植物多光谱荧光成像系统

FluorCam移动式多光谱荧光成像系统是国际知名FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，可用于叶绿素荧光动态成像分析、多激发光光合效率成像分析、紫外光激发多光谱荧光成像分析、PAR吸收与NDVI（植物光谱反射指数）成像分析、GFP/YFP稳态荧光成像等，全面、非接触、高灵敏度反映植物生理生态、胁迫生理与抗性、光合效率等，广泛应用于植物表型成像分析、植物胁迫与抗性检测、植物病害检测研究、遗传育种高通量筛选、植物生理生态学、植物初级代谢与刺激代谢研究、污染生态学研究检测/生物检测等。 主要功能特点：ü 客户定制四轮移动平台、模块式结构，便于温室内或野外移动使用、原位测量监测、系统扩展等ü 叶绿素荧光成像分析：植物光合效率、荧光淬灭热散失、光响应曲线、植物胁迫与抗性等生理功能测量检测ü 多光谱荧光成像分析：反映多酚与黄酮类等次级代谢产物动态变化、叶绿素动态变化、植物衰老、植物病虫害胁迫及非生物胁迫等ü GFP/YFP稳态荧光成像（选配）：遗传育种、基因标记ü NDVI成像分析（选配）：N素营养状态、植物胁迫等ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 多激发光、多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü 可选配13x13cm或大型20x20cm不同规格型号LED光源版，以实现不同大小均一的植物多光谱荧光成像面积，可对叶片、植物果实器官包括植物根系或整株植物甚至多株植物进行实验成像分析 ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳），以便于野外长时间（如几个小时）自动监测ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配RGB成像、红外热成像及高光谱成像，以便与叶绿素荧光成像融合分析，全面研究分析形态结构、颜色、气孔导度、植物光谱特征、WUE（水分利用效率）、CWSI（水分胁迫指数）、植物生理生化等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标：1. 多光谱荧光成像1) 标配4+1智能LED光源系统，包括1对红色LED光源板、1对冷白色LED光源板、1个顶部紫外光源，可选配其它波段光源、多光谱光源2) 标准版LED光源板面积13x13cm，大型版LED光源板面积达20x20cm3) 脉冲调制测量光源，波段617nm，持续时间10μs - 100μs可调，可深入叶片栅栏组织，可选配蓝色等其它颜色测量光 4) 双波段持续光化学光：标配617nm橙色光化学光和6500K白色光化学光，300-2,000 μmol(photons)/m2.s光强可调，可选配3000 μmol(photons)/m2.s光强，还可选配蓝色、绿色等其它颜色光化学光5) 6500K白色饱和光脉冲，最大强度4000 μmol(photons)/m2.s，可选配强度达6000 μmol(photons)/m2.s，还可选配蓝色饱和光脉冲或120000μmol(photons)/m2.s单周转光脉冲6) Protocols（实验程序）：包括（根据选配配置而定）：a) Fv/Fmb) Kautsky 诱导效应c) 荧光淬灭分析d) 光响应曲线分析e) 静态荧光成像分析（选配）f) 多光谱荧光成像分析g) PARabs/NDVI成像分析（选配）7) 测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和多光谱荧光参数8) 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740及相应比率成像分析参数（下左图为西葫芦感染软腐病菌（Dickeya dadantii）RGB彩色成像、多光谱荧光成像（引自Maria L. Perez-Bueno等，2016）；右图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008） 9) 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，20fps，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4）10) 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序11) 7位滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块），标准配置含7位滤波轮、ChlF.滤波器、MCF多光谱荧光滤波器等12) 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI13) 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究14) 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）15) 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： 16) FluorCam多光谱荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单17) Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序18) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差20) 给光制度：静态或动态（窦式）21) 通讯方式：USB 2.022) 供电电压：90 – 240 V （野外需另配轻便型发电机）2. 红外热成像单元：1) 非制冷红外焦平面检测器（uncooled VOx microbolometer），已经过欧盟标注校准，可直接测量温度，包括每个像素点的温度等2) 分辨率：640x512像素3) 光谱范围：7.5～13.5μm4) 温度测量范围：-25～150°C?5) 灵敏度：≤0.03℃（30mK）@ 30℃6) 帧频：标配9Hz或30Hz（须提前申请选配）7) 数据传输：USB-3或千兆以太网8) 19mm光学镜头，视野32℃x26℃，可选配13mm镜头或35mm镜头9) 具备视频模式和快照模式10) 具备14种调色板供任意选择，可多样化设置热成像假彩色11) 具备差值功能，可内查图像形成平滑影像以避免像素化12) 可通过软件设置大气温度、湿度、距离等参数13) 具备等温模式功能，包括以上、一下、之间、及以下与以上四种等温模式14) 结果在线报告功能，自动显示热影像、时距图及影像参数如发射率、反射温度、大气温度、湿度、外部光距离、传播等15) 影像处理软件具备ROI选区功能，包括点、线、折线、矩形等，并可进行分区处理，每个ROI即时显示最小温度、最高温度、平均温度等16) 热扫描功能及热剖面功能：可在线可视化显示线型ROI温度值、温度剖面图17) 所有ROI工具的温度值均可显示在时距图中18) 防护级：IP6519) 工作温度：-15°C～+50°C 20) 支持GPS信息，可将位置信息显示在谷歌地图上3. RGB成像分析单元：科研级RGB成像镜头，分辨率2592x1944像素，信噪比54dB，1-40x放大，最小视野6.1x7.9mm（40x），最大视野20.8x25.4 产地：欧洲

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000），右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图（Photosynthetica, 38: 571-579, 2000）FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备，高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内（还可根据需求选配第五个光源板置于顶部），植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过USB与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析（NPQ）protocolas（2套定制给光方案）、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析（选配）、OJIP快速荧光动力学分析（选配）及GFP绿色荧光蛋白成像（选配）等 可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）；还可预设两个实验程序（Protocols）；比如使系统白天自动运行Fv/Fm，夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益左图A为100％红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm，左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm；右上图为光合作用强度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系，右下图为气孔导度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元，植物性状数字化、可视化，全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统，成像面积35x35cm，可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例：Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等，在2019年2月出版的《Plant Physiology》，发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging，该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统，成像速度可达4000fps@640x512，QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附：OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括： a) Fo：初始荧光或称最小荧光，50μs时的荧光b) Fj：2ms时的荧光c) Fi：60ms时的荧光d) P或Fm：最大荧光e) Vj＝(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi＝(Fi-Fo)/(Fm-Fo)：i阶荧光相对变量g) Mo＝TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo)：荧光瞬变初始斜率，或称OJIP曲线初始斜率h) Area：OJIP曲线与Fm之间的面积，可称为补偿面积（complementary area）为了对不同样品进行比较，Area需要标准化为：Sm＝Area/(Fm-Fo)，Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area：OJIP固定面积，OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm：标准化OJIP补偿面积，反映QA还原多次周转k) Ss＝Vj/Mo：标准化OJ相补偿面积，反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj)：OJIP QA还原周转数量（between 0 and tFm）m) Phi_Po＝QY＝φpo＝TRo/ABS＝Fv/Fm，最大光量子产量，吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o＝ψo＝ETo/TRo＝1-Vj，捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo＝φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj)，吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率，或称电子传递光量子产量（quantum yield of electron transport at t=0）p) Phi_Do＝φDo＝1-φpo＝Fo/Fm，能量散失光量子产量（t＝0）q) Phi_pav＝φpav＝φpo（Sm/tFm），平均光量子产量，tFm为达到Fm所需时间（ms）r) ABS/RC＝Mo(1/Vj)(1/QY)：为单位反应中心的吸收光量子通量，这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers（下同）。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC＝Mo(1/Vj)：单位反应中心初始（或称最大）捕获光量子通量（导致QA的还原，也即反应中心关闭比率B的增加）t) ETo/RC＝Mo(1/Vj)（1-Vj）：单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC＝（ABS/RC）－（TRo/RC）：单位反应中心能量散失v) ABS/CS：单位样品截面的吸收光量子通量，CS stands for the excited cross-section of the tested sample（下同）。ABS/CSo＝Fo，ABS/CSm＝Fm，TRo/CSx＝QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo＝QY.Fo；ETo/CSo＝φEo.Fo ＝QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx：反应中心密度，RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS＝(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs＝(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于截面的“性能”指数或称生存指数

FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台 FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量，成像面积35×35cm，是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域：实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析（Phenotyping）植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点：ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、滤波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和蓝光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像： UV紫外光对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为蓝光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统，成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等 技术指标： 1) 大型叶绿素荧光成像平台，成像面积达35×35cm2) 高分辨率CCD相机l 图像分辨率：1360×1024像素l 时间分辨率：在最 高图像分辨率下可达每秒20帧l A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）l 像元尺寸：6.45μm×6.45μm l 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量l 通讯模式：千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源（可选配蓝色或其它波长的LED光源），具备735nm红外光源，LED光源板面积750×750mm4) PAR吸收／NDVI成像模块：680nm红色光源、735nm红外光源板及相应滤波器和功能程序模块（选配）5) 多光谱荧光成像模块：UV紫外光源及相应滤波器和功能程序模块（选配）6) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器7) 成像平台高度可调，调整高度范围350-1350mm8) 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ，Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，qL，QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数；R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数（选配）；包括F440、F520、F690、F740等UV激发多光谱荧光参数（选配）；荧光强度Ft等GFP绿色荧光蛋白成像参数（选配）。每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像9) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔，系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名10) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等，可对Protocols进行编辑，实时在线数据分析和二维显示11) 客户定制实验程序协议（protocols），可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序12) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?13) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等14) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI)，，成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等15) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线，可进行“选区操作”（参见上条）或“分级操作”（图像阈值分割功能）；选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区（ROI），还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区；分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”，通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理，可设置不同的阈值进行图像阈值分割16) 结果展示报告功能：可展示所有选区（ROI）的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等，可对原数据（kinetic）、叶绿素荧光参数等导出到excel表，还可对每个参数成像图存储成位图17) 可自动测量多个样品（无限制）荧光动力学曲线及相应参数，程序软件可自动识别多个植物样品（数量不受限制）或多个区域（数量不受限制），也可手动选区（数量不受限制）18) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 19) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm，分辨率640x512，1－14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C，灵敏度30mK（0.03°C），传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换，标配9mm光学镜头、69°视野， 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol：一根电缆支持18通道；视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用，在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最小峰值温度等f) 32GB内存，可存储80000张图片或200分钟视频，图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片，图片采集间隔1－60s可调，带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等 产地：欧洲

FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的最新高级扩展产品。此系统既可用于PAM脉冲调制式叶绿素荧光动态成像分析，又可用于UV紫外光对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配滤波器组对GFP、RFP、YFP、SYBR Green等荧光蛋白和荧光染料进行稳态荧光成像测量。测量对象包括叶片、果实、花朵、整株拟南芥或其他小型植株、苔藓、微藻、大型藻类乃至特定的动物样品。 应用领域：§ 植物光合生理生态§ 植物逆境胁迫生理与易感性§ 植物初级代谢与次级代谢§ 植物表型组学成像分析（Phenotyping）§ 作物遗传育种与抗性筛选§ 种子萌发与活力监测§ 转基因植株筛选 功能特点：§ 多激发光-多光谱荧光成像技术：通过两种以上不同波长的光源激发植物样品中不同的发色团发出荧光并进行成像检测，即为多激发光多光谱荧光成像技术。植物的多光谱荧光主要包括叶绿素荧光、UV紫外光激发多光谱荧光和荧光蛋白荧光§ FluorCam-Pro无需更换任何配件即可同步实现多激发光-多光谱荧光成像功能：s PAM脉冲调制式叶绿素荧光成像s 紫外激发F440、F520、F690、F740多光谱荧光成像s GFP、RFP、YFP等常用荧光蛋白成像§ 可根据用户需要定制荧光蛋白或荧光染料成像，如BFP、CFP、SYBR Green、DAPI等§ 可对黄酮、花青素含量进行定量测量§ 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 测量样品为各种活体植物样品，包括叶片、花卉、果实、整株拟南芥或其他小型植物、微藻（包括液滴、多孔板、固体培养基）及大型藻类等 技术指标：§ 一体式设计，自带暗适应箱体§ 最佳成像面积：20×20cm§ 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数；紫外激发多光谱荧光成像参数：F440、F520、F690、F740；荧光蛋白荧光强度参数Ft；每项参数均可显示对应二维荧光彩色图像。并可测量计算黄酮醇指数Flavonol Index,、花青素指数Anthocyanin Index。 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑1) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等叶绿素荧光参数2) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等叶绿素荧光参数3) Quenching荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个叶绿素荧光参数4) Light Curve光响应曲线：不同光强梯度条件下Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等叶绿素荧光参数5) MultiColor紫外激发多光谱荧光成像（选配）6) FPs荧光蛋白成像：GFP、YFP、RFP、BFP等（选配） § 荧光激发光源组：全LED光源，包括620nm红光、5700K冷白光、735nm远红光、365nm紫外光，445nm品蓝光，470nm蓝光，505nm青光，530nm绿光，590nm琥珀色光等§ 高分辨率CCD相机1) 图像分辨率：1360×1024像素2) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧§ 具备7位滤波轮，标配叶绿素荧光滤波器，根据用户需要可定制紫外激发多光谱荧光和GFP、RFP、YFP、BFP等荧光蛋白专用滤波器§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单§ 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）§ 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000） § 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等应用案例：1. 抗病毒基因研究：叶绿素荧光成像与GFP成像联合分析法国国家农业科学研究院一直致力于马铃薯y病毒组的抗病基因研究，通过不同基因编辑处理方法，验证抗病毒分子机制。相关研究中，研究人员利用FluorCam多光谱荧光成像系统的GFP荧光蛋白成像功能，定量分析感染面积与病毒积累量，从而直观地反映了不同基因功能对拟南芥病毒抗性的影响。同时，叶绿素荧光成像则反映病毒对光合系统的损伤，同步提供植物的光合表型信息。 参考文献：§ Zafirov D, et al. 2021. When a knockout is an Achilles' heel: Resistance to one potyvirus species triggers hypersusceptibility to another one in Arabidopsis thaliana. Mol Plant Pathol. 22: 334–347§ Bastet A, et al. 2019. Mimicking natural polymorphism in eIF4E by CRISPR‐Cas9 base editing is associated with resistance to potyviruses. Plant Biotechnology Journal 17: 1736–1750§ Bastet A, et al. 2018. Trans-species synthetic gene design allows resistance pyramiding and broad-spectrum engineering of virus resistance in plants. Plant Biotechnology Journal: 1–13 2. 不同颜色凌霄叶片的叶绿素荧光与紫外激发多光谱荧光成像分析（易科泰EcoTech实验室） 产地：欧洲

