLC (now: StageBio)Ratliff Histology Consultants, LLC
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  • 产品说明微型化双光子宽场适配器是辅助微型化双光子进行视野搜寻的模块,它可以很好的匹配至大部分的宽场荧光显微镜、台式双光子显微镜和共聚焦显微镜上。通过定制化的长工作距离、大视野的物镜预先找寻最合适的成像位置,再切换至微型化双光子显微镜进行成像,最大化的降低样本的搜寻时间,快速定位至最佳的实验成像区域。同时还可以通过适配器上 XY 精密调节机构确保宽场视野与微型化双光子视野的完全重合,是微型化双光子成像应用中必不可少的配件之一。产品应用微型化双光子显微镜成像产品优势方便调节:可方便调节光轴位置和快速更换夹具,以适配各种型号的微型化双光子显微镜宽场视野大:3 mm的宽场成像视野,可以帮助用户快速定位最感兴趣的区域宽场工作距离长:70 mm的长工作距离,使得微型化双光子可以非常方便的进行各种操作防撞击:微型化双光子显微镜安装在防撞击夹具上,物镜触碰样本后会自动回缩,以最大程度的保护样本和设备
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  • 激光共焦多维成像系统: FLIM / FCS 时间分辨的空间分辨显微系统: ISS 推出新一代的快速荧光寿命成像系统FLIM/PLIM。成像速度可达 20 fps (@256×256),自由选择1×1到4096×4096像元分辨率;同时获取荧光寿命成像和共焦强度成像数据,保持单分子级的检测灵敏度。 用于化学、纳米、能源、生物等学科方向,单分子、活细胞、微区成像及形貌、能级结构和能量传递特征的机理研究。满足上转换量子点及相关材料的寿命成像测试。。 ISS以整机的荧光寿命成像系统为己任,实现共焦三维扫描模块(针孔,二维振镜、压电台或自动工作台)和时间分辨模块的完美结合,提供<100ps-100ms的全时域荧光寿命检测;同时软件融合Phasor Plots荧光寿命直读半圆规的矢量图技术,可视化、直观的提供荧光寿命分布及数值。 荧光寿命成像数据分析进入直读时代。 ISS 激光共焦扫描荧光寿命成像系统,还可以同时满足以下特殊需要: 1. 双光子的荧光寿命 FLIM/PLIM 成像; 2. 深紫外激发的荧光寿命 FLIM / PLIM 成像; 3. 红二区荧光寿命 FLIM /PLIM 成像; 4. 激光扫描大视场活体成像 FLIM /PLIM ; 5. 光谱采集及光谱成像; 6. AFM联用--活细胞工作站联用--冷冻及加热工作台联用; 7. 纳米颗粒三维跟踪;(专有技术) 主要功能描述:(可以选择双光子功能)激光共焦荧光强度成像LCM;荧光寿命成像FLIM,磷光寿命成像PLIM;上转换荧光(寿命)成像,稀土发光(寿命)成像,延迟荧光(寿命)成像;荧光波动成像FFS(FCS,FCCS, PCH,N&B, RICS, FLCS,scan-FCS),FLIM-FRET成像;荧光定量成像;单量子点发光(寿命)成像,单分子及单分子荧光共振转移成像smFRET,包括交替激发PIE成像;稳态及瞬态偏振成像;微区荧光光谱采集 400-1100nm;反聚束测试(含专业软件);活细胞工作站升级(含多孔板)仪器特点: 实时直读式获得荧光寿命数值及变化趋势,FRET效率分布;选择350nm-1100nm加上900nm-1700nm波长范围检测器,2-4通道检测器,用于成像,FLIM-FRET;可以升级无波长干扰AFM(正置或倒置),实现同区域形貌和FLIM同步测试;紫外-可见-红外激发波长,单波长或超连续激光器;单光子或双光子的激光器; 主要技术指标 1. 荧光寿命测试范围:100ps-100ms;2. 最小时间分辨率≤1ps;3. 数据计数速率:65 MHz/channel4. 检测通道:upto 8 channels;5. 标配xy振镜扫描,5kHz扫描频率,配合xy闭环自动台实现大区域扫描;6. Phasor plots 用于数据分析;7. 光谱采集;400-1100nm8. 扫描透射成像;9. 界面聚焦系统;10. 变温附件;77k-500k;
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  • 激光共焦多维荧光成像系统: FLIM / FCS 时间分辨的空间分辨显微系统: ISS 推出新一代的快速荧光寿命成像系统FLIM/PLIM。成像速度可达 20 fps (@256×256),自由选择1×1到4096×4096像元分辨率;同时获取荧光寿命成像和共焦强度成像数据,保持单分子级的检测灵敏度。 用于化学、纳米、能源、生物等学科方向,单分子、活细胞、微区成像及形貌、能级结构和能量传递特征的机理研究。满足上转换量子点及相关材料的寿命成像测试。。 ISS以整机的荧光寿命成像系统为己任,实现共焦三维扫描模块(针孔,二维振镜、压电台或自动工作台)和时间分辨模块的完美结合,提供<100ps-100ms的全时域荧光寿命检测;同时软件融合Phasor Plots荧光寿命直读半圆规的矢量图技术,可视化、直观的提供荧光寿命分布及数值。 