fobi整体荧光成像系统

一、荧光分布成像系统（EEM View）简介 作为荧光分光光度计的配件系统，这是全球首创将相机与荧光分光光度计的完美结合，融合了智能算法的先进技术。能够同时获取样品图像和光谱信息。 新型荧光分布成像系统可安装到日立F-7000/71000荧光分光光度计的样品仓内。入射光经过积分球漫反射后均匀照射到样品，利用荧光光度计标配的荧光检测器可以获得样品荧光光谱，积分球下方的CMOS相机可获得样品图像，并利用独特的AI光谱图像处理算法，可以同时得到反射和荧光成分图像。 二、 荧光分布成像系统特点： 1. 可以全面测定样品的光谱数据（反射光、荧光特性）在不同光源条件下（白光和单色光）拍摄样品图像，（区域：Φ20mm、空间分辨率：0.1 mm左右、波长范围：360-700nm），同时利用先进的光谱算法，分别显示荧光图像和反射图像, 根据图像可获得不同区域的光谱信息（荧光光谱、反射光谱）荧光分布成像系统软件分析（EEM View Analysis）界面(样品：LED电路板)2. 样品安装简单，适用于各种样品测试样品只需摆放到积分球上，安装十分简单！丰富的样品支架支持精确测量的校正工具 荧光分布成像系统是一种全新的技术，将它配置到荧光分光光度计中，改变了常规荧光光度计只能获得样品表面区域平均化信息的现状，可以查看样品图像任意区域的光谱信息，十分适合涂料、材料、油墨、LED、化工等领域。

FOBI小动物活体成像系统/小动物成像 小鼠 植物FOBI 荧光体内成像系统 特点² FOBI系生物成像仪，用于对来自荧光标记的生物体的荧光信号进行成像和分析。² FOBI利用对绿色荧光与近红外线优化的光源及滤光镜来分辨背景与信号&mdash 无须预处理。² 散射LED光源减少了位置变化使结果更为可靠。² 既可以采集高灵敏度的图像也可以生成高分辨率的视频文件。² FOBI的简单设计与程序成就其易于使用与快速获取数据的性能。² 集成麻醉气体进出暗箱的接口，暗箱内动物可持续麻醉成像。 应用肿 瘤● 利用绿荧光蛋白稳定细胞系来获取肿瘤影像。● 凭借亮度测量，FOBI可检测抗肿瘤活性而无需牺牲动物。● 追踪荧光信号，FOBI可判定癌转移的位置与范围。 细胞追踪● FOBI可确认标靶细胞的存活与位置所在--这些标靶细胞因应不同目的而制成。● 利用病毒载体导入荧光基因存在若干问题；干细胞和免疫细胞经荧光染料染色后，可马上用于动物体内检测。 体 外● 在动物体内成像数据的结果可借体外成像再次确认。● 在动物牺牲后，荧光信号可持续显现。通过分离组织可取得标本，从而再定量荧光影像。●上述的体外数据可为实验做很好的数据支撑并增加测试的可靠度。 植 物● FOBI可记录并定量分析植物叶片--由于叶绿素的自发荧光，此功能在同类产品中极难实现！● FOBI的彩色摄影机不仅能记录绿荧光蛋白之绿色荧光，也能摄取红色荧光。因此您也能检测植物的健康状况。● 您能在同一叶片上进行绿荧光蛋白分析也能检测其健康状况。● FOBI能就种子和 (植物伤口)愈合组织成像。● 您可籍FOBI观察植物包含整个生长期与再生期的功能。 分 析● 您可利用NEOimage软件去除荧光背景噪声。此功能将提升定量分析的精确度。 技术规格 图像传感器1/2&rdquo 隔行扫描 SonyICX205140 万像素彩色 CCD 传感器有效像 素1392 x1040,4.65 微米 平方像 素帧率15 幀/ 秒 @ 1392× 1040 pixels 像 素数字输 出2 4 位元接 口标准 US B2.0 高速接 口通 道蓝 (GFP ,FITC&hellip ), 绿 (RFP, Cy2&hellip ), 红(Cy5.5, DiD&hellip )，近红外 (Cy7, ICG&hellip )重量9 kg尺 寸 ( 宽 × 深 × 高)26 0 x260x400 毫 米

红宝石荧光/拉曼标压系统红宝石荧光标压系统的原理是红宝石的R1荧光线在不同压力下，其波长位置会做相应的改变（常温常压下是694.3nm），根据所处的波长位置，可以计算出压力值。该方法的优点是测量速度快，耗材少，测量压力可达100GPa以上。SPL目前有三款标压系统，满足不用应用的需求。整体式标压系统SPL-2000H:激光器、光谱仪和信号收集系统，全部集成在一个仪器里面。后面板有12V电源输入口，USB信号输出口，前面板有激光光源和LED成像光源开关和对应的功率调节旋钮。样品放置在手动调节三轴位移台上，位移台通过地板跟主机连接。操作软件：光谱数据采集和CCD数据采集集成在一个软件界面上，软件具有自动搜寻R1线峰值（也可以手动寻找峰值），并且根据特定的计算公式，得到当前的压力值显示在软件右下角。软件中默认的压力计算公式是：1） 压力P=2.74*（λ-λ0） 当P小于20GPa时 2） 压力P=3.808*{[1+（λ-λ0）/λ0]5-1} 当P大于20GPa时 其中，λ为当前R1线峰值位置，λ0是压力为0时R1线峰值位置，λ0由客户输入软件界面。参数指标类型整体式分体式立式型号SPL-2000HSPL-2000SPL-Micro2000激光器405nm405nm405nm/450nm/532nm压力范围（常温）0~100Gpa0~100Gpa0~100Gpa压力分辨率0.1GPa物镜10X20X10X/20X工作距离34mm29mm29-34mmCCD1/2”CMOS彩色CCD， 2048*1536（300万像素）拉曼功能无可选，785nm激发波长二维扫描无可选，50mm*50mm行程，2um重复定位精度特点完全集成，操作、携带方便主机、光谱仪和激光器使用光纤连接，通用性高，更换器件方便立式结构，利用商用显微镜，可以做荧光标压和拉曼标压，同时也可以作为通用的显微荧光和拉曼光谱测量设备使用

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备，高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内，植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过千兆以太网与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析（quenching）protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）6.具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数： 1.测量光为617nm可调制红光，持续时间10µ s–100µ s可调； 2.双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合， Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s，QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同13×13cm，另外还具备一个顶部双色光源（735nm红外光源和650nm红色光源）用于PAR吸收和NDVI成像测量；高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源，不会因为用大量光强弱的LEDs（比如几百个）造成光源不稳定、寿命短等问题（使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足，会造成系统出错率的提高，任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用）5.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数（选配），每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) QA再氧化动力学（选配）g) GFP等静态荧光成像测量（选配）h) OJIP快速荧光动力学分析（选配）：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网8.成像面积：13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器（选配），可根据需要选配其它滤波器（选配）10.QA再氧化动力学成像分析（选配）：可进行STF荧光动力学分析测量，单周转光闪（STF）光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块（选配）：时间分辨率达1µ s，可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单13.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）15.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）17.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱，内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等，方便暗适应操作，样品平台36x30cm，高度7级可调，样品（整株植物）最大高度可达12cm 20.给光制式：静态或动态21.Bios：固件可升级22.尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量：Appr. 40 kg 24.电源输入：Appr. 1100 W 25.供电电压：90–240 V 配置组成：1.主机系统，包括暗适应操作箱，内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地：欧洲 附：其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统：可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统：成像面积3.5x3.5cm，具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架，可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统：为便携式荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统：LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统，是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统，成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统：为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统：模块式，具备高度可扩展性，可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析，镜头高度可调，成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统：成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统：多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析，可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析，还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统：大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上，方便移动，成像平台可上下移动，成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统：大型成像平台可在100－500cm的支架上对样带进行扫瞄成像，标配扫瞄区域长度为400cm，成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄，可选配RGB真彩扫瞄成像，从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统：属多激发光、多光谱荧光成像系统，不仅可对叶绿素荧光进行成像分析，还可对UV紫外光激发F440（蓝色荧光）、F520（绿色荧光）、F690（红色荧光）和F740（红外荧光）进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性，有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统：是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版，可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析，以分析检测植物的功能表型和形态表型，自动扫瞄范围为60x129cm，定位定时并得到4维（XYZ三维位置信息和时间信息）测量数据

设备名：一体化全电动荧光显微成像系统产品简介：• 无需暗室、节省空间• 批量分析大量图像• 操作简单，新手也能拍摄出清晰的图像• 集观察分析于一身，在超短的时间内实现高精细的观察和精确的分析• All-in-One无需暗室的一体化全电动荧光显微成像系统 产品特性1、无需暗室、节省空间在明亮的房间里也能实现鲜明的荧光观察。可以安装在实验室的各个位置。 2、电动型，操作便捷标配先进的全电动控制系统。通过优化的界面，可快速掌握操作方法。只需一键点击，即可拍摄出没有“荧光模糊”的高精细图像。不需要特殊技术和大规模系统。 使用载物台视图可瞬间抵达观察位置 仅需点击各种载物台所对应的映射图像 载物台连动，瞬间移动至点击位置 不会“淬灭”的电动快门 无荧光淬灭减轻模式 有荧光淬灭减轻模式 3、超过一般荧光显微镜的高拓展性超越荧光显微镜的范畴，可满足共聚焦显微镜、切片扫描仪、活细胞工作站、高内涵等需求。 4、“光学切片”技术以轻松操作获得没有荧光模糊的清晰图像，直逼共聚焦显微镜的高清图像 5、活细胞成像可以搭载适用于多孔培养板的温度及CO2控制培养室，用于维持细胞活性，进行长时间的延时拍摄。以预先设定的时间间隔，按时间顺序拍摄明场、荧光、相差图像。 6、图像拼接只需简单的操作，即可高速连续拍摄大量图像。最大可拼接 50000×50000 pixel 的图像。“想用一张图像包含整体，但是又需要高倍率的高分辨率图像。”通过使用超高分辨率图像拼接，可以同时实现这两个相悖的需求。 7、图像细胞分析全自动孔板拍摄，既可以只扫描选择的视野、微孔，也可以随机确定拍摄位置。与拍摄时相同，根据图像设定分析条件，即可自动分析数量庞大的图像。 应用事例心脏 切片拍摄图像 人 iPS 细胞衍生的神经细胞All-in-One无需暗室一体化全电动荧光显微成像系统，功能强大，在医学与生命科学等领域应用广泛。斑马鱼（北京）科技有限公司，为您提供仪器的参数、价格、选型、技术原理等信息，更多信息可留言或电话咨询，我们将竭诚为您服务。

ABM 自动生物荧光成像系统 ABM（Automatic biological microscope)是韩国Nanoscope Systems 开发的一种全自动荧光显微镜，以传统倒置显微镜构造。 通过目镜可以进行视觉观察，并且通过将摄像机安装在侧面端口上，可以通过监视器显示并保存所有观察图像。 自动样品台，自动聚焦和自动转塔数字控制系统可实现对自动显微镜图像数据采集的高效管理。 Features & Benefits（性能及优势）： 卓越的图像质量ABM具有精选和优化的光学组件，高灵敏度检测器和高性能的电脑组件确保出色的图片质量。 紧凑模块尺寸通过简单直观的软件控制界面，即使是初学者也可以简单地操作系统简单操作软件通过专用软件简单直观的用户界面控制共聚焦显微镜 性价比通过自有技术以及丰富的设计经验使得我们可以为客户提供高性价比的产品 完全可定制的模块光学团队、电子团队和机械师团队随时为您提供每一个可定制的光学方案。我们很乐意支持每位客户的第一阶段研究和原型设计提供支持Software（软件）：ABM控制测量软件拥有Auto Focus , Video , Automatic Well Plate Scanning ，Time lapse , SNAP（2D 荧光图像测量），Stitching(图像拼接）， Z STACK（3D 荧光图像构建）多种功能。SNAP 拥有single point SNAP 和Multi point SNAP可供选择, Z STACK有三种测量方法可供选择：Top/bottom, Center/Range, Upper/Lower Reconstructed 3D image of cell nuclei and cytoplasm by 3D deconvolution algorithmAutomated Well Plate Scanning（自动孔板扫描）进行Well Plate 扫描时，需预先选择标准Well Plate的类型，根据所选的Well Plate类型软件会自动生成每一个Well Plate孔的坐标，点击每一个坐标，物镜将会自动移动到对应孔的位置。Stitching（拼接）：对设定的区域执行Stitching, 为样品的大范围成像提供了便利。 用户可对Stitching后的图像进行整体分析。 Stitched image of a single well

荧光标记成像系统，用以成像并分析来自荧光标记生物的荧光信号。● FOBI利用对绿荧光与近红外线特别优化的光源及滤光镜来分辨背景与信号--无须预前处理。● 扩散LED灯能减低亮度及温度变动让结果更加可靠。● 并非仅拾取高感度 (单张静态)影像，FOBI也能摄录 (连续动态)影片。● FOBI的简单设计与程序成就其易于使用与快速获取数据的性能。产品的主要优势简单－体积小巧 (240×240×400mm)，只需连接USB线至PC。方便－比数字相机更方便使用。每个过程稍一点按即可完成。快速－荧光信号侦测，实时成像。强势－去除背景噪音，可定量分析荧光强度。经济－高性价比。肿瘤成像● 利用绿荧光蛋白稳定细胞系来获取肿瘤影像。● 凭借亮度测量，FOBI可检测抗肿瘤活性而无需牺牲动物。● 追踪荧光信号，FOBI可判定癌转移的位置与范围。 细胞追踪● FOBI可确认标靶细胞的存活与位置所在--这些标靶细胞因应不同目的而制成。● 利用病毒载体导入荧光基因存在若干问题；干细胞和免疫细胞经荧光染料染色后，可马上用于动物体内检测。 体外实验● 在动物体内成像数据的结果可借体外成像再次确认。● 在动物牺牲后，荧光信号可持续显现。通过分离组织可取得标本，从而再定量荧光影像。●上述的体外数据可为实验做很好的数据支撑并增加测试的可靠度。 植物成像● FOBI可记录并定量分析植物叶片--由于叶绿素的自发荧光，此功能在同类产品中极难实现！● FOBI的彩色摄影机不仅能记录绿荧光蛋白之绿色荧光，也能摄取红色荧光。因此您也能检测植物的健康状况。● 您能在同一叶片上进行绿荧光蛋白分析也能检测其健康状况。● FOBI能就种子和 (植物伤口)愈合组织成像。● 您可籍FOBI观察植物包含整个生长期与再生期的功能。分 析● 您可利用NEOimage软件去除荧光背景噪声。此功能将提升定量分析的精确度。 请关注玉研仪器的更多相关产品。如对产品细节和价格感兴趣，敬请来电咨询！