PlantScan全自动植物多广谱三维成像观测室PlantScan全自动植物多广谱三维成像观测室整合了植物智能培养、自动识别管理、自动化控制、叶绿素荧光测量、RGB真彩3D成像、热成像、近红外成像、超谱分析等多项先进技术，被专门设计来满足用户的特殊需求。它可以最优化的方式实现大量植物样品&mdash &mdash 从拟南芥到各种植物&mdash &mdash 的形态与结构分析研究。传送系统可以被设置成单株或多株形式，从而提供对大量不同物种的测量，或者对同一物种在其生命周期内的长期监测。应用领域植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究尤其适用于植物胁迫筛选，植物氮素营养与需水状态研究，植物疾病与病原体感染研究，生态毒理学研究等工作原理FC 900-PS 整合了植物智能培养、自动识别管理、自动化控制、叶绿素荧光测量、RGB真彩3D成像、热成像、近红外成像、超谱分析等多项先进技术。可以理想化地控制植物的生长条件，包括光、温、水、气、土；最大限度地节省人力和管理成本；监测培养植物的一举一动、方方面面，极其灵敏地将植物对环境条件的反应真实再现。植物荧光成像站用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取，从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个：F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。RGB真彩成像、热成像室、NIR近红外成像结合超谱分析，可以实现对植物形态与结构的综合研究，使得研究结果不在停留在孤立的某一方面。系统组成与功能特点：FC 900-PS系统由机械传送装置、自动植物称重与灌溉系统、自动条形码或RFID射频标签识别、叶绿素荧光和RGB真彩成像、热成像室、NIR近红外成像室、超谱分析模块等组成。传送装置自动装载与卸载样品通过条形码或RFID跟踪感兴趣的样品自动灌溉与称重整合叶绿素荧光，RGB真彩与热成像系统自动植物灌溉 成像工作站叶绿素荧光，RGB真彩或者其它成像工作站，包含了部分机械传输系统，确保待测植物的暗适应和光照平衡。植物上方的机械臂携带成像设备垂直或水平运动。成像区域可选择，以适应不同样品大小和配置，单幅图片成像范围13 x 13 cm或者35 x 40 cm。LED光源板可以精确控制特定波长的照明、低或高的光照强度而不产生热效应，也可以执行复杂的照明方案。远红光LED光源板可以在热成像室内提供所需的热效应系统内部环境条件可完全控制，如温度、相对湿度、灌溉设置，以及氧气、二氧化碳分压。 成像工作站 操作软件功能用户友好的图形界面自动读取条形码或RFID标签软件完全控制所有的机械部件和成像工作站可用默认程序进行所有测量，也可通过开发工具创建自定义的工作过程可根据实验需求自动控制植物样品的移动和单一成像站的激活成像区域可选择以适应不同样品大小和配置，单幅图片成像范围13 x 13 cm或者35 x 40 cm可提供3个相机视角的RGB数字生长分析，包含阈值分析和颜色分析对于叶绿素荧光成像图片，软件可批量进行淬灭参数分析，包含了在背景去除图像上用户感兴趣区域和像素值的平均。分析数据以原始图像和分析数据的形式存储在数据库中。对FIR热成像图，16位图可直接导出到MATLAB或通过软件生成温度分布的假彩图像。产地：欧洲

FluorTron植物叶绿素荧光光谱成像分析系统基于高灵敏度视频光谱成像传感器技术、多通道调制智能LED光源技术及机器视觉叶绿素荧光成像技术，通过叶绿素荧光光谱成像和RedNIR光谱成像，对植物表型特别是光合生理表型进行非接触、非损伤、数字化、可视化成像分析（可客户定制高通量表型分析），用于植物表型分析、植物光合生理研究检测、胁迫与抗性检测与筛选等。主要技术特点：1) 高灵敏度叶绿素荧光动态及光谱成像分析，同时兼备time-resolved和spectral-resolved叶绿素荧光分析功能，全面解析叶绿素荧光动态及其光谱特性，每一个参数都具备光谱指纹2) RedEdge-NIR光谱（红边-近红外反射光）成像分析3) 可同时进行植物形态分析，如长度、宽度、投影面积（相对生物量）、凸包面积、圆度等主要技术指标：1) 叶绿素荧光光谱成像：包括红色波段和远红波段如F668、F740、F686（红色波段峰值）、F704、F720、F727、F739（远红波段峰值）、F760、F772等十几个光谱波段叶绿素荧光 2) 叶绿素荧光动态成像分析参数：Fo、Fm、Fp、Ft、Fs、Fm’、Fv/Fm（QYmax）、∆ F/Fm’（YPSII）、Fv/Fo、NPQ、Rfd、Y(NPQ)、Y(NO)、EXC、Fred/Ffr及其它光谱比值指数等3) 红边-近红外光谱成像：665-960nm，24波段，波段宽（FWHM）10-15nm4) 反射光光谱成像分析参数：NDVI、RDVI、OSAVI、MSAVI、ZTM（红边指数）、NIRv、SR、MSR、EVI、GM、CI、R（红度指数）等5) 成像面积：客户定制6) AMS CMV2000 CMOS成像传感器，分辨率2048x1088像素7) 数据抓取速度：≥100光谱立方/秒8) 形态参数：投影面积（相对生物量）、长度、宽度、长宽比、凸包面积、ROI面积、圆度等常见形态参数9) 像元大小：5.5µ m10) 光学镜头：C口（C-mount）11) 光谱成像功耗：15W12) 激发光：蓝色LED激发光源，可选配多激发光13) 模块式结构，具备可扩展性，可扩展选配高光谱成像、Thermo-RGB红外热成像等14) 侧面多功能高光谱成像（选配）：a) 高光谱成像：光谱范围400-1000nm，光谱通道448，帧频330fps，FOV 38度，信噪比600:1，具备MROI功能b) 多光谱成像：可自由选择感兴趣光谱波段，进行高灵敏度多光谱成像c) 空间分辨率：1024 x像素，具体依据植物高度范围而定d) 可成像分析作物生化、生理指标、光利用效率、健康指数、覆盖度、胁迫等近百种参数e) UV-MCF成像分析：可对植物紫外光激发荧光进行成像和光谱分析，包括叶绿素荧光成像及光谱分析、BGF蓝绿荧光成像及光谱分析、相应光谱比值参数、荧光光谱分析、ROI分析等f) SpectrAPP高光谱成像分析软件及FluorVision高光谱荧光成像分析软件，可进行光谱融合、ROI选区分析、面积校准、频率直方图、自动识别不同波段峰值并分析其比值等，近百种参数一键分析 g) 叶面积指数参数/结构指数：NDVI、RDVI、MSR、SAVI、MSAVI、TVI、MCARI、MTVI、EVI等h) 色素指数（包括叶绿素指数、胡萝卜素指数、花青素指数等）：VOG1、VOG2、VOG3、GM1、GM2、TCARI、CI、CCCI、TCARI/OSAVI、SRPI、NPQI、NPCI、CTRI、CAR、CRI550、CRI700、CRI550_515、CRI700_515、DCabCxc、DNIRCabCxc、SIPI、PSSRa、PSSRb、PSSRc、PSNDc、ARI等i) 叶黄素循环色素指数：PRI570、PRI515、PRIm1、PRIm2、PRIm3、PRIm4、PRIn、PRI.CI等j) 颜色指数：包括红度指数、绿度指数、兰度指数、比值指数等，可区分100多种颜色波段k) 生理生态指数：包括健康指数HI、衰老指数PSRI、叶绿素荧光指数CUR等l) 光合物候指数：CCI、NIRv、∆ PRI等m) N素指数：DCNI、TCARI1510、MCARI1510、GnyLi、NDNI、NRI1510、N870,1450、N850,1510等（除DCNI外，其它需要选配900-1700nm高光谱）n) 水分指数o) 一阶导数、二阶导数p) 高光谱荧光指数：Fb、Fg、F685、F740、F685/F740（反应植物胁迫）、F735/F700（反应叶绿素含量）、Fb/F685、Fb/F740、Fg/F685、Fg/F740、频率直方图、截面分析等 应用案例——番茄DCMU实验：

CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观，内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像，从而计算植物生长、胁迫，育种，突变株筛选相关等科学研究；滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪，标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲，强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配：385nm紫外，455nm蓝色，530nm绿色，660nm红色，适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能，可以进行0-60摄氏度范围内进行控温，更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域，有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究，用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计；500万像素高清传感器；最大图像尺寸：2456x2054；快门模式：全局及卷帘快门；分辨率：约250DPI（10pix/mm）；可测量参数：F0，Fm，Ft，Fm’，Fv/Fm，Yield，qP，qL，qN，NPQ，Y（NPQ），Y（NO），慢速诱导，rETR等。其它功能：ROI，尺寸测量，伪色遮罩，分级统计，自动暗适应等选配功能：385nm灯板，455nm灯板，530nm灯板，660nm灯板，底板控温组件。技术参数成像功能：叶绿素荧光成像及多光谱波段测量；调制叶绿素荧光成像参数：Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等；成像面积：≥20 cm x 20 cm；相机类型：CMOS传感器；相机分辨率：约500万像素颜色深度：12bit(软件扩展至16位)；接口：2个USB3.0，1个以太网口；专用嵌入式控制器：提供硬件控制功能；供电：供电：110-230V，最大功耗500W，待机功耗50W；测量光：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ，独立触发；饱和脉冲：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强3500 umol m-2 s-1，独立触发；近红外：LED，730nm，半峰全宽20nm，35W；可见光：LED，660nm，半峰全宽20nm，35W，可选蓝色、绿色LED；内置测量程序：内置多种测量功能可选，允许用户编辑设定测定参数 ；图像批处理：支持一键批处理，并可将数据导出至Excel；参数分级功能：支持对任意参数进行多区间分级，支持对分级区间自定义显示颜色，支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示；ROI功能：允许用户自定义多种ROI，并对ROI的数据自动分析；延时成像：支持设定暗适应延迟；支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套

FluorCam开放式多光谱荧光成像系统 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量。标准配置（标准版）的最大成像面积为13 x 13 cm ，大型版最大成像面积达20 x 20 cm ，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性、作物育种、Phenotyping、转基因、稳态荧光成像测量等研究。 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统功能特点： ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等；ü UV紫外光激发多光谱荧光成像技术：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 成像面积大，标准配置为13x13cm，大型版成像面积达20x20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟兰芥等小型植物）进行实验成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于形态测量分析，结合荧光成像分析参数，可作为植物表型分析（Phenotyping）的有力工具ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 FluorCam开放式多光谱荧光成像系统配置规格：1) 标准配置：可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，成像面积13 x 13cm，系统高度集成、方便使用，具备7位绿波轮及多光谱荧光成像滤波器组、高分辨率CCD镜头、UV紫外光激发多光谱荧光成像功能模块及程序软件等；2) 扩展配置：模块式结构，具备高度可扩展性，不仅可进行叶绿素荧光成像分析及UV紫外光源激发4个波段的荧光成像分析，还可进行PAR吸收及NDVI成像分析、GFP绿色荧光蛋白等稳态荧光成像分析（选配），可根据客户需求选配不同的激发光源和滤波器组合，成像面积13 x 13cm；3) 大型配置：具备上述扩展配置的所有功能优势，成像面积达20cm x 20cm，可对整株植物或多株植物进行成像分析。FluorCam开放式多光谱荧光成像系统技术指标： ? 标准版成像面积达13x13cm，大型版成像面积达20x20cm? 标准配置含滤波轮、ChlF.滤波器及高分辨率镜头，测量参数包括Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, QY, QY_Ln, PARabs, Rfd，BGF，UV-Chl.F等60多个叶绿素荧光参数和稳态荧光? 紫外光激发多光谱荧光参数包括F440、F520、F690、F740? 高分辨率CCD镜头，1392x1040像素，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4） ? 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存，比如白天自动定时运行Kautsky诱导效应程序，夜间自动定时运行荧光淬灭分析程序? 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序（protocols）和稳态荧光测量程序（选配），包括Fv/Fm Protocol，Kautsky诱导效应Protocol，荧光淬灭分析 Protocol，稳态荧光测量，客户定制光响应曲线及PAR吸收成像测量等? 4个13x13cmLED光源板（大型版为20x20cm），双色光源（2红橙光＋2蓝光），双色光化学光（Actinic light1和Actinic light2）? 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s ? 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s ? 标配测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10μs - 100μs可调；? 7为滤波轮及滤波器，用于成像测量叶绿素荧光、F440、F520、F690、F740及GFP等稳态荧光（GFP荧光需选配相应功能模块）? 可选配远红光735nm(FAR)与630nm双色LEDs光源板及相应滤波器和功能程序模块，用于测量Fo’、PARabs及NDVI? 可选配1对青色LEDs光源板及相应滤波器等，光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能测量研究? 可选配1对绿色LEDs光源板用于测量YFG（须选配相应滤波器等）? 如测量其它荧光参数，须选配相应滤波器等（请咨询EcoLab实验室），以下为选配参考： ? FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单? Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序? 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等? 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差? 给光制度：静态或动态（窦式）? A/D 转换分辨率：12 位；Bios：固件可升级? 通讯方式：USB 2.0 ? 供电电压：90 – 240 V 下图为植物接种病毒（PMMoV-I为意大利菌株，PMMoV-S为西班牙菌株）后（dpi为接种后的侵染天数）的紫外光激发多光谱荧光成像，其中Abaxial为叶片背面成像，Adaxial为叶片正面成像（引自Monica Pineda等，2008）产地：欧洲

