植物叶片叶绿素仪

[size=16px]　　叶绿素测定仪是一种用于测量植物叶片中叶绿素含量的设备。叶绿素是植物中进行光合作用的关键色素，它们吸收光能并将其转化为化学能以支持植物的生长和发展。以下是一般情况下使用叶绿素测定仪测量植物叶绿素相对含量的步骤：　　样本准备： 从要测量的植物中选取代表性的叶片样本。这些叶片应该是健康的、没有损伤的，并且尽可能避免太老或太嫩的叶片。　　叶片处理： 如果需要，将叶片处理成较小的块状或碎片，以确保测量时样本的均匀性。同时，避免过度损伤叶片，因为这可能会影响叶绿素的测量结果。　　提取叶绿素： 使用适当的提取液(比如乙醇、乙醚等)将叶片中的叶绿素提取出来。提取的过程通常需要在低温下进行，以防止叶绿素的降解。　　测量光吸收： 将提取液中的叶绿素溶液置于叶绿素测定仪中。这种仪器通过照射样本并测量样本对不同波长光的吸收来确定叶绿素的含量。最常见的方法是使用分光光度计，它可以测量不同波长下样本吸收的光强度。　　建立标准曲线： 使用已知浓度的叶绿素标准溶液，进行一系列测量以建立标准曲线。标准曲线可以用来将样本吸收的光强度值转换为叶绿素浓度值。　　测量样本： 使用同样的方法测量你的样本，获取其吸收的光强度值。　　计算叶绿素含量： 根据标准曲线，将样本的光吸收值转化为叶绿素浓度。如果你感兴趣的是叶绿素的相对含量，可以将不同样本的叶绿素浓度与标准样本进行比较。　　请注意，使用叶绿素测定仪需要一定的实验操作技能和基本的化学常识。在操作之前，云唐建议仔细阅读仪器的操作手册，并根据实际情况调整实验步骤。另外，确保在实验过程中遵循安全操作规范，使用适当的防护措施。[/size]

[size=16px]　　叶绿素测定仪通常用于测量植物叶片中的叶绿素含量，而不是直接测量氮含量。然而，叶绿素含量与植物的氮素含量之间存在一定的关联，因为氮是叶绿素分子中的一个重要组成部分。叶绿素测定可以作为一种间接方法来估计植物的氮含量。　　要测量植物的氮含量，通常可以使用以下方法之一：　　Kjeldahl法：这是一种传统的分析方法，可以测量有机物中的氮含量。样品首先被消化，然后氮被转化为氨，并通过滴定酸来测量氨的含量，从而计算样品中的氮含量。　　Dumas法：这是一种更现代的方法，类似于Kjeldahl法，但使用燃烧而不是消化来将样品中的有机氮转化为氨。然后通过化学反应测量氨的含量，从而计算氮含量。　　[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱[/color][/url]法：这是一种通过[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱仪[/color][/url]来分析样品中的氮化合物的方法。样品在高温条件下分解产生氮气，然后氮气被送入[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱仪[/color][/url]进行分析。　　光谱法：虽然叶绿素测定仪主要用于叶绿素含量测量，但某些光谱数据也可以用于估计氮含量。光谱数据中的某些特征可以与氮含量之间存在的关联进行校准，从而进行估算。　　请注意，这些方法可能需要特定的实验室设备和技术，并且样品的处理和分析可能会有一定的复杂性。云唐建议选择合适的方法取决于你的实验目的、设备可用性以及实验室的专业知识。如果你不熟悉这些分析方法，最好是在有经验的人的指导下进行实验。[/size]