近红外二区小动物活体成像系统 MARS 拥有完整的小动物活体光学成像系统，并可个性化定制，满足不同需求。 MARS的近红外二区相机采用Teledyne Princeton Instruments 的NIRvana系列，其出色的量子效率与先进的噪声抑制技术为高品质成像提供保证。 FAST与Pathfinder两套定制的光学方案能实现不同场景的实验需求，从大视场下对小鼠的整体拍摄，到局部的微观分析，我们独特的光学解决方案在保证空间分辨率的前提下，为您提供优异的光通量与信号强度。 MARS系统采用别具匠心的整体设计，开放的用户界面带来独特的便捷性与灵活性。模块化的设计可以方便用户扩展功能，并可整合超声，光声，CT断层扫描，荧光寿命，PET-CT，MRI等成像系统，提供无缝多模态成像解决方案。 小鼠血管荧光成像， 使用水溶性D-A-D小分子染料（QY≈1.2%）

基恩士 一体化荧光显微成像系统 BZ-X系列 产品外观 产品特性1、以轻松操作获得没有荧光模糊的清晰图像光学切片只需一键点击，即可拍摄出没有“荧光模糊”的高精细图像。不需要特殊技术和大规模系统。BZ-X800LE 特有的光学切片技术使用基于“电气投影元件”的结构化照明（Structured Illumination），向各用户提供极其清晰的图像。 2、高速拍摄超高分辨率的大视野图像图像拼接通过轻松的操作，以基恩士以往机型7倍*的拍摄速度连续拍摄大量图像。可拼接 50000×50000 pixel 的图像。“想以 1 张图像包含整体，但是又需要高倍率的高分辨率图像。”通过使用超高分辨率图像拼接，能让这两个相反的需求得以实现。*与本公司BZ-9000 系列产品的比较3、图像细胞分析使拍摄和分析的吞吐量得到大幅提升在选择1 点设定拍摄条件后，瞬间即可应用到孔内的整个视野。并将范围扩大到培养板内的其他微孔，以同一条件扫描全孔。既可以只扫描各种视野、微孔，也可以随机确定拍摄位置。因为条件统一，不仅拍摄的重复精度高，而且只需 3 步即可完成各种设定，不用从头至尾守在显微镜旁。 4、图像细胞分析功能以高精细图像准确地进行大量的分析与拍摄时相同，只需给 1 张图像设定分析条件，即可自动分析数量庞大的图像。不仅能缩短操作时间；而且以相同的分析条件，加之一体化显微成像系统高分辨率图像，从而实现更准确的观察分析。 BZ 系列应用事例 心脏 切片拍摄图像 人 iPS 细胞衍生的神经细胞 基恩士 一体化荧光显微成像系统 BZ-X系列，在医学与生命科学等领域应用广泛。如果想了解更多信息可留言或电话咨询，我们将竭诚为您服务。

专业□ 相机具有极高的灵敏度和时间分辨率， 用于叶绿素荧光 瞬时表达检测□ 系统采用大功率脉冲式LED光源，保证样品在强激发光下受光均匀□ 系统配备近红外和红外光源，可测量叶片吸光系数(Abs)，计算光合作用光系统 II(PSII)电子传递速率集成□ 系统高度集成化，满足常足植物全株、叶 片、果实、藻类等多种样本的荧光成像□ 高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像，系统功能涵盖从单细胞到生态学，应用广泛智能□ 一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数□ 全自动智能仪器控制，轻松上手，快速成像□ 可预设多种实验方案，模块化设计，流程式操作灵活□ 光源与样品的固定测量距离为170mm，相机和光源可沿Z轴自动升降，测量不同高度、大小的植物□ 测量的植株最高可达400mm智能软件□ 可测量Fo, Fo’, Fm, Fm’, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, qN, qP，ETR等多个叶绿素荧光参数□ 专用数据分析软件，智能中英文双语模式自由切换□ 用户可自定义设置程序，数据结果自动存储并分析□ 自带GLP协议，可对实验数据记录、追踪、溯源, 安全可靠，为您的数 据保驾护航□ 多用户登录功能，可对不同的实验室人员进行权限管理，确保实验数据的安全

荧光成像冷CCD相机 TCH-1.4ICE & TCH-1.4CICE良好的制冷技术 TCH-1.4ICE和TCH-1.4CICE属于图森专业相机H系列，前者为黑白制冷CCD相机，后者为彩色制冷CCD相机。它们使用了SONY公司经典的高品质CCD芯片ICX285，同时半导体制冷技术将CCD温度降低至零下10摄氏度。在此低温下，CCD可进行长达1小时的曝光而不影响成像质量。TCH-1.4ICE/TCH-1.4CICE相机作为图森多年来精密制造工艺技术的完美结晶，为您进行荧光、化学发光等微弱光成像提供了卓越的品质保证。 TCH-1.4ICE和TCH-1.4CICE应用了图森最新的制冷工艺技术，即在数十分钟长时间曝光进行拍摄时，可以将传感器表面的温度降低至-10℃，使得暗电流噪声降低至忽略不计的水平，为您进行微弱光成像提供更全面的保障。 单个像素点达6.45微米X 6.45微米 TCH-1.4ICE和TCH-1.4CICE冷CCD相机分别搭载了SONY公司的专业CCD图像传感器ICX285AL与ICX285AQ，芯片感光面积的对角线长度为2/3英寸，单个像素点尺寸达6.45微米X 6.45微米。极大的像元面积也显著提高了各像素点的蓄光能力，提供了相当高的饱和输出电压信号。 优异的光电转换效率 TCH-1.4ICE和TCH-1.4CICE拥有很高的量子效率水平，其峰值达65%，这带来优异的灵敏度表现，可以捕获到极微弱的光源信号。TCH-1.4ICE与TCH-1.4CICE非常适合对于荧光、化学发光等微弱光成像应用。 TCH-1.4ICETCH-1.4CICE图像传感器型号Sony ICX285AL Sony ICX285AQ 彩色/黑白黑白彩色CCD/CMOS 尺寸2/3"2/3"像素大小(&mu m)6.45× 6.456.45× 6.45有效像素141万141万最大分辨率 (H× V)1360× 10241360× 1024扫描模式逐行扫描逐行扫描快门模式电子快门电子快门帧频13fps(1360 × 1024 全分辨率)13fps(1360 × 1024 全分辨率) 15fps (680 × 520，2 × 2Bin) 15fps (680 × 520，2 × 2Bin) 彩色深度&mdash 36bit模数转换12 bit12 bit曝光控制自动/手动自动/手动曝光范围0.1ms-60min.0.1ms-60min.白平衡控制自动/手动自动/手动动态范围67dB66dB工作温度0-60℃0-60℃工作湿度45%-85%45%-85%贮存温度-20-70℃-20-70℃制冷方式半导体制冷半导体制冷制冷温度-10℃-10℃操作系统支持Windows / Linux / MacWindows / Linux / Mac光学接口C接口C接口数据接口USB2.0/480Mb/sUSB2.0/480Mb/s公 司：福州鑫图光电有限公司地址：福州市仓山区盖山镇齐安路756号财茂城主楼6F邮编：350008电话: 传真: 中文网站：国际网站：一、 技术简介活体生物荧光成像技术是近年来发展起来的一项分子、基因表达的分析检测系统。它由敏感的CCD及其分析软件和作为报告子的荧光素酶以及荧光素组成。利用灵敏的检测方法，让研究人员能够直接监控活体生物体内肿瘤的生长及转移、感染性疾病发展过程、特定基因的表达等生物学过程。传统的动物实验方法需要在不同的时间点宰杀实验动物以获得数据，得到多个时间点的实验结果。相比之下，可见光体内成像通过对同一组实验对象在不同时间点进行记录，跟踪同一观察目标（标记细胞及基因）的移动及变化，所得的数据更加真实可信。因其操作极其简单、所得结果直观、灵敏度高等特点，在刚刚发展起来的几年时间内，已广泛应用于生命科学、医学研究及药物开发等方面。二、原理活体生物荧光成像技术是指在小的哺乳动物体内利用报告基因-荧光素酶基因表达所产生的荧光素酶蛋白与其小分子底物荧光素在氧、Mg2+离子存在的条件下消耗ATP发生氧化反应，将部分化学能转变为可见光能释放。然后在体外利用敏感的CCD设备形成图像。荧光素酶基因可以被插入多种基因的启动子（promoter），成为某种基因的报告基因，通过监测报告基因从而实现对目标基因的监测。生物荧光实质是一种化学荧光，萤火虫荧光素酶在氧化其特有底物荧光素的过程中可以释放波长广泛的可见光光子，其平均波长为560nm（460～630nm），这其中包括重要的波长超过600nm的红光成分。在哺乳动物体内血红蛋白是吸收可见光的主要成分，能吸收中蓝绿光波段的大部分可见光；水和脂质主要吸收红外线，但其均对波长为590～800nm的红光至近红外线吸收能力较差，因此波长超过600nm的红光虽然有部分散射消耗但大部分可以穿透哺乳动物组织被敏感的CCD camera检测到。三、操作方法荧光标记的选择 活体生物荧光成像主要有三种标记方法：荧光蛋白标记、荧光染料标记和量子点标记。荧光蛋白适用于标记肿瘤细胞、病毒、基因等。通常使用的是GFP、EGFP、RFP（DsRed）等。荧光染料标记和体外标记方法相同，常用的有Cy3、Cy5、Cy5.5及Cy7，可以标记抗体、多肽、小分子药物等。量子点标记作为一种新的标记方法，是有机荧光染料的发射光强的20倍，稳定性强100倍以上，具有荧光发光光谱较窄、量子产率高、不易漂白、激发光谱宽、颜色可调，并且光化学稳定性高，不易分解等诸多优点。量子点是一种能发射荧光的半导体纳米微晶体，尺寸在100nm以下，它可以经受反复多次激发，而不像有机荧光染料那样容易发生荧光淬灭。 但是不同荧光波长的组织穿透力不同，如图1所示，各种波长的光对小鼠各种器官的透过率，都在波长600nm时显著增加。而如图2所示，在650nm-900nm的近红外区间，血红蛋白、脂肪和水对这些波长的光的吸收都保持在一个比较低的水平。因而，选择激发和发射光谱位于650nm-900nm的近红外荧光标记（或至少发射光谱位于该区间），更有利于活体光学成像，特别是深层组织的荧光成像。（推荐文献： Nature Method, 2005, 2: 12 如何选择合适的荧光蛋白； Science, 2009, 324: 804 钱永建教授研究成果-近红外荧光蛋白，非常适合活体生物荧光成像）。 活体生物荧光成像CCD的选择 选择适当的CCD镜头，对于体内可见光成像是非常重要的。如何选择活体荧光性价比最高的CCD呢？CCD有一些重要的参数： 1) CCD像素。CCD像素决定成像的图片质量，像素越高，成像质量越好。由于荧光背景光较强，产生非特异性杂光干扰明显，需要配有高分辨率CCD的相机。 2) 前照式还是背照式CCD。一般而言，背照式CCD具有更高的量子效率，但是只有在检测极弱光信号优势明显（如活体生物发光成像），但在强光检测中与前照式CCD无本质差别，还更容易光饱和，并且其成本较高的弱势使其不属于荧光检测常规要素。 3) CCD温度。制冷CCD分为两种：恒定低温制冷CCD和相对低温制冷CCD。恒定低温制冷CCD拥有稳定的背景，可以进行背景扣除；而相对低温制冷CCD由于背景不稳定，一般不能进行有效的背景扣除。CCD制冷温度越低，产生的暗电流越小，如图3所示，当制冷温度达到-29℃时，产生的暗电流已经低至0.03e/pixel/s。由于仪器自身产生的噪音主要由暗电流热噪音和CCD读取噪音组成，而目前CCD读取噪音最低只能降至2e rms；因而更低温度的CCD并不能明显的降低背景噪音，而成本却极大提高。 4) CCD读取噪音和暗电流。CCD读取噪音和暗电流热噪音是成像系统产生背景噪音的主要因素，但是在荧光成像中，最主要的背景噪音却是来自于荧光背景光。荧光成像信噪比的改善主要依赖于荧光背景光的有效控制和背景扣除技术（图4）。 &lsquo 自发荧光的干扰 在活体荧光成像中，动物自发荧光一直困扰着科研工作者。在拥有激发光多光谱分析功能的活体成像系统出现以前，科学家们被迫采取各种方法来减少动物自发荧光，比如：采用无荧光素鼠粮饲养小鼠、使用裸鼠等。现在，拥有激发光多光谱分析功能的活体成像系统，能够轻松进行荧光信号的拆分，如图5，食物、膀胱、毛发和皮肤的自发荧光能够被有效的区分和剥离。激发光多光谱分析也可用于多重荧光标记检测，实现一鼠多标记，降低实验成本，并有效提高数据的可比性。 荧光信号的准确定位 如图6所示，如果信号和靶标100%重合，这是科学家所追求的；但是，如果信号并不和靶标重合，而又误以为正确定位时，这是科学的噩梦。也许，一个错误定位的信号，比没有信号更加糟糕！ 而同时拥有结构成像（如X光、MRI）和功能成像功能（如荧光、发光、同位素）的多功能活体成像系统，则让您摆脱困境，准确定位荧光信号。如图7所示，小鼠的X成像经过胃肠造影，可清晰地获得胃肠的形状和位置，将荧光信号和X光叠加，荧光和胃肠重合，可准确判定荧光定位在胃肠。 四、应用在肿瘤方面的应用它可以快速的测量各种癌症模型中肿瘤的生长，并可对癌症治疗中癌细胞的变化进行实时观测评估；可以无创伤地定量检测小鼠整体的原位瘤、转移瘤及自发瘤。如Hollingshead等利用人类胶质瘤细胞系U251构建U251-HRE细胞，其中的荧光素酶基因表达受可诱导启动子的操控，低氧状态为其诱导条件，因此在细胞处于低氧状态下荧光素酶基因开始表达。将此肿瘤细胞sc于裸鼠体内，肿瘤增殖早期并无明显荧光素酶表达，当肿瘤达到了300～500mg时，局部组织出现低氧状态，此时可监测到荧光素酶显著表达。这种方法不仅仅监测肿瘤本身，更重要的是可以监测肿瘤细胞所处的微环境。在监测感染和炎症方面的应用荧光素酶基因标记病毒和细菌，利用活体生物荧光成像技术可以检测到，并能连续观察其对机体的侵染过程以及抗病毒药物和抗生素对其病理过程的影响。如Contag et等用细菌荧光素酶标靶沙门菌，并用活体生物荧光成像追踪细菌感染。活体生物荧光成像技术和细胞示踪活体生物荧光成像技术还可应用到免疫细胞、干细胞、细胞凋亡等研究领域。如Costa等通过活体生物荧光成像可以追踪到T淋巴细胞聚集于中枢神经系统。 五、前景活体生物荧光成像技术让研究人员能够观察活体动物体内的基因表达和细胞活动，是将分子及细胞生物学技术从体外研究发展到活体动物体内的强有力手段，正在被越来越广泛地应用于医学及生物学研究领域。由于其检测灵敏度极高，且操作简单，费用相对低廉，因此在生物科学研究领域有着广阔的应用空间。 除非注明，图森文章均为原创，转载请以链接形式标明本文地址　　本文地址：