产品介绍Videometer Mic是一款新型、功能强大且性价比较高的将显测量技术与多光谱技术结合的成像测量系统。通过控制系统就可进行高分辨率显微多光谱成像。基础模块包括标配10个散射波段，波长范围为280-1050nm。可固定摄像头或移动摄像头。Videometer Mic显微多光谱成像系统是一款自动多光谱显微成像系统，集成了多光谱相机传感器，安装在xyz平台上，可实现达30mmX30mm的样品自聚焦和扫描，可以测量较小的样品，比如拟南芥种子等小植株、用多孔板培养的植物、多孔板里的叶圆片、以及植物的种子等，分析软件功能强大。Videometer Mic显微多光谱测量系统通过测量样品在10种不同波长的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的彩色图像。Videometer备选模块包括滤波轮，用于荧光相关研究测量。Videometer Mic也可用于食品样品成像分析测量领域如海鲜品质评估、肉类品质评估、肌肉、脂肪和肉色测量、肌肉和脂肪分布、果品和蔬菜品质检测、琼脂平板菌落计数、质构分析、颗粒涂层分析、孔隙结构分析等；可专用于寄生虫检测。Videometer已经有成熟的针对颗粒例如种子的研究方案，这些形态、表型成像技术，完全可在显微镜下使用，尤其是显微镜下的多光谱特征，是一个全新的探索领域，例如多光谱显微分析法还可用于植物组织、颗粒研究，如小麦、水稻。 产品特点5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析10种不同波长/光源1.4百万像素图片标准设备包括使用设备校准与传统RGB技术相比具有先进的彩色测量功能 根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时少有LED光源技术稳定性增强研究用强大探索软件易用常规应用配方构建模型（建模）多光谱荧光备选 应用领域肌肉、脂肪和肉色测量菌落鉴别寄生虫分析海鲜品质评估肌肉和脂肪分布植物病害肉类品质评估果品和蔬菜品质检测质构分析孔隙结构分析测量参数细微尺寸 细微形状细微颜色细微形态纹理光谱质构与细微表面化学相关的光谱成分计数应用案例 水稻雄性不育是水稻杂种优势利用的基础。长期以来，显微镜下的细胞学证据是判别水稻雄性不育系花粉细胞败育程度和区分不同雄性不育细胞质的较主要依据之一。法碘化钾染色是较简单的方之一。该方法是基于水稻在花粉发育过程中，正常发育的花粉积累大量淀粉，能被碘—碘化钾染色且着色深而均匀；败育花粉不能正常积累淀粉、不能被染色或染色较浅。但是，在发育过程中有些水稻雄性不育系的花粉也能积累少量淀粉。花粉败育过程中的复杂性，降低了碘—碘化钾染色法鉴别水稻花粉育性的可靠性，有时其结果很可能反映不出花粉生活力的真实情况。另外也有用醋酸洋红等其它染色方法进行的各种研究报道。这些传统的常规方法存在植物雄性不育是水稻等农作物利用杂种优势的理论基础。在农作物遗传育种的研究领域中，一个基础性的研究课题就与水稻的雄性不育的有关。研究可利用Videometer Mic多光谱显微成像系统，比较观察水稻花药发育的全过程以及两水稻不育系花粉败育的不同特征。技术参数标准：5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析光源寿命长：可达10万小时光源：具有10个高功率LED 灯源，波段范围从280 nm-1050 nm图像尺寸： 图1.4M 分辨率：1~5 μm /像素 样品尺寸：3 x 3cm分析时间：每个样品5-10秒 室温：操作: 5 - 40℃，储存；-5 – 50℃环境湿度：20-90 % RH相对湿度，非冷凝电源：100-240V AC，50/60HZPC 要求：较低配置: Intel i7或较高，16GB RAM，USB2端口，USB3高速端口，千兆以太网软件：Microsoft Windows 7 Professional, 64 bit, 全新windows版本 硬件备选：滤波轮（用于荧光）可选软件：图像处理工具盒（IPT）、光谱成像工具盒（MSI）、斑点工具盒

AIRPHEN 由法国HI-PHEN公司研制生产，可用于地面植物多光谱成像分析及EcoDrone无人机多光谱遥感成像分析，其主要技术特点：1) 可见光-近红外6波段多光谱成像2) 可分析多种植物光谱反射指数包括：a) 简单比值指数b) 植被归一化指数NDVIc) 光化学反射指数PRId) 叶绿素指数CIe) 修正的叶绿素吸收反射指数MCARI（反映叶绿素含量）f) 归一化红边指数NDRE等3) 可嵌合红外热成像组成多光谱＋红外热成像系统4) 可通过地面支架进行植物冠层多光谱成像5) 可方便安装到易科泰自主研发的EcoDrone专业无人机遥感平台（UAV-4或UAV-8）进行无人机多光谱遥感或多光谱与红外热成像综合遥感 主要技术指标1) 拍摄：6个同步全球快门传感器2) 图片尺寸：1280×960（tif，12bit）3) 获取速度：2帧/ 秒4) 波段范围：450-900nm、6波段（450／530／570/675／710／730／750／850），FWHM＝10nm（可选配其它滤波器）5) 标配8mm光学镜头，视野33°x 25°，飞行高度100m视野60x40m、4.7cm像素分辨率6) 内置GPS7) 红外热成像：640x512分辨率，19mm光学镜头（视野32°x26°），快门同步化8) 数据存储：SD卡存储，32GB9) 低功耗：7W/H10) 重量：200g

用途：FC 900-XY平面式植物荧光成像系统是一款定制型的荧光成像系统，用于大型生长盘中样品的通量成像和多谱段分析。机体采用金属柜体设计，可以轻松移动、安全存储和运输，样品可以轻松的放入测量区域，柜子内部是自动控制高度和位置的光源是相机。 特点：测量面积80cm x 40cm；适用于高通量筛选；光源和相机高度和位置可调；可选自动重复测量，按照设定的程序自动循环成像，实现无人值守监测；内置测量程序，用户可根据实际情况定制程序；测量结果多样化，有数据、图表、图像等；测量和计算的参数多达50多个；无需分离或移动样品，原位测量； 应用领域：植物光合生理研究 植物表型组学研究 植物生理毒理学研究作物优良品种筛选植物逆境生理生态研究植物与生物或非生物胁迫交互作用研究技术参数：主体测量和计算参数FO；FM；FV；FO'；FM'；FV'；FT；FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd等测量区域80 x 40cm光谱响应QE最大在540nm（~70%），400nm~650nm出转降50%读出噪音小于12个电荷RMS，典型10个电荷满井容量大于70000电荷Bios可固件升级电压范围90-240V通讯USB 2.0光源类型LED灯板，4个，其中一对灯板提供测量光和光化光1，另两个分别提供光化光2和饱和脉冲激发光橙色、蓝色和红外三色光化光标准617nm，300~2000 µ mol(photons)/m² .s（标准版）最大3000µ mol(photons)/m² .s（升级版）饱和脉冲最大4000 µ mol(photons)/m² .s（标准版）最大6000 µ mol(photons)/m² .s（升级版）单一覆盖闪光(STF)100µ s脉冲下120000 µ mol(photons)/m² .s（QA再氧化版）光制静态或窦式滤波轮7位高灵敏度相机分辨率720x560像素，可选1024x768（视频模式）或1392x1040像素（快照模式）A/D12位（4096灰阶）CCD波长范围400-1000nm像素尺寸8.6µ m×8.3µ m成像速率50帧/s功率4W曝光方式手动工作环境0-50℃，相对湿度0-95%，非冷凝接口连接以太网专业软件测量程序内置常用测量程序，用户可自己编程新的程序重复测量可选重复测量模块，实现长时间自动重复测量分析区域自动或手动选定结果格式数据、图表、图像

FKM（Fluorescence Kinetic Microscope）多光谱荧光动态显微成像系统是目前功能最为强大全面的植物显微荧光研究仪器，是基于FluorCam叶绿素荧光成像技术的显微成像定制系统。它由包含可扩展部件的增强显微镜、高分辨率CCD相机、激发光源组、光谱仪、控温模块以及相应的控制单元和专用的工作站与分析软件组成。它不仅可以进行微藻、单个细胞、单个叶绿体乃至基粒-基质类囊体片段进行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等各种叶绿素荧光及MCF多光谱荧光（multicolor fluorescence）成像分析；还能通过激发光源组进行进行任意荧光激发和荧光释放波段的测量，从而进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料以及藻青蛋白、藻红蛋白、藻胆素等藻类特有荧光色素的成像分析；更可以利用光谱仪对各种荧光进行光谱分析，区分各发色团（例如PSI和PSII及各种捕光色素复合体等）并进行深入分析。 FKM多光谱荧光动态显微成像系统使荧光成像技术真正成为光合作用机理研究的探针，使科研工作者在藻类和高等植物细胞与亚细胞层次深入理解光合作用过程及该过程中发生的各种变化，为直接研究叶绿体中光合系统的工作机理提供了最为有力的工具。FKM作为藻类/植物表型和基因型显微研究的双重利器，得到了学界的广泛认可并取得了大量的科研成果。功能特点• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数。• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光。• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图。• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究。 应用领域• 微藻、大型藻类/高等植物的单个细胞、单个叶绿体、基粒-基质类囊体片段等的显微结构植物光合生理研究• 藻类/植物逆境研究• 生物和非生物胁迫的研究• 藻类/植物抗胁迫能力及易感性研究• 突变体筛选及光合机理研究• 藻类长势与产量评估• 藻类特有色素与光合作用关系• 藻类/植物——微生物交互作用研究• 藻类/植物——原生动物交互作用研究• 基因工程与分子生物学研究测量样品• 植物活体切片• 植物表皮• 植物细胞• 绿藻、蓝藻等各种单细胞和多细胞微藻• 叶绿体提取液• 类囊体提取液• 含有叶绿体的原生动物工作原理 FKM分析过程中，通过连接在显微镜上的激发光源组和内置在6位滤波轮中的一系列滤波器、分光镜激发植物样品中各种发色团的动态荧光。样品激发出的荧光经显微镜放大后进行荧光光谱分析和荧光动力学成像分析。SM 9000光谱仪通过光纤与显微镜连接，以进行激发荧光光谱分析。安装在显微镜顶部的高分辨率CCD相机则用于荧光动力学成像分析。全部工作过程通过工作站和控制单元按照预先设定好的程序自动进行。测量过程中，可通过温控模块调控藻类、植物细胞等实验样品的温度。蠕动泵可以实现培养藻类的连续测量。仪器组成1. 增强显微镜 2. 高分辨率CCD相机 3. 激发光源组 4. SM 9000光谱仪 5. 主控制单元 6. 工作站及软件 7. 控温模块的控制单元8. 6位滤波轮技术参数• 测量参数?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' , Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像?OJIP快速荧光曲线：测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi???_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）等（选配）?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白和荧光染料的成像分析（选配）?QA再氧化动力学曲线（选配）?Spectrum荧光光谱图（选配）• 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑?Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等?Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数?荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数，2套制式程序?光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数?Dyes & FPs稳态荧光成像测量?OJIP快速荧光动力学分析：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数（选配）?QA再氧化动力学（选配）?Spectrum荧光光谱分析（选配）• 荧光激发光源：红外光、红光、橙光、蓝光、绿光、白光、紫外光等可选，根据客户要求定制光源组• 透射光源（选配）：白光、远红光?高分辨率TOMI-2 CCD传感器：?逐行扫描CCD?最高图像分辨率：1360×1024像素?时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧?A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）?像元尺寸：6.45μm×6.45μm?运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量?通讯模式：千兆以太网• 显微镜：Axio Imager M2，可选配Axio Scope A1简洁版或Axio Imager Z2高级版?物镜转盘：研究级7孔自动物镜转盘?透射光快门?聚光器 Achr Apl 0.9 H?6位反光镜转盘?双目镜筒(100:0/30:70/0:100)?机械载物台：75×50mm，硬膜阳极氧化表面?样品架：76×26mm• 物镜：10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜（可选）• 6位滤波轮：叶绿素荧光、GFP/SYTOX、DAPI/CTC等• SM9000光谱仪?入射狭缝：70μm×1400μm ?光栅：平场型校正?光谱范围：200-980nm?波长绝对精确度：0.5nm?再现性：0.1nm?温度漂移：0.01nm/K• 温度调控模块：温度调节范围 5℃-70℃，精确度0.1℃• 蠕动泵（选配）：流速10-5600μl/min，用于藻类连续培养测量• FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单 • 客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序• 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）• 快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片• 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）• 数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差• 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等叶绿素荧光与光谱分析结果典型应用：产地：捷克参考文献：1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-3812.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 494.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-705.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.1626.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-12587.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-2368.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.01143219.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.023410.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. 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用途：FC 800-C密闭式植物荧光成像系统用于多谱动态荧光成像，它由一个CCD相机，4~5个LED灯板，可选择一个滤光器包含7个不同的发射器，LED灯板统一提供面积13x13cm辐照度，适合一些小的植物，比如分割的树叶，藓类，地衣，海藻聚集地或海藻悬浮液等等。相机通过光化光和饱和光瞬时荧光成像，用户自定义辐照度的时间和强度。FC 800-C相关软件提供数据采集和图像处理功能，同时还为专业人员提供了复杂的编程语言用来设计新的测量计划。 应用：筛选用于光合作用效能和代谢扰动；探测生物和非生物刺激；胁迫抗性或敏感性；线虫类荧光和行为；气孔分布；提供耕地产量；生长发育； 可测量的样品：树叶、培养植物、果实、蔬菜；藓类、地衣；蓝藻、绿藻；线虫类；样品大小，最大可达13 cm x 13 cm；成像滤光片可用于384多孔板，96多孔板，有盖培养皿中的样品；可选择搁板系统用于不同尺寸样品的测量；暗适应盒用于对样品进行暗适应测量（可选件）。 光板：FluorCam的标准配置4个超高亮度的LED面板灯，一对LED灯板提供测量光和光化光1（典型618nm），另外两个灯板提供光化光2和饱和脉冲（这两个灯板根据客户需求安装蓝色（455nm），红色（618nm）或白色灯光）；其他有效波长：470nm，505nm，570nm，605nm，630nm（FluorCam自定义版本）；附加LED灯板可以装在相机顶部，有红外（735nm），紫外（360或380nm）或绿色（505nm）可供选择（可选）；光化光强度：300~2000 µ mol(photons)/m² .s（标准版） 最大3000µ mol(photons)/m² .s（升级版）；超级脉冲强度：最大4000 µ mol(photons)/m² .s（标准版） 最大6000 µ mol(photons)/m² .s（升级版）；单一覆盖闪光（STF）：100µ s脉冲下120000 µ mol(photons)/m² .s（QA再氧化版）； 不同的发射带：叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm）、GFP（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）. 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m×8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：逐行扫描CCD，1.4M像素；A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m×6.45µ m像素尺寸两种模式：录像、拍照；分辨率：1392x1040像素-拍照模式下最高分辨率 1024x768像素（每秒10次拍摄）-录像模式下最大分辨率；分级选项，提供更高的灵敏度和帧率： 2x2：696x520像素，每秒25次拍摄 3x3：464x344像素，每秒20次拍摄 4x4：348x256像素，每秒50次拍摄；更高空间分辨率的叶绿素和荧光信号测量（显微镜）； FluorCam 7.0软件功能：自动实验方案设置向导，软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序多重（自动重复）实验对视野内的单个植物或样品进行动态分析对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分从视野内的所有样品进行动态分析获取数据批量画面操作工具支持读取条形码可输出为Excel操作系统支持Windows 2000, XP, Vista FluorCam软件界面 技术规格：荧光参数F0、FM、 FV、 F0’、FM’、FV’、QY(II)、绝对PAR吸收值和从计算的参数PQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、PAR吸收率、光合电子传递速率 (PS)等激发光源455nm、470 nm、505 nm、570 nm、605 nm、618nm、630 nm、735 nm和其它波长超级脉冲强度标准版：最大4000 µ mol(photons)/m² .s升级版：最大6000 µ mol(photons)/m² .s光化学光强度标准版：最大2000 µ mol(photons)/m² .s升级版：最大到3000 µ mol(photons)/m² .s滤光轮7位光源协议静态或动态，凹陷式定制实验方案可设置定时，专用语言和脚本CCD检测波长400~1000 nmCCD格式512×512，640×480和1392×1040像素A/D转换12 bit光谱灵敏度QE最大在540nm（~70%），50%滚降在400 nm和650 nm检出信号噪音RMS小于12e， 典型仅为10e满阱容量大于70000e成像频率最大50帧/秒Bios可升级固件数据交换端口USB2.0外部尺寸471mmx473mmx512mm内部尺寸450mmx450mmx400mm重量40 kg功率大约1100W电压90-240 V 产地：捷克 参考文献：BOURDAIS G., BURDIAK P., GAUTHIER A., ET AL. (2015) Large-Scale Phenomics Identifies Primary and FineTuning Roles for CRKs in Responses Related to Oxidative Stress. PLoS Genet,. Volume 11.DOI:10.1371/journal.pgen.1005373下载地址：点击下载更多相关期刊论文：密闭式植物荧光成像系统参考文献-英文版.pdf

FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品，LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上，既可用于叶绿素荧光动态成像分析，又可用于长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析，还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量，成像面积35x35cm，是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域：实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析（Phenotyping）植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点：ü 多激发光－多光谱荧光成像技术：通过光学滤波器技术，仅使特定波长的光（激发光）到达样品以激发荧光，同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团（如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等）对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光，根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器，对不同波长荧光（多光谱荧光）进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器，可以对GFP和叶绿素荧光成像分析，还可选配绿色光源及相应滤波器，以对YFP进行荧光成像分析等； ü UV紫外光激发多光谱荧光成像：长波段UV紫外光（320nm－400nm）对植物叶片激发，可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱，4个波峰的波长为兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态，包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统，成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测，可设置两个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 可选配RGB成像分析模块,用于植物颜色和形态测量分析等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标：1) 大型叶绿素荧光成像平台，成像面积达35x35cm2) 高分辨率CCD镜头，图像分辨率：1360×1024像素、时间分辨率：在最 高图像分辨率下可达每秒20帧、A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）、像元尺寸：6.45μm×6.45μm、运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量、通讯模式：千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源（可选配蓝色或其它波长的LED光源），具备735nm红外光源，LED光源板750x750mm4) PAR吸收／NDVI成像模块：680nm红色光源、735nm红外光源及相应滤波器和功能程序模块，700x725x45mm5) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器 6) 成像平台高度可调，成像距离（平台离植物顶部距离）350-1350mm7) 测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ，Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，qL，QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数、R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数、及UV激发多光谱荧光包括F440、F520、F690、F740等，每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像8) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔，系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名9) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等，可对Protocols进行编辑，实时在线数据分析和二维显示 10) 客户定制实验程序协议（protocols），可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序11) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?12) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等13) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI)，，成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等14) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线，可进行“选区操作”（参见上条）或“分级操作”（图像阈值分割功能）；选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区（ROI），还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区；分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”，通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理，可设置不同的阈值进行图像阈值分割15) 结果展示报告功能：可展示所有选区（ROI）的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等，可对原数据（kinetic）、叶绿素荧光参数等导出到excel表，还可对每个参数成像图存储成位图16) 可自动测量多个样品（无限制）荧光动力学曲线及相应参数，程序软件可自动识别多个植物样品（数量不受限制）或多个区域（数量不受限制），也可手动选区（数量不受限制）17) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 18) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm，分辨率640x512，1－14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C，灵敏度30mK（0.03°C），传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换，标配9mm光学镜头、69°视野， 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol：一根电缆支持18通道；视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用，在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最 小峰值温度等f) 32GB内存，可存储80000张图片或200分钟视频，图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片，图片采集间隔1－60s可调，带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等产地：欧洲

FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备，具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列，也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积是13 x 13 cm ，通过选择光源的尺寸，可调整最大成像面积为20 x 20 cm 。成像尺寸可高达200 x 100 cm ，通过选择额外的LED板和/或将整个系统安装在一个移动支架上实现，相关内容见XY-Plane, Transect, Arch, 和 Rover FluorCam。应用领域 植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究工作原理FC-800系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取，从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个：F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。功能特点：实验过程和测量参数 Meter功能荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它。一次测量可获取多达50个参数荧光蛋白与荧光素成像，GFP、eGFP、wtGFP、BFP、YFP、CY3, CY5等技术参数 测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10µ s - 100µ s可调；光化光强可达2,500 µ mol(photons)/m² .s ，波段可选蓝（455 nm）, 红 (618 nm), 白光。可升级最高光强至5,000 µ mol(photons)/m² .s· 饱和光强度可达 红/蓝/白光可选- 3,000 µ mol(photons)/m² .s (标准版)- 10,000 µ mol(photons)/m² .s (光源升级) STF -单次翻转饱和光闪，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s ，100µ s脉冲远红光735nm(FAR)8位滤波轮（可选）：叶绿素荧光(高通695 nm, 低通 780 nm)，GFP荧光（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）,PAR(透明玻璃)，YFP，CY3，CY5，以及其它荧光波段辅助光源可选：390 nm（紫外）、470 nm、505 nm、570 nm、605 nm、630 nm、735 nm（远红）, 或者其它波段，可安装在仪器支架或者设备侧面。荧光参数：F0, FM, FV, FO' , FM' , FV' , QY(II)), Abs PAR-value, 或计算出的其它参数(e.g., NPQ, FV/FM, FV' /FM' , Rfd, qN, qP), PAR-absorptivity, 光合电子传递速率(ETR),等给光制度：静态或动态（窦式）CCD检测器带宽：400 &ndash 1000 nmCCD 制式：512 x 512 像素 可选 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素（显微视野）像素尺寸：8.2 µ m x 8.4 µ mA/D 转换分辨率：12 位光谱响应：540 nm处量子效率最高(70 %),400 nm 和 650 nm 处转降50 %读出噪音：低于12eRMS，典型10e满阱容量：大于 70,000 e (unbinned)成像频率：50 张图片每秒Bios：固件可升级通讯方式：USB 2.0尺寸：471 mm(W) x 473 mm (D) x 512 mm (H)重量：Appr. 40 kg电源输入：Appr. 1100 W供电电压：90 &ndash 240 V 附：标准版与QA再氧化版配置对照表FluorCam FC-800 - Standard VersionLight TypeActinic 1ColorRed-orange Wavelength [nm]617 Intensity [umol]200-300 Light TypeActinic 2Colorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]200020002000 Light TypeSaturating PulseColorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]400040004000 FluorCam FC-800 - Light Upgraded Version / QA VersionLight TypeActinic 1Colorred-orange Wavelength [nm]617 Intensity [umol]2000 Light TypeActinic 2Colorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]300030003000 Max Intensity [umol]800080009000 Light TypeSaturating Pulse Colorred-orangeroyal-bluecool whiteneutral whitewarm whiteWavelength [nm]6174474500 - 10000 K3500 - 4500 K2540 - 3500 KIntensity [umol]600060006000 Max Intensity [umol]160001600016000 操作软件与实验结果 内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excel· FluorCam 软件界面Windows 2000, XP, Vista兼容 配置型号指南：标准版1&mdash &mdash 超高速成像版：512 x 512 像素，50幅/秒超快CCD，适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版：1392 x 1040 像素分辨率，适用于高空间分辨率的应用，如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版：可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数，用于修正荧光参数和ETR标准版4&mdash &mdash 功能增强版：超强STF，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s，可实现100µ s脉冲，用于QA瞬间饱和与再氧化研究；可同时进行荧光蛋白与荧光素成像，包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等，用于转基因研究。 产地：欧洲

来因科技多功能植物活体成像系统 植物活体成像检测仪 植物多光谱荧光成像系统PLIS-95PLIS系列多功能植物活体成像系统搭载了超高灵敏度深冷背照式相机大光圈镜、RGB激光光源、IR激光光源、温控平台、全自动滤光轮，用于生物发光检测；植物活体荧光素酶检测；荧光检测；化学发光检测等满足客户多种实验需求的一套高性能植物活体成像分析系统。激光光源：相对LED 和卤素光而言，激光有更稳定的光谱以及更小的光衰，光源更纯净，无边缘效益， 在光斑处光都处于均匀的能量，使其成为最佳的荧光成像光源。背照式高灵敏度深冷相机：PLIS植物活体成像仪采用了660万高分辨深冷背照式相机其QE在峰值最高高达95%,制冷温度 达到-95℃, 配合F0.95大光圈镜头，同时具备的了出色的信噪比和灵敏度。专用滤镜：深度定制激光专用滤镜，双层镀膜，截止深度更是高达OD6, 杂散光通过率非常低，背景干净。植物活体成像应用：相对普通LED 的可见荧光，激光尤其红外激光因穿透力较强，背景低，激发效率高的特性，可以更好的拍摄活物体内的细胞活动和基因表达，有效地研究观测感染性疾病发生发展过程、植物转基因鉴定，植物突变体筛选，病毒侵染等。产品参数型号PLIS-68PLIS-95分辨率1200万像素(背照式相机)660万像素(背照式相机)制冷温度-68℃-95℃像素尺寸4.63um×4.63um11um×11um感光效率HighQE:95%像数密度16bit(0-65535)曝光时间1ms-60min像素合并1×1、2×2、4×4…8×8动态范围≥4.8个数量级电动镜头F=0.95/35MM自动聚焦镜头，可选配F0.8镜头RGB光源标配650nm、532nm、473nm(红绿蓝)激光器IR光源标配红外680nm、780nm激光器紫外反射254nm白光光源LED冷光滤光镜轮7位滤光轮滤光镜片标配535nm,570nm、605nm、699nm、720nm、820nm拍摄面积最大拍摄面积32×26cm×10cm(L×W×H),侧位相机选配光照模块选配旋转样品台选配输入气孔预留定时关闭1～60分钟

太阳辐射照射到植物叶片上，其中的蓝色波段和红色波段大部分被叶片吸收进行光合作用，另一部分（包括绿色波段、红外波段等）以反射光的形式返回到大气中，少量以荧光的形式发射到大气中，还有部分则以热的形式耗散。通过对叶片反射光成像测量分析（RGB彩色成像、多光谱或高光谱成像等）、多光谱荧光成像测量分析及叶片温度测量分析（红外热成像），可以全面分析植物的性状特征包括外部形态颜色、光合作用效率、气孔动态、次级代谢等形态与生理生态特征，使植物表型数字化、生理生态及功能可视化。模块式植物表型成像分析系统由植物多光谱荧光成像单元、红外热成像单元、RGB彩色成像单元等组成，可全面分析植物叶片及冠层的形态结构、颜色、光合作用、生理状态、气孔动态、生化色素分布、胁迫生理等，是目前市场上配置最灵活、功能最全面、性价比最高的植物表型与生理生态观测分析系统。左图：西葫芦感染病原菌成像分析，其中(a)为RGB彩色成像、(b)为红外热成像、(c)为F520绿色荧光成像、(d)为F520/F680绿红荧光比值成像；右图：向日葵幼苗列当寄生后的多光谱荧光成像主要功能特点与技术指标：1) 植物多光谱荧光成像技术，可以对具有4个特征性波峰的植物荧光光谱进行成像分析，进而可全面分析植物初级代谢（光合效率）、次级代谢、生理生态、胁迫与抗性筛选等2) 可选配UV紫外光、白色LED光源（用于模拟自然光源）、青色LED光源（用于气孔功能研究）、绿色LED光源、红色LED光源、蓝色LED光源等不同激发光源3) 可对UV紫外光激发的4个波峰的荧光进行成像分析，包括兰光440nm（F440）、绿光520nm（F520）、红光690nm（F690）和远红外740nm（F740），其中F440和F520统称为BGF，由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出，F690和F740为叶绿素荧光Chl-F4) 红外热成像分析单元可测量分析叶片温度的异质性分布，并通过选区（ROI）工具得到不同区域的最高温度、最低温度、平均温度、温度分布频率直方图等，依次进一步分析气孔导度、水分胁迫等5) 40倍RGB成像可以对植物形态及颜色进行分析，既可明察秋毫到气孔分布，又可大视野宏观成像分析6) 配置灵活、使用方便，可选配不同单元组合7) 适于植物叶片、植物幼苗及小型全株植物，红外热成像可应用于植物冠层或多株植物成像分析8) 应用于作物遗传育种、遗传组学与表型组学研究、植物生理生态学、植物胁迫生理、抗性筛选等领域技术指标：1 红外热成像单元：1.1 非制冷红外焦平面检测器（uncooled VOx microbolometer），已经过欧盟标注校准，可直接测量温度，包括每个像素点的温度等1.2 分辨率：640x512像素1.3 光谱范围：7.5～13.5μm1.4 温度测量范围：-25～150°C1.5 灵敏度：≤0.03℃（30mK）@ 30℃1.6 帧频：9Hz或30Hz，最大60Hz1.7 数据传输：USB-3或千兆以太网1.8 19mm光学镜头，视野32℃x26℃，可选配13mm镜头或35mm镜头1.9 具备视频模式和快照模式1.10 具备14种调色板供任意选择，可多样化设置热成像假彩色1.11 具备差值功能，可内查图像形成平滑影像以避免像素化1.12 可通过软件设置大气温度、湿度、距离等参数1.13 具备等温模式功能，包括以上、一下、之间、及以下与以上四种等温模式1.14 结果在线报告功能，自动显示热影像、时距图及影像参数如发射率、反射温度、大气温度、湿度、外部光距离、传播等1.15 影像处理软件具备ROI选区功能，包括点、线、折线、矩形等，并可进行分区处理，每个ROI即时显示最小温度、最高温度、平均温度等1.16 热扫描功能及热剖面功能：可在线可视化显示线型ROI温度值、温度剖面图1.17 所有ROI工具的温度值均可显示在时距图中1.18 防护级：IP651.19 工作温度：-15°C～+50°C 1.20 支持GPS信息，可将位置信息显示在谷歌地图上2 植物多光谱荧光成像2.1 成像面积20x20cm2.2 紫外光激发多光谱荧光成像包括F440、F520、F690、F740四个波段的荧光成像2.3 高分辨率CCD镜头，20fps、1360x1024像素，有效像素大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加（binning）以提高灵敏度（2x2，3x3，4x4）；具备视频模式和快照模式2.4 自动测量分析功能（无人值守）：可预设1个或2个试验程序，系统可自动测量储存2.5 激发光源包括紫外光、蓝色光源、红橙色光源，通过紫外激发荧光与红光LED激发荧光，可以分析植物类黄酮相对含量等2.6 成像分析软件具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre-processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单2.7 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2.8 Protocol实验程序可自由编辑，也可利用Protocol菜单中的向导程序模版客户自由创建新的实验程序2.9 多种Protocols供选配和自动运行，包括Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭曲线、光响应曲线等2.10 具备系统自动重复运行功能，可无人值守自动循环完成选定的实验程序,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机2.11 高度可调，以适应不同高度植株成像分析，最大植株高度50cm，可根据客户需求定制不同高度3. NDVI与PAR吸收成像模块：630nmLED红色光源和740nm LED红外光源，可对PAR（光合有效辐射）吸收及植物光谱反射指数NDVI成像分析 4. 可对绿色荧光蛋白GFP进行成像分析，可选配YFP成像分析5. RGB成像：科研级RGB成像镜头，分辨率2592x1944像素，信噪比54dB，1-40x放大，最小视野6.1x7.9mm（40x），最大视野20.8x25.4；可分析叶面积、长度、宽度、周长、比值、绿度指数、颜色分级分析、频率直方图等 应用案例与近期代表性参考文献： 西葫芦感染软腐病菌（Dickeya dadantii）RGB彩色成像、多光谱荧光成像及红外热成像分析（引自Maria L. Perez-Bueno等，Multicolor Fluorescence Imaging as a Candidate for Disease Detection in Plant Phenotyping. Frontiers in Plant Science, 2016）1) Monica Pineda etc. Detection of Bacterial Infection in Melon Plants by Classification Methods Based on Imaging Data. Frontiers in Plant Science2) Monica Pineda et. Use of multicolour fluorescence imaging for diagnosis of bacterial and fungal infection on zucchini by implementing machine learning. Functional Plant Biology, 20173) Carmen M. Ortiz-Bustos etc. Fluorescence Imaging in the Red and Far-Red Region during Growth of Sunflower Plantlets. Diagnosis of the Early Infection by the Parasite Orobanche Cumana. Frontiers in Plant Science, 2016 4)Maria Luisa Perez-Bueno etc. Spatial and temporal dynamics of primary and secondary metabolism in Phaseolus vulgaris challenged by Pseudomonas syringae. Physiologia Plantarum, 2015