荧光寿命成像数据分析进入直读时代。 ISS 激光共焦扫描荧光寿命成像系统,还可以同时满足以下需要: 1. 双光子的荧光寿命 FLIM/PLIM 成像; 2. 深紫外激发的荧光寿命 FLIM / PLIM 成像;266nm 355nm 3. 红二区荧光寿命 FLIM /PLIM 成像; 4. 激光扫描大视场活体成像 FLIM /PLIM ; 5. 光谱采集及光谱成像; 6. AFM联用--活细胞工作站联用--冷冻及加热工作台联用; 7. 纳米颗粒三维跟踪;(专有技术) 主要功能描述:(单/双光子功能) 激光共焦荧光强度成像LCM;荧光寿命成像FLIM,磷光寿命成像PLIM;上转换荧光(寿命)成像,稀土发光(寿命)成像,延迟荧光(寿命)成像;荧光波动成像FFS(FCS,FCCS, PCH,N&B, RICS, FLCS,scan-FCS), FLIM-FRET成像;荧光定量成像;单量子点发光(寿命)成像,单分子及单分子荧光共振转移成像smFRET,包括交替激发PIE成像;稳态及瞬态偏振成像;微区荧光光谱采集 400-1100nm;反聚束测试(含专业软件);活细胞工作站升级(含多孔板)仪器特点: 实时直读式获得荧光寿命数值及变化趋势,FRET效率分布;选择350nm-1100nm加上900nm-1700nm波长范围检测器,2-4通道检测器,用于成像,FLIM-FRET;可以升级无波长干扰AFM(正置或倒置),实现同区域形貌和FLIM同步测试;紫外-可见-红外激发波长,单波长或超连续激光器;单光子或双光子的激光器; 主要技术指标 1. 荧光寿命测试范围:100ps-100ms;2. 最小时间分辨率≤1ps;3. 数据计数速率:65 MHz/channel4. 检测通道:upto 8 channels;5. 标配xy振镜扫描,5kHz扫描频率,配合xy闭环自动台实现大区域扫描;6. Phasor plots 用于数据分析;7. 光谱采集;400-1100nm8. 扫描透射成像;9. 界面聚焦系统;10. 变温附件;77k-500k;
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  • 紧凑型多光子显微成像系统2PM 基于近红外飞秒激光技术,具有亚细胞空间分辨率的光学层切成像测量系统,可应用于:? 细胞和组织的高分辨率成像? 组织工程学? 在线药品检测? 动物研究? 干细胞研究? 检测荧光发光蛋白? 神经生物学 关于紧凑型多光子显微成像系统2PM的详细信息介绍,请访问下面网址:http://www.dpiv.cn/data/upload/publications/Jenlab/2PM_Microscope_JenLab.pdf
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  • 激光共焦多维成像系统: FLIM / FCS 时间分辨的空间分辨显微系统: ISS 推出新一代的快速荧光寿命成像系统FLIM/PLIM。成像速度可达 20 fps (@256×256),自由选择1×1到4096×4096像元分辨率;同时获取荧光寿命成像和共焦强度成像数据,保持单分子级的检测灵敏度。 用于化学、纳米、能源、生物等学科方向,单分子、活细胞、微区成像及形貌、能级结构和能量传递特征的机理研究。满足上转换量子点及相关材料的寿命成像测试。。 ISS以整机的荧光寿命成像系统为己任,实现共焦三维扫描模块(针孔,二维振镜、压电台或自动工作台)和时间分辨模块的完美结合,提供<100ps-100ms的全时域荧光寿命检测;同时软件融合Phasor Plots荧光寿命直读半圆规的矢量图技术,可视化、直观的提供荧光寿命分布及数值。 荧光寿命成像数据分析进入直读时代。 ISS 激光共焦扫描荧光寿命成像系统,还可以同时满足以下特殊需要: 1. 双光子的荧光寿命 FLIM/PLIM 成像; 2. 深紫外激发的荧光寿命 FLIM / PLIM 成像; 3. 红二区荧光寿命 FLIM /PLIM 成像; 4. 激光扫描大视场活体成像 FLIM /PLIM ; 5. 光谱采集及光谱成像; 6. AFM联用--活细胞工作站联用--冷冻及加热工作台联用; 7. 纳米颗粒三维跟踪;(专有技术) 主要功能描述:(可以选择双光子功能)激光共焦荧光强度成像LCM;荧光寿命成像FLIM,磷光寿命成像PLIM;上转换荧光(寿命)成像,稀土发光(寿命)成像,延迟荧光(寿命)成像;荧光波动成像FFS(FCS,FCCS, PCH,N&B, RICS, FLCS,scan-FCS),FLIM-FRET成像;荧光定量成像;单量子点发光(寿命)成像,单分子及单分子荧光共振转移成像smFRET,包括交替激发PIE成像;稳态及瞬态偏振成像;微区荧光光谱采集 400-1100nm;反聚束测试(含专业软件);活细胞工作站升级(含多孔板)仪器特点: 实时直读式获得荧光寿命数值及变化趋势,FRET效率分布;选择350nm-1100nm加上900nm-1700nm波长范围检测器,2-4通道检测器,用于成像,FLIM-FRET;可以升级无波长干扰AFM(正置或倒置),实现同区域形貌和FLIM同步测试;紫外-可见-红外激发波长,单波长或超连续激光器;单光子或双光子的激光器; 主要技术指标 1. 荧光寿命测试范围:100ps-100ms;2. 最小时间分辨率≤1ps;3. 数据计数速率:65 MHz/channel4. 检测通道:upto 8 channels;5. 标配xy振镜扫描,5kHz扫描频率,配合xy闭环自动台实现大区域扫描;6. Phasor plots 用于数据分析;7. 光谱采集;400-1100nm8. 扫描透射成像;9. 界面聚焦系统;10. 变温附件;77k-500k;
