都知道HJ/T 347-2007(试行)是推荐方法标准,粪大肠菌群测定里面的复发酵,方法中是要求用44.5±0.5摄氏度的水浴锅,那可不可以改成用44.5±0.5恒温培养箱,我想恒温培养箱总比水浴锅要稳定吧。
1.样品的保存采样用的容器使用前应盖好瓶盖,用牛皮纸将瓶盖和瓶颈处包裹好,置干燥箱160℃-170℃干热灭菌2h,或用高压蒸汽灭菌器121℃灭菌15min。采样后水样的正确保存也很重要,如保存不当可使样品中的大肠菌群细菌死亡或在一定条件下再生长,这些都将影响检测结果的准确性。检测室接到水样后,应立即检测,如因故不能检测时,应立即将样品置于冰箱内(2℃-10℃)并于2小时内检测。 2.培养温度的要求总大肠菌群中的细菌除生活在肠道中外,在自然环境中的水与土壤中也经常存在,但此等在自然环境中生活的大肠菌群培养的最合适温度为25℃左右,如在37℃培养则仍可生长,但如将培养温度再升高至44.5℃,则不再生长,而直接来自粪便的大肠菌群细菌,习惯于37℃左右生长,如将培养温度升高至44.5℃仍可继续生长。因此,可用提高培养温度的方法将自然环境中的大肠菌群与粪便中的大肠菌群区分,两种方法也都基于此理。将接种好的样品或装有滤膜的培养基放入生化培养箱时,箱内温度一定要达到所要求的温度(44.5±0.5℃)时,方可放入。如用恒温水浴箱时,其水面要高于接种物面,放滤膜的培养皿要沉到水浴箱底部。 3.加氯水样的处理经氯处理消毒过的水样,水中含有一定量的余氯,使大肠菌群处于受损或受抑制状态,在采集水样时应提前在采样瓶中加硫代硫酸钠,硫代硫酸钠可以脱氯,使受损的细菌得以复苏与修复,从而避免出现计数结果偏低甚至假阴性的现象。此外余氯对滤膜法培养的细菌其抑制作用尤为明显,所以抽滤时应对水样进行大量无菌水稀释,以减少余氯的残留。 4.培养物质的制备与保存 ⑴.多管发酵法所使用的培养液在分装于各发酵管中后,应将发酵管尽快放于高压蒸汽灭菌器中,在115℃灭菌20min(注意:这个温度也应控制好,既达到灭菌的作用,还要防止培养物质分解流失),然后贮存于冰箱或暗处备用。 ⑵.滤膜法所采用的M-FC培养基多使用外购的成品,培养基中苯胺蓝的纯度和质量往往影响菌落的颜色,因此,无菌包装的成套培养基在使用前,最好先接种典型粪大肠菌,以观察对比菌落的颜色,来鉴定其稳定性。 5.结果统计 ⑴.多管发酵法的结果是根据不同接种量的发酵管所出现阳性结果的数目,从MPN表中查得相应的MPN指数,来计算每升水中粪大肠菌群细菌的MPN值。MPN是“MostProbableNumber”的缩写,指最大可能数,它是根据统计学理论,估计水体中的菌群密度和卫生质量的一种方法,所以准确判断不同接种量发酵管的阳性数是非常重要的,否则将导致较大偏差。 ⑵.滤膜法的结果是计数滤膜上呈蓝或蓝绿色的菌落,来计算出每升水样中的粪大肠菌群数。所以为便于计数,减少误差,理想的水样体积是一片滤膜上生长20-60个粪大肠菌群菌落。(来源于www.ibuy17.com麦仪网)
无菌室:超菌台、漩涡振荡器(用于打散孢子)、操作平台(放三角瓶等)配料间:秤、物料架、搅拌器、冰箱摇床间:摇床、恒温恒湿机组消毒间:消毒锅、烘箱相关诱变设备:紫外灭菌箱、搅拌器、温控装置其它:培养箱、超低温冰箱、离心机、检验室、洗瓶间、物料间、自动罐....... 生物发酵实验室包括基础研究和中试研究两部分。主要仪器设备包括:高效液相系统、微生物鉴定系统、生物分子纯化系统、基因工程仪器、小试发酵罐(15L、16L和50L)、中试发酵线(100L种子罐、1000L种子罐、5000L发酵罐、2000L配料罐、200L补料罐、4000L储罐、100L消泡液罐、200L酸罐、200L碱罐)中试后处理设备(板框过滤机、旋转真空干燥机、真空薄膜浓缩设备、混合机、粉碎机)。http://bbs.bbioo.com/data/attachment/forum/month_0809/20080913_a3315892fa93bc4e21b6eWHHE60URMvx.jpg