PlantScreen SC植物表型成像分析系统 PlantScreen SC移动式植物表型成像分析平台为实验室和温室植物表型分析的理想平台，植物传送系统与成像分析系统内置于一体式紧凑机箱内，有脚轮可以移动，方便大型温室内不同区域间移动使用，极大地提高了载样方便性和使用效率。植物样品放入平台传送带上自动传送至成像单元进行成像分析，最 后自动传送归原位完成一个测量循环。PlantScreen SC包括叶绿素荧光成像测量和RGB 3D成像测量，以提供完备的作物表型形态测量和光合生理测量分析，可选配或客户定制3D激光扫描三角测量、高光谱成像分析、红外热成像分析等其它成像测量单元。标配PlantScreen SC适于最 大高度70cm、冠幅50cm的植物表型分析，可定制其它规格大小。 功能特点l FluorCam叶绿素荧光成像分析l RGB三维成像形态结构与颜色分析l 传送带系统自动传送植物、自动定位成像分析、自动将植物传出l 整套系统有脚轮可以移动l 可选配3D激光扫描，三维形体结构测量并构建3D模型l 可选配高光谱成像、红外热成像、NIR近红外成像l 可选配大型步入式生长室 系统组成1. 传送系统PlantScreen SC配备半自动化的植物装载和识别系统。只需将盛有植物的标准托盘放于传送带上，按下装载按钮，植物即可进入封闭的成像室内进行成像测量，测量完成后自动传送出来。标准托盘上贴有二维码，进入成像室后能够被识读并录入数据库，用于植物的自动编号。传送系统使实验过程变得简单轻松。标准托盘有4种规格：5 × 4（盆，250 mL）、2 x 2（盆，1L）、1 x 2（盆，3L）、1 × 1（盆，5L），适用于拟南芥、草莓、草坪草、烟草及大豆、玉米等作物的幼苗。 2. 测量成像单元测量成像单元包含基本的RGB成像单元和叶绿素荧光成像单元。RGB成像单元包括顶端及侧面多角度的RGB成像，通过高质量RGB图像的采集和专业的图像分析，获得植物的形态参数（如冠层面积、株高、冠幅、形状系数）及颜色分布情况。 叶绿素荧光成像单元采用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术，能够对植株的光合生理进行无损、非接触的测量，高灵敏度、高通量检测和评估各类胁迫因子对植株的生理影响。 3. 环境传感器系统包含温湿度等环境传感器，持续记录测量环境的温湿度变化。环境信息数据和测量数据同步存储在数据库中，便于特定实验的相关性分析。4. 软件系统配备的高性能服务器电脑预装了用于系统控制、实验规划、数据自动采集、数据自动分析和数据库管理的全套软件。此外，系统配备了RGB分析和叶绿素荧光成像分析的独立软件，便于数据的再处理。安装案例1. 瓦赫宁根大学Shared Research Facilities，2018年11月安装，是荷兰植物生态-表型中心（Netherlands Plant Eco-phenotyping centre）的第 一台安装完成的设备，面向科研用户和商业伙伴开放使用。 2. 成都某生物技术公司，2020年10月安装，是国内首套由公司购买使用，用于生物农药、植物源生物刺激剂及土壤调理剂研发的大型高通量表型分析系统。 3. 孟加拉国，2020年4月，技术和生物测试完成。 易科泰生态技术公司提供植物/作物表型分析全面技术方案：1) 叶绿素荧光成像分析、多光谱荧光成像分析2) 高光谱成像分析、Thermo-RGB成像分析3) 细胞亚细胞水平显微叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像分析4) RhizoTron根系表型分析系统、PhenoTron实验室植物表型成像分析系统5) PlantScreen植物自动传送式、XYZ三维扫描式植物表型分析平台6) SpectraScan样带扫描式、田间机器人式及PhenoUAS无人机遥感植物表型分析平台Ecolab植物表型实验室装备有400-1700nm高光谱成像、FluorCam叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、Thermo-RGB红外热成像等先进表型分析仪器技术，并与中科院植物所PlantScreen表型分析平台合作，提供全面表型分析技术服务与合作研究。

用途：用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）都可被摄取，从而提供2维荧光图像，测量计算常规的50多个荧光参数如F0, FM, FV, F0', FM', FV', NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP等，这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。 应用：筛选用于光合作用效能；单个植物或叶片非均匀性研究，比如感染；不同生物体的研究，例如海藻或蓝藻群落，小型植物冠层；生长和产量。 实验和测量参数：猝灭分析Kautsky效应QA再氧化（需要选购附件）标准参数：Fo、FM、FV、Fo’、FM’、FV’、QY(II)50多种计算的参数：NPQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、光合作用电子传递速率（ETR）和其他 附件：叶夹 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m×8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：分别可选640×480像素和1392×1040像素A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m×6.45µ m像素尺寸分别为每秒30和15幅画面主要用于测量相对较慢的过程和应用于一些要求高空间分辨率的重要实验 小麦成像叶片 光源：四块超亮LED光板；光板尺寸：40×40mm，每块光板包含25个LED；标准配置：白光（光化光和超脉冲），617nm红橙光（测量闪光），735nm红光；测量闪光持续时间：10 µ s~250 µ s；在持续时间和电源适合的前提下，连续光化光调节最大可达到2,000 µ mol(photons)/m² .s 新FluorCam 6.0软件功能：自动实验方案设置向导，软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序多重（自动重复）实验对视野内的单个植物或样品进行动态分析对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分从视野内的所有样品进行动态分析获取数据批量画面操作工具支持读取条形码可输出为Excel操作系统支持Windows 2000, XP, Vista FluorCam软件界面 附件：三脚架 附件：电池组 产地：捷克 参考文献：Mascalchi M., Osticioli I., Riminesi C., et al. (2015). Preliminary investigation of combined laser and microwave treatment for stone biodeterioration. Studies in Conservation. Volume 60, Pages 19-27.DOI: 10.1179/0039363015Z.000000000203下载地址：点击下载更多期刊论文：便携式植物荧光成像系统参考文献-英文版.pdf

WIWAM植物表型成像系统由比利时SMO公司与Ghent大学VIB研究所研制生产，整合了LED植物智能培养、自动化控制系统、叶绿素荧光成像测量分析、植物热成像分析、植物近红外成像分析、植物高光谱分析、植物多光谱分析、植物CT断层扫描分析、自动条码识别管理、RGB真彩3D成像等多项先进技术，以优化的方式实现大量植物样品——从拟南芥、玉米到各种其它植物的全方位生理生态与形态结构成像分析，用于高通量植物表型成像分析测量、植物胁迫响应成像分析测量、植物生长分析测量、生态毒理学研究、性状识别及植物生理生态分析研究等。SMO机械设备制造与设计工程公司是一家将大规模自动化理念和工业级零件和设备整合入植物成像系统的厂家，在机械自动化以及机器视觉成像领域拥有丰富的设计和实践经验，为欧洲客户提供机械设计解决方案，SMO公司将机械领域的先进理念带入了植物表型机器人领域，所采用的配件均为工业界广泛认可的高品质配件，耐受苛刻环境，另外表型设备领域的诸多自动化配件，均由SMO公司自主设计，因公司拥有极为强大的工程师团队，基于工业领域的丰富经验，可针对不同客户需求，一般2-3周就可以提供极复杂表型成像系统的解决方案。目前WIWAM植物表型平台分为WIWAM XY，WIWAM Line以及WIWAM Conveyor3个系列，同时还提供WIWAM Boxing柜式成像系统，也提供野外表型成像系统设计方案。植物表型成像系统WIWAM Line产品说明WIWAM Line是一款高通量可重复性表型机器人，用于对小型植物，如小玉米植物研究。该机器人可定期对多种植物参数进行自动化灌溉和并测量多种植物生长参数。WIWAM line代替了很多手工处理，省时省钱，精度较高。WIWAM Line由花盆定位桌面，不同个体线路，底层端口机器人以及1或多个成像或称重/浇水站组成。全套系统可以安装在现有生长室，内置高品质工业部件。植物在各自花盆内生长，预设时间间隔，机器臂提取植物，将其带到成像和称重浇水工作站。机器人将桌面上的线路移到旁边，生成机械臂到定位花盆所需空间，并将其提升脱离桌面。RFID读取装置以及花盆底部的RFID标签，可作为额外花盆识别法，识别和校正桌面上因手工花盆安置造成的错误。通常旁边取景照相机从不同角度获得图像。成像站可安装一系列照相机系统。组合称重/浇水站集成在机器臂上。花盆中植物在浇水时旋转以获得较佳水分布。灌溉精度较高可达+/- 0.1 mL。另外，灌溉可基于自动目标重量计算或固定量。在整个实验过程中，可有效控制土壤湿度水准。集成光温度和湿度传感器可监控温度，详细记录实验生长条件。植物表型成像系统WIWAM Line产品特点1、浇水时花盆旋转以获得水分布2、高精度灌溉(达0.1mL !).3、WIWAM Line 可配置环境传感器4、WIWAM Line 配有直观用户界面5、开放式数据库结构6、可提供全定制系统成像系统优势所有表型平台均为SMO工程部门自主设计、针对课题组的研究项目快速、准确提供技术方案，设备中诸多备件为自主生产和设计；公司软件设计团队针对具体项目提供有针对性的WIWAM定制软件；SMO和VIB自主开发PIPPA 数据管理、视觉成像和分析软件，系统高效处理整个实验设计的大数据；PIPPA 软件可安装在网络服务器上（包括专有用户管理系统），网络中每个计算机均可操作；在PIPPA软件内，可集成整合外来分析数据和文本；易于获取数据库和原始图像数据；与客户自有IT技术设施进行整合；针对客户对表型设备运行环境了解欠缺的事实，提供表型设备生长室、温室建设交钥匙设计方案，实现环境参数如照明、温度、湿度等控制，提供一站式表型研究解决方案；专门技术人员维护设备、定期指导维护硬件；官方代理密切沟通服务、提供支持反馈；自主电路设计、建筑内电柜设计、机械电缆布线以及PLC管理所有室内设施，将工业领域理念灌输到科研中；多篇利用WIWAM系统进行研究的文章发表在期刊如Nature Biotechnology等上面；迅速增长的用户群；采用开放式框架设计，可整合市面上的所以种类成像模块。应用领域遗传资源和序列数据快速积累，但将该信息与基因功能相关联的进程要缓慢的多，这表明植物表型是理解基因 编码过程以及应用该知识改善作物产量的主要瓶颈。众所周知表型工作是最耗劳力和具技术挑战性的部分，成本高且耗时。但该“表型瓶颈”已可通过集成新型图像获取技术、机器人技术、图像分析技术以及数据处理技术解决。WIWAM 植物表型成像系统集成了这些技术，替代了很多人工处理。该植物表型平台可应用到多个研究领域，包括植物生长调节、耐旱研究、植物生理、盐碱或重金属胁迫反应等。也可在不同光照条件，营养水平或土壤类型下，研究化学物影响.产品可选配模块可见光RGB成像模块可见光RGB成像是所有高通量植物表型平台的核心部分，它分辨率高、测量快速、科研中应用较多、发表文章较多，可以捕获与植物生长和发育相关的大量参数。此外，它们可以提供植物形态和结构的测量，并且包含颜色信息。参数如下：叶面积、植物紧实度／紧密度、叶片周长、偏心率、叶圆度、叶宽指数、植物圆直径、凸包面积、植物质心、节间距、生长高度、植物三维最大高度和宽度、相对生长速率、叶倾角、节叶片数量。叶绿素荧光成像模块叶绿素荧光成像属于定制化设计，成像面积范围是从30x30cm到200x200cm，是目前适合大型植物植株成像的荧光成像系统。它可以顶部成像，也可以侧面成像，甚至顶部和侧面都成像；集成到高通量植物表型平台中，进行高通量的光合表型测量。该模块技术参数如下：Fo, FI, Fm, Ft, Fm’, FI’, Fo’, Fv/Fm, φPSII, φRO, NPQ, qN, qP, Rfd, NDVI, RNIR, RChl, RAnth, RRed, RGreen, RBlue, Chl. Index, Ant. Index等。叶绿素荧光成像技术参数群体植物光合长期监测模块实时对植物进行多传感监控：PSII最大和有效效率，光强，辐射，ETR以及植物面积。群体植物光合长期监测传感器是一款自动多传感器，可测量PSII与最大效率(Fv/Fm)、有效效率相关的参数。通过镜像系统，通过内置计算机控制，激光束打到植物上。每5秒钟，激光束不断变化在植物上的位置，每次循环可生成数百个测量点。系统编程测量每个激光点的PSII效率，光强以及辐射。计算参数有PAR光，Fq’/Fm’以及ETR(电子传 递速率)。ETR与CO2吸收相关。植物面积可从含有叶绿素的测量位置数计算出来。传感器上面有2个内置Licor传感器，PAR传感器以及辐射传感器。传感器可集成在知名的LetsGrow系统中以及wiwam系统中。在系统中，可监测来自该传感器的所有数据并与其它环境数据进行对比。 激光点测量参数：最小(Fo或 Fs)以及最大(Fm或Fm)叶绿素荧光信号、CropObserver顶部光强、CropObserver顶部辐射、计算机24/7实时信息、实时Fv/Fm 和Fq /Fm平均值与分布、实时PAR平均值 μmol/s/ m2、实时辐射平均值 /s/ m2、实时ETR平均值与分布、植物面积近红外成像模块近红外成像主要用于观测分析植物的水分状态及其在不同组织间的分布变异，处于良好浇灌状态的植物表现出对近红外光谱的高吸收性，而处于干旱状态的植物则表现出对近红外光谱的高反射性，通过分析软件可以监测分析从干旱胁迫到再浇灌过程中的整个过程动态及植物对干旱胁迫的响应和水分利用效率，并形成假彩图像，可以与植物的形态指数及叶绿素荧光指数进行相关分析研究。近红外成像模块技术参数红外热成像模块红外热成像主要用于成像分析植物在光辐射情况下的二维发热分布，良好的散热可以使植物耐受较长时间的高光辐 射或低水条件（干旱）。红外热成像模块技术参数高光谱成像模块高光谱成像在估测植物各种生化组分的吸收光谱信息及植物生长情况的检测上表现出了强大的优势，主要用于植物 的营养状况、水分含量、长势情况、病虫害情况监测等。高光谱成像模块技术参数激光3D扫描多光谱成像模块激光3D扫描成像能够耐受全日照辐射而不影响测量，在高精度测量三维点云信息的同时，测量400-900 nm范围内4 个波段的多光谱成像，使得我们可以得到植物在X、Y和Z轴上所有坐标点的多光谱信息，通过点云的空间深度信息和角 度信息，可以对光谱信息进行完美的校准，从而获得更加精准的数据。 激光3D扫描多光谱成像模块技术参数根系CT成像模块根系CT成像是植物表型平台的重要组成部分，成功的实现了原位监测植株根系状态，并对直径20cm花盆内自然土 壤中的根系进行扫描和重建。根系CT成像模块技术参数IT解决方案和储存WIWAM软件在高端工业计算机上运行，触摸屏。该软件配有用户友好图形界面，用于控制机器人站行为以及以极高灵活度设计设计实验。可同时运行多组实验，可运行不同随机模式，可及时规划单个植株或一组植株的处理。在预设启动时间，PC机将向工业PLC发送指令，照管机器人移动。所有成像，称重/浇水以及环境数据均可存于SQL数据库，记录后可用于分析记录。系统采用了开放式数据库结构，可以直接获取图像。该平台可以与高性能计算相连，用于分析储存数据或者可与本地服务器设施整合。SMS邮件服务可以通知用户机器报警和错误，可尽快进行用户干涉。系统可于任一点暂停和停下，UPS(不间断电源)可防止数据丢失和确保在停电后全系统恢复。该软件也有平台管理员系统设置和维护行为通道。图像分析和数据可视化WIWAM Conveyor有VIB开发的图像分析和数据可视化软件支持，此软件包，称为PIPPA，是中央网络界面和数据库，一方面用来为不同类型的WIWAM植物表型平台提供管理的工具，另一方面用于分析图像和数据。PIPPA与该平台通讯，通过将PIPPA网络界面生成的实验结果传到平台。每个花盆的处理和基因型信息已在数据库限定以确保在整个实验中的数据一体性。实验期间PIPPA对来自平台的称重，灌溉测量，环境数据，错误记录以及图像信息进行处理分析。PIPPA支持这些图像后续处理(旋转/收获/等)。图像分析文本可以在PIPPA界面初始化，可设置于网络服务器运行(独立版本)或计算机群运行，以快速生成结果。随后，通过检查数据是否在特定阈值之内可在网络几面对输出文本进行验证，例如，是否生长相关性状，如植物枝条面积一段时间内是否增加。北京博普特科技有限公司是比利时WIWAM植物表型成像系统的中国区总代理，全面负责其系列产品在中国市场的推广、销售和售后服务。