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  • 系统简介超维景自主研制的快速微型化双光子显微成像系统,在全球首次获取了小鼠在自由行为过程中大脑神经元和神经突触活动的清晰、稳定的动态图像。其产品具有高分辨、大视野等多个型号,可在动物自由活动状态下,约150 μm变焦和多平面快速切换的实时成像,并可对同一批神经元长期稳定跟踪。结合光遗传模块,还可以在结构与功能成像的同时,精准地操控神经元和大脑神经回路的活动。该系统为研究大脑的结构和功能提供了一个新工具,可融合微观神经元和神经突触活动与大脑整体的信息处理和个体行为信息,成为全景式解析脑连接图谱和功能动态图谱的利器。系统特点和优势柔:系统采用柔性光纤和细软的微机电扫描振镜线缆,避免长期佩戴对动物的干扰稳:各部件精密设计,可对同一区域长时程、反复成像,动物剧烈运动时仍稳定成像快:成像速度快,为9 Hz@512×512,平面间切换速度为4 Hz@512×512,可实时观察神经元和神经网络活动简:探头可整体即时拔插,极大地简化了实验操作,避免长期佩戴对动物的干扰探头优势轻:探头重2.2 g,可在小鼠头部“戴着跑”小:体积小,可佩戴于小鼠头部或者大动物头部的多个部位精:分辨率高,可清楚观察单个树突棘的结构变化。高分辨型<850 nm,大视场型<1.3 μm深:工作距离为1 mm,并具有盖玻片补偿功能,在150 μm范围电动变焦,可观察神经环路活动系统功能高分辨成像:分辨率高,为<850 nm,可实时观察树突棘等微观结构,实现亚细胞级成像。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)前额叶皮层神经元大视场成像:400 μm × 400 μm大视野成像,可实时记录数百个神经元,上千个突触的动态信号。神经分布情况及兴奋轨迹尽收眼底。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)前额叶皮层神经元多通道成像:在同一波长下,通过多个探头同时对多只动物,或者同一动物不同区域成像。可同时观察发生社交行为的两只动物的神经活动,或者观察同一动物不同核团的变化。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)社交活动时前额叶皮层神经元双色同步成像:FIRM-TPM可双波长同时激发,实现双色同步成像。不同颜色标记特定的细胞群,可研究不同细胞群之间的相互关系。全神经标记斑马鱼(GFP标记神经,mCherry标记血管)三维变焦成像:可在z轴150 μm范围内,进行三维电动变焦,实现对神经环路的观察。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)前额叶皮层不同深度的神经元光遗传操控成像:可整合光遗传模块,对所研究细胞进行精准调控的基础上成像。系统配置参数成像探头高分辨型重量:2.2 g大小:9.5×15.5×17 mm3分辨率:<850 nm成像视野:>180×180 μm2工作距离:>390μm成像速度:9 Hz@512×512;18 Hz@256×256大视场型重量:2.8 g大小:10×16×21 mm3分辨率:<1.3μm成像视野:>400×400μm2工作距离:1 mm成像速度:9 Hz@512×512;18 Hz@256×256三维变焦模块(可选配置)变焦范围:~30μm,平面间切换速度:4 Hz变焦范围:~100μm,平面间切换速度:4 Hz飞秒脉冲激光器920 nm/1030 nm飞秒光纤激光器平均功率:>400 mW重复频率:440-80MHz脉冲宽度:<200 fs激光耦合模块实现飞秒激光与激光传导光纤的有效耦合荧光采集模块高灵敏度GaAsP PMT光谱接收范围:300~720nm绿色通道:520/50 nm(GCaMP6/GFP)红色通道:605/50 nm(tdTomato)可定制双通道成像控制模块最大采样率:≥120MS/s 模拟输入分辨率:≥16-bits 模拟输入带宽:≥110 MHz成像处理模块成像工作站屏幕:30英寸显示器CPU内存:32G显卡:2GB DDR5专业级显卡硬盘:256G固态硬盘和2T机械硬盘系统:win10操作系统成像控制分析软件:GINKGO-MTPM视场搜寻模块便于宽场荧光与双光子成像切换一体式动物行为学成像工作台可兼容大部分小鼠行为学实验,具有隔音、避光、紫外杀菌、耐腐蚀和耐磨损等多种特点系统尺寸成像系统:955×1380×1825mm3行为学工作台:1380×1380×2179mm3系统环境温度:24±2℃,建议使用可独立控制的空调系统湿度:<60%