培养箱 生化培养箱在多管发酵法注意事项 1.加氯水样的处理经氯处理消毒过的水样,水中含有一定量的余氯,使大肠菌群处于受损或受抑制状态,在采集水样时应提前在采样瓶中加硫代硫酸钠,硫代硫酸钠可以脱氯,使受损的细菌得以复苏与修复,从而避免出现计数结果偏低甚至假阴性的现象。此外余氯对滤膜法培养的细菌其抑制作用尤为明显,所以抽滤时应对水样进行大量无菌水稀释,以减少余氯的残留。 2.培养温度的要求总大肠菌群中的细菌除生活在肠道中外,在自然环境中的水与土壤中也经常存在,但此等在自然环境中生活的大肠菌群培养的最合适温度为25℃左右,如在37℃培养则仍可生长,但如将培养温度再升高至44.5℃,则不再生长,而直接来自粪便的大肠菌群细菌,习惯于37℃左右生长,如将培养温度升高至44.5℃仍可继续生长。因此,可用提高培养温度的方法将自然环境中的大肠菌群与粪便中的大肠菌群区分,两种方法也都基于此理。将接种好的样品或装有滤膜的培养基放入生化培养箱时,箱内温度一定要达到所要求的温度(44.5±0.5℃)时,方可放入。如用恒温水浴箱时,其水面要高于接种物面,放滤膜的培养皿要沉到水浴箱底部。 3.培养物质的制备与保存 ⑴.多管发酵法所使用的培养液在分装于各发酵管中后,应将发酵管尽快放于高压蒸汽灭菌器中,在115℃灭菌20min(注意:这个温度也应控制好,既达到灭菌的作用,还要防止培养物质分解流失),然后贮存于冰箱或暗处备用。 ⑵.滤膜法所采用的M-FC培养基多使用外购的成品,培养基中苯胺蓝的纯度和质量往往影响菌落的颜色,因此,无菌包装的成套培养基在使用前,最好先接种典型粪大肠菌,以观察对比菌落的颜色,来鉴定其稳定性。 4.样品的保存采样用的容器使用前应盖好瓶盖,用牛皮纸将瓶盖和瓶颈处包裹好,置干燥箱160℃-170℃干热灭菌2h,或用高压蒸汽灭菌器121℃灭菌15min。采样后水样的正确保存也很重要,如保存不当可使样品中的大肠菌群细菌死亡或在一定条件下再生长,这些都将影响检测结果的准确性。检测室接到水样后,应立即检测,如因故不能检测时,应立即将样品置于冰箱内(2℃-10℃)并于2小时内检测。 5.结果统计 ⑴.多管发酵法的结果是根据不同接种量的发酵管所出现阳性结果的数目,从MPN表中查得相应的MPN指数,来计算每升水中粪大肠菌群细菌的MPN值。MPN是“MostProbableNumber”的缩写,指最大可能数,它是根据统计学理论,估计水体中的菌群密度和卫生质量的一种方法,所以准确判断不同接种量发酵管的阳性数是非常重要的,否则将导致较大偏差。 ⑵.滤膜法的结果是计数滤膜上呈蓝或蓝绿色的菌落,来计算出每升水样中的粪大肠菌群数。所以为便于计数,减少误差,理想的水样体积是一片滤膜上生长20-60个粪大肠菌群菌落。培养箱
在发酵生产过程中,种子制备的过程大致可分为两个阶段:(1)实验室种子制备阶段(2)生产车间种子制备阶段 一、实验室种子的制备实验室种子的制备一般采用两种方式:对于产孢子能力强的及孢子发芽、生长繁殖快的菌种可以采用固体培养基培养孢子,孢子可直接作为种子罐的种子,这样操作简便,不易污染杂菌。对于产孢子能力不强或孢子发芽慢的菌种,可以用液体培养法。(一)孢子的制备1,细菌孢子的制备细菌的斜面培养基多采用碳源限量而氮源丰富的配方。培养温度一般为37℃。细菌菌体培养时间一般为1~2天,产芽孢的细菌培养则需要5~10天。