仪器简介：植物叶绿素荧光成像一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。还有一种多功能荧光动态显微检测系统，它除具备显微叶绿素荧光成像系统的功能外，还集成了分光光度计SM－9000、PAM荧光测量技术及FL3500双调制荧光测量仪，用于高分辨率快速荧光动态测量和成像。多种激发光源可以激发不同的天线色素，从而分析出那些色素蛋白复合体对光化学荧光淬灭或非光化学荧光淬灭贡献更大。同时还可以对非叶绿素荧光（自发荧光及荧光染料等）动态进行测量分析，超高灵敏度镜头可以在很低的光线下（从而不干扰正常细胞代谢）成像，并且还可以对目前市场上其它镜头捕捉不到的快速过程如QA再氧化、天线联通性及天线大小等进行测量分析。技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）分辨率： mm主要特点：植物叶绿素荧光成像采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。显微植物荧光成像系统可成像单个细胞和亚细胞的荧光。所有的常规荧光参数都可成像，分辨率达mm，可用于研究单个的叶绿体或是类囊体。该系统和配置多种显微镜。

PlantView100植物活体成像系统主要应用于植物活体基因表达分析、植物活体克隆筛选、植物生物节律研究、植物光周期相关研究、植物抗逆性研究、植物病菌害研究、植物生长的连续观察以及基因育种的筛选等。PlantView100植物活体成像系统是新型的植物学研究平台，其将植物学研究从分子水平提升到整体水平，能够反映细胞或基因表达的空间和时间分布，从而了解活体植物体内的相关生物学过程、特异性基因功能和相互作用；其次，在转基因植物研究过程中，可以更早期、更快速、高通量精确筛选目标植株，缩短育种周期；对植物的性状进行跟踪检测、对表型进行直接观测和（定量）分析，具有廉价、灵敏、定量和可重复性的检测特性，节约时间成本，提高实验效率。 产品优势 超大视野，双位相机 最大成像面积可达280mm×280mm， 满足常见植物全株成像的同时， 可实现幼苗、 种子、 果实， 培养皿等样品的批量成像。 特有的双相机模式， 除顶部主相机外还可搭配一台侧位相机， 可实现植物从种子萌发到幼苗自然垂直生长的长时间连续观察。 超灵敏，高品质 采用超高量子效率、 深度制冷科研级CCD相机， 制冷温度低至绝对-100℃， 具备针对微弱荧光或发光的强大捕获能力； 配备全密闭抗干扰暗箱， 避免外界光源及宇宙射线对成像的影响； 搭配OD6高品质滤光片， 结合背景干扰扣除功能， 在快速成像的同时保证超高的灵敏度与成像质量。 多功能 配备植物光照模拟模块，可用于植物生长节律及光周期等实验。 同时具备通用接口，连接多种装置，便于模拟多种特殊实验环境。 还可连接X-Ray成像模块， 紫外或蓝光透射台等， 满足更多实验研究需求。 多光源 荧光光路系统全部采用高功率窄带宽LED，强度更高、光衰更小，环形全局排列具有更均匀的光线输出。且系统最多可配备20种激发光源，10种发射滤光片，满足更多荧光成像需求。 智能软件，专业可靠 人性化的全中文软件可自动控制样品台升降及各种光源强度大小， 预设多种成像模式、 一键快速成像、 多种伪彩及定量单位自由切换、 量化分析功能、 具备国际公认标准单位（p/s/cm2/sr）、 符合GLP原始数据、 操作记录规定、 可直接输出实验报告。 中文软件， 操作简化， 快速上手， 软件终身免费升级。 应用示例菌种筛选（GFP）植物全株基因表达（Luc）蛋白互作（Luc）病毒侵染（Luc）植物防御机制（Luc）叶绿素荧光

PlantScreen SC植物表型成像系统名称：植物表型成像系统 型号：PlantScreen SC 产地：捷克用途：PlantScreen SC植物表型成像系统适用于生长在可控生长因素的环境或温室内的植物，系统可以在时间和空间尺度上自动进行植物表型成像测量。系统配置多种测量植物生长和生理指标的传感器，专用的成像传感器安装在相对封闭的成像室内，保证了成像室内光环境与外界环境相互独立。 PlantScreen SC植物表型成像系统对研究拟南芥、草莓、大豆、马铃薯、玉米幼苗、小麦幼苗等高度小于50cm的中小型植物非常适合。研究对象可以是单株、多株或多孔盘种植的植物，测量时只需将样品放入成像室内，系统根据设定好的程序自动从顶部视角测量，每个样品采用ID编码，保证数据与样品之间正确匹配。 特点： 专业定制，根据用户实验需求量身定制；多重控制平台间相互协调；可选热成像、叶绿素荧光成像、高光谱成像单元；配有照明系统，满足测量需求；单株、多株、多孔盘种植的植物；独特的条形码设别，自动读取样品信息；可选配空气温度、湿度、辐射、光质等环境传感器，测量气象参数；适用于多种类型的研究对象，拟南芥、草莓、马铃薯、水稻、小麦、玉米幼苗等；软件包功能强大，具有系统控制、数据获取、图像分析和数据库功能；软件具备远程访问接入功能； 使用领域： 植物生长营养管理；植物光合性能研究；生物和非生物胁迫研究；突变体筛选；选育、育种； 技术规格：系统主体传送单元手动光适应室LED光源，光强达1000μmol/m2.s，无热效应，强度0－100 %可调，可通过实验程序预设光照周期变化条形码识别RFID读取器辨识，距离2-20cm，RS485通讯，可读取1维、2维和QR码，具LED光源便于弱光下辨识叶绿素荧光成像系统测量和计算的参数Fo, Fm, Fv, Fo’, Fm’, Fv’, Ft, Fv/Fm, Fv’/Fm’, Phi_PSII, NPQ, qN, qP, Rfd等几十个叶绿素荧光参数测量单元高分辨率CCD相机成像面积80cm x 80cm测量光橙色620nm光化学橙色和白色双色光，光强达到2000 μmol.m-2.s-1饱和光白色或蓝色，光强6000μmol.m-2 .s-1附加光远红光（735nm）用于Fo’测量，蓝光（450nm）用于GFP荧光蛋白激发滤波轮7位高光谱成像测量参数归一化指数、简单比值指数、改进的叶绿素吸收反射指数、较优化土壤调整植被指数、绿度指数、改进的叶绿素吸收反射指数、转换类胡萝卜素指数、三角植被指数、ZMI指数、简单比值色素指数、归一化脱镁作用指数、光化学植被反射指数、归一化叶绿素指数、Carter指数、Lichtenthaler指数、SIPI指数、Gitelson-Merzlyak指数波长范围400到2500nmVNIR镜头光谱范围380-1000nm，光圈F/0.2，缝隙宽度25μm，缝隙长度18mm，帧速12－236 fps；SWIR镜头波段900－2500nm，光圈F/0.2，缝隙宽度25μm，缝隙长度18mm，帧速60或100 fps，视野150x100cm成像视角顶视和侧视热成像分辨率640x480nm温度范围20-120°C灵敏度NETD0.05°C@30°C/50mK成像面积150x150cm成像视角顶视和侧视 产地：捷克点将科技-心系点滴，致力将来！ ： (上海) (北京) (昆明) (合肥) Email: (上海) (北京) (昆明) (合肥) 扫描点将科技官方微信，获取更多服务：

仪器简介：植物荧光成像系统一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。用途： 1. 基本型：用于一般叶绿素荧光成像及荧光参数测量研究、Kautsky 诱导效应、 OJIP等 2. 标准型：除上述基本用途外还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率等成像测量 3. GFP＋型：基本型加GFP成像测量（或其它颜色荧光） 4. 光合仪配套型：除上述基本用途外还可以接光合仪配合使用 5. 加强型：可用于QA再氧化动力学、荧光快速诱导等 6. 全能型：除上述基本用途外，还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率、GFP等进行成像测量，此外可以与光合仪配合使用技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）测量区域：直径8cm的圆形 6）光源：持续时间可调，最大到2秒，最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1主要特点：植物荧光成像系统采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。荧光成像原理：卤素灯提供饱和光脉冲，两个发光二极管板提供测量光和持续性光化学光。 封闭式植物荧光成像系统其核心是CCD摄象机，在测量样品的周围装有两个发光二极管板，带快门的卤素灯。 摄象机的焦距为F1.2/2.8-6 mm，每秒抓取50幅分辨率为12bit 或14bit的512x512像素的图象。图像与测量光一起存储，通过USB2.0接口传输。两个发光二极管板激发10-33ms的闪烁光，每个板都有345个橙色发光二极，lmax = 620 nm，也可提供其它颜色。发光二极管板产生连续光，均匀照射在直径8cm的圆形测量区域。250w的卤素灯产生饱和光脉冲，其持续时间可调，最大到2秒，最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1。该系统用PC或笔记本电脑控制。其技术原理在Nedbal L. et al. 2000， Photosynth.Res. 66: 3-12， Nedbal L. and Whitmarsh J. 2002， Chlorophyll fluorescence imaging of leaves. In: Chlorophyll fluorescence: A signature of photosynthesis， eds. Govindjee and Papageorgiou， G.， Kluwer Academic Publishers， in press 有详细介绍。

用途：FC 900-R移动式植物荧光成像系统是一款在野外用于大范围成像的荧光成像系统。具有非常稳定的结构，底部安装有轮子，方便在野外进行移动。大型植物（如玉米，大豆植物）不需要分离或破坏就可以进行测量。摄像机和光板能进行封闭，方便进行控制暗适应和光化光。系统扫描面积为20×20厘米，高度可在20~150cm范围进行调节。如果需要，可以添加摄像头使用真彩分析。 特点：用于野外大面积扫描；扫描面积为20×20厘米；稳定的结构，底部安装有轮子；在粗糙的地面方便移动；配置暗适应柜用于样品的暗适应；高度可在20~150cm范围进行调节；样品不需要分离或破坏。 产地：捷克