[size=16px]　　叶绿素测定仪是一种用于测量植物叶片中叶绿素含量的设备。它在植物生理学、生态学和农业研究中非常有用。然而，是否认为叶绿素测定仪好用取决于具体的使用情境和需求。　　以下是一些使用叶绿素测定仪的优点和考虑因素：　　优点：　　快速准确： 叶绿素测定仪能够快速测量叶片中的叶绿素含量，提供准确的结果，节省时间和人力成本。　　非破坏性： 使用叶绿素测定仪通常不需要摘取植物叶片，因此不会对植物造成破坏，可以进行长期监测。　　数据量大： 叶绿素测定仪能够高通量地收集数据，适用于大规模实验和研究。　　定量分析： 通过叶绿素测定仪，您可以获取叶绿素含量的定量数据，有助于更深入地理解植物生长和环境因素之间的关系。　　考虑因素：　　成本： 叶绿素测定仪可能需要较高的投资成本，包括设备购买和维护费用。　　操作复杂性： 操作叶绿素测定仪可能需要一定的技术培训，特别是对于没有相关经验的人员。　　适用范围： 叶绿素测定仪主要用于叶绿素含量的测量，如果您需要其他植物参数的数据，可能需要其他类型的设备或方法。　　样本处理： 样本的准备和处理可能会影响测量结果的准确性，需要注意标准化的操作步骤。　　综合考虑以上因素，如果您在植物研究、农业实验或环境监测等领域需要准确测量叶绿素含量，叶绿素测定仪可能会非常有用。然而，在购买之前，云唐建议您仔细评估您的研究需求、预算以及操作和维护的可行性。[/size]

叶绿素测定仪是一种用于测量植物或其他生物样品中叶绿素含量的仪器。叶绿素是植物中的关键色素之一，它在光合作用中扮演着重要的角色，将光能转化为化学能。测定叶绿素含量可以用来评估植物的生长状况、健康状态以及光合作用效率。　　叶绿素测定仪在许多领域都有广泛的应用，主要涉及到植物生长、生态系统研究、环境监测和农业等。以下是叶绿素测定仪的一些主要应用范围：　　植物生长与健康评估： 叶绿素测定仪可以用于评估植物的健康状况和生长状态。通过测量叶绿素含量，可以推断出植物的光合作用活性、养分吸收能力以及受到的环境影响。　　农业领域： 叶绿素测定仪在农业中被用来监测作物的生长情况和健康状态。这有助于决定适宜的施肥、灌溉和其他农业管理措施，以提高农作物产量和质量。　　生态学研究： 叶绿素测定仪在生态系统研究中非常有用。通过对植物叶片和水体中叶绿素的测量，可以了解生态系统的光合作用活动、能量流动和生态链的结构。　　水质监测： 叶绿素测定仪可用于评估水体中的藻类和蓝藻数量，从而判断水体的富营养化程度和水质。这对于保护水体生态平衡和提供饮用水质量至关重要。　　环境污染监测： 叶绿素测定仪可以用于检测污染物对植物生长和光合作用的影响。它们可以帮助监测工业排放、空气污染和土壤污染等对环境的影响。　　生物学研究： 叶绿素测定仪在生物学领域中用于研究不同生物体中叶绿素的含量和分布，如藻类、植物、海洋生物等。　　教育与科普： 叶绿素测定仪也可用于教育和科普活动，帮助人们理解光合作用的基本原理以及叶绿素在生态系统中的作用。　　总之，叶绿素测定仪在植物学、生态学、环境科学、农业和生物学等多个领域中都发挥着重要作用，帮助人们更好地了解和评估生态系统、植物健康和环境状况。

请教各位元素分析仪可以测定植物叶片的全Ｎ　吗？用来计算光合Ｎ利用率好象一般都是用凯式半微量定氮法，凯式定氮法请问他们有什么区别吗？什么做的好呢？

由于实验需要，需测量植物中的相关物质，用甲醇提取后，提取液成墨绿色，猜想是叶绿素含量太多。而叶绿素非实验所需，需要除去。请问各位色友帮忙解决下。 如果说用石墨烯及活性碳， 我的样品比较少就1ml,能用活性碳吗，能得话如何操作呢。

[url=http://www.bio-equip.com/show1equip.asp?equipid=4021089&division=1601]手持式植物叶绿素测定仪[/url]功能描述：[img]http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09501.gif[/img]1、测量结果可以制定不同的植物名称，总共可以储存500个名称；2、可以存储最多5000个测量数据；3、可删除最近的或所有的测量数据；4、通过USB接口可以将测量数据保存到电脑中，也可以将植物名称上传到仪器中主要特点：1、手持式；2、体积小重量轻；3、易于使用；4、专为绿叶植物设计；5、非浸入式；6、1s内即可测量；7、USB端；8、免费Windows软件；9、内部存储容量大；10、电池使用寿命大。