一种超多标组织成像分析整体解决方案获取空间生物标记物网络信息超多标组织成像分析整体解决方案 Cell DIVE使用超多标组织成像分析整体解决方案加深您对组织微环境的理解癌症十分复杂。 免疫疗法虽然很有发展前景，但目前有效性仍只有 30%。研究人员需要更深入地了解正常组织和病变组织的细胞结构，以开发更好的治疗方法，更准确地预测疾病进展。多标或者超多标成像是清晰地观察、识别和量化重要生物标志物的最新技术。 研究层面从回答“是否为癌症？”的问题到能够根据细胞类型、生物标志物特点和个体特征将肿瘤分层。了解用于空间生物标志物分析的 Cell DIVE 超多标组织成像分析整体解决方案只需一个组织切片就可以提供上千个数据点，解析度达到单个细胞水平。可定制： 完全按照您的需求设计和配置实验精确： 收集对您有价值的数据，让您获得可靠的结果经验证： 多年的丰富经验加上三项经过测试和改进的技术汇聚成一个整体解决方案我们如何提供揭示重要的蛋白质生物标志物可靠且可重复的结果自动化成像系统，专为精确、快速和灵敏度高的分析而设计，让您获得可靠的结果在我们大量的经过验证的抗体列表的使用下，您可以根据您的需要设计自己的实验方案，灵活地进行染色和成像反复进行标记、成像和脱色，仅从一个组织切片就获得上千个空间细胞数据点确信我们的温和方案不会损害您的组织样本 — 无需剥离抗体或采取复杂的样本制备步骤与常规能够分析 6 到 8 个生物标志物的多标成像工具相比，超多标免疫荧光成像可以在一个样本中揭示多达 60 个生物标志物背后的科学家团队历经十多年的探索和开发，服务于当前的科学家们Cell DIVE 超多标组织成像分析整体解决方案经过 10 多年严格的研究、测试和验证。我们的科学方案、算法和方法学在美国开发与设计，并在国际合作中进行评估，久经验证，让您可以充分信赖实验结果。水晶般清晰的全组织成像 Cell DIVE可提供出色的微环境内单个细胞的空间映射，帮助研究人员加深对组织微环境的理解。获得经过自动校准和修正的全组织成像，解析度达到单个细胞水平，可供下游作质量分析。

小动物低温荧光断层扫描成像系统适用于各种研究领域：药物传递、神经生物学、癌症生物学、免疫学、纳米医学等领域研究。可以对细胞簇、孤立器官甚至整个动物进行高分辨率可视化。整体动物连续切片且实时荧光成像也是全球首台，它基于带有现成荧光成像、重建和分析的连续切片，可从 2D 图像提供全面的 3D 荧光和 3D 解剖图像。其他常用的成像方式只能聚焦于亚细胞结构或生成全身或特定区域的低分辨率图像。除了生成 3D 图像外，还可以进行选择性地识别和转移高价值样本切片以进行额外的组织学和成像。弥补MRI和CT的分辨率不足，更好的确定肿瘤位置和大小。冷冻成像的过程中，成像的信噪比会大幅度降低，成像质量和分辨率会大大提升，对于荧光探针的示踪可以做一个很好的补充。特点：1. 整体动物连续切片2. 整体动物3D成像及体内器官成像3. 荧光探针体内定位及定量分析4. 肿瘤位置和大小定位

产品介绍：化学发光成像系统可帮助您轻松进行化学发光和荧光成像以及分析免疫印迹。高分辨率高灵敏度制冷CCD相机配合自主研发软件轻松实现自动对焦、自动判定曝光时间、一键成像等功能。帮助您快速生成高品质的图像数据。应用场景：核酸检测各种荧光染料，如Ethidium bromide, SYBRTMGold, SYBRTMGreen, SYBRTMSafe, GelStarTM, Fluorescein, Texas Red标记的DNA/RNA检测；蛋白检测考马斯亮蓝胶，银染胶，以及荧光染料如SyproTMRed, SyproTMOrange, Pro-Q Diamond, Deep Purple&trade 标记胶/膜/芯片等；化学发光检测Western Lightning, ECL, ECL plus, CDP Star, SuperSignal, CSPD, LumiGlo等发光底物；荧光检测用于红绿蓝激发光源进行激发的荧光探针成像；其他应用各种杂交膜，蛋白转印膜，培养皿菌落计数，酶标板，点杂交，蛋白芯片，TLC板等；产品特点：全自动控制：变焦、聚焦等操作，无需手动调整，避免交叉干扰；样品位置多层设计，满足不同种类样品的曝光实验；样品托盘采用模块化设计更换方便，具有紫外/免染样品托盘、白光样品托盘、蓝光样品托盘可选；主机13.3 英寸触摸屏可显示及实时操作功能工作状态；内置红外感应系统，自动识别样品放置状态；LED白光光源，能量 0-100%可调，用于照明以及考马斯亮蓝或银染色的蛋白胶成像分析；采用高速USB3.0接口完成对相机、光源、紫外台等所有硬件的控制、数字图像采集；一体式触摸屏操作系统。软件功能：制冷CCD相机温度实时显示；数据库成像图片管理系统；软件定量测算功能；一键曝光的功能；多程序曝光：单/多帧曝光、连续曝光、叠加曝光；多屏同框对比；自动叠加Marker；技术参数：一体式化学发光成像系统一体式凝胶化学发光成像系统一体式多色荧光成像显影系统型号EPC E660EPC E760EPC E860相机进口高分辨率高灵敏度制冷CCD相机传感器大小：12.49×9.99mm像素尺寸：≥4.54μm×4.54μm读出燥声: 5.5e- RMS at 12 MHz暗电流: 0.0005 e-/pixel/sec. @ -20º C暗电流: 0.0005 e-/pixel/sec. @ -40º C动态范围: ﹥4.6OD物理分辨率：605万像素，2750*2200物理分辨率：890万像素，3354*2658像素密度： 16bit(真实65536灰阶)量子效率： 78%制冷：三级半导体热电式(TEC)致冷, 常温以下-65℃单一USB3.0线完成图像传输及控制镜头4/3英寸大靶面25mm F0.8镜头软件控制实现自动聚焦与光圈控制操作暗箱全封闭操作暗箱全开式门，三层平移式样品托盘, 满足用户的多类型样品需求辅助光源顶照式LED矩阵光源LED反射灯*2LED光可调节操作台荧光光源：302nm、470nm、530nm、630nm、660nm、770nm可选成像面积：200*180成像面积220*250紫外光源：302nm紫外激发光源：200*200滤镜系统标配6位置自动滤镜系统标配590nm，460nm、525nm、690nm、715nm、810nm超多层镀膜滤镜可选样品台化学发光样品台：三层化学发光载样台，可直接进行加样，无需拆卸下来，满足客户不同要求紫外样品台： 高透光率，自带冷风系统，最大显影面积：220×270mm蓝光样品台：亮度可调 最大显影面积220×270nm可见光样品台：高亮度LED白光透射，最大显影面积：220×270mm操作系统屏幕尺寸13.3寸存储512G系统win 10WIFI模块分辨率 1920*1080

激光共焦多维荧光成像系统： FLIM / FCS 时间分辨的空间分辨显微系统： ISS 推出新一代的快速荧光寿命成像系统FLIM/PLIM。成像速度可达 20 fps （@256×256），自由选择1×1到4096×4096像元分辨率；同时获取荧光寿命成像和共焦强度成像数据，保持单分子级的检测灵敏度。 用于化学、纳米、能源、生物等学科方向，单分子、活细胞、微区成像及形貌、能级结构和能量传递特征的机理研究。满足上转换量子点及相关材料的寿命成像测试。。 ISS以整机的荧光寿命成像系统为己任，实现共焦三维扫描模块（针孔，二维振镜、压电台或自动工作台）和时间分辨模块的完美结合，提供＜100ps-100ms的全时域荧光寿命检测；同时软件融合Phasor Plots荧光寿命直读半圆规的矢量图技术，可视化、直观的提供荧光寿命分布及数值。 荧光寿命成像数据分析进入直读时代。 ISS 激光共焦扫描荧光寿命成像系统，还可以同时满足以下需要： 1. 双光子的荧光寿命 FLIM/PLIM 成像； 2. 深紫外激发的荧光寿命 FLIM / PLIM 成像；266nm 355nm 3. 红二区荧光寿命 FLIM /PLIM 成像； 4. 激光扫描大视场活体成像 FLIM /PLIM ； 5. 光谱采集及光谱成像； 6. AFM联用--活细胞工作站联用--冷冻及加热工作台联用； 7. 纳米颗粒三维跟踪；（专有技术） 主要功能描述：（单/双光子功能） 激光共焦荧光强度成像LCM；荧光寿命成像FLIM，磷光寿命成像PLIM；上转换荧光（寿命）成像，稀土发光（寿命）成像，延迟荧光（寿命）成像；荧光波动成像FFS（FCS，FCCS, PCH，N&B, RICS， FLCS，scan-FCS）， FLIM-FRET成像；荧光定量成像；单量子点发光（寿命）成像，单分子及单分子荧光共振转移成像smFRET，包括交替激发PIE成像；稳态及瞬态偏振成像；微区荧光光谱采集 400-1100nm；反聚束测试（含专业软件）；活细胞工作站升级（含多孔板）仪器特点： 实时直读式获得荧光寿命数值及变化趋势，FRET效率分布；选择350nm-1100nm加上900nm-1700nm波长范围检测器，2-4通道检测器，用于成像，FLIM-FRET；可以升级无波长干扰AFM（正置或倒置），实现同区域形貌和FLIM同步测试；紫外-可见-红外激发波长，单波长或超连续激光器；单光子或双光子的激光器； 主要技术指标 1. 荧光寿命测试范围：100ps-100ms；2. 最小时间分辨率≤1ps；3. 数据计数速率：65 MHz/channel4. 检测通道：upto 8 channels；5. 标配xy振镜扫描，5kHz扫描频率，配合xy闭环自动台实现大区域扫描；6. Phasor plots 用于数据分析；7. 光谱采集；400-1100nm8. 扫描透射成像；9. 界面聚焦系统；10. 变温附件；77k-500k；