WIWAM植物表型成像系统由比利时SMO公司与Ghent大学VIB研究所研制生产，整合了LED植物智能培养、自动化控制系统、叶绿素荧光成像测量分析、植物热成像分析、植物近红外成像分析、植物高光谱分析、植物多光谱分析、植物CT断层扫描分析、自动条码识别管理、RGB真彩3D成像等多项先进技术，以优化的方式实现大量植物样品——从拟南芥、玉米到各种其它植物的全方位生理生态与形态结构成像分析，用于高通量植物表型成像分析测量、植物胁迫响应成像分析测量、植物生长分析测量、生态毒理学研究、性状识别及植物生理生态分析研究等。SMO机械设备制造与设计工程公司是一家将大规模自动化理念和工业级零件和设备整合入植物成像系统的厂家，在机械自动化以及机器视觉成像领域拥有丰富的设计和实践经验，为欧洲客户提供机械设计解决方案，SMO公司将机械领域的先进理念带入了植物表型机器人领域，所采用的配件均为工业界广泛认可的高品质配件，耐受苛刻环境，另外表型设备领域的诸多自动化配件，均由SMO公司自主设计，因公司拥有极为强大的工程师团队，基于工业领域的丰富经验，可针对不同客户需求，一般2-3周就可以提供极复杂表型成像系统的解决方案。目前WIWAM植物表型平台分为WIWAM XY，WIWAM Line以及WIWAM Conveyor3个系列，同时还提供WIWAM Boxing柜式成像系统，也提供野外表型成像系统设计方案。高通量植物表型成像系统WIWAM conveyor产品介绍WIWAM conveyor是一款集成机器人解决方案，用于高通量可重复表型平台，用于大型植物如玉米。该机器人可进行自动灌溉，允许定期对多种植物生长参数测量。WIWAM Conveyor代替了很多手工操作，省时省钱，精度高。该WIWAM机器人传送带网络组成，可将植物传送到1或多台称重浇水站以及成像柜，成像柜中安装有一系列的非损害性照相系统。全套系统可以安装在现有温室，由高品质工业部件构成。典型应用是植物种植在不同各自花盆内。这些花盆在传送带系统上以小车运输。花盆和小车均有少有识别码(分别QR和RFID码)，从其固定生长区域传送到称重和灌溉站以及成像柜，都可对每植株进行个性处理。成像平台是封闭区域，配有适合照像的光照条件，配有旋转平台提升装置，可从观察角度稳定获得图像，聚焦远处感兴趣部分。成像柜可以容纳一系列照相系统，用于非损害性图像获取。称重和灌溉站位置，植物在浇水时旋转，以在花盆获得较佳水分布。灌溉精度较高可达+/-1mL。浇水后，可应用指定容器中准备好的不同溶液。另外，灌溉可以基于对目标重量计算或固定量。这方法可以保证在整个实验中的有效土壤湿度水平。通过集成光、温度和湿度传感器监控环境，详细记录实验生长条件。 该系统的精明之处在于包括1个处理区，系统可以提取和检索所需号码的属于特定基因组或处理的植株。系统用户可进入操作区，可视觉观察植物或手工操作植物，如测量特定植物性扎状，或提取部分植物做分子或化学分析。系统另外一精明特征是可将外部植物装载到系统中，例如生长在另外一间温室或生长箱中的植物，可将其在称重和灌溉站成像和/或处理。高通量植物表型成像系统WIWAM conveyor特点称重和灌溉站位置，植物在浇水时旋转，以在花盆获得较佳水分布。灌溉精度较高可达+/-1mL。浇水后，可应用指定容器中准备好的不同溶液。另外，灌溉可以基于对目标重量计算或固定量。这方法可以保证在整个实验中的有效土壤湿度水平。通过集成光、温度和湿度传感器监控环境，详细记录实验生长条件。该系统的精明之处在于包括1个处理区，系统可以提取和检索所需号码的属于特定基因组或处理的植株。系统用户可进入操作区，可视觉观察植物或手工操作植物，如测量特定植物性扎状，或提取部分植物做分子或化学分析。系统另外一精明特征是可将外部植物装载到系统中，例如生长在另外一间温室或生长箱中的植物，可将其在称重和灌溉站成像和或处理。成像系统优势所有表型平台均为SMO工程部门自主设计、针对课题组的研究项目快速、准确提供技术方案，设备中诸多备件为自主生产和设计；公司软件设计团队针对具体项目提供有针对性的WIWAM定制软件；SMO和VIB自主开发PIPPA 数据管理、视觉成像和分析软件，系统高效处理整个实验设计的大数据；PIPPA 软件可安装在网络服务器上（包括专有用户管理系统），网络中每个计算机均可操作；在PIPPA软件内，可集成整合外来分析数据和文本；易于获取数据库和原始图像数据；与客户自有IT技术设施进行整合；针对客户对表型设备运行环境了解欠缺的事实，提供表型设备生长室、温室建设交钥匙设计方案，实现环境参数如照明、温度、湿度等控制，提供一站式表型研究解决方案；专门技术人员维护设备、定期指导维护硬件；官方代理密切沟通服务、提供支持反馈；自主电路设计、建筑内电柜设计、机械电缆布线以及PLC管理所有室内设施，将工业领域理念灌输到科研中；多篇利用WIWAM系统进行研究的文章发表在期刊如Nature Biotechnology等上面；迅速增长的用户群；采用开放式框架设计，可整合市面上的所以种类成像模块。应用领域遗传资源和序列数据快速积累，但将该信息与基因功能相关联的进程要缓慢的多，这表明植物表型是理解基因 编码过程以及应用该知识改善作物产量的主要瓶颈。众所周知表型工作是最耗劳力和具技术挑战性的部分，成本高且耗时。但该“表型瓶颈”已可通过集成新型图像获取技术、机器人技术、图像分析技术以及数据处理技术解决。WIWAM 植物表型成像系统集成了这些技术，替代了很多人工处理。该植物表型平台可应用到多个研究领域，包括植物生长调节、耐旱研究、植物生理、盐碱或重金属胁迫反应等。也可在不同光照条件，营养水平或土壤类型下，研究化学物影响.产品可选配模块可见光RGB成像模块可见光RGB成像是所有高通量植物表型平台的核心部分，它分辨率高、测量快速、科研中应用较多、发表文章较多，可以捕获与植物生长和发育相关的大量参数。此外，它们可以提供植物形态和结构的测量，并且包含颜色信息。参数如下：叶面积、植物紧实度／紧密度、叶片周长、偏心率、叶圆度、叶宽指数、植物圆直径、凸包面积、植物质心、节间距、生长高度、植物三维最大高度和宽度、相对生长速率、叶倾角、节叶片数量。叶绿素荧光成像模块叶绿素荧光成像属于定制化设计，成像面积范围是从30x30cm到200x200cm，是目前适合大型植物植株成像的荧光成像系统。它可以顶部成像，也可以侧面成像，甚至顶部和侧面都成像；集成到高通量植物表型平台中，进行高通量的光合表型测量。该模块技术参数如下：Fo, FI, Fm, Ft, Fm’, FI’, Fo’, Fv/Fm, φPSII, φRO, NPQ, qN, qP, Rfd, NDVI, RNIR, RChl, RAnth, RRed, RGreen, RBlue, Chl. Index, Ant. Index等。叶绿素荧光成像技术参数群体植物光合长期监测模块实时对植物进行多传感监控：PSII最大和有效效率，光强，辐射，ETR以及植物面积。群体植物光合长期监测传感器是一款自动多传感器，可测量PSII与最大效率(Fv/Fm)、有效效率相关的参数。通过镜像系统，通过内置计算机控制，激光束打到植物上。每5秒钟，激光束不断变化在植物上的位置，每次循环可生成数百个测量点。系统编程测量每个激光点的PSII效率，光强以及辐射。计算参数有PAR光，Fq’/Fm’以及ETR(电子传 递速率)。ETR与CO2吸收相关。植物面积可从含有叶绿素的测量位置数计算出来。传感器上面有2个内置Licor传感器，PAR传感器以及辐射传感器。传感器可集成在知名的LetsGrow系统中以及wiwam系统中。在系统中，可监测来自该传感器的所有数据并与其它环境数据进行对比。 激光点测量参数：最小(Fo或 Fs)以及最大(Fm或Fm)叶绿素荧光信号、CropObserver顶部光强、CropObserver顶部辐射、计算机24/7实时信息、实时Fv/Fm 和Fq /Fm平均值与分布、实时PAR平均值 μmol/s/ m2、实时辐射平均值 /s/ m2、实时ETR平均值与分布、植物面积近红外成像模块近红外成像主要用于观测分析植物的水分状态及其在不同组织间的分布变异，处于良好浇灌状态的植物表现出对近红外光谱的高吸收性，而处于干旱状态的植物则表现出对近红外光谱的高反射性，通过分析软件可以监测分析从干旱胁迫到再浇灌过程中的整个过程动态及植物对干旱胁迫的响应和水分利用效率，并形成假彩图像，可以与植物的形态指数及叶绿素荧光指数进行相关分析研究。近红外成像模块技术参数红外热成像模块红外热成像主要用于成像分析植物在光辐射情况下的二维发热分布，良好的散热可以使植物耐受较长时间的高光辐 射或低水条件（干旱）。红外热成像模块技术参数高光谱成像模块高光谱成像在估测植物各种生化组分的吸收光谱信息及植物生长情况的检测上表现出了强大的优势，主要用于植物 的营养状况、水分含量、长势情况、病虫害情况监测等。高光谱成像模块技术参数激光3D扫描多光谱成像模块激光3D扫描成像能够耐受全日照辐射而不影响测量，在高精度测量三维点云信息的同时，测量400-900 nm范围内4 个波段的多光谱成像，使得我们可以得到植物在X、Y和Z轴上所有坐标点的多光谱信息，通过点云的空间深度信息和角 度信息，可以对光谱信息进行完美的校准，从而获得更加精准的数据。 激光3D扫描多光谱成像模块技术参数根系CT成像模块根系CT成像是植物表型平台的重要组成部分，成功的实现了原位监测植株根系状态，并对直径20cm花盆内自然土 壤中的根系进行扫描和重建。根系CT成像模块技术参数IT解决方案和储存WIWAM软件在高端工业计算机上运行，触摸屏。该软件配有用户友好图形界面，用于控制机器人站行为以及以极高灵活度设计设计实验。可同时运行多组实验，可运行不同随机模式，可及时规划单个植株或一组植株的处理。在预设启动时间，PC机将向工业PLC发送指令，照管机器人移动。所有成像，称重/浇水以及环境数据均可存于SQL数据库，记录后可用于分析记录。系统采用了开放式数据库结构，可以直接获取图像。该平台可以与高性能计算相连，用于分析储存数据或者可与本地服务器设施整合。SMS邮件服务可以通知用户机器报警和错误，可尽快进行用户干涉。系统可于任一点暂停和停下，UPS(不间断电源)可防止数据丢失和确保在停电后全系统恢复。该软件也有平台管理员系统设置和维护行为通道。图像分析和数据可视化WIWAM Conveyor有VIB开发的图像分析和数据可视化软件支持，此软件包，称为PIPPA，是中央网络界面和数据库，一方面用来为不同类型的WIWAM植物表型平台提供管理的工具，另一方面用于分析图像和数据。PIPPA与该平台通讯，通过将PIPPA网络界面生成的实验结果传到平台。每个花盆的处理和基因型信息已在数据库限定以确保在整个实验中的数据一体性。实验期间PIPPA对来自平台的称重，灌溉测量，环境数据，错误记录以及图像信息进行处理分析。PIPPA支持这些图像后续处理(旋转/收获/等)。图像分析文本可以在PIPPA界面初始化，可设置于网络服务器运行(独立版本)或计算机群运行，以快速生成结果。随后，通过检查数据是否在特定阈值之内可在网络几面对输出文本进行验证，例如，是否生长相关性状，如植物枝条面积一段时间内是否增加。北京博普特科技有限公司是比利时WIWAM植物表型成像系统的中国区总代理，全面负责其系列产品在中国市场的推广、销售和售后服务。

Videometer Lab 4是一款新型、功能强大且性价比超高的多光谱表型成像测量系统，通过控制系统就可以进行高分辨率多光谱成像。多光谱成像模块包括可见光成像，UV紫外成像以及NIR成像。可固定摄像头或移动摄像头。因拍照速度迅速，可实现较高通量成像。Videometer Lab 4通过测量样品在19种不同波长的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的彩色图像。Videometer备选模块包括叶绿素荧光成像模块，能够实现叶绿素荧光成像（叶绿素a和叶绿素b）。Videometer Lab 4 同时也可以测量较小的样品，比如拟南芥等小植株、用多孔板培养的植物、多孔板里的叶圆片、植物的种子、药片、肉类、调料等，分析软件功能强大。该系统也可以对细菌等进行高通量成像测量，进行毒理学或其它研究。对于拟南芥等冠层平展的植物，可以进行自动的叶片计数等。Videometer Lab 4 用于种子表型研究，直接测量种子参数如尺寸、颜色、形状等，通过算法分析还可得到如下参数：种子纯度、发芽百分比、发芽率、种子活力、种子健康度、种子病害情况、种子成熟度等。Videometer Lab 4 可选配基于盛料盘的进料系统，用于测量前后自动分发和移动样品。Autofeeder配件与Videometer Lab 4 共同为颗粒样品提供了高通量多光谱分析检测。对于特定谷物或颗粒，样品大小可达100g（基于密度和分辨率），成为一款测量成品以及生产控制用的独特模块。自动进料器使用振动器将颗粒从漏斗均匀分布到传送带上，传送带将颗粒传送到Videometer Lab 4下，然后进入一个收集箱。在采集、分割和分析样本图像后，在测量结束时自动创建摘要报告。根据需求，系统还可以定制分拣机器（如图所示），根据分析结果来筛选颗粒。筛选系统设计用于高价值颗粒的物理分拣，例如去除缺陷颗粒（破碎、未发芽、受感染等）。自动进样模块的振动装置将颗粒均匀地分布在皮带上，形成单层。分割程序提取颗粒，分离接触颗粒，并为样本中的所有颗粒创建blob图像。预测模型根据颜色、形状和纹理特征对颗粒进行分类。测量过程中显示颗粒图像和分析结果。测量结束时自动创建总结报告。如配置分拣机器可直接实现样品颗粒分类放置。产品功能：通过成像，可获取样品的图像，包括单波段的灰度图像和对应的反射率值及sRGB图像，用于不同的形状分析：可用于种子表型研究，直接测量种子参数如尺寸、颜色、形状等，通过算法分析还可得到如下参数：种子纯度、发芽百分比、发芽率、种子活力、种子健康度、种子病害情况、种子成熟度等；可用于种子品种鉴别，例如不同品种的水稻、玉米、小麦等；可用于花朵测量，可分析花径、花瓣面积、花色分级、花朵病斑、花图像提取等；可用于果实测量，可分析果实纵径、果实横径、果实颜色分级、果实数量、果实病斑、果实裂缝、果实图像提取等；可用于植物资源品种鉴别和种质资源研究（形态学结合多光谱信息）、植物疾病（如小孢链格孢属鉴别）研究、植物生理生态发育以及胁迫研究（如对植物进行激素处理后、植物形态学的一些变化）、植物繁育栽培研究、果品和蔬菜品种、品质检测（如草莓、浆果品质特征和成熟阶段研究）；可用于中药、民族药和茶叶等的形态、分类、品质、种植和地道性研究；可用于茶叶分类、鉴别、品质检测与评估等；可用于食品参假鉴定，比如食品原料的选择；可用于昆虫如蚕蛹雌雄鉴别、动物寄生虫检测、进行昆虫的游动测试，自动获取图像；产品特点：积分球提供均匀和弥散光线照明5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析19-20种不同波长/光源6或9.1百万像素/波长提供1.2-3.6亿像素/帧分辨率标准设备包括使用设备校准与传统RGB技术相比具有卓越的彩色测量功能根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时独特LED光源技术稳定性增强前光灯和背光灯组合、备选背光灯相对样品自动移动照明研究应用强大的软件分析多光谱荧光备选颗粒产品自动进料备选分拣机器备选产品技术参数主机技术参数摄像头：顶部，可固定或者移动，6或9.1百万像素，波长提供1.2-3.6亿像素/帧分辨率采用积分球设计，积分球提供均匀和弥散光线照明5-10秒钟内实现光谱成像和定量分析，19-20种不同波长的光源与传统RGB技术相比具有卓越的彩色测量功能光源寿命长，可达10万小时具有19个高功率LED灯源，波段范围从375nm-970nm，集成了RGB成像模块、紫外UV成像模块、叶绿素荧光成像模块、NIR近红外成像模块备选350nm-1700nm，包含30-40个波段图像尺寸：2056 × 2056像素或更高分辨率：～45μm/像素根据应用需求可自动切换动态范围NIST可追溯校准，使用2个反射校准以及几何定标靶。简单校准向导程序，只需3分钟样品尺寸：（台式）高度最高可调定制；落地式可根据用户需求调节设计尺寸，需要对相机镜头进行设置快速无损检测，分析时间：每个样品5-10秒室温，操作：5～40℃，储存：-5～50℃，环境湿度：20～90%RH相对湿度，非冷凝PC要求：最低配置：Intel i7 或更高，16GB RAM， 1THDD，USB3高端端口，千兆以太网软件：Microsoft Windows 7 Professional 64 bit， full windows update可选配颗粒样品自动进样模块、暗场/明场背光、滤波轮（用于荧光），可选配图像处理工具盒（IPT）、光谱成像工具盒（MSI）、斑点工具盒选配进样器技术参数样品容量标准为1.5升（可定制更大的样品尺寸）传送带宽度76nm处理速度每分钟1200cm2传送面积。样品处理量示例：宠物食品吊桶，18分钟内1公斤。玉米粒：6分钟300克。小麦和大麦：10分钟100克适用于不同尺寸和类型颗粒产品，软件自动进料器选项由Videometer Lab Biob Analyzer工具控制，可通过定制的软件插件与外部进样接口