2,霉菌孢子的制备霉菌孢子的培养一般以大米、小米、玉米、麸皮、麦粒等天然农产品为培养基。培养的温度一般为25~28℃。培养时间一般为4~14天。3,放线菌孢子的制备放线菌的孢子培养一般采用琼脂斜面培养基,培养基中含有一些适合产孢子的营养成分,如麸皮、豌豆浸汁、蛋白胨和一些无机盐等。培养温度一般为28℃。培养时间为5~14天。(二)液体种子制备1,好氧培养对于产孢子能力不强或孢子发芽慢的菌种,如产链霉素的灰色链霉菌(S. griseus)、产卡那霉素的卡那链霉菌(S. Kanamuceticus)可以用摇瓶液体培养法。将孢子接入含液体培养基的摇瓶中,于摇瓶机上恒温振荡培养,获得菌丝体,作为种子。其过程如下: 试管→三角瓶→摇床→种子罐2,厌氧培养对于酵母菌(啤酒,葡萄酒,清酒等),其种子的制备过程如下:试管→三角瓶→卡式罐→种子罐例如生产啤酒的酵母菌一般保存在麦芽汁琼脂或MYPG培养基(培养基配制:3克麦芽浸出物,3克酵母浸出物,5克蛋白胨,10克葡萄糖和20克琼脂与升水中)的斜面上,于4℃冰箱内保藏。每年移种3-4次。将保存的酵母菌种接入含10ml麦芽汁的500-1000ml三角瓶中,再于25℃培养2-3天后,再扩大至含有250-500ml麦芽汁的500-1000ml三角瓶中,再于25℃培养2天后,移种至含有5-10L麦芽汁的卡氏培养罐中,于15-20℃培养3-5天即可作100L麦芽汁的发酵罐种子。从三角瓶到卡氏培养罐培养期间,均需定时摇动或通气,使酵母菌液与空气接触,以有利与酵母菌的增殖。二、生产车间种子制备实验室制备的孢子或液体种子移种至种子罐扩大培养,种子罐的培养基虽因不同菌种而异,但其原则为采用易被菌利用的成分如葡萄糖、玉米浆、磷酸盐等,如果是需氧菌,同时还需供给足够的无菌空气,并不断搅拌,使菌(丝)体在培养液中均匀分布,获得相同的培养条件。1,种子罐的作用:主要是使孢子发芽,生长繁殖成菌(丝)体,接入发酵罐能迅速生长,达到一定的菌体量,以利于产物的合成。2,种子罐级数的确定种子罐级数:是指制备种子需逐级扩大培养的次数,取决于:(1)菌种生长特性、孢子发芽及菌体繁殖速度;(2)所采用发酵罐的容积。 比如:细菌:生长快,种子用量比例少,级数也较少,二级发酵。 茄子瓶→种子罐→发酵罐霉菌:生长较慢,如青霉菌,三级发酵 孢子悬浮液→一级种子罐(27℃,40小时孢子发芽,产生菌丝 )→二级种子罐(27℃,10~24小时,菌体迅速繁殖,粗壮菌丝体)→发酵罐放线菌:生长更慢,采用四级发酵酵母:比细菌慢,比霉菌,放线菌快,通常用一级种子3,确定种子罐级数需注意的问题(1)种子级数越少越好,可简化工艺和控制,减少染菌机会(2)种子级数太少,接种量小,发酵时间延长,降低发酵罐的生产率,增加染菌机会(3)虽然种子罐级数随产物的品种及生产规模而定。但也与所选用工艺条件有关。如改变种子罐的培养条件,加速了孢子发芽及菌体的繁殖,也可相应地减少种子罐的级数。
在实验室自制发酵菌需要在严格的无菌条件下进行,以下是一般的步骤和注意事项: [color=initial]一、准备工作[/color] [list=1][*] 设备和材料准备 [list][*]超净工作台:提供无菌操作环境。[*]高压灭菌锅:对培养基、培养皿、移液管等进行灭菌。[*]恒温培养箱:提供适宜的温度进行菌种培养。[*]天平、量筒等:用于准确称量和量取试剂。[*]培养基原料:如蛋白胨、酵母提取物、葡萄糖、琼脂等,根据所需菌种选择合适的培养基。[*]无菌水、移液管、培养皿、锥形瓶等。[/list][*] 环境消毒 [list][*]在进行实验前,对实验室进行全面消毒,包括桌面、地面、墙壁等。可以使用紫外线照射、化学消毒剂擦拭等方法。