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  • 系统简介超维景自主研制的快速微型化双光子显微成像系统,在全球首次获取了小鼠在自由行为过程中大脑神经元和神经突触活动的清晰、稳定的动态图像。其产品具有高分辨、大视野等多个型号,可在动物自由活动状态下,约150 μm变焦和多平面快速切换的实时成像,并可对同一批神经元长期稳定跟踪。结合光遗传模块,还可以在结构与功能成像的同时,精准地操控神经元和大脑神经回路的活动。该系统为研究大脑的结构和功能提供了一个新工具,可融合微观神经元和神经突触活动与大脑整体的信息处理和个体行为信息,成为全景式解析脑连接图谱和功能动态图谱的利器。系统特点和优势柔:系统采用柔性光纤和细软的微机电扫描振镜线缆,避免长期佩戴对动物的干扰稳:各部件精密设计,可对同一区域长时程、反复成像,动物剧烈运动时仍稳定成像快:成像速度快,为9 Hz@512×512,平面间切换速度为4 Hz@512×512,可实时观察神经元和神经网络活动简:探头可整体即时拔插,极大地简化了实验操作,避免长期佩戴对动物的干扰探头优势轻:探头重2.2 g,可在小鼠头部“戴着跑”小:体积小,可佩戴于小鼠头部或者大动物头部的多个部位精:分辨率高,可清楚观察单个树突棘的结构变化。高分辨型<850 nm,大视场型<1.3 μm深:工作距离为1 mm,并具有盖玻片补偿功能,在150 μm范围电动变焦,可观察神经环路活动系统功能高分辨成像:分辨率高,为<850 nm,可实时观察树突棘等微观结构,实现亚细胞级成像。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)前额叶皮层神经元大视场成像:400 μm × 400 μm大视野成像,可实时记录数百个神经元,上千个突触的动态信号。神经分布情况及兴奋轨迹尽收眼底。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)前额叶皮层神经元多通道成像:在同一波长下,通过多个探头同时对多只动物,或者同一动物不同区域成像。可同时观察发生社交行为的两只动物的神经活动,或者观察同一动物不同核团的变化。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)社交活动时前额叶皮层神经元双色同步成像:FIRM-TPM可双波长同时激发,实现双色同步成像。不同颜色标记特定的细胞群,可研究不同细胞群之间的相互关系。全神经标记斑马鱼(GFP标记神经,mCherry标记血管)三维变焦成像:可在z轴150 μm范围内,进行三维电动变焦,实现对神经环路的观察。小鼠(hSyn-GCaMP6s病毒注射)前额叶皮层不同深度的神经元光遗传操控成像:可整合光遗传模块,对所研究细胞进行精准调控的基础上成像。系统配置参数成像探头高分辨型重量:2.2 g大小:9.5×15.5×17 mm3分辨率:<850 nm成像视野:>180×180 μm2工作距离:>390μm成像速度:9 Hz@512×512;18 Hz@256×256大视场型重量:2.8 g大小:10×16×21 mm3分辨率:<1.3μm成像视野:>400×400μm2工作距离:1 mm成像速度:9 Hz@512×512;18 Hz@256×256三维变焦模块(可选配置)变焦范围:~30μm,平面间切换速度:4 Hz变焦范围:~100μm,平面间切换速度:4 Hz飞秒脉冲激光器920 nm/1030 nm飞秒光纤激光器平均功率:>400 mW重复频率:440-80MHz脉冲宽度:<200 fs激光耦合模块实现飞秒激光与激光传导光纤的有效耦合荧光采集模块高灵敏度GaAsP PMT光谱接收范围:300~720nm绿色通道:520/50 nm(GCaMP6/GFP)红色通道:605/50 nm(tdTomato)可定制双通道成像控制模块最大采样率:≥120MS/s模拟输入分辨率:≥16-bits模拟输入带宽:≥110 MHz成像处理模块成像工作站屏幕:30英寸显示器CPU内存:32G显卡:2GB DDR5专业级显卡硬盘:256G固态硬盘和2T机械硬盘系统:win10操作系统成像控制分析软件:GINKGO-MTPM视场搜寻模块便于宽场荧光与双光子成像切换一体式动物行为学成像工作台可兼容大部分小鼠行为学实验,具有隔音、避光、紫外杀菌、耐腐蚀和耐磨损等多种特点系统尺寸成像系统:955×1380×1825mm3行为学工作台:1380×1380×2179mm3系统环境温度:24±2℃,建议使用可独立控制的空调系统湿度:<60%