请问是否有一种仪器，能够测植物光合、叶绿素、叶面积，等对植物生理的检测系统

钨灯丝电镜想拍植物叶片看看细胞结构，想知道怎么制样？

请问测定“植物叶片水势”的仪器？哪里有？

背景简介小麦灌浆期叶片的持绿功能期对籽粒产量具有重要意义，是小麦育种专家极为重视的表型特征,目前小麦叶片衰老态势主要通过叶色、绿叶相对面积以及叶绿素荧光等方法来评价前两种方法受观测者的主观感受影响，后者则受太阳辐射等因素影响，且叶室夹具容易对叶片造成损伤低场核磁共振以1H 为探针，可用于探测植物水分生理状态。比如植物叶片的核磁共振T2弛豫特性( NMＲ T2 Ｒelaxivity) 与含水率、水分分布、蒸腾活性以及水势等密切相关。与其他技术相比，核磁共振技术具有检测快速、检测方式多样、无损和非接触等优点。利用核磁共振T2弛豫谱技术和磁共振成像技术，建立小麦植株的核磁共振活体检测系统，研究小麦叶片含水率、叶绿素含量与核磁共振T2弛豫谱的关系，并在此基础上评价核磁共振T2弛豫谱和磁共振成像技术反映叶片衰老态势的有效性。http://pic.yupoo.com/niumagqw2/FCKpAOb9/13DK4k.png小麦叶片的T2弛豫谱幅度和含水率随日序的变化如图2 所示。5 月下旬为陕229 灌浆乳熟期，该时期倒2 叶进入降解期，叶色开始变黄，而旗叶亦有衰老迹象，叶色亦开始变淡，但是T2 弛豫谱幅度和含水率并未出现明显变化。6 月上旬陕229 灌浆趋近结束，叶片进入衰亡期，T2弛豫谱幅度和含水率均出现显著减小。http://pic.yupoo.com/niumagqw2/FCKpCldR/DRLQ6.png小麦叶片的平均T2弛豫时间和叶绿素含量的日序变化如图3 所示。叶片在衰老前期( 6 月1 日之前) 平均T2弛豫时间逐渐增大，叶绿素含量逐渐减小，旗叶的叶绿素含量大于倒2 叶，而且旗叶的平均T2弛豫时间相对较小; 6 月4 日选取的陕229 植株均有倒2 叶完全衰亡，其平均T2弛豫时间和叶绿素含量均达到最小值，而旗叶仍保持一定的含水率，虽然其叶绿素含量亦基本达到最小值，但平均T2弛豫时间仍未到衰减阶段。http://pic.yupoo.com/niumagqw2/FCKpCqOU/qLGHx.png同时，核磁共振成像技术可以对活体小麦样品进行成像分析http://pic.yupoo.com/niumagqw2/FCKpCyvo/82VIT.png参考文献：“小麦叶片衰老态势核磁共振分析” 《农业机械学报》2014年4月 第45 卷第4