涂魔师非接触式测厚技术采用领先的光热法（ATO）涂魔师能测量未干涂层即时得出干膜厚度。基于先进的热光学技术(ATO)和数字信号处理技术(DSP)，实现独有的非接触式涂层无损测厚技术。该仪器精度高、重复性好、无须接触产品，适合检测金属、塑料、橡胶、碳纤维、陶瓷、玻璃、木材等多种基材，各种形状尺寸和所有颜色的产品，非常适合在实际生产环境下使用。涂魔师3D Inline操作简单，实现经济高效集成到现有涂装生产线上通过3D成像智慧检测技术，轻松非接触精准测量形状复杂零部件的膜厚分布情况，测试点的数据与工件被测部份一一对应，实时高效监控膜厚真实情况。涂魔师3D Inline整体膜厚成像ATO非接触膜厚分析仪特色功能非接触式无损测量技术采用先进的热光学专利技术TSP，在允许距离内轻松进行涂层厚度非接触式测量产品整体成像膜厚检测整体快速测量产品大面积的涂层干膜厚度，无需逐点测量；能自由调整测量区域大小和空间分辨率智慧自动化高效集成控制通过SPS等接口实现涂装线的自动化控制，能将涂魔师3D轻松高效集成到现有涂装线上，集成成本低在线性及实时性连续实时检测产线的移动工件膜厚，无需严控测量条件，对于摇摆晃动、外形复杂（曲面、内壁、立体、边缘等部位）、各种颜色（不受白色等浅色限制）的工件也能精准测厚100%数据自动连续记录测量数据自动记录与生成文档，可统计及不间断追溯生产全过程；通过膜厚数据的统计分析，调整涂装设备的一系列参数及高效优化涂装工艺节约高达28%的涂装原材料操作人员根据实际成像膜厚判断是否超出设定的合格值，及时调整出粉量、喷涂距离等参数，提高良品率，减少返工节约成本，降低环境污染风险技术参数-涂魔师3D Inline整体膜厚成像ATO非接触膜厚分析仪测量时间：0.5秒（数据采集）, 5秒（测量结果的展示）测量固化前粉末涂层厚度的标准偏差：在70-150微米范围内少于4微米测试时间间隔：5秒或以上探头放置有被测物：15厘米的距离测量面积：25厘米 x 19厘米（如果涂层是白色，最大测量面积：20厘米 x 15厘米）涂魔师3D Inline整体涂层测厚仪结合机械手，在生产线上实现全方位涂层厚度测量涂魔师3D Inline在线非接触测厚仪结合机械手，通过涂装线的主控机对涂魔师进行调试及控制其测厚过程，全方位进行整体涂层厚度测量如下图所示，涂魔师3D Inline与机械手结合，从不同角度测量产品涂层厚度，测量结果不受角度和距离影响，工作人员可以很清晰的了解产品上涂层厚度的分布清晰，同时，涂魔师3D Inline在线涂层测厚仪支持将数据发送到外部控制器（PLC），实现完整的涂层数据归档，提高生产周转率和减少粉末材料消耗。应用举例-涂魔师3D Inline整体膜厚成像ATO非接触无损测厚仪?涂魔师3D Inline涂层测厚仪测量T型管上的粉末涂层厚度如图所示，涂魔师3D Inline从不同角度测量T型管上的粉末涂料涂层，对涂层厚度的测量不受角度和距离影响，可以直观看到零件上的涂层整体分布?涂魔师3D Inline测量压力弹簧上的粉末涂层厚度如图所示，涂魔师3D Inline从弹簧圈不同位置测量弹簧上的粉末涂层厚度?涂魔师3D Inline测量铝轮毂上的粉末涂层厚度如图所示，使用涂魔师3D Inline测量铝轮毂上的粉末涂层厚度，对比使用传统涂层测厚仪进行单点测量，涂魔师3D Inline整体膜厚成像系统可以快速测量铝轮毂整体涂层厚度分布情况。翁开尔是涂魔师中国总代理，欢迎致电【400-6808-138】咨询更多关于涂魔师在线非接触涂层测厚仪产品信息。

FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统 FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统可以为一系列应用到绿色荧光蛋白的分子和细胞生物学研究提供服务。在封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以对GFP、EGFP、wtGFP、YFP、BFP或者其它波段荧光蛋白和荧光素进行检测和成像。 FluorCam封闭式GFP/Chl.荧光成像系统也可用于检测植物发出叶绿素荧光的动态变化和空间分布，测量Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）并提供2维荧光图像。专门设计的硬件配置使得本系统能够自动转换成荧光蛋白、荧光素成像或叶绿素荧光检测成像。该系统高度集成，并且可以进行样品的暗适应。 应用领域： 荧光蛋白与荧光素的荧光检测 基因转移和生物传感器技术 转基因植物研究 不同基因型抗性筛选 植物——微生物交互作用研究 植物——原生动物交互作用研究 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 气孔非均一性研究 代谢混乱研究 长势与产量评估 功能特点: 操作简便，测量样品高度可调，集成了专用暗适应箱，方便被测植物的暗适应处理、操作等 高分辨率CCD，分辨率高达1392×1040像素，快速精确捕捉叶绿素荧光和GFP 可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳） 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×625px，用于叶片或植物形态测量分析 典型样品： 叶片，茎，种子，根，整株小植物愈伤组织，培养皿中的小苗果实和花朵蓝细菌，绿藻，细菌转基因动物技术参数： 荧光参数：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项参数 高分辨率CCD：1392×1040像素，15幅每秒；30幅每秒时分辨率为640×480像素；积分时间可从毫秒到秒。可以很好地测量叶绿素荧光和长积分时间的弱稳态荧光或者用于对空间分辨率要求更高的测量，用于GFP等荧光蛋白成像 2个红色（627nm）或蓝色（470nm）LED光源板用于提供测量光和光化学光1，2个蓝色（470nm）LEDs光源板用于提供饱和光闪和光化学光2 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s 成像面积：13×13 cm 7位滤波轮：叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm），GFP荧光（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm），PAR，YFP，CY3，CY5，以及其它荧光波段QA在氧化动力学模块（可选）：内置单周转光闪（STF），光强达120000 μmol(photons)/m2.s in 100μsOJIP快速荧光动力学模块（可选）：可测定OJIP曲线与二十几项相关参数F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC，时间分辨率达1μsPAR吸收测量模块（可选）：包括7位滤波轮和红外／红色光源板置于顶部，用于测定PAR吸收FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单Protocol实验程序可自由编辑，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差可进行自动重复成像测量（可选），可设置一个实验程序（Protocol）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）CCD检测器带宽：40–1000nm 给光制度：静态或动态（窦式） A/D 转换分辨率：12位 光谱响应：540nm处量子效率最高（70 %），400nm和650nm处转降50% 读出噪音：低于12eRMS，典型10e 满阱容量：大于70,000 e (unbinned) Bios：固件可升级 通讯方式：USB 2.0 尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 重量：Appr.40 kg 电源输入：Appr. 1100 W 供电电压：90–240 V 典型应用： 产地：捷克 请致电索取参考文献列表

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000），右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图（Photosynthetica, 38: 571-579, 2000）FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备，高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内（还可根据需求选配第五个光源板置于顶部），植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过USB与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点: 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，成像面积达13x13cm 是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等20多个参数 是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100μs内可达到120,000 μmol(photons)/m2.s 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析（NPQ）protocolas（2套定制给光方案）、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析（选配）、OJIP快速荧光动力学分析（选配）及GFP绿色荧光蛋白成像（选配）等 可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）；还可预设两个实验程序（Protocols）；比如使系统白天自动运行Fv/Fm，夜间自动运行NPQ分析等 具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益左图A为100％红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm，左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm；右上图为光合作用强度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系，右下图为气孔导度随光照强度（不同比例蓝色光）的关系 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像 可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20x25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元，植物性状数字化、可视化，全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等 可选配大型版移动式植物成像分析系统，成像面积35x35cm，可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析 最新应用案例：Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等，在2019年2月出版的《Plant Physiology》，发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging，该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统，成像速度可达4000fps@640x512，QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 μmol/m2.s1。 附：OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括： a) Fo：初始荧光或称最小荧光，50μs时的荧光b) Fj：2ms时的荧光c) Fi：60ms时的荧光d) P或Fm：最大荧光e) Vj＝(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量f) Vi＝(Fi-Fo)/(Fm-Fo)：i阶荧光相对变量g) Mo＝TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo)：荧光瞬变初始斜率，或称OJIP曲线初始斜率h) Area：OJIP曲线与Fm之间的面积，可称为补偿面积（complementary area）为了对不同样品进行比较，Area需要标准化为：Sm＝Area/(Fm-Fo)，Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度i) Fix Area：OJIP固定面积，OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积j) Sm：标准化OJIP补偿面积，反映QA还原多次周转k) Ss＝Vj/Mo：标准化OJ相补偿面积，反映单周转QA还原l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj)：OJIP QA还原周转数量（between 0 and tFm）m) Phi_Po＝QY＝φpo＝TRo/ABS＝Fv/Fm，最大光量子产量，吸收光量子通量反应中心初始捕获比率n) Psi_o＝ψo＝ETo/TRo＝1-Vj，捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率o) Phi_Eo＝φEo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj)，吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率，或称电子传递光量子产量（quantum yield of electron transport at t=0）p) Phi_Do＝φDo＝1-φpo＝Fo/Fm，能量散失光量子产量（t＝0）q) Phi_pav＝φpav＝φpo（Sm/tFm），平均光量子产量，tFm为达到Fm所需时间（ms）r) ABS/RC＝Mo(1/Vj)(1/QY)：为单位反应中心的吸收光量子通量，这儿的反应中心仅指the active (QA to QA– reducing) centers（下同）。QY=TRo/ABS=Fv/Fms) TRo/RC＝Mo(1/Vj)：单位反应中心初始（或称最大）捕获光量子通量（导致QA的还原，也即反应中心关闭比率B的增加）t) ETo/RC＝Mo(1/Vj)（1-Vj）：单位反应中心初始电子传递光量子通量u) DIo/RC＝（ABS/RC）－（TRo/RC）：单位反应中心能量散失v) ABS/CS：单位样品截面的吸收光量子通量，CS stands for the excited cross-section of the tested sample（下同）。ABS/CSo＝Fo，ABS/CSm＝Fm，TRo/CSx＝QY(ABS/CSx)——单位截面捕获能量或光量子通量w) TRo/CSo＝QY.Fo；ETo/CSo＝φEo.Fo ＝QY.(1-Vj).Fox) RC/CSx：反应中心密度，RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)y) PIABS＝(RC/ABS)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数z) PIcs＝(RC/CSx)(φpo/φDo)(ψo/Vj)：基于截面的“性能”指数或称生存指数

用途：FC 800-O开放式动态荧光成像系统是采用高集成设备有灵活的几何结构设计，LED板和光源发出饱和闪光能从不同的角度和距离对样品进行照射，摄像机的位置也是可以进行调节的，提高了测量的精度。标准的成像面积为13×13厘米，可选20×20厘米成像面积，成像大小主要依赖于光源。最大成像面积可达到200×100厘米。LED板可自由在测量框架中安装和移动。用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程（瞬变）都可被摄取，从而提供2维荧光图像，测量计算常规的50多个荧光参数如Fo, FM, FV, Fo', FM', FV', NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP等，这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。 特点：采用用户自行设置的光照和测量时间，测量、记录叶绿素荧光成像。4个装有超强LED板提供测量光源、持续性光化学光或强饱和脉冲（饱和光闪），以驱动光化学反应。荧光成像由高端CCD摄像机抓取，时间解析度达每秒50张，是目前世界上图象抓取速度较高的荧光成像系统。 应用：筛选用于光合作用效能；胁迫抗性或敏感性；新陈代谢扰动；生长和产量。 可测量的样品：树叶、培养植物、果实、蔬菜；蓝藻、绿藻；样品大小，最大可达13×13 厘米，可选20×20 厘米；成像滤光片可用于384多孔板，96多孔板，有盖培养皿中的样品；可选暗适应盒用于对样品进行暗适应测量。 小麦成像叶片实验和标准参数：淬灭Kautsky诱导效应QA再氧化（需要选购附件）OJIP（需要选购附件）1µ s分辨率的快速荧光诱导（需要选购附件）PAR吸收率（需要选购附件）标准参数：Fo、FM、FV、Fo’、FM’、FV’、QY(II)50多种计算的参数：NPQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、光合作用电子传递速率（ETR）和其他 一次测量过程计算的50多种参数 各种波段：可选7位滤光轮；叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm）、GFP（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）、PAR、YFP、CY3、CY5等其他一些荧光颜色。 光源：光化光强度最大可达到3000 µ mol(photons)/m² .s.；超脉冲光强度标准版本最大可达到3000 µ mol(photons)/m² .s.，定制产品最大可达到5000 µ mol(photons)/m² .s.，配备QA再氧化测量附件最大可达到7000 µ mol(photons)/m² .s；STF-单代谢回转光IR 735nm（FAR）本系统包含4块高亮度的LED板2块LED板提供测量光和光化光1（红色，618nm）。另外2块LED板提供光化光2和饱和脉冲，这2块LED板用户可以定制为蓝光（455nm）、红光（618nm）或白光；其他波段可以选择：390nm、470nm、505 nm、570 nm、605 nm、630 nm、735 nm和其他；可变激发颜色。 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m × 8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：分别可选640 × 480像素和1392 × 040像素A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m × 6.45µ m像素尺寸分别为每秒30和15幅画面主要用于测量相对较慢的过程和应用于一些要求高空间分辨率的重要实验 暗适应箱FluorCam 7.0软件功能：自动实验方案设置向导； |多重（自动重复）实验；对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分；对视野内的单个植物或样品进行动态分析；批量画面操作工具；支持读取条形码；可输出为Excel；操作系统支持Windows 2000、XP、Vista、Win7。 FluorCam软件界面 技术规格：荧光参数测量的参数：Fo、FM、FV、Fo'、FM'、FV'、FT；计算的约50种参数：FV/ FM、FV'/ FM'、ΦPSII、NPQ、qN、qP、Rfd、PAR吸收率、光合电子传递速率（ETR）和其他光源455 nm、470nm、505 nm、570 nm、605 nm、618 nm、630 nm、白光和其他饱和脉冲光强度4000 µ mol(photons)/m² .s.（标准版本），6000 µ mol(photons)/m² .s.（升级光源版本）；光化光强度最大2000 µ mol(photons)/m² .s.（标准版本），最大3000 µ mol(photons)/m² .s.（升级光源版本）；滤光轮7位光状态静态或动态定制协议可控制时间，专用语言和脚本CCD探测器波段范围400~1000 nmCCD格式512×512像素；可选1024×768像素或1392×1040像素像素尺寸8.2 µ m×8.4 µ m；可选6.45 µ m×6.45 µ mA/D分辨率12位光谱响应QE最大在540 nm（~70%），50%滚降在400 nm和650 nm读取噪音小于12电子RMS，典型只有10电子全部容量包括70000电子成像频率50帧/秒BIOS可升级固件通讯端口USB 2.0尺寸710×710×430毫米重量约40公斤功率约1100 W供电90~240V 产地：捷克 参考文献：CASTILLO-LIZARDO M. G., ARAGÓ N I. M., CARVAJAL V., ET AL. (2015). Contribution of the non-effector members of the HrpL regulon, iaaL and matE, to the virulence of Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 in tomato plants. BMC MICROBIOLOGY Volume 15.DOI:10.1186/s12866-015-0503-8