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  • EIGER2R双能乳腺X射线光子计数成像仪探测器1、产品特点: 在DECTRIS公司所有应用于实验室的探测器产品系列中,Eiger2R系列探测器结合了所有混合光子计数探测器的最先进技术。 它所具有的双能量识别有助于在微弱信号和长时间曝光的条件下进行背景抑制和提高信噪比。其优越的计数率性能可以准确地测量极高强度的X射线。利用该系列探测器的巨大动态范围,可以在零死时间同步读/写的状态下进行长时间曝光。由于具备可选择的真空兼容性,从而使空气和窗口所产生的吸收和散射最小化。小尺寸像素与X射线直接探测相结合,提高了空间分辨率和角度分辨率,可以进行精细地测量样品并具有宽泛的倒易空间。可以在三种不同的型号中进行选择以满足您的需求。2、核心优势: – 双能识别有助于抑制低能量和高能量的背景 – 由于零背景噪音和同时读写,所以具有很高的动态范围 – 小尺寸像素和优秀的点扩散函数有助于获得高的空间分辨率 – 可定制在真空环境下使用; – 免维护3、应用领域: - 小角X射线散射和广角X射线散射(SAXS/WAXS); - 大分子晶体学(MX); - 化学结晶学; - 单晶衍射(SCD); - 粉末衍射(PD); - X射线成像; - 表面衍射; - 漫散射。4、技术参数:EIGER2 R500K1M4M探测器模块数量11 x 22 x 4有效面积:宽x高 [mm2]77.2 x 38.677.2 x 79.9155.2 X 162.5像素大小 [μm2]75 x 75点扩散函数1 pixel能量阈值2阈值范围(KeV)4-113.5-30 3.5-30最大计数率(cps/mm2)3.6×108计数器深度(bit/threshold)2×16采集模式同时读/写,死区时间为零图像位深度(bit)32可选真空兼容Yes冷却方式 风冷水冷水冷尺寸(WHD)[mm3]100 x 140 x 93114 x 133 x 240235 x 235 x 372重量 [kg]1.83.915
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  • SUPERNOVA-100微型化双光子显微镜1.2.6g 微型化探头,小动物轻松佩戴,一体化设计的高度集成系统2. 成像分辨率可达 0.65 μm, 实现对神经元单个树突棘成像;3. 大视野 1mm × 0.87 mm,可同时对数以千计的神经细胞成像;4. 成像深度高达 800 μm,实现对小鼠大脑各皮层成像5. 适配各品牌飞秒激光器6. 标准化流程,微型化探头简易佩戴7. 可与EEG、EMG、DBS等多模态信号同步记录荧光检测模块高灵敏 GaAsP PMT; 采集波长范围:300~720 nm; 绿色荧光通道:520+/-25 nm(GCaMP6 / GFP) ;红色荧光通道:625+/-25nm(RCaMP/tdTomato/mCherry)控制器FHIRM-HR: 采样率≥ 120 Msps FHIRM-U: 模拟输入分辨率≥ 14 bit FHIRM-LF: 模拟信号带宽≥ 60 MHz光纤耦合模块内置 AOM,响应时间 < 250 ns;带激光快门保护成像模式切换模块XYZ 载物台,双向重复精度:1 μm 用于寻找成像视野和定位成像区域荧光检测模块激发波长 470 nm; CCD 相机,分辨率 1920×1200 像素,全视野成像速度 ≥ 40 Hz软件SUPERGIN:系统控制采集软件; SUPERANALY:数据处理与分析软件系统安装体积595×400×668 mm3微型化三维变焦模块 ( 可选 )FHIRM-HR: ~50 μm FHIRM-U: ~150 μm FHIRM-LF: ~500 μm飞秒激光器 ( 可选 )920 nm 飞秒激光器;可适配各品牌飞秒激光器成像工作站 ( 可选 )成像工作站 推荐配置:OS-Win10、RAM-32G、HDD-512 SSD 和 2T HDD动物行为学装置 ( 可选 ) 动物行为学装置可适用于大多数小鼠行为学实验防震台 ( 可选 )推荐尺寸:1200×750×750 mm3安装条件温度:20~30 ° C,湿度< 60% 更多详情请联系昊量光电/欢迎直接联系昊量光电关于昊量光电:上海昊量光电设备有限公司是光电产品专业代理商,产品包括各类激光器、光电调制器、光学测量设备、光学元件等,涉及应用涵盖了材料加工、光通讯、生物医疗、科学研究、国防、量子光学、生物显微、物联传感、激光制造等;可为客户提供完整的设备安装,培训,硬件开发,软件开发,系统集成等服务。您可以通过我们昊量光电的官方网站www.auniontech.com了解更多的产品信息,或直接来电咨询4006-888-532。
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  • 单像素光子成像教学仪 单像素光子成像教学仪是基于压缩感知理论和光子计数成像技术,利用数字微镜器件完成随机空间光调制目标物进行快速成像的教学仪器。产品利用压缩感知技术信号稀疏的特性,超越传统香农采样定理,可以通过较少的测量值在极弱光条件下还原出高空间分辨率高信噪比的图像。 单像素光子成像教学仪具有丰富的硬件模块,支持学生动手调节和搭建,方便学生了解空间光调制技术及设备使用方法;理解压缩感知原理以及成像方式;知悉光子计数成像特点及噪声处理方法。 配备完整的压缩感知理论教学讲义和实验内容,帮助高校在近代物理实验课、通信类、计算数学等方向开设课程,推动学科建设发展。产品硬件可调,教学功能丰富桌面型设计,使用更加方便完善的配套教学资料 遮光性能优越,具有强光保护自由算法编码,可视化实验效果实验内容仪器调节实验光路搭建和仪器模块连接;单帧图像显示实验;光本底测量实验; 频率位移关系实验含目标靶成像实验;分辨率靶成像实验;自制目标靶成像实验;单像素光子成像调制方法实验不同矩阵调制成像实验;不同算法调制成像实验;实验原理图