各位大佬请教个问题 使用钼蓝比色法测定植物叶片无机磷 为什么不显色呢？

叶绿素 　　我们还只是有了光合作用过程的轮廓。详细情况又是怎样的呢？1817年，法国的佩尔蒂埃和卡芳杜分离出了一种最重要的植物产物，就是这种产物使绿色植物成为绿色的。因此，他们把这种化合物叫做叶绿素（源自希腊语，意思是“绿色的叶子”）。（后来他们还发现了奎宁、马钱子碱、咖啡碱及一些其他特殊的植物产物。）而后，1865年，德国植物学家萨克斯证明，叶绿素并不是一般地弥散在所有的细胞中（尽管叶子看上去绿色很均匀），而是局限在小的亚细胞体内。这种亚细胞体后来称做叶绿体。　　现在问题清楚了，光合作用是在叶绿体内进行的。叶绿素对光合作用过程是必不可少的，但是只有叶绿素是不够的。不论怎样小心地提取，所得到的叶绿素本身在试管里都不能催化光合反应。叶绿体通常比线粒体大得多。有些单细胞植物，每个细胞只有一个大的叶绿体。但是，大多数植物细胞含有40来个较小的叶绿体，每一个叶绿体的长和粗都是一般线粒体的2～3倍。　　叶绿体的结构看上去比线粒体更为复杂。叶绿体的内部是由许多伸展在壁与壁之间的薄膜组成的。这些薄膜叫做片层。在大多数种类的叶绿体中，这些片层在一些地方变厚变深以形成基粒，叶绿素分子就是在这些基粒里发现的。　　如果把基粒内的片层放在电子显微镜下研究，会看到它们也好像是由刚能看得见的微小单位组成的，就像浴室地面上的瓷砖一样铺得整整齐齐。每一个这样的单位可能就是一个进行光合作用的单元，含有250～300个叶绿素分子。　　叶绿体比线粒体更难完整地分离出来。直到1954年，波兰血统的美国生物化学家阿诺恩才从破碎的菠菜叶细胞中获得十分完整而且能够把全部光合反应进行到底的叶绿体。　　叶绿体不仅含有叶绿素，而且含有全套的酶及有关的物质，它们都恰当而巧妙地排列着。叶绿体还含有细胞色素。依靠细胞色素，它可以把叶绿素捕捉到的光能，通过氧化磷酸化，转变成ATP（腺苷三磷酸）。　　叶绿体的情况如此，那么，叶绿体中最有代表性的物质叶绿素的结构又是什么样的呢？在几十年的时间里，化学家们利用他们掌握的各种工具来研究这种关键的物质，但进展很慢。最后，1906年，德国的威尔施泰特（即后来发现色谱法的那个人，但他错误地坚持酶不是蛋白质）证明，叶绿素分子的中心部分是金属镁。（由于这项发现及其他关于植物色素的研究，威尔施泰特获得1915年的诺贝尔化学奖。）威尔施泰特和H．费歇尔继续研究叶绿素分子的结构，这个任务用了整整一代人的时间才告完成。到20世纪30年代，已经确定，叶绿素有一个基本上和血红素（H.费歇尔曾破译的一种分子）相类似的卟琳环结构。血红素在卟琳环的中心有一个铁原子的地方，叶绿素则有一个镁原子。　　R.B.伍德沃德消除了对于这一点的一切疑虑。这位合成大师1945年合成了奎宁；1947年合成了马钱子碱；1951年合成了胆固醇；1960年他又创造了新记录，合成了一种与威尔施泰特和H．费歇尔所提出的分子式完全符合的分子，而且，请注意，这种分子具有从绿叶中分离出来的叶绿素的全部性质。由于这项成就，R.B.伍德沃德获得了1965年的诺贝尔化学奖。　　叶绿素在植物里到底催化了什么反应？直到20世纪30年代，人们所知道的还只是二氧化碳和水进去，氧出来。分离出来的叶绿素不能发生光合反应，这个事实使研究工作更加困难。只有完整的植物细胞（至少也要完整的叶绿体）才能进行光合反应；因此，这个被研究的系统是非常复杂的。　　作为最初的猜想，生物化学家们认为，植物细胞首先利用二氧化碳和水合成葡萄糖（C6H12O6），然后利用这种葡萄糖，加上土壤中的氮、硫、磷和其他无机元素，继续合成各种植物物质。　　从理论上看，葡萄糖似乎可能是通过一系列步骤形成的，首先把二氧化碳中的碳和水化合（放出二氧化碳中的原子氧），然后再把这种化合物（CH2O，即甲醛）聚合成葡萄糖。六个甲醛分子可以合成一个葡萄糖分子。　　这种用甲醛合成葡萄糖的过程实际可以在实验室里完成，但方法非常麻烦。人们推测，植物可能具有加速这种反应的酶。诚然，甲醛是一种毒性很大的化合物，但是化学家们猜想，甲醛变成葡萄糖的速度非常快，因而使植物在任何时候只能含有极少量的甲醛。这种甲醛学说是拜耳（靛蓝的合成者）于1870年首先提出的，流传了两代人的时间，只是因为没有一种更好的学说取代它。　　1938年，鲁宾和卡门着手用示踪剂探测绿色叶子的化学作用，于是又开始重新研究这个问题。利用氧-18（氧的一种不常见的稳定同位素），他们获得一个轮廓清楚的发现：结果证明，当用氧一18只标记上施于植物的水时，植物所放出的氧就带有这种标记；当用氧-18只标记上供给植物的二氧化碳时，植物所放出的氧就不带有这种标记。简单地说，这个实验表明，植物所放出的氧来自水分子，而不是来自二氧化碳分子。甲醛学说认为植物放出来的氧来自二氧化碳，那是错误的。　　鲁宾和他的同事试图通过用放射性同位素碳-11（当时知道的惟一放射性碳）标记二氧化碳的方法，来追踪二氧化碳在植物里的命运。但这个尝试没有成功。一则碳-11的半衰期只有20．5分钟；二则他们当时还没有能够快速而彻底地分离植物里单个化合物的方法。　　但是，20世纪40年代初期，他们有了必要的工具。鲁宾和卡门发现了长寿命的放射性同位素碳-14，这样就可以通过一系列的反应来追踪碳。同时，纸色谱法的发展为简易而彻底地分离复杂的混合物提供了一种手段。（实际上，放射性同位素可以使纸色谱法得到很好的改进；纸上表示示踪剂存在的放射性斑点，会使放在它下面的底片产生黑点，因此，色谱图就能拍下自己的照片，这种技术叫做放射自显影。）　　第二次世界大战以后，由美国生物化学家卡尔文领导的另一个小组接着进行研究。它们把微小的单细胞植物（小球藻）在含有碳-14的二氧化碳里暴露一小段时间，为的是让它只进行最初阶段的光合作用。然后他们把这些植物细胞捣碎，在色谱图上把它们的物质分离，并进行放射自显影。　　他们发现，即使这些细胞在有标记的二氧化碳中仅暴露1又 1/2分钟，放射性碳原子就会在细胞内15种不同的物质中出现。通过缩短暴露的时间，吸收放射性碳的物质的数目减少了。最后他们断定，细胞吸收二氧化碳的碳-14而形成的第一种（或接近第一种）化合物是磷酸甘油。（他们从未探测到任何甲醛，因此，那个延续了多年的甲醛学说便悄悄地从画面上消失了。）