随着植物科学的发展，越来越多的研究人员需要在活体植株中验证基因的功能，研究基因的表达调控，以及植物的昼夜纪律等，因此，对于植物活体成像的需求也越来越大。植物活体植物成像或植物组织成像，还可以应用于植物阳性克隆的筛选以及转基因植物的鉴定等多方面。Vilber自推出小动物活体成像后，近日再次推出专门应用于植物活体或组织的成像系统——NEWTON7.0 Bio 基于NEWTON7.0 平台，NEWTON7.0 Bio具有超高的检测灵敏度以及灵活的操控性。 — 多通道荧光光源可应用于不同染料标记或报告基因的检测，如植物研究中常见的GFP，RFP等； — 深度制冷的CCD相机，可长时间曝光，尤其适用于Luc报告基因的检测，避免了叶绿素等自发荧光的干扰； — X,Y,Z轴三维移动的载物台，可根据植物样品进行快速对焦，适用于培养皿中的幼苗，植物叶片，植物种子，小型植株等； — 可调角度的载物台，避免了植物叶片间的遮挡，便于根据需求针对特定部位进行成像；应用实例植物逆境胁迫&基因表达调控Analysis of CtHsfA2bbinding to ProAtApx2 in vivo with using luciferase(LUC) assay in Arabidopsisprotoplast.Signs of +/- indicates with/without the components listed on theleft side.Wang, X. et al. Transcriptional regulation ofheat shock proteins and ascorbate peroxidase by CtHsfA2b from Africanbermudagrass conferring heat tolerance in Arabidopsis.Sci. Rep.6,28021 doi:10.1038/srep28021(2016)植物克隆筛选Arabidopsis thaliana seedlings transfected with luciferase (right) and non-transfected (left), 3min exposure after 1 mM luciferin was sprayed onto the leaves.植物微生物侵染研究BIK1 and FLS2 interact with RbohD in N. benthamiana. The indicated constructs were transiently expressed in N. benthamiana, and luciferase complementation imaging assay was performed.转基因植物鉴定GFP expression, GFP-transfected (right) and Control (left) grain of rice and leaves, Epi excitation 470nm and emission filter f565, exposure time 2sec.NEWTON7.0 Bio为植物领域科研工作者提供了更多的选择，植物（植株/幼苗/种子）成像也将会为研究结果的最终验证提供最有力的支持!

产品特点：相较于市场上同类产品，此款产品具有化学发光和荧光成像两种功能，而且具有高像素、高灵敏度、高集成度，全系采用纯黑色ABS环保材料精加工而成，外观大方美观，内置12.5英寸surface平板电脑，运行稳定，1080P高清显示，确保成像面积的同时具有体积小，易操作，即使狭小的实验空间也能给您的科研带来极大的帮助。产品外置4个独立的USB3.0接口，方便实验数据的导入、导出、查看等外设设备输入、输出等用途。产品还提供内置电脑和外置电脑一键切换使用功能。拍摄软件具有一键成像，marker图和样品图的自动叠加，也可手动叠加，荧光彩色图像的自动叠加功能，成像清晰度高等特点。1、使用环境：操作电压:AC110-240V /50 ~ 60 Hz ；操作温度:正常室温 ；操作湿度:10-65%相对湿度（无冷凝水）； 最大功率60W2、产品材料和尺寸：机箱采用全黑色ABS材料精加工而成，集美学和产品应用要求于一体设计，≤400×380×500mm（W×L×H）技术参数：1、相机:科研级高分辨率BSI背照式深冷相机2、制冷温度: 低于环境温度-68℃，动态实时显示相机制冷温度3、★有效物理像素: 1200万像素4、★量子效率: 相机芯片光电转换效率QE95%5、图像位深 : 16 bit （65536灰阶）6、像元大小 : 4.63um×4.63um7、像素合并: : 1×1，2×2，3×3，4×4，8x88、动态范围: ＞4.8OD9、★电动镜头: 超大光圈F：0.95高清晰大口径电动双可变自动聚焦镜头，可通过计算机进行电动自动调整聚焦和光圈，且带自动聚焦校准功能。10、超灵敏度：化学发光法可检测低至pg级蛋白11、★滤光镜轮：标配5位自动滤光镜轮12、★激发光源：标配红（637nm）、绿（520nm）、蓝（470nm）三组LED荧光光源13、★接收滤镜：标配BP699nm、BP605nm、BP535nm，滤镜截止深度＞OD6级14、ECL样品台：可移动式样品板，方便放置样品，加注发光液15、辅助光源：双侧LED反射白光。16、触控系统：内置12.5寸10点触摸surface平板电脑，处理器≥i5、8G内存、256G 固态硬盘，1080P高清显示17、★操作系统：可连接外置台式电脑，可以和内置触控系统同时使用，一键切换软件功能：1、★预装常用荧光染料数据库，直接选择染料自动拍摄，最大同时支持5路荧光通道样品同时曝光。2、拍摄软件可自动对化学发光样品图与marker自动合并，伪彩图与marker图合并，三色自动合并，同时支持合并后的手动调整。3、★自动曝光：自动控制灯光及镜头，精确估算样品检测时间，一键预览实验结果。4、★积分拍摄功能：可连续间隔任意时间拍摄1-99张样品，且自动曝光时间自动键入。更加精准设置时间张数。5、拍摄软件具有批量导入图片，批量导出，批量删除等功能导出时自动识别U盘。6、单张成像：长时间曝光功能，可实现单张图像的长时间拍摄7、具有序列图保存功能，无需单张图像分别存储8、图像输出格式：tif、tiff、bmp、jpg9、分析软件具有：独有格式可追踪溯源，PDF或图片格式报告输出，符合GMP认证标10、拍摄软件含批量导入图片，批量导出，批量删除等功能导出时自动识别U盘保存。11、★自动分析：一键自动分析出结果，无需手动识别泳道及条带等。12、分析软件:可对结果进行自动条带检测，自动分子量测算，自动条带浓度测算，相对含量百分数分析，绝对浓度、密度计算，具有注释功能，可添加各种格式的文字或符号说明。数据报告输出等功能。产品应用：■发光检测：Western Lightning、ECL、ECLplus、自发光微孔板，生物芯片等自发光样品。■荧光检测：Western Blotting 荧光标记、DNA荧光标记、动物活体荧光标记、动物切片荧光标记、植物荧光标记产品认证：产品通过CE+LVD+EMC认证，并通过国标4793. 1-2007《测量、控制和实验室用电器设备的安全要求》认证★号功能必须满足

FKM（Fluorescence Kinetic Microscope）多光谱荧光动态显微成像系统是目前功能最为强大全面的植物显微荧光研究仪器，是基于FluorCam叶绿素荧光成像技术的显微成像定制系统。它由包含可扩展部件的增强显微镜、高分辨率CCD相机、激发光源组、光谱仪、控温模块以及相应的控制单元和专用的工作站与分析软件组成。它不仅可以进行微藻、单个细胞、单个叶绿体乃至基粒-基质类囊体片段进行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等各种叶绿素荧光及MCF多光谱荧光（multicolor fluorescence）成像分析；还能通过激发光源组进行进行任意荧光激发和荧光释放波段的测量，从而进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料以及藻青蛋白、藻红蛋白、藻胆素等藻类特有荧光色素的成像分析；更可以利用光谱仪对各种荧光进行光谱分析，区分各发色团（例如PSI和PSII及各种捕光色素复合体等）并进行深入分析。 FKM多光谱荧光动态显微成像系统使荧光成像技术真正成为光合作用机理研究的探针，使科研工作者在藻类和高等植物细胞与亚细胞层次深入理解光合作用过程及该过程中发生的各种变化，为直接研究叶绿体中光合系统的工作机理提供了最为有力的工具。FKM作为藻类/植物表型和基因型显微研究的双重利器，得到了学界的广泛认可并取得了大量的科研成果。功能特点• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数。• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光。• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图。• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究。 应用领域• 微藻、大型藻类/高等植物的单个细胞、单个叶绿体、基粒-基质类囊体片段等的显微结构植物光合生理研究• 藻类/植物逆境研究• 生物和非生物胁迫的研究• 藻类/植物抗胁迫能力及易感性研究• 突变体筛选及光合机理研究• 藻类长势与产量评估• 藻类特有色素与光合作用关系• 藻类/植物——微生物交互作用研究• 藻类/植物——原生动物交互作用研究• 基因工程与分子生物学研究测量样品• 植物活体切片• 植物表皮• 植物细胞• 绿藻、蓝藻等各种单细胞和多细胞微藻• 叶绿体提取液• 类囊体提取液• 含有叶绿体的原生动物工作原理 FKM分析过程中，通过连接在显微镜上的激发光源组和内置在6位滤波轮中的一系列滤波器、分光镜激发植物样品中各种发色团的动态荧光。样品激发出的荧光经显微镜放大后进行荧光光谱分析和荧光动力学成像分析。SM 9000光谱仪通过光纤与显微镜连接，以进行激发荧光光谱分析。安装在显微镜顶部的高分辨率CCD相机则用于荧光动力学成像分析。全部工作过程通过工作站和控制单元按照预先设定好的程序自动进行。测量过程中，可通过温控模块调控藻类、植物细胞等实验样品的温度。蠕动泵可以实现培养藻类的连续测量。仪器组成1. 增强显微镜 2. 高分辨率CCD相机 3. 激发光源组 4. SM 9000光谱仪 5. 主控制单元 6. 工作站及软件 7. 控温模块的控制单元8. 6位滤波轮技术参数• 测量参数?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' , Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像?OJIP快速荧光曲线：测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi???_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）等（选配）?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白和荧光染料的成像分析（选配）?QA再氧化动力学曲线（选配）?Spectrum荧光光谱图（选配）• 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑?Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等?Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数?荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数，2套制式程序?光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数?Dyes & FPs稳态荧光成像测量?OJIP快速荧光动力学分析：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数（选配）?QA再氧化动力学（选配）?Spectrum荧光光谱分析（选配）• 荧光激发光源：红外光、红光、橙光、蓝光、绿光、白光、紫外光等可选，根据客户要求定制光源组• 透射光源（选配）：白光、远红光?高分辨率TOMI-2 CCD传感器：?逐行扫描CCD?最高图像分辨率：1360×1024像素?时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧?A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）?像元尺寸：6.45μm×6.45μm?运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量?通讯模式：千兆以太网• 显微镜：Axio Imager M2，可选配Axio Scope A1简洁版或Axio Imager Z2高级版?物镜转盘：研究级7孔自动物镜转盘?透射光快门?聚光器 Achr Apl 0.9 H?6位反光镜转盘?双目镜筒(100:0/30:70/0:100)?机械载物台：75×50mm，硬膜阳极氧化表面?样品架：76×26mm• 物镜：10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜（可选）• 6位滤波轮：叶绿素荧光、GFP/SYTOX、DAPI/CTC等• SM9000光谱仪?入射狭缝：70μm×1400μm ?光栅：平场型校正?光谱范围：200-980nm?波长绝对精确度：0.5nm?再现性：0.1nm?温度漂移：0.01nm/K• 温度调控模块：温度调节范围 5℃-70℃，精确度0.1℃• 蠕动泵（选配）：流速10-5600μl/min，用于藻类连续培养测量• FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单 • 客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序• 自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）• 快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片• 成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）• 数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差• 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等叶绿素荧光与光谱分析结果典型应用：产地：捷克参考文献：1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-3812.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 494.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-705.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.1626.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-12587.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-2368.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.01143219.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.023410.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. Metallomics, 6: 444-45411.Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-9112.Andresen E, et al. 2013. Effects of Cd & Ni toxicity to Ceratophyllum demersum under environmentally relevant conditions in soft & hard water including a German lake. Aquatic Toxicology. 142–143, 15: 387–402

FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是FC 1000-H 的功能增强版本，既能做叶绿素荧光成像也能做GFP成像研究。该系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数和GFP表达情况成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5 x 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。应用领域 转基因表达和定位植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究工作原理FC 1000系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取，从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个：F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。典型样品 海藻，蓝藻群落整株小植物植物冠层，叶片或者果实小动物其它功能特点：实验过程和测量参数 GFP表达强度与分布位置成像Meter功能荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析光响应曲线分析可测量与计算多达50个参数: Fo, FM, Fs, Fo&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , QY(II)， NPQ, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , Rfd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它。技术参数 可测荧光参数：(F0, FM, FV, FO' , FM' , FV' , QY(II)), or 计算参数 (e.g., NPQ, FV/FM, FV' /FM' , Rfd, qN, qP),光合电子传递速率 ETR,及其它4块超亮LED光源板，尺寸4 X 4 cm；均一照明面积3.5 X 3.5 cm。测量光为620nm红光， 455 nm蓝光，持续时间10µ s - 250µ s可调；光化光，标配蓝光蓝光: 大约350 µ mol(photons)/m² .s饱和光，标配蓝光蓝光: 最高 1,000 µ mol(photons)/m² .s远红光：IR735nm给光制度：静态或者动态模式自定义实验程序：多样化的时间顺序，专门的程序语言和脚本CCD检测器带宽：400 &ndash 1000 nmCCD 制式：512 x 512 像素 可选 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素像素尺寸：8.2 µ m x 8.4 µ mA/D 转换分辨率：12 位光谱响应：540 nm处量子效率最高(70 %),400 nm 和 650 nm 处转降50 %读出噪音：低于12eRMS，典型10e满阱容量：大于 70,000 e (unbinned)成像频率：50 张图片每秒Bios：固件可升级通讯方式：USB 2.0重量：1.8 kg叶夹重量：0.2 kg供电模块重量：2.5 kg支架重量：1.5 kg笔记本重量（含所有附件）：3.5 kg耗电Max.：200 W供电电压：90 &ndash 260 V ；AC或蓄电池供电尺寸：21.5 cm x 13.5 cm x 13.5 cm 操作软件与实验结果 内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excel· FluorCam 软件界面Windows 2000, XP, Vista兼容 典型应用：产地：欧洲请致电索取参考文献列表