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  • 荧光和荧光寿命分子包含多个单能态S0、S1、S2… 和三重态T1… ,每个能态都包含多个精细的能级。正常情况下,大部分电子处在*低能态即基态S0 的*低能级上,当分子被光束照射,会吸收光子能量,电子被激发到更高的能态S1 或S2 上,在S2 能态上的电子只能存在很短暂的时间,便会通过内转换过程跃迁到S1 上,而S1 能态上的电子亦会在极短时间内跃迁到S1 的*低能级上,而这些电子会存在一段时间后通过震荡弛豫辐射跃迁到基态,这个过程会释放一个光子,即荧光。此外,亦会有电子跃迁至三重态T1 上,再由T1 跃迁至基态,我们称之为磷光。荧光特性研究荧光特性时,主要在以下几方面进行分析:激发光谱,发射光谱、荧光强度、偏振荧光、荧光发光量子产率、荧光寿命等。其中荧光寿命(Fluorescence Lifetime)是指荧光分子在激发态上存在的平均时间(纳秒量级)。荧光寿命测试荧光寿命一般在几纳秒至几百纳秒之间,如今主要有两类测试方法:时域测量和频域测量时间稳定性实验测试曲线:1 时域测量由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1,接着测量荧光的发射几率随时间的变化。其中目前广泛应用的是时间相关单光子计数,即TCSPC(Time Correlated Single Photon Counting)时间相关单光子计数(TCSPC) 实现了从百ps-ns-us 的瞬态测试,此方法对数据的获取完全依赖快速探测器和高速电路。用统计的方法计算样品受激后发出的第一个( 也是*一的一个) 光子与激发光之间的时间差,也就是下图的START( 激发时刻) 与STOP( 发光时刻) 的时间差。由于对于Stop 信号的要求,所以TCSPC 一般需要高重复频率的光源作为激发源,其重复至少要在100KHz 以上,多数的光源都会达到MHz 量级;同时,在一般情况下还要对Stop 信号做数量上的控制,做到尽量满足在一个激发周期内,样品产生且只产生一个光子的有效荧光信号,避免光子对的出现。2 频域测量对连续激发光进行振幅调制后,分子发出的荧光强度也会受到振幅调制,两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差,因此可以测量该相位差计算荧光寿命。 左图为正弦调制激发光(绿色)频域显示,发射光信号(红色)相应的相位变化频域显示。右图为对应不同寿命的调制和相位的频域显示。TM- 调制寿命,TP- 相位寿命。[1]显微荧光寿命成像技术(FLIM)显微荧光寿命成像技术(Fluorescence Lifetime ImagingMicroscopy,FLIM)是一种在显微尺度下展现荧光寿命空间分布的技术,由于其不受样品浓度影响,具有其他荧光成像技术无法代替的优异性能,目前在生物医学工程、光电半导体材料等领域是一种重要的表征测量手段。FLIM 一般分为宽场FLIM 和激光扫描FLIM。宽场FLIM(Wide Field FLIM,WFM)该技术是用平行光照明并由物镜聚焦样品获得荧光信号,再由一宽场相机采集荧光成像。宽场FLIM 常用于快速获取大面积样品成像。时域或是频域寿命采集都可以应用在宽场成像FLIM 上。宽场FLIM 有更高帧率和低损伤的优势。2 激光扫描FLIM(Laser Scanning FLIM,LSM)激光扫描FLIM 是针对选定区域内的样品逐点获取其荧光衰减曲线,再经过拟合最终合成荧光寿命图像。相比宽场FLIM,其在空间分辨率、信噪比方面有更大的优势。扫描方式有两种:一种是固定样品,移动激光进行扫描,一种是固定激光,电动位移台带动样品移动进行扫描。显微荧光寿命成像系统RTS2-FLIM应用材料科学领域宽禁带半导体如GaN、SiC 等体系的少子寿命mapping 测量量子点如CdSe@ZnS 等用作荧光寿命成像显微镜探针钙钛矿电池/LED 薄膜的组分分析、缺陷检测铜铟镓硒CIGS,铜锌锡硫CZTS 薄膜太阳能电池的组分、缺陷检测镧系上转换纳米颗粒GaAs 或GaAsP 量子阱的载流子扩散研究生命科学领域细胞体自身荧光寿命分析自身荧光相对荧光标记的有效区分活细胞内水介质的PH 值测量局部氧气浓度测量具有相同频谱性质的不同荧光标记的区分活细胞内钙浓度测量时间分辨共振能量转移(FRET):纳米级尺度上的远差测量,环境敏感的FRET 探针定量测量代谢成像:NAD(P)H 和FAD 胞质体的荧光寿命成像显微荧光寿命成像系统RTS2-FLIM应用案例1 用荧光分子对海拉细胞进行染色用荧光分子转子Bodipy-C12 对海拉细胞(宫颈癌细胞的一种) 进行染色。(a) 显微荧光寿命成像图,寿命范围1ns(蓝色)到2.5ns(红色);(b) 荧光寿命直方图,脂肪滴的短寿命约在1.6ns 附近,细胞中其他位置寿命较长,在1.8ns 附近。用荧光分子转子的时间分辨测量*大的好处在于荧光寿命具备足够清晰的标签特性,且与荧光团的浓度无关。