扫描电镜能否观察植物细胞器尊敬的老师们，大家好！我做了植物叶片的断面，看了其中的细胞器，发现细胞里面全都是大小不一得圆颗粒，但是分不清是什么细胞器，请问扫描电镜能否观察细胞器，由于细胞经过干燥处理后，里面的细胞器自然就分散开来，细胞仪破碎后，细胞器全部掉出，请问大家有没有什么好办法可以看见细胞里面的细胞器呢？补充一下：如果想用扫描电镜观察植物叶片的断面，应当怎么操作？在固定之前就用刀切断，还是干燥完了之后切呢？我在干燥之后掰断的叶片，发现细胞都是破的，而且很不整齐。

GCMS测植物叶片代谢产物（氨基酸、有机酸、糖））前，样品处理的标准化，应该怎么处理植物叶片，从采摘下后，越详细越好，非常感谢

帮做生物的同学问的，在做植物生理综合实验的时候，我们种了一批种子（同一品种），长差不多后一组4℃处理2-3天，另一组37℃恒温培养。在后来生理指标测定中有一项是测定叶绿素含量变化，我们采用的是乙醇提取，然后测定吸光值。我们一共三个大组共同进行，实验结果惊艳了我们……有两组数据结果显示，低温处理的幼苗在665nm和649nm的吸光值都大于正常幼苗。我觉得这一结果不太可信，我就重新选叶片测了一次，结果还是如此。然后我查了好多文献资料，他们测定结果都是减少，这一结果让我也觉得很合理。但是我们在实验中并没有什么操作上的问题，使用的也是同一台分光光度计，结果为什么会这样呢？求大神解答啊……