恒光智影自主研发最新的近红外二区小动物活体荧光成像系统-MARS。这是一款多色成像系统，可实现全波段（400-1700 nm）荧光，X射线，CT多模态成像。这款产品突破了传统荧光活体成像系统的局限，具有从微观到宏观，由细胞至活体的全视野成像能力，可以实现更深，更快，更清晰的成像效果。在肿瘤研究，动物模型成像，血管成像，纳米药物开发，药物制剂，靶向治疗，及脑科学研究等方向提供新的影像解决方案。 1. 活体穿透深度高于 15 mm2. 空间分辨率优于 3 μm3. 荧光寿命分辨率优于 5 μs4. 高速采集速度优于 1000 fps（帧每秒）5. 精准光热治疗模块6. 可定制多模态系统 （X射线辐照、荧光寿命、一区荧光成像、原位成像光谱，CT等） 可实现小鼠颅内血管成像，皮下肿瘤成像，大鼠褐色脂肪及血管成像，小鼠肝肺成像，淋巴管与淋巴结成像，肠道系统成像的应用案例。您也可以在恒光智影的网站上找到更多的应用案例和视频：上海恒光智影医疗科技有限公司为您提供恒光智影 近红外二区小动物活体荧光成像系统的参数、价格、型号、原理等信息，恒光智影 近红外二区小动物活体荧光成像系统产地为上海、品牌为恒光智影，型号为MARS，价格为面议，更多相关信息可来电咨询，公司客服电话7*24小时为您服务。

CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观，内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像，从而计算植物生长、胁迫，育种，突变株筛选相关等科学研究；滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪，标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲，强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配：385nm紫外，455nm蓝色，530nm绿色，660nm红色，适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能，可以进行0-60摄氏度范围内进行控温，更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域，有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究，用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计；500万像素高清传感器；最大图像尺寸：2456x2054；快门模式：全局及卷帘快门；分辨率：约250DPI（10pix/mm）；可测量参数：F0，Fm，Ft，Fm’，Fv/Fm，Yield，qP，qL，qN，NPQ，Y（NPQ），Y（NO），慢速诱导，rETR等。其它功能：ROI，尺寸测量，伪色遮罩，分级统计，自动暗适应等选配功能：385nm灯板，455nm灯板，530nm灯板，660nm灯板，底板控温组件。技术参数成像功能：叶绿素荧光成像及多光谱波段测量；调制叶绿素荧光成像参数：Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等；成像面积：≥20 cm x 20 cm；相机类型：CMOS传感器；相机分辨率：约500万像素颜色深度：12bit(软件扩展至16位)；接口：2个USB3.0，1个以太网口；专用嵌入式控制器：提供硬件控制功能；供电：供电：110-230V，最大功耗500W，待机功耗50W；测量光：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ，独立触发；饱和脉冲：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强3500 umol m-2 s-1，独立触发；近红外：LED，730nm，半峰全宽20nm，35W；可见光：LED，660nm，半峰全宽20nm，35W，可选蓝色、绿色LED；内置测量程序：内置多种测量功能可选，允许用户编辑设定测定参数 ；图像批处理：支持一键批处理，并可将数据导出至Excel；参数分级功能：支持对任意参数进行多区间分级，支持对分级区间自定义显示颜色，支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示；ROI功能：允许用户自定义多种ROI，并对ROI的数据自动分析；延时成像：支持设定暗适应延迟；支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套

1、 FluorCam叶绿素荧光成像技术功能特点由于叶绿素荧光技术本身在科学研究中有一系列的局限性。因此从上世纪八十年代末开始，随着Charge-Coupled Device(CCD)成像技术、LED光源板技术、图像分析技术的成熟，不断有科学家和工程师合作探索将这三项技术与PAM脉冲调制技术结合，进而将叶绿素荧光技术升级为叶绿素荧光成像技术（Daley et al. 1989 Raschke et al. 1990 Mott et al. 1993 Genty and Meyer 1994 Bro et al. 1995 Siebke and Weis 1995 Meyer and Genty 1998 Balachandran et al. 1994 Oxborough and Baker 1997）。20世纪90年代末，PSI首席科学家Nedbal和PSI总裁Trtilek等合作，成功研制了与PAM脉冲调制技术结合的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Nedbal et al., 2000），并推出第一台商业化叶绿素荧光成像设备FluorCam。这一发明正式开启了叶绿素荧光研究的二维时代。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界，并得到了国际科学界的一致认可。FluorCam叶绿素荧光成像系统已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器。与之前的叶绿素荧光技术相比，FluorCam叶绿素荧光成像技术的主要优势有：• 能够全面反映整株植物、叶片、藻类群体等的不同位置荧光强度变化与分布。• 可测量叶片、果实、麦穗、大型藻/微藻、整株植物乃至植物冠层等各种样品。• 可同时测定几十、甚至上百株个样品。• 能够在显微水平研究叶绿体或藻类细胞。• 尤其适用于环境胁迫早期植物不同部位光合活性的变化规律、突变体不同部位的光合功能差异等研究。同时，FluorCam叶绿素荧光成像技术与同类技术相比具备以下国际领先优势：• 由真正的生物学家、数学家、电子工程师和光学工程师组成的研发团队所开发• FluorCam是脉冲调试式叶绿素荧光成像技术的最早实用化成果• 国际最权威的叶绿素荧光成像技术，仅2019-2021.3可查阅全文的SCI文献就有300篇以上• 可实现高通量植物表型分析、抗性筛选、种质资源检测等科研应用• 激发荧光的LED光源板和获取荧光数据的成像传感器不但技术国际领先，而且为PSI自行开发，具备完全自主知识产权• 测量及成像参数最多，具备叶绿素荧光显微成像、OJIP快速荧光动力学曲线、QA再氧化动力学、荧光蛋白活体成像、多光谱荧光成像、无人值守自动监测、图像阈值分割等世界独有的成像测量功能• 以FluorCam叶绿素荧光成像技术为核心的PlantScreen植物表型成像分析系统为目前国际最先进、安装最多的植物表型组学研究系统• 软件由PSI开发，为客户提供终身免费升级• PSI表型科研中心可进行科研合作并提供实验指导• 系统型号全面，适用于各种实验需求• 几乎无维护费用技术功能特点：1) 仪器型号和配置灵活多样，测量样品涵盖了从叶片、藻类、果实、花朵、整株植物、植物群体/冠层乃至单个微藻/植物细胞、叶绿体等几乎所有不同类型的宏观和微观植物样品，甚至还包括含有叶绿素的细菌和海洋生物；同时满足了从实验室光合机理精细研究到野外大田实地研究，从自然环境到精确可控环境等不同实验条件和尺度的要求。2) 高灵敏度CCD，时间分辨率可达50帧／秒，分辨率720×560像素；可选配高分辨率CCD，最高分辨率1360×1024像素，在最高图像分辨率下时间分辨率可达20帧／秒，用于稳态荧光如GFP荧光测量等；超高灵敏度成像传感器，最高分辨率1280×1024像素，最高时间分辨率高达16000帧／秒，真正实现了OJIP快速荧光诱导动力学曲线的成像测量3) 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收率、NDVI成像测量（选配）f) GFP、YFP、EBFP、CFP、DsRed等荧光蛋白与DAPI等荧光染料的荧光定量测量（选配）g) 多光谱荧光测量（选配）：F440、F520、F690、F740h) QA再氧化动力学曲线（选配）i) OJIP快速荧光诱导动力学曲线（选配）：Fo，Fj，Fi，P或Fm，Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等参数4) 自动重复实验功能，可无人值守自动循环完成选定的实验程序，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机5) 标配4个LED光源板，采用大型预封装LED光源，红/蓝或红/白双色光化光源，可选配其他不同颜色（波长）、不同光强LED光源6) 功能强大的FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单：7) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”两种功能模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差8) 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2、 FluorCam叶绿素荧光成像系统型号1. FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪• 可测量叶绿素荧光成像，可选配GFP荧光蛋白成像功能• 成像面积：便携式FluorCam 31.5mm×41.5 mm、便携式GFPCam 35mm×46 mm• 配备专用支架和电池包，便携性强，实验室、野外均可使用• 可编辑测量实验程序（protocol）• 具备自动重复测量功能• 配备专用暗适应叶夹，便于在野外对样品进行暗适应无损测量2. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统• FluorCam系列中功能最全面，使用最便捷的型号• 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 • 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变；可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量；也可选配超高灵敏度成像传感器，实现真正的OJIP快速荧光诱导动力学曲线成像测量• 成像面积达13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析• 饱和光光强最高达6000 µmol(photons)/m².s，进行QA再氧化分析使用的单周转饱和光闪STF可达120000µmol(photons)/m².s• 世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等• 可选配GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 可进行自动重复成像测量分析• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合3. FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统• 模块化设计，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合• 可自由选配多种备用不同波长LEDs光源板，用户可简便自行更换，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多光谱荧光成像测量等• 可进行GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量4. FluorCam多光谱荧光成像系统FluorCam多光谱成像系统是将稳态荧光成像技术与脉冲调制式叶绿素荧光成像技术完美融于一体，能够在一台仪器上实现GFP、BFP、CFP、YFP、RFP等荧光蛋白成像、DAPI等荧光染料成像、荧光素酶、脉冲调制式叶绿素荧光成像以及NDVI反射光谱成像分析功能，是真正功能全面的植物荧光活体成像系统。同时，除了植物样品外，植物荧光活体成像系统也可以进行藻类、珊瑚共生体、菌落乃至动物的荧光成像分析。• 1360×1024像素高分辨率CCD，可对样品荧光标记的分布进行精准成像分析• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 专用荧光激发光源组与滤波器组合，精确测量不同荧光蛋白标记• 软件配置多种用户自定义调色板，可生成真实色彩成像图或对比增强彩色成像图• 可选配新型FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统，一体化完成各种荧光成像测量5. FKM多光谱荧光动态显微成像系统• 目前唯一用于植物/藻类显微叶绿素荧光成像研究的成熟商用仪器• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究6. FluorCam大型叶绿素荧光成像平台• 世界上单幅成像面积最大的脉冲调制式（PAM）叶绿素荧光成像系统，成像光源板面积70×70cm，成像面积达35×35cm，可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性叶绿素荧光成像分析• LED激发光源、CCD叶绿素荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可自由移动的成像平台上，成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析• 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析• 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等• 可选配GFP绿色荧光蛋白成像分析功能，用于植物转基因研究三、FluorCam叶绿素荧光成像系统应用案例1. 拟南芥叶绿体R-loop调控机制2017年清华大学生命学院孙前文课题组通过分析获得一个新的定位于叶绿体中的核糖核酸酶H蛋白（AtRNH1C），发现该蛋白可以调节叶绿体中R-loop水平的变化，从而维持基因组的稳定性和发育。他们使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统，发现AtRNH1C对叶绿体的发育有重要作用。在使用喹诺酮类药物环丙沙星（CIP）处理后，通过FluorCam叶绿素荧光成像图可以直观发现野生型的生长被抑制，同时叶片变色。而atrnh1c突变体则加强了CIP的毒害效应。这更加证实了AtRNH1C的功能。本实验的荧光成像检测是在易科泰Ecolab实验室完成的。2020年，孙前文课题组又使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统结合分子实验结果，证实了R-loop解旋酶过表达能够拯救由于异常累积HO-TRC触发R-loop共同表达造成的缺陷，从而维持拟南芥叶绿体基因组完整性。参考文献：1. Yang Z, et al. 2017. RNase H1 Cooperates with DNA Gyrases to Restrict R-loops and Maintain Genome Integrity in Arabidopsis Chloroplasts. The Plant Cell, doi:10.1105/tpc.17.003052. Yang Z, et al. 2020. RHON1 Co-transcriptionally Resolves R-Loops for Arabidopsis Chloroplast Genome Maintenance. Cell Reports 30: 243–2562. 构建耐盐生菜品种表型鉴定体系目前，全球农业都受到土壤和灌溉水盐分升高的威胁。大约50%的灌溉农田都受到了盐分的影响。2013年的经济分析指出由于盐分诱发的土壤退化和作物产量损失在全球造成了273亿美元的损失。作为一种重要的蔬菜作物，生菜（Lactuca sativa L.）在世界范围内都进行了广泛的种植。生菜产量最高的国家为美国、欧盟和中国。而生菜对盐分胁迫非常敏感的。盐分胁迫会造成生菜生物量减少、诱发叶烧病和早衰等。美国农业部（USDA）的科学家尝试确定生菜盐胁迫的关键生理表型性状，用于筛选高耐盐的生菜品种，希望从这些数据中筛选出最灵敏的指标构建耐盐生菜品种表型鉴定体系。与传统作物表型测量相比，一方面光系统对各种生物和非生物胁迫因素都非常敏感，而叶绿素荧光成像分析可以无损地直接测量胁迫对光系统的损伤程度和机理，在胁迫初期乃至症状出现前即可检测到胁迫的发生；另一方面，叶绿素荧光成像分析技术与自动传送系统集合，能够实现对大量样品的高通量无损快速检测，非常适用于作物品种的筛选。他们使用的PlantScreen XYZ植物表型成像分析系统就能够将这两方面的优势完美地结合起来。其样带式FluorCam叶绿素荧光成像单元是目前唯一使用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术实现大型整株植物测量的商用化仪器。自动传送系统可以自动调整成像单元的位置与高度，结合专用软件可以对几十株乃至上百株样品进行自动叶绿素荧光成像分析。实验中使用了球生菜、奶油生菜、直立生菜、叶生菜等不同的栽培品种和生菜的野生亲缘种L. serriola L，共240株样品。这些品种中既有耐盐品种，也有盐胁迫敏感品种。所有样品在同样盐胁迫处理下进行了叶绿素荧光成像分析。研究者重点分析了QY_max（Fv/Fm）最大光化学效率、Fv/Fm_L（Fv’/Fm’）光适应最大光化学效率、NPQ非光化学淬灭（最大荧光）、qN非光化学淬灭（可变荧光）、qP光化学淬灭、QY实际光化学效率（量子产额）、Rfd荧光衰减比率等荧光参数。值得一提的是，叶绿素荧光成像图经过校准后，还可以直接获得整株植物具备光合活性的叶面积。结合荧光参数还可以对叶面积进行不同胁迫程度的定量分级和图像分割。本研究中直接使用叶绿素荧光成像获得的光合活性叶面积取代了传统测量的叶面积。荧光数据与鲜重等传统表型数据进行了相关性分析和主成分分析，结果表明敏感栽培种的叶绿素荧光特征是低QY，qN，NPQ和Rfd，而耐受栽培种的特征是高QY_max，Fv/Fm_L和QY_D。与叶绿素荧光参数的高灵敏度相比，大多数样品的叶绿素指数和CO2同化速率在盐胁迫处理前后都没有表现出显著的差异。因此，研究者建议在筛选高耐受品系时以较高的叶面积配合较高的Fv/Fm和QY作为初筛指标。后续，美国农业部又使用加装了高光谱成像单元的PlantScreen表型成像系统与FluorCam结合，通过叶绿素荧光成像数据与高光谱成像数据绘制了生菜水分胁迫响应基因位点的分子图谱。参考文献：1. Adhikari N D, et al. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors, 19: 48142. Kumar P, et al. 2021. Molecular Mapping of Water-Stress Responsive Genomic Loci in Lettuce (Lactuca spp.) Using Kinetics Chlorophyll Fluorescence, Hyperspectral Imaging and Machine Learning. Front. Genet. 12: 634554