[*]确保超净工作台的过滤器正常工作,开启超净工作台进行通风和紫外线照射,进一步净化操作环境。[/list][/list] [color=initial]二、菌种来源选择[/color] [list=1][*] 从自然界分离 [list][*]可以从土壤、水体、植物表面等环境中采集样品,通过稀释涂布法、平板划线法等分离出单一的菌种。[*]例如,从果园土壤中采集土样,经过一系列处理后,在特定的培养基上培养,挑选出具有发酵潜力的菌落进行进一步培养和鉴定。[/list][*] 已有菌种保藏中心获取 [list][*]如果实验室有菌种保藏条件,可以从专业的菌种保藏中心购买或申请所需的菌种,然后进行活化和培养。[*]在使用外来菌种时,要确保其来源可靠、无致病性和污染风险。[/list][/list] [color=initial]三、培养基制备[/color] [list=1][*]按照配方准确称量培养基原料,加入适量的蒸馏水溶解。[*]将溶解后的培养基装入锥形瓶中,用棉塞或硅胶塞封口。[*]将锥形瓶放入高压灭菌锅中进行灭菌,一般在 121℃下灭菌 15-20 分钟。[*]灭菌后的培养基在超净工作台中冷却至适宜温度(一般为 45-50℃),然后倒入无菌培养皿中,待其凝固备用。[/list] [color=initial]四、菌种培养[/color] [list=1][*]如果是从自然界分离菌种,将采集的样品进行适当处理后,用无菌移液管吸取少量样品,涂布在培养基表面。[*]如果是活化已有菌种,用无菌接种环从保藏菌种中挑取少量菌体,划线接种在培养基表面。[*]将接种后的培养皿放入恒温培养箱中,根据菌种的特性设置适宜的温度和培养时间。例如,乳酸菌一般在 37℃下培养 24-48 小时。[/list] [color=initial]五、菌种筛选和鉴定[/color] [list=1][*]观察培养皿中的菌落形态,挑选出具有所需发酵特性的菌落,如形态规则、生长旺盛、有特定颜色等。[*]对筛选出的菌落进行进一步的鉴定,可以通过显微镜观察菌体形态、生理生化试验、分子生物学方法等确定菌种的种类。[*]将鉴定后的菌种进行纯化培养,确保菌种的纯度。[/list] [color=initial]六、菌种保存[/color] [list=1][*] 短期保存 [list][*]可以将菌种接种在斜面培养基上,放入冰箱冷藏保存,一般可保存数周至数月。[*]定期转接菌种,以保持其活性。[/list][*] 长期保存 [list][*]采用冷冻干燥法、液氮保存法等进行长期保存。[*]冷冻干燥法是将菌种在保护剂的作用下冷冻干燥,然后密封保存于低温环境中。液氮保存法则是将菌种悬浮在液氮中,可长期保持菌种的活性。[/list][/list] [color=initial]七、注意事项[/color] [list=1][*] 严格无菌操作 [list][*]在整个实验过程中,要始终保持无菌意识,严格遵守无菌操作规范。所有操作都要在超净工作台中进行,使用的工具和材料都要经过灭菌处理。[*]避免交叉污染,不同菌种的操作要分开进行,使用的工具和培养皿等要专用。[/list][*] 安全防护 [list][*]对可能具有致病性的菌种进行操作时,要采取相应的安全防护措施,如佩戴手套、口罩、实验服等,在生物安全柜中进行操作。[*]严格遵守实验室的安全规定,避免发生意外事故。[/list][*] 记录和标识 [list][*]对实验过程中的每一个步骤都要进行详细记录,包括菌种来源、培养基配方、培养条件、鉴定结果等。[*]对培养的菌种进行明确标识,注明菌种名称、培养日期、保存条件等信息,以便于管理和使用。[/list][/list]