光照培养箱介绍光对植物生长分解叶片空气中碳 光照培养箱介绍：绿色植物需要光进行光合作.居室的进光量变化极大,它不仅依窗户的大小,位置不同而不同,而且依季节,天气,室外遮蔽光线的树和建筑物而变化. 南墙:南墙的玻璃门或落地窗能充分满足采光要求.在南面窗的前面白天都有明亮的光线,但光线的强弱或距离窗户的远近有关,离窗户越远,光线越弱.在窗户两侧的光线相对较弱.此处适合摆放一些喜阳的植物,尤其适合摆放株型较高大的绿色植物,它能充公利用从地板到天花板整个空间的光线. 当然，空气中所有碳和水中所有氢不一定都是植物可利用的，它们必须保持一定核旋速以下，否则不可能在植物体中结晶，旋速高了还会蒸发出体外。光照培养箱介绍这就是为什么高海拔或岗地不利植物生长的重要原因，这些地方不利重气体停留或堆积，光照度好的低海拔或洼地是植物生长的良好环境，当然植物生长还要一定的风摆作用，否则不利营养输送。 植物生长，光起到分解叶片内空气中的碳，分解根部输送来的水中氢，然后碳氢输送到冷环境（植物背光处）结晶形成植物体。所以说：光对植物的作用不是“光合”而是“光解”，因此，要想让植物生长的快必须提高上下温差或昼夜温差，水和化肥就是用来降低根部温度的，当然水中低能氢是植物必须的。农家肥不能为植物提供必须营养，它的作用只是培养微生物，利用微生物活动提高土壤透气透水性。 信息来自：光照培养箱 人工气候箱

叶绿素a存在于一切独立营养植物中，是一种能将光合作用的光能传递给化学反应系统的惟一色素。因此，叶绿素a就成为水中有机物的源泉。通过测定叶绿素a，可以了解海洋、湖泊和河流中植物性浮游生物的现存量和基础生产量，可掌握水体中藻类现存量。因此，叶绿素a指标是评价水体富营养化程度最直接有效的方法，也是目前科学地预测其发展趋势的有效方法。根据实测资料分析，当叶绿素a含量从常量上升至10 mg／m3以上，并有迅速增加的趋势，就可预测水体即将发生富营养化。(一)叶绿素a的分光光度法测定在一定量的水样中添加1％碳酸镁悬浮液1 mL，充分搅匀，用玻璃纤维滤纸或微孔滤膜过滤。若不能立即提取，将带样品的滤膜放人冰箱保存(1～2 d)。将载有藻类的滤膜放人研钵中，加入90％丙酮6～7 mL，研磨至呈糊状，再用90％丙酮溶液洗入具塞刻度离心管中，密封，放置暗处静置萃取6～20 h。以3500～4000r／min转速离心lO～15 min，取上清液转入1 cm比色皿中，以90％丙酮溶液为参此，于波长665 nm和750 nm处测吸光度，然后加入几滴l mol／L盐酸酸化，于波长665 nm和750 nm处再测吸光值。叶绿素a浓度计算公式为：Chla=27．3×665一E750)一(A665一A750)]×V丙酮／V水样式中：Chla——叶绿素a含量(μg／L)；E665,E750——丙酮萃取液分别于波长665 nm和750 nm的吸光度；A665,A750——丙酮萃取液酸化后分别于波K 665 nm和750 nm的吸光度；V丙酮——丙酮萃取液的体积，mL；V水样——水样过滤的体积，L。(二)叶绿素a的荧光法测定适合于藻类较少的贫营养湖泊或外海洋中的叶绿素a的测定。基本原理是，当丙酮提取液经紫外线照射时，叶绿素a显现其固有的红色荧光特征，其浓度与荧光强度存在一定的规律性，因此可定量测定叶绿素a的含量。由于所用的光源强度高，故荧光法的灵敏度比分光光度法约高两个数量级。[/td][/tr][/table]

我需要把叶子所有的颜色去除，包括叶绿素、叶黄素以及其他色素。我有2组叶片，需要进行不同的处理，最后达到2个效果：一部分叶片我需要它们变透明。另一部分叶片我需要他们被漂白。 我已经尝试用乙醇泡叶片，在不同的浓度中进行梯度脱水，这个过程一方面脱去叶绿素，另一方面把水分置换出来。再放入和乙醇相溶的透明剂和漂白剂进行浸泡，置换出叶片里的乙醇。我发现泡过的叶片只是脱去了一部分绿色素。但叶子仍然残留有色素，并非完全透明。至于漂白，我准备尝试双氧水，但是不知道漂白效果稳定否。大家帮我看看我现在做的方法对不对 ？请告诉我效果比较稳定持久的透明剂和漂白剂。当然，如果是有毒危险物质也请顺带说明。其实我只要达到下面2个目的就行 1.一是要使叶片透明，如果大家有更好的方法，请告诉我具体步骤和需要的材料。（注意是透明，不含任何色素） 2.清告诉我漂白叶片需要的材料及方法步骤。（请仔细考虑漂白后效果的稳定性） 诚求善解.谢谢了！