Kautsky 与 Hirsch 于1931年首次发表论文“CO2同化新实验”，报道了用肉眼发现叶绿素荧光现象，荧光强度的变化与CO2同化速率呈负相关。Ladislav Nedbal教授与Martin Trtilek博士等基于脉冲调制技术（PAM，Pulse Amplitude Modulated technique）与CCD技术，于1996年研制成功FluorCam叶绿素荧光成像技术（Nedbal etc, 2000），使叶绿素荧光得以在二维和显微（细胞与亚细胞水平）水平上进行成像分析。PAM技术基于人工激发光（脉冲调制测量光、光化学光、饱和光脉冲）Protocols诱导成像，如何在自然光（太阳光）条件下对叶绿素荧光进行成像测量，从而实现对植物光合作用成像作图（mapping），成为科学家特别是生态观测、农业遥感等领域科学家的梦想。 AisaIBIS叶绿素荧光高光谱成像仪由芬兰Specim公司与德国Juelich研究中心为欧洲太空局（ESA）地球探测项目（SIFLEX）研制的Hyplant传感器，是世界上第一款商业化高光谱叶绿素荧光成像仪，采用夫琅和费线深度法，可以检测太阳辐射诱导叶绿素荧光（Sun-induced Fluorescence），用于陆空双基植物叶绿素荧光高光谱成像测量分析，可得到NDVI、EVI、F760（植物叶绿素荧光）等参数。 作为一款功能强大的超高光谱分辨率空陆双基成像系统，适用于地面及航空遥感SIF叶绿素荧光高光谱成像测量，AisaIBIS采用“夫琅和费线深度法”，该方法在670 - 780nm的特定光谱区域内，可对两条吸氧谱线底部的微弱荧光信号进行检测和定量。结合高光通量成像光谱仪和先进的sCMOS成像技术，可在飞行条件下以较高的成像速率和优异的光谱采样间隔(0.11nm)采集高质量、低噪声、高动态范围和信噪比的叶绿素荧光高光谱数据，可以安装在易科泰光谱成像与无人机遥感研究中心提供的近地面遥感平台、通量塔或者航空遥感平台，得到不同尺度的NDVI、EVI、F760（植物叶绿素荧光）等参数。适用于农业、林业、草原、湿地生态系统观测，如光合作用与植被胁迫（如病虫害、干旱等）研究、大田作物表型与种质资源检测、生态系统生产力与作物产量评估等。功能特点1.推扫式高光谱成像技术，采用“夫琅和费线深度法”获取SIF叶绿素荧光成像数据，使太阳光诱导叶绿素荧光测量提高到高空间分辨率水平2.科研级超高性能，光谱采样率达到0.11/0.22nm，高透光率F/1.7，高信噪比680:1 3.陆空双基，既可用于航空遥感，也可以安装于近地面遥感平台、通量塔，以获取不同尺度日光诱导叶绿素荧光高光谱成像数据4.结合易科泰生态技术公司提供的便携式叶片水平叶绿素荧光测量设备，可以满足不同尺度水平的观测研究5.可配置易科泰生态技术公司提供的全波段高光谱成像技术、Thermo-RGB红外热成像与RGB融合成像分析技术等 技术指标：1. SIF叶绿素荧光高光谱成像传感器CMOS科研级检测器，快照模式，珀尔贴制冷 波段范围：670-780nm光谱采样：0.11/0.22nm空间分辨率：384/768像素 透光率F/1.7、信噪比680:1、帧频65fps视野：32.3度，0.5m至无穷远 积分时间：在帧像周期内可调 数据接口：CameraLink 16-bit功耗：一般135W，最大200W成像系统重量（含DPU）：＜25kg支电机械快门，光温稳定功能2. Thermo-RGB红外热成像与RGB真彩成像融合分析技术，可区分阳光照射叶片或冠层、阴影叶片或冠层以及土壤的温度和覆盖度等，以精确反映作物/植物气孔导度动态，使作物冠层温度测量精准区分阳光照射叶片、阴影叶片及土壤背景，并可进行ROI选区分析、频率直方图分析显示及颜色分析等，适宜于高空间解析度冠层温度检测、物候观测、气孔导度观测、高通量作物表型分析等 3. AisaFENIX双镜头全波段高光谱成像：包括VNIR（380-970nm）和SWIR（970-2500nm）双镜头高光谱成像，高信噪比（1000:1）、分辨率，空间分辨率可达1024x像素4. 遥感平台：可选配航空遥感平台、通量塔、或易科泰生态技术公司提供的近地遥感平台5. 光谱成像近地遥感：可选配扫描式或机器人近地遥感光谱成像，包括叶绿素荧光成像（基于PAM技术）、高光谱成像、红外热成像等应用案例1：ESA（欧洲航天局）与NASA（美国国家航空航天局）合作开展生态健康与碳循环动态研究 ESA与NASA合作，采用基于AisaIBIS的HyPlant SIF航空遥感系统、美国NASA研发的基于LiDAR-高光谱-红外热成像航空遥感系统，同步获取森林的太阳光诱导叶绿素荧光成像、冠层结构信息、可见光至短波红外（400-2500nm）光谱反射成像信息、及冠层温度信息，以观测研究生态系统健康与碳循环动态（Middleton etc. The 2013 FLEX-US airborne campaign at the parker tract loblolly pine plantation in North Carolina, USA. Remote Sensing, 2013）应用案例2：AisaIBIS用于监测农作物长势-德国波恩大学农业试验站 德国Julich研究所、西班牙Valencia大学、意大利Milano-Bicocca大学、芬兰Specim公司等科学家，对基予AisaIBIS的HyPlant航空遥感系统（包括AisaIBIS和AisaFENIX）观测冠层（Top-of-Canopy, TOC）光谱反射与SIF叶绿素荧光技术，进行了全面解读，并采用该系统对农田作物进行了遥感作图分析（参见下图），该系统采用AisaIBIS、AisaFENIX全波段空陆双基高光谱成像（400-2500nm）等（Basbian Siegmann etc. The high-performance airborne imaging spectrometer HyPlant-from raw images to Top-of-Canopy reflectance and fluorescence products: Introduction of an Automatized Processing China. Remote Sensing, 2019）应用案例3：AisaIBIS用于估算不同时间作物初级生产力-德国科隆大学 德国科隆大学等科学家采用HyPlant航空遥感系统（基于AisaIBIS SIF叶绿素荧光高光谱成像和AisaFENIX高光谱成像技术），结合地面光合作用（采用Li6400或LCPro T光合仪）和土壤呼吸测量（采用Li8100或SRS2000土壤呼吸测量系统），对植被初级生产力及胁迫进行了观测研究（参见下图），结果表明，F760对现有GPP评估方法可以起到很好的改善和补充，SIF红色叶绿素荧光与远红波段叶绿素荧光比率可以灵敏地反映环境胁迫（S. Wieneke etc. Airborne based spectroscopy of red and far-red sun-induced chlorophyll fluorescence: Implications for improved estimates of gross primary productivity. Remote Sensing of Environment, 2016）其它参考文献：Rascher, U., et al.(2015), Sun-induced fluorescenc – a new probe of photosynthesis: First maps from the imaging spectrometer HyPlant. Global Change Biology.Rossini, M., et al.(2015), Red and far red Sun-induced chlorophyll fluorescence as a measure of plant photosynthesis, Geophys. Res. Lett.Wieneke, S., et al.(2016), Airborne based spectroscopy of red and far-red sun-induced chlorophyll fluorescence: Implications for improved estimates of gross primary productivity. Remote Sensing of Environment.Colombo, R., et al.(2018), Variability of sun-induced chlorophyll fluorescence according to stand age-related processes in a managed loblolly pine forest. Global Change Biology.Gerhards, M., et al.(2018), Analysis of airborne optical and thermal imagery for detection of water stress symptoms. Remote Sensing.Max Gerhards, et al.(2018), Analysis of airborne optical and thermal imagery for detection of water stress symptom. Remote Sensing.Bandopadhyay, S., et al. (2018), Examination of Sun-induced Fluorescence (SIF) Signal on Heterogeneous Ecosystem Platforms using ‘HyPlant’. Geophysical Research Abstracts.Giulia Tagliabue, et al. (2019), Exploring the spatial relationship between airborne-derived red and far-red sun-induced fluorescence and process-based GPP estimates in a forest ecosystem. Remote Sensing of Environment.

用途：FC 800-C密闭式植物荧光成像系统用于多谱动态荧光成像，它由一个CCD相机，4~5个LED灯板，可选择一个滤光器包含7个不同的发射器，LED灯板统一提供面积13x13cm辐照度，适合一些小的植物，比如分割的树叶，藓类，地衣，海藻聚集地或海藻悬浮液等等。相机通过光化光和饱和光瞬时荧光成像，用户自定义辐照度的时间和强度。FC 800-C相关软件提供数据采集和图像处理功能，同时还为专业人员提供了复杂的编程语言用来设计新的测量计划。 应用：筛选用于光合作用效能和代谢扰动；探测生物和非生物刺激；胁迫抗性或敏感性；线虫类荧光和行为；气孔分布；提供耕地产量；生长发育； 可测量的样品：树叶、培养植物、果实、蔬菜；藓类、地衣；蓝藻、绿藻；线虫类；样品大小，最大可达13 cm x 13 cm；成像滤光片可用于384多孔板，96多孔板，有盖培养皿中的样品；可选择搁板系统用于不同尺寸样品的测量；暗适应盒用于对样品进行暗适应测量（可选件）。 光板：FluorCam的标准配置4个超高亮度的LED面板灯，一对LED灯板提供测量光和光化光1（典型618nm），另外两个灯板提供光化光2和饱和脉冲（这两个灯板根据客户需求安装蓝色（455nm），红色（618nm）或白色灯光）；其他有效波长：470nm，505nm，570nm，605nm，630nm（FluorCam自定义版本）；附加LED灯板可以装在相机顶部，有红外（735nm），紫外（360或380nm）或绿色（505nm）可供选择（可选）；光化光强度：300~2000 µ mol(photons)/m² .s（标准版） 最大3000µ mol(photons)/m² .s（升级版）；超级脉冲强度：最大4000 µ mol(photons)/m² .s（标准版） 最大6000 µ mol(photons)/m² .s（升级版）；单一覆盖闪光（STF）：100µ s脉冲下120000 µ mol(photons)/m² .s（QA再氧化版）； 不同的发射带：叶绿素荧光（高通695nm，低通780nm）、GFP（高通495nm，低通660nm，带通505/560nm）. 标准成像规格：512×512像素A/D：12位（4096灰阶）8.2µ m×8.4µ m像素尺寸每秒50幅画面便于测量快速过程 可选成像格式：逐行扫描CCD，1.4M像素；A/D：12位（4096灰阶）6.45µ m×6.45µ m像素尺寸两种模式：录像、拍照；分辨率：1392x1040像素-拍照模式下最高分辨率 1024x768像素（每秒10次拍摄）-录像模式下最大分辨率；分级选项，提供更高的灵敏度和帧率： 2x2：696x520像素，每秒25次拍摄 3x3：464x344像素，每秒20次拍摄 4x4：348x256像素，每秒50次拍摄；更高空间分辨率的叶绿素和荧光信号测量（显微镜）； FluorCam 7.0软件功能：自动实验方案设置向导，软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序多重（自动重复）实验对视野内的单个植物或样品进行动态分析对单独植物或样品，视野内的，可自动标记，用于区分从视野内的所有样品进行动态分析获取数据批量画面操作工具支持读取条形码可输出为Excel操作系统支持Windows 2000, XP, Vista FluorCam软件界面 技术规格：荧光参数F0、FM、 FV、 F0’、FM’、FV’、QY(II)、绝对PAR吸收值和从计算的参数PQ、FV/FM、FV’/FM’、Rfd、qN、qP、PAR吸收率、光合电子传递速率 (PS)等激发光源455nm、470 nm、505 nm、570 nm、605 nm、618nm、630 nm、735 nm和其它波长超级脉冲强度标准版：最大4000 µ mol(photons)/m² .s升级版：最大6000 µ mol(photons)/m² .s光化学光强度标准版：最大2000 µ mol(photons)/m² .s升级版：最大到3000 µ mol(photons)/m² .s滤光轮7位光源协议静态或动态，凹陷式定制实验方案可设置定时，专用语言和脚本CCD检测波长400~1000 nmCCD格式512×512，640×480和1392×1040像素A/D转换12 bit光谱灵敏度QE最大在540nm（~70%），50%滚降在400 nm和650 nm检出信号噪音RMS小于12e， 典型仅为10e满阱容量大于70000e成像频率最大50帧/秒Bios可升级固件数据交换端口USB2.0外部尺寸471mmx473mmx512mm内部尺寸450mmx450mmx400mm重量40 kg功率大约1100W电压90-240 V 产地：捷克 参考文献：BOURDAIS G., BURDIAK P., GAUTHIER A., ET AL. (2015) Large-Scale Phenomics Identifies Primary and FineTuning Roles for CRKs in Responses Related to Oxidative Stress. PLoS Genet,. Volume 11.DOI:10.1371/journal.pgen.1005373下载地址：点击下载更多相关期刊论文：密闭式植物荧光成像系统参考文献-英文版.pdf

玉研仪器作为专业小动物活体成像厂家，提供可见光、近红外二区、全光谱荧光活体成像设备，可实时观察并记录大小鼠荧光标记的精细分布与活动，进口科研级制冷CCD相机，配备温控升降平台，窄带宽OD6滤光轮实现精准光谱分离，广泛应用于肿瘤科研、基因治疗和药物研究，为生物医学研究提供了前所未有的直观视角和深入理解。产品简介：近红外二区小动物活体成像系统是新一代的具有900~1700 nm荧光波长探测范围的活体成像仪器，其克服了传统荧光成像难以在深层组织成像的问题，具有更深的穿透深度、更少的背景散射和生物组织自发光干扰、更高的信噪比，能够获得更高分辨率的图片。同时其也具有无创，成本低等优点，广泛应用于分析化学、化学生物学和生物医学领域，是基础生物研究，药物研发和临床应用中最为有效的实时成像手段之一。适用于小动物研究领域。 此外还有高分辨近红外二区活体显微镜可实现对样品的高分辨显微荧光成像。从细胞尺度的分子机理研究，到活体尺度的多器官协同作用进行深入的研究，为科学家提供一整套的跨尺度光学成像方案。恒光的光路系统具备升级3D（NIR-II光谱 ，共聚焦）的潜在优势。适用于小动物的细小组织与细胞层面研究。 产品原理：相对于传统的可见光(400～750 nm)和近红外一区(NIR I，750～900 nm)荧光成像技术，近红外二区(NIR II，1000～1700 nm)的发射波长更长，可显著降低生物组织内光子的散射，增强生物组织的光吸收，具有穿透深度大，空间分辨率高，速度快等优势，被誉为下一代荧光成像技术。穿透深度高于 15mm空间分辨率优于4um荧光寿命分辨率优于10us高速采集速度高于1000fps产品特点：近红外二区成像NIR-Ilin-vivo lmaging 近红外I区与II区小鼠颅内血管成像对比全光谱成像 Full Spectrum全光谱（可见光-近红外一区/二区）活体荧光成像系统，具备300-1700 nm双光路设计，可实现高灵敏度生物发光（bioluminescence）与荧光（fluorescence）成像。全视野 Cross-Scale首创的全视野成像能力，满足了从微观到宏观成像视野的需求（1.5-250 mm），极大丰富了用户的使用场景：肿瘤微环境、脑部精细成像、斑马鱼、眼部血管、神经成像、小鼠大鼠整体成像，到兔、犬、猴大动物的局部成像等均可轻松实现。 高灵敏度成像系统的核心相机均采用了业界知名的Teledyne Princeton Instruments的NIRvana系列，具有高灵敏度，低噪声，高速成像等优势，其量子效率与噪声抑制技术为高品质成像提供保证。可拓展X-ray / CT 模块市场上首台可嵌入小动物荧光成像系统的桌面式 X-ray激发/CT成像模块，系统顶部配置一块铅玻璃，在隔离射线辐射的情况下，让350-1700 nm的 光透射出射线腔，实现X-ray激发的荧光成像，CT-荧光三维共定位等。 荧光寿命与高精度激光器系统采用了高精度控制的电子门控激光器（下降沿优于900ns），方便用户在荧光强度成像与荧光寿命成像之间快速切换，而无需繁琐的硬件系统（如斩波器等），且荧光寿命精度可达15μs。 活体多模态成像设计采用模块化的结构设计，可进行后期功能扩展，整合近红外一区荧光成像，超声，光声，CT断层扫描，荧光寿命，PET-C，MRI等系统，实现多模态成像解决方案。其遮光外壳、上下机体可分离组合，带来更加自由的实验平台。 近红外二区荧光探针与众多科研院所合作，为用户提供丰富的荧光探针选择方案：小分子，量子点，AIE，稀土纳米探针等；可满足肿瘤靶向，血管造影，淋巴标记，细胞体内追踪，药物筛选，体内分布等众多应用。同时团队具有丰富的生物学实验设计与数据分析经验，可为用户提供生物成像的培训及N3服务。应用领域：NIR-II区荧光成像拓宽了荧光成像的应用范围，包括：肿瘤研究、血管成像、药物开发、靶向治疗、手术导航、肠道菌群成像、淋巴成像、脑科学、药理研究、药效评价及大分子药物药代动力学研究等众多领域。部分文献[1]Ji A, Lou H, Qu C, et al. Acceptor engineering for NIR-II dyes with high photochemical and biomedical performance[J]. nature communications, 2022, 13(1): 3815.[2] Dong S, Feng S, Chen Y, et al. Nerve suture combined with ADSCs injection under real-time and dynamic NIR-II fluorescence imaging in peripheral nerveregeneration in vivo[J]. Frontiers in Chemistry, 2021, 9: 676928.[3] Feng S, Chen M, Chen Y, et al. Seeking and identifying time window of antibiotic treatment under in vivo guidance of PbS QDs clustered microspheres based NIR-II fluorescence imaging[J]. Chemical Engineering Journal, 2023, 451: 138584.[4] Zhang X, Ji A, Wang Z, et al. Azide-dye unexpected bone targeting for near-infrared window ii osteoporosis imaging[J]. Journal of Medicinal Chemistry, 2021, 64(15): 11543-11553.[5] Yang S, Zhang J, Zhang Z, et al. More Is Better: Acceptor Engineering for Constructing NIR-II AIEgens to Boost Multimodal Phototheranostics[J]. 2022.[6] Qiu Q, Chang T, Wu Y, et al. Liver injury long-term monitoring and fluorescent image-guided tumor surgery using self-assembly amphiphilic donor-acceptor NIR-II dyes[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2022, 212: 114371.[7] Yang R, Bao G, Li H, et al. Lead/cadmium-free near-infrared multifunctional nanoplatform for deep-tissue bimodal imaging and drug delivery[J]. Materials Today Advances, 2022, 16: 100306.[8] Pan Y, He Y, Zhao X, et al. Engineered Red Blood Cell Membrane‐Coating Salidroside/Indocyanine Green Nanovesicles for High‐Efficiency Hypoxic Targeting Phototherapy of Triple‐Negative Breast Cancer[J]. Advanced Healthcare Materials, 2022, 11(17): 2200962.[9] Chen M, Shu G, Lv X, et al. HIF-2α-targeted interventional chemoembolization multifunctional microspheres for effective elimination of hepatocellular carcinoma[J]. Biomaterials, 2022, 284: 121512.

IMA激光荧光显微高光谱成像系统 IMA荧光（EL/PL）显微高光谱成像仪 高速读取荧光高光谱均化激光不会损伤细胞等样品非逐点扫描高速PL/EL Mapping 基于独特的体布拉格光栅滤波片技术（BTF）和光致发光成像技术，Photon etc公司最新推出的IMA激光荧光显微高光谱成像系统，采取革新的二维成像的方式，激光经过扩束后再经过匀化，将高斯分布的点激光扩展成平面均匀分布面激光，面激光均匀照射在样品上，可以直接获得整个样品的荧光高光谱信息。从而获得分子结构方面的信息。有别于传统的激光荧光显微高光谱系统以逐点扫描的方式，而是一次性的获取整个样品的光谱信息，故而只需要更短的成像时间以及具有更高的空间分辨率。 共焦荧光成像系统，共聚焦荧光成像系统，共焦荧光光谱成像系统，共焦荧光成像光谱仪系统，成像光谱仪，激光荧光成像系统， 荧光显微成像系统 系统参数：VISIR光谱范围400-1000nm900-1700nm光谱分辨率2.5nm(最小可到0.2nm)4nm（最小可到0.4nm）图像分辨率亚微米亚微米成像速度20x20μm in 1s @100X20x20μm in 1s @100X激发光源447 nm, 532, 635 nm（可选其他波长）808，980nm（可选其他波长）CCD科学级CCD，背照式CCD，EMCCD等InGaAs相机显微镜倒置或正置倒置或正置物镜20X，60X，100X20X，60X，100X 应用领域：NANOPARTICLES IN CANCER CELLSDark field illumination is commonly used for the analysis of biological samples containing nanomaterials that significantly scatter light. When combined to hyperspectral imaging, it becomes an exceptional tool to also detect the composition and the location of nanomaterials embedded in cells. IMATM, Photon etc.’s hyperspectral imager, can be equipped with a highly efficient dark field condenser and generate high contrast images of biological samples. The high throughput of Photon etc.’s hyperspectral filter allows the rapid acquisition of spectrally resolved high resolution images. Since the camera captures the whole area in the field of view, it is possible to collect spectral and spatial information in real time, with the possibility of recording spectrally resolved videos to follow the dynamics of cells and luminescent nanoscale components. PHySpecTM, Photon etc software, enables principal component analysis (PCA) in order to identify the smallest variations of single and aggregated nanoparticles. With the purpose of showing the capabilities of IMATM to analyse nanomaterials in biological systems, a sample of MDA-MB-23 human breast cancer cells has been tagged with 60 nm gold nanoparticles (GNPs) and exposed to a dark field illumination on the entire field of view (Figure 1). With a 60×objective, an area of 150×112 μm was imaged, with a step of 2 nm and an exposition time of 2 s per wavelength. The complete analysis took only a few minutes, for more than one million spectra, each of them covering the whole visible spectrum. Cells typically have a flat scattering spectrum, whereas GNPs show a sharp peak around 550 nm. Figure 2 illustrates the 550 nm image extracted from the dark field hyperspectral cube of the breast cancer. The GNPs are marked with a green colouring after PCA software processing. The magnification of a breast cancer cell (Figure 3a) and the spectra of the regions containing GNPs (some examples in Figure 3b) confirmed the presence of single 60 nm NPs (peak at 550 nm) and their aggregates (peaks red-shifted). The hyperspectral camera did not detect any GNPs in the areas between the cells. CHARACTERISATION OF SOLAR CELLS USING HYPERSPECTRAL IMAGER A new characterization method based on hyperspectral imaging recording spectrally resolved images allows the cartography of electroluminescence (EL) and photoluminescence (PL). From the data acquired, spatial variations of cell properties such as open circuit voltage and transport mechanisms were identified and characterized. Furthermore, the system was compared to a classical confocal microscope, showing significant gains in acquisition time. Spectrally resolved images provide considerable advantages such as, absolute calibration of intensity, micrometer scale resolution, and excitation and detection on a surface (no information loss from lateral diffusion and roughness). In luminescence imaging, absolute calibration is a main concern and is here done in two steps: first, an absolute calibration at a determined point (spatially and spectrally) with a laser, and then a relative calibration on the whole space and the whole spectrum, with a calibrated lamp coupled to an integrating sphere.The images rendered by IMATM are spectrally resolved luminescence images from multicrystalline CIS solar cell, offering means of studying its spatial inhomogeneities. On high efficiency GaAs solar cells, we got absolute measurements of EL and successfully investigated reciprocity relations. Our next step is to record quantitative maps of CIGS physical properties from PL and EL images, such as VOC , transport parameters and more. A confocal microscope coupled to a spectrometer provides similar data. The 532nm laser is focused onto the cell front contact, and the cartography of PL spectra is obtained by scanning the sample. The acquisition time with the imager is much faster. 150*150μm2 at 107 W/m2 would take hundreds of hours in confocal, but only 8min with IMA. Moreover, surface excitation and detection allow to get rid of diffusion and roughness troubles for quantitative analysis. MULTIPLEXING OF 17 SWCNTsNIR hyperspectral microscopy covers the detection range of 900-1700 nm and is ideal for the spatial and spectral identification and measurement of fluorophores that emit in the second biological window. For example, single wall nanotubes (SWNTs) emission bands are narrow (~ 20 nm) and each band corresponds to unique (n, m) species (chiralities). With IR hyperspectral microscopy, it is possible to separate these species, with single SWNT spatial resolution on surfaces, in live cells, and in vivo. Images obtained by IR hyperspectral microscopy can be used to study fluorescence and spectral heterogeneity from single SWNTs in complex environments, including live cells and tissues. Locate and identify single SWNTs chiralities Identify SWNTs by their IR spectra Separate single SWNT (emission band ~ 20 nm) Simultaneous imaging of all emitters Multiplexing with one laser source Access to second biological windowAttenuated tissue absorbance Higher depth of penetrationLess scatteringLimited autofluorescence Monitor spectral informationChanges in intensity of single emittersShifts in wavelengthSpectral bandwidth variations In vivo applicationsIn vivo imaging of multiplexed emittersIn vivo long term sensing