最近在做一个项目,是检测发酵液中癸酸的含量,选择气相检测。发酵液为了溶解癸酸,加了油酸甲酯。气相色谱柱:Rtx-1 30m柱长×0.25mm内径 0.25μm膜厚载气:氮气 45.4cm/sec柱箱温度:60℃保持2min 60℃-300℃ 20℃/min 300℃保持4min进样方式:分流(50:1) 2μl 290℃检测器:FID 310℃发酵液预处理:发酵液,PH调到3.0(或者不调pH),加乙酸乙酯,离心,上清检测附件中图从上到下分别是:1:Blank (乙酸乙酯)2:癸酸标样(1.825mg/ml)0.25ml+预处理后发酵 0.25ml (未PH处理)3:癸酸标样(1.825mg/ml)0.25ml+预处理后发酵 0.25ml (PH处理)4:未pH处理发酵液 0.25ml+pH处理发酵液0.25ml混合5:往3中加少量水,离心,取上清检测6.:发酵液,PH到3.0,加等体积乙酸乙酯,离心,上清检测7:发酵液,PH到3.0,加标样癸酸1.825mg/ml 200ul ,加等体积乙酸乙酯,离心,上清检测目前的问题:癸酸标样基本在7.6min出峰,但是发酵液PH处理后的有两个峰,一个在癸酸标样很近的7.7min左右,后一个峰在9.5min左右,而未有PH处理只有7.7min左右一个峰。原来认为7.7min左右的就是癸酸,但是和标样混合后,不在一个峰,是不是代表不是一种物质。
本公司研发中心发酵实验室拥有9个独立发酵罐,可在线监测数据,可以满足单级、多级发酵实验,拥有专业的发酵专业团队,辅助的检验团队,菌种研发团队及仪器设备配备齐全!欢迎有需求的公司来电洽谈,电话微信同步13848063760[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204211303019403_914_4064059_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204211303026337_3354_4064059_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204211303028573_4784_4064059_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204211303027421_6444_4064059_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204211303030917_7901_4064059_3.png[/img]
[size=16px][b]一、准备阶段(大肠杆菌为例)[/b] 根据试验需求,准备合适的培养基,比如说[font=&]LB[/font],参照相关内容。 准备[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/9p][color=#3333ff]移液枪[/color][/url]枪头,接种环,玻璃棒等。 [b]二、种子培养阶段 [font=&]1[/font].菌种活化:[/b]方法参照相关内容。 [b][font=&]2[/font].种子液接种:[/b]从保存的平板上挑取单克隆至种子培养液中([font=&]50mL/250mL[/font]),将其放置于恒温([font=&]37[/font][font=宋体]℃[/font])摇床中振荡([font=&]200rpm[/font])培养,过夜([font=&]约12h[/font])。 [b]三、摇瓶发酵培养阶段 [font=&]1[/font].摇瓶接种:[/b]将上述种子培养液按照一定比例(一般[font=&]1%[/font]-[font=&]10%[/font])接种至新鲜的发酵培养基中([font=&]100mL/500mL[/font])。 [i]按照需要选择合适的三角瓶,比如说[font=&]50mL/250mL[/font]、[font=&]100mL/500mL[/font],如果需要量比较小,也可以选择[font=&]5mL/50mL[/font],[font=&]10mL/50mL[/font]等。[/i] [b]2.发酵培养:[/b]将接种后的三角瓶放置于恒温([font=&]37[/font][font=宋体]℃[/font])摇床中振荡([font=&]200rpm[/font])培养。 定期检测发酵生物量 [i]摇起来有助于氧气的供应、微生物和营养物质均匀分布,使微生物更好地生长。[/i] [b]3.诱导阶段:[/b]约摇瓶培养[font=&]2h左右,OD600达到0.6-0.8,此时添加诱导剂(IPTG)开始诱导,诱导目的基因表达,约5h。[/font] [font=&]一般诱导剂的浓度[/font][font=&]0.1mM-1mM[/font][font=&],浓度过低过高都会影响表达效果。如果不知道多少合适,可以先选择[/font][font=&]0.5mM进行试验,后续再进行浓度筛选。[/font] 4.发酵结束:发酵结束,离心后去上清,收集菌体。 [font=&]不同的微生物,表达产物的位置不同,收集相应的菌体或上清。[/font] [b]5.[/b][font=&]细胞破碎[/font]:取一定量菌体,用PPS重悬后,使用超声破碎仪破碎。 [font=&]注意破碎功率和时间,注意冰水混合液降温。(糗事:第一次破碎忘记加冰。)[/font] [b]6.[/b][font=&]检测:[/font]定性检测,定量检测蛋白浓度,还有[font=&]Western Blotting[/font]、酶活检测等。 [font=&]酶活测定可以采用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相[/color][/url]、[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相[/color][/url],也可以采用比色法等方法。[/font][/size]
畜牧业一度曾是“与臭为伍”的产业,传统的养野猪业所面临的“环境问题”、“肉质退化问题”、“健康问题”、“效益提高问题”有着密切联系,环境脏、乱、差就自然而然的带来了品质与健康问题,没有健康和品质,经济效益也就无从谈起了。怎样解决养野猪业给环境带来的压力,变废为宝,怎样既减少环境污染又不增加投入,怎样既降低劳动强度并培养出肉质鲜美、健康无病的野猪,同时还能显著提高经济效益,这些一直是国家、畜牧科研者和广大养野猪业者共同追求的目标,利用发酵床养野猪技术可以很好地解决现代养野猪业遇到的难题,达到养野猪无污染、零排放,好的发酵床产品不仅能使传统养野猪业从“臭”变“香”,而且操作极其简单。下面以发酵床发酵剂为例简述一下除臭机理。 养野猪所产生的恶臭味,是因为野猪排泄出的粪便当中含有大量的NH3(氨气)、H2S(硫化氢)以及硫醇、二硫化物、胺、氧化物、醇、有机酸粪臭素等。寻找传统养野猪场根本不用靠眼睛,只要跟着鼻子走就行,千米之外就能感受到野猪场特有的“味道”,而采用发酵床发酵剂养野猪技术后,即使进到野猪圈与野猪亲密接触也不会感到不适,一点也感觉不到臭味,其奥妙在哪里?发酵床养野猪是利