[font=宋体]链接：[/font]https://bbs.instrument.com.cn/topic/3239640[font=宋体]问题描述：[/font][font=宋体][color=black][back=white]测量植物中的相关物质，用甲醇提取后，提取液成墨绿色，猜想是叶绿素含量太多。而叶绿素非实验所需，需要除去。如果用石墨烯及活性碳，样品比较少就[/back][/color][/font][color=black][back=white]1ml[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]，能用活性碳吗？[/back][/color][/font][font=宋体]解答[/font]:[font=宋体][color=black][back=white]（[/back][/color][/font][color=black][back=white]1[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]）用石油醚或者环己烷萃取，一般是[/back][/color][/font][color=black][back=white]1:1[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]的比例，然后再反萃，反萃就是用初始溶剂，这里应该是甲醇，再萃取一下你萃取后的石油醚层，提高下回收率。[/back][/color][/font][font=宋体][color=black][back=white]（[/back][/color][/font][color=black][back=white]2[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]）可以用[/back][/color][/font][color=black][back=white]Carb[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]（石墨碳），在农残检测中都用来除叶绿素，效果很好。[/back][/color][/font][font=宋体][color=black][back=white]（[/back][/color][/font][color=black][back=white]3[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]）如果样品量大，可以用[/back][/color][/font][color=black][back=white]SPE-DEX4790[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]，膜过滤及[/back][/color][/font][color=black][back=white]SPE[/back][/color][font=宋体][color=black][back=white]技术，专门针对这样的问题。[/back][/color][/font]以上内容来自仪器信息网《样品前处理实战宝典》

spad值分析烟叶氮元素含量 在一定范围内，spad值分析氮素营养与烟叶叶片的叶绿素含量、颜色、内在化学品质和香气品质存在着相关关系，而叶绿素含量随着叶片部位和成熟度的提高而降低。烤烟对养分变化反应敏感，为了获得高产优质的烟叶，生产上通常将烤烟叶片叶色变化作为营养管理和烟株氮素营养状况跟踪和烟叶成熟度判断的重要指标。　使用叶绿素计来进行对烟叶的spad值进行测定，同时使用传统的叶绿素提取法来进行对植物的叶绿素含量进行测定，两者进行比较发现，植物的叶绿素含量与spad值之间是成正比关系的。同时对于烟叶的不同生长期的叶片进行研究，发现烤烟叶片的叶绿素含量因不同品种、不同氮肥施用水平、不同叶位、同一叶位的不同部位以及不同成熟度会有差异，要根据具体的生产目的和试验要求采用相应的测定方法。在进行对烟叶的叶绿素含量进行测定的时候要进行选择比较有代表性的，以此来进行测定烟叶的叶绿素含量，以此来进行保证测量的准确度。 通过使用常规的方法来进行测量苹果中叶绿素含量与使用叶绿素测量仪来进行测量spad值来进行比较，发现叶片SPAD值与其叶绿素含量间均存在正相关关系,随着SPAD值的增加，叶绿素含量也呈增加趋势。说明苹果叶片的SPAD值基本能反映出叶绿素含量的水平,可根据SPAD值判定叶绿素含量的高低。但不同品种相关系数存在差别。就以嘎啦苹果为代表进行进一步的研究发现spad值叶绿素总量之间呈线性关系，其SPAD值与叶绿素a、叶绿素b和叶绿素总量之间的相关系数分别达到0. 512、0.376和0.845。 SPAD502叶绿素仪 spad值

看了一篇文章，说植物吸收汞的主要方式是通过叶片吸收的（室外，垃圾焚烧厂附近），不知道是不是因为汞易挥发的原因？那么对于其他重金属呢？pb、cd？请大家给个解答

[align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

一般在用SPE处理植物样品时常出现叶绿素被淋洗下来，使得样品不能进GC-MS，有没有哪位大侠有成功去除叶绿素的成功经验，谢谢分享。期待ing。。。。[em09505][em09505][em09505][em09505][em09505][em09505][em09505]