[2]2 金属修饰荧光金属修饰荧光:(a) 荧光寿命是荧光团到金表面距离的函数;(b) 用绿色荧光蛋白(GFP)标记乳腺腺癌细胞的细胞膜的共聚焦xz 横截面,垂直比例尺:5m;(c) b 图的FLIM 图,金表面附近的GFP 荧光寿命缩短。[2]3 钙钛矿太阳能电池下图研究中,展示了一种动态热风(DHA)制备工艺来控制全无机PSC 的薄膜形态和稳定性,该工艺不含有常规的有害反溶剂,可以在大气环境中制备。同时,钙钛矿掺有钡(Ba2+) 碱金属离子(BaI2:CsPbI2Br)。这种DHA 方法有助于形成均匀的晶粒并控制结晶,从而形成稳定的全无机PSC。从而在环境条件下形成完整的黑色相。经过DHA处理的钙钛矿光伏器件,在0.09cm小面积下,效率为14.85%,在1x1cm的大面积下,具有13.78%的*高效率。DHA方法制备的器件在300h后仍然保持初始效率的92%。4 MQWs 多量子阱研究在(a) 蓝宝石和(b) GaN 上生长的MQWs 的共焦PL mapping 图像。具有较小尺寸的发光团的最高密度是观察到在GaN 上生长的MQWs。在(c) 蓝宝石和(d)GaN 上生长的MQWs 的共焦TRPL mapping 图。仅对于在GaN 上生长的MQWs,强的PL 强度区域与较长PL 衰减时间的区域很好地匹配。在(e) 蓝宝石和(f)GaN 上生长的MQWs 在A 点和B 点测量的局部PL 衰减曲线,均标记在图中。对于在GaN 上生长的MQWs,点A 和B 之间的PL 衰减时间差更高。显微荧光寿命成像系统FLIM参数配置北京卓立汉光仪器有限公司提供的显微荧光寿命成像系统是基于显微和时间相关单光子计数技术,配合高精度位移台得到微观样品表面各空间分布点的荧光衰减曲线,再经过用数据拟合,得到样品表面发光寿命表征的影像。是光电半导体材料、荧光标记常用荧光分子等类似荧光寿命大多分布在纳秒、几十、几百纳秒尺度的物质的选择。参数指标:系统性能指标光谱扫描范围200-900nm最小时间分辨率16ps荧光寿命测量范围500ps-1μs@ 皮秒脉冲激光器空间分辨率≤1μm@100X 物镜@405nm 皮秒脉冲激光器荧光寿命检测IRF≤2ns配置参数激发源及匹配光谱范围(光源参数基于50MHz 重复频率)375nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:30ps,平均功率1.5mW,荧光波段:400-850nm405nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:25ps,平均功率2.5mW,荧光波段:430-920nm450nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:50ps,平均功率1.9mW,荧光波段:485-950nm488nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:70ps,平均功率1.3mW,荧光波段:500-950nm510nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:75ps,平均功率1.1mW,荧光波段:535-950nm635nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:65ps,平均功率4.3mW,荧光波段:670-950nm660nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:60ps,平均功率1.9mW,荧光波段:690-950nm670nm 皮秒脉冲激光器,脉宽:40ps,平均功率0.8mW,荧光波段:700-950nm科研级正置显微镜落射明暗场卤素灯照明,12V,100W5 孔物镜转盘,标配明场用物镜:10×,50×,100×监视CCD:高清彩色CMOS 摄像头,像元尺寸:3.6μm*3.6μm,有效像素:1280H*1024V,扫描方式:逐行,快门方式:电子快门电动位移台高精度电动XY 样品台,行程:75*50mm(120*80mm 可选),最小步进:50nm,重复定位精度:< 1μm光谱仪320mm 焦距影像校正单色仪,双入口、狭缝出口、CCD 出口,配置三块68×68mm 大面积光栅,波长准确度:±0.1nm,波长重复性:±0.01nm,扫描步距:0.0025nm,焦面尺寸:30mm(w)×14mm(h),狭缝缝宽:0.01-3mm 连续电动可调探测器:制冷型紫外可见光电倍增管,光谱范围:185-900nm(标配,可扩展)光谱CCD(可扩展PLmapping)低噪音科学级光谱CCD(LDC-DD),芯片格式:2000x256,像元尺寸:15μm*15μm, 探测面:30mm*3.8mm,背照式深耗尽芯片,低暗电流,*低制冷温度-60℃ @25℃环境温度,风冷,最高量子效率值95%时间相关单光子计数器(TCSPC)时间分辨率:16/32/64/128/256/512/1024ps… … 33.55μs,死时间< 10ns,*高65535 个直方图时间窗口,瞬时饱和计数率:100Mcps,支持稳态光谱测试;OmniFluo-FM 荧光寿命成像专用软件控制功能:控制样品平移台移动,通过显微镜的明场光学像定位到合适区域,框选扫描区域进行扫描,逐点获得荧光衰减曲线,实时生成荧光图像等数据处理功能:自动对扫描获得的FLIM 数据,逐点进行多组分荧光寿命拟合(组分数小于等于4),对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示图像处理功能:直方图、色表、等高线、截线分析、3D 显示等操作电脑品牌操作电脑,Windows 10 操作系统软件界面控制测试界面测试软件的界面遵循“All In One”的简洁设计思路,用户可在下图所示的控制界面中完成采集数据的所有步骤:包括控制样品平移台移动,通过显微镜的明场光学像定位到合适区域,框选扫描区域进行扫描,逐点获得荧光衰减曲线,实时生成荧光图像等。数据处理界面功能丰富的荧光寿命数据处理软件,充分挖掘用户数据中的宝贵信息。可自动对扫描获得的FLIM 数据,逐点进行多组分荧光寿命拟合(组分数小于等于4),对逐点拟合获得的荧光强度、荧光寿命等信息生成伪彩色图像显示。自主开发的一套时间相关单光子计数(TCSPC)荧光寿命的拟合算法,可对荧光衰减曲线中最多包含4 个时间组分的荧光过程进行拟合,获得每个组分的荧光寿命,光子数比例,计算评价函数和残差。TCSPC 荧光寿命通常并非简单的指数衰减过程,而是与光源及探测器相关的仪器响应函数(IRF)与荧光衰减过程相互卷积的结果,因此适当的拟合方法和参数选择对获得正确可靠的荧光寿命非常重要。该软件可导入实际测量的IRF 对衰减曲线进行卷积计算和拟合。但是大多数情况下, IRF 很难正确的从实验获得,针对这种情况,软件提供了两种无需实验获取IRF 的拟合方法:1.通过算法对数据上升沿进行拟合,获得时间响应函数IRF,然后对整条衰减曲线进行卷积计算和拟合得到荧光寿命。2.对于衰减时间远长于仪器响应时间的,可对衰减曲线下降沿进行直接的指数拟合。该软件经过大量测试,可以很好的满足各种场合的用户需求。MicroLED 微盘的荧光强度像(3D 显示):
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  • Celloger Pro全自动活细胞成像系统无缝成像,无限洞察。与Celloger Pro一起,发现无限可能 ★ 培养箱内的实时细胞监测★ 双荧光显微镜增强成像★ 用户可手动更换不同倍率物镜★ 直观的软件操作界面和多种便捷分析工具★ 多点高性能延时成像多荧光通道及明场成像凭借其双色荧光和亮场成像能力, CellogerPro能够捕获高质量和高分辨率图像通过增强的扫描方法和创新的合并技术,该系统大幅减少了扫描时间,使研究人员能够以清晰和高效的方式分析细胞动力学。实时监控培养箱内部情况CellogerPro的设计是为了方便对培养箱内的细胞进行实时监测。只需将设备放入培养箱中,并将其连接到外部电脑,研究人员便能够远程实时观察细胞。 利用延时成像功能,按照研究者设定的时间表拍摄细胞图像 这些图像后期可以很容易地转换成延时视频。 用户可手动更换不同倍率物镜 CellogerPro提供给用户可手动互换的物镜。根据研究人员的具体研究需求提供更灵活的选择。有2X、4X、10X等物镜选项。用户可以手动在这些镜头之间切换。 可从多个位置捕获图像CellogerPro通过自动移动得镜头,同时保持培养容器和样品固定在载物台上,使样品在多个位置成像。这确保了细胞的稳定环境,从而提高了图像质量和精确的研究结果 兼容不同类型的培养容器 CellogerPro可以通过更换容器夹具兼容不同类型的细胞培养容器,如多孔板(多至384孔板)、T型瓶、培养皿和载玻片。 应用:细胞毒性测试Cytotoxicity监测和测定物质对细胞的毒性作用,帮助完成各种应用,如药物开发和筛选 球体成像分析Spheroid assay 实时研究球体的形成和生长,以跟踪细胞行为和药物反应 细胞划痕实验Scratch wound assay 评估治疗对关键细胞过程的影响,如迁移、增殖和伤口愈合 神经突生长Neurite outgrowth 研究神经元发育、连接、再生的机制和因素 参数:成像模式:明场, 双荧光 (绿荧光 & 红荧光)物镜倍率:2X、4X、10X (用户可手动更换)荧光:绿荧光 (激发: 470/40 发射 : 540/50)红荧光 (激发: 562/40 发射: 641/75)载物台:电动 XYZ轴 (载物台固定, 镜头可控制自由移动)镜头:高灵敏度500百万像素 CMOS成像位置:多点聚焦:自动调焦,手动调焦视野范围:2X (2.02×1.49 mm), 4X (1.41×1.05 mm), 10X (0.70×0.52 mm)操作软件:扫描软件、分析软件尺寸 (长×宽×高):250×338×412 mm成像方法:单色/多色, 图像拼接, Z轴堆叠, 延时成像, 实时视频录制重量:9.6 kg文件导出格式:TIFF, AVI (JPEG, PNG)培养容器:多孔板,T型瓶,培养皿,载玻片操作环境:10-40℃,湿度95%电源要求:100-240V, 50/60Hz电脑操作系统:Windows 10 以上
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