Videometer田间多光谱植物表型测量系统采用了LED频闪光源系统，有效组合了7个波长测量，并生成图谱合一的融合光谱图像，每个像素对应一个不同反射光谱。该设备包括可见光以及NIR近红外波段，用于作物表型、植物病害等等进行精确、全面检测。该便携式Videometer Lite可搭载到推车支架上，在田间使用，也可手持使用，是一款多功能成像平台。田间Videometer多光谱植物表型功能分析系统主要功能结合可见光成像和光谱成像优点对种子、病害表型成像便携设计，方便带到温室或野外使用标准校准功能，数据可重复经验丰富的专家根据应用经验设计的软件，操作简单，解决农业应用中遇到的问题内置颜色校正标配7个光谱波段，并不断升级中产品说明该系统也可以对细菌、真菌、虫卵等进行高通量成像测量，进行毒理学或其它研究，用于食品谷物、作物、肉品等等进行精确、全面品质检测。Videometer系统生成图片可用其它分析系统进行分析，如Matlab等。考虑到Videometer Lite可能需要经常带到温室、野外或其它地方进行测量，因此它被设计成可便携携带的样式。VideometerLab Lite的工作软件由Videometer公司强大的生物信息学和软件团队开发，充分考虑在实际应用的需求，操作简单，功能强大。Videometer还在不断研究、升级新算法，适合各种需求。VideometerLab Lite便携式种子表型多光谱成像系统通过测量种子在7种不同波长（波长范围405-850nm）的LED频闪光下的成像来获取有用的信息。这些图像可以独立分析使用，也可以叠加起来合成高分辨率的颜色图像。基础整合模块，含7个波段多光谱成像系统。软件可进行颜色校准，标签识别，灰度图转换等。田间多光谱表型成像系统应用表型性状分析/挖掘，基因型-表型关联农业育种园艺学、农业信息学果实品质分析植物病理研究生物量分析种子萌发研究抗逆研究直接测量的参数尺寸形状颜色形态纹理光谱质构与表面化学相关的光谱成分计数间接测量或计算种子纯度 发芽百分比发芽率种子活力种子健康度种子成熟度种子寿命等主要特点集成球体提供均匀和弥散光线照明10-15秒钟内实现光谱成像和定量分析7不同波长/光源3百万像素/波长，提供,2100万像素/帧分辨率标准设备包括易于使用设备校准与传统RGB技术相比具有先进的彩色测量功能根据应用需求可自动切换动态范围光源寿命长、可达10万小时LED光源技术稳定性增强研究用强大探索软件易用常规应用配方构建工具（建模）成像特点快速、无损检测包括处理在内每样品处理仅需10-20秒与其它破坏性技术组合 高灵活性测量主要专注：可重复洗、可追溯性、耐用性、可传递性技术参数全套分析时间10-15秒/样品电源：5 V DC 3 A电源功耗300 VA环境温度操作: 5-40℃，储存-5-50℃ 环境湿度20-90 % RH相对湿度，非冷凝软件备选：图像处理工具包 (IPT)光谱成像工具盒 (MSI) 斑点工具盒设备尺寸： 270 mm(h) * 240 mm(w) * 200 mm(d)重量：1.1kg 案例应用 由叶绿素/成熟度区分种子来自英国的科学家研究重点是对高级成像技术进行评估，以对根定植进行真菌检测和精确定量，通过测量光合参数评估对地上部健康的影响。研究中使用了VideometerLab 多光谱成像系统。 图中显示“Take-all”感染小麦幼苗。左侧是原始图像，有红色箭头标示“take-all ”损失，用手工评分；右图是相同图像经‘VideometerLab’分析，将根组织分类为感病(蓝色)和健康(桔色/黄色)。利用Videometer多光谱成像系统对藜麦霜霉病成像藜麦(Chenopodium quinoa)是一种作物，营养丰富，在多个国家广有种植。真菌病如霜霉病限制了谷物产量，培育抗性品系，如抗霜霉病品系是藜麦育种的中心目标。利用常规RGB成像来测量藜麦对霜霉病的表型反应(Peronospora variabilis ) 测量比较困难，原因在于来自不同藜麦基因型在叶片上有不同绿色和红色斑点进行干扰，参见图1和图2。 开发图像分析规程来区分健康藜麦叶片组织以及感染霜霉病的藜麦叶片组织。研究利用Videometer多光谱成像系统对严重度程度表型和孢子形成进行研究。 严重程度是叶片正面损伤的面积占整个叶片面积的百分比。依基因型不同，颜色可为桔色、黄色或红色。孢子形成是损伤部上方孢子量，以百分比测量，通过测量叶片正面进行评估。 图1 叶片正面严重度症状图2 叶片正面孢子形成 多光谱图像分析研究人员利用VideometerLab 4多光谱成像系统进行多光谱成像，积分球确保对样品的均一照明(图3)。每个获取的图像层由19个不同图像波段组成，波长涵盖365nm（UVA）到970nm（NIR）。图像的每个像素分辨率为~41 µ m。每个图像层的分辨率为2192X2192像素。图像分析严重度模型从G9基因型叶片正面(图4)清楚看到了黄化现象(A)，拍摄了RGB图像（常规相机，人眼可见光波段。(B)和(C)显示了多光谱图层中的2个波段，蓝光490nm(B)和黄光570nm(C)。对健康植物组织和黄化界定进行了初始标记，转换建立了模型(D)，通过nCDA（归一化典型判别分析将19个波段信息（图像中多个图层），转换为了整个图层的代表像素范围值。之后切割(E和F)，可用于所有图像-所有品系和基因型，获取有黄化组织（E黄色）百分比定量分析，该特定叶片比例为68.0%，或者包括红色覆盖孢子区(F)，比例为18,9%，黄化（黄色）比例68%，孢子和黄化区综合面积占比75.8%。 图像分析孢子形成在叶片正面（底部），RGB图像中的G9基因型清晰可见到孢子形成图像（下底部A和B放大）。尽管在可见光波段很难检测到单个波段，这里特别标出了蓝光波段（490nm）（C）。进入NIR（780nm）波段（下左部的D和E放大），清晰看见了孢子。使用该信息（仅标识黑灰色孢子）可帮助我们区分切割孢子像素（F），并将该面积定量，该叶片孢子比例为12.5% （黄色显示），不包括黄化部分面积。另外，此处的孢子标识与正面图像分析而言更加保守。 覆盖的非黑灰区的像素部分 (像素比单个孢子要大）估计，孢子比例为~23%（此处未予以显示)。图4(A) sRGB图像。(B)，490nm(蓝光)，(C)，570nm(黄色)，(D) 转换，(E)和(F)，2种类型定量分割。图5(A) sRGB 图像，(B)490nm(蓝光)，(C) 570nm(黄色)，(D)转换，(E)定量分割。 结果图6:133个基因型的平均严重程度（%）分布表1手工以及基于多光谱表型成像的藜麦霜霉病互作

全自动、高通量对大量植株进行成像特别适合植物功能基因组学和植物表型组学遗传育种、突变株筛选、表型筛选的强大工具机器人技术、图像分析和大规模计算能力的完美结合 实验室高通量植物成像系统&mdash &mdash Scanalyzer HTS是一套可以全自动、高通量对大量小植株进行成像的系统，可以选择配置可见光（VIS）成像、近红外（NIR）成像、红外（IR）成像、荧光成像或激光扫描3D成像（只适合高度15 cm以下的小植株）中的一种或多种。成像系统带程控移动装置，可以在X轴和Y轴上进行移动，并配有射频或条形码读取器。Scanalyzer HTS系统通过软件控制摄像头移动到样品上方（多孔板或小盆）进行拍照，照片数据与该样品的电子标记（射频或条形码）一起存储。软件也可控制摄像头对多孔板上的每个孔进行单独成像，每个孔的数据分布存储（告诉软件多孔板类型，然后自动编码，如A01、A02&hellip &hellip ）。（下载演示视频）软件可以控制系统每天自动对样品进行成像，获得样品成像的时间动力学变化。只要点击样品的编码，就可以获得样品的图像及分析数据的时间动力学变化，并可进行复杂的统计学分析和图表分析。系统提供顶部光源和底部光源，并可通过软件控制光强变化。根据测量样品数目的多少，可以选择配置4、24、48或72个多孔板的版本，不同版本的外观尺寸差别很大。如有特殊需要，可以定制更大版本。由于全自动、高通量测量获得的数据非常庞大，本系统必须配置服务器来存储数据。选购PHP远程数据库软件，还可以对系统进行远程原理、控制和分析。主要功能◆ 全自动、高通量对植物等小型样品进行可见光成像、近红外成像、红外成像、荧光成像（包括整株GFP成像）和/或激光扫描3D成像（每套系统可选择一种或多种）◆ 通过可见光成像可以测量植物的结构、宽度、密度、对称性、叶长、叶宽、叶面积、叶角度、叶颜色、叶病斑、种子颜色、种子颜色面积等等50多个参数◆ 通过近红外成像可以分析植物的水分分布状态、水力学研究、胁迫生理学研究等◆ 通过红外成像可以进行植物干旱胁迫研究、蒸腾研究等◆ 通过荧光成像可以分析植物的生理状态◆ 样品可以是培养在多孔板中（如12、24、48、96、384孔板），也可以是长在小花盆中。◆ 高通量测量大量样品，标准配置可选择装4、24、48或72个多孔板的版本◆ 花盆大小范围，直径3.64 ~ 20.51 cm，高2.79 ~ 15.44 cm◆ 可选择成像分辨率，特别适用于96孔板高精度测量◆ 进行动物/昆虫的游动/运动测试时，可自动获取图像应用领域植物功能基因组学、植物表型组学、遗传育种、突变株筛选、植物生理学、农业科学、植物病理学、植物形态建模、植物生物信息学、种子生理学、种子病理学、植物胁迫生理学、植物水力学等研究领域。HTS系统的成像扫描模式多孔板扫描模式整个多孔板像素每个孔的像素每个板扫描1次1 228 80012 800每个板扫描4次4 915 20051 200每个板扫描9次11 059 200115 200每个板扫描16次19 660 800204 800每个板扫描96次117 964 8001 228 800应用实例◆ 整盆拟南芥的GFP成像实验室型高通量植物成像系统Scanalyzer HTS特别适合于拟南芥植株的整株甚至是整盆的GFP成像。软件可以自动过滤掉盆和土壤引起的噪音，把有用的图像抽提出来进行进一步分析。对于不同的GFP，可以定制激发波长。下图是整盆拟南芥的eGFP成像。◆ 通过荧光成像进一步分析植物的生理状态植物的可见光成像更多的是反映植物的表观信息，对生理状态的反映有限。而荧光成像可以较深入的反映到植物的生理状态，如下图中，热水处理部分叶片后，可见光成像看不出有什么区别，而荧光成像则可以反映出受损伤的部位。热水处理部分叶片（红框区域）后的可见光成像原始照片和软件成像热水处理部分叶片（红框区域）后的荧光成像原始照片和软件成像◆ 植物的生长动力学变化高通量Scanalyzer HTS系统特别适合于研究植物的形态学指标和在生长过程中这些指标随时间的动力学变化，如下图就是利用Scanalyzer HTS系统研究的拟南芥植株面积随时间的动力学变化。利用Scanalyzer 3D系统可以研究玉米等大植株整个生活史的动力学曲线，各种形态学指标都可以测量。t = 0 dt = 4 dt = 7 dt = 11 d基于面积的植株生长动力学曲线◆ 利用表型参数的雷达图进行植株分类通过Scanalyzer HTS系统可以获得大量的植物表型参数，利用这些表型参数绘制的雷达图，可作为反映植株形态的&ldquo 指纹图谱&rdquo 。根据这种&ldquo 指纹图谱&rdquo 可以对植株根据表型进行分类，特别适合于数量性状基因座（QTL）研究。下面两个图根据拟南芥的表型雷达图进行的植物分类，对于其它大型的农作物用Scanalyzer 3D系统测量后，也可以获得类似的结果。利用表型参数的雷达图进行植株分类南芥表型参数的静态雷达图（&ldquo 指纹图谱&rdquo ）利用5种参数做的雷达图，分类结果用颜色显示。数据为拟南芥生长到第13天时的结果。更多详细介绍，请点击链接：

LASER系列多功能植物活体成像系统搭载了超高灵敏度深冷背照式相机大光圈镜、RGB荧光光源、IR荧光光源、温控平台、全自动滤光轮，能满足客户多种实验需求的一套高性能植物活体成像分析系统,产品所拍摄的实验也出现在科学期刊杂志，获得了客户的认可。■产品应用相对普通LED的可见荧光，激光尤其红外激光因穿透力较强，背景低，激发效率高的特性可以更好的拍摄活物体内的细胞活动和基因表达，有效地研究观测感染性疾病发生发展过程、植物转基因鉴定，植物突变体筛选，病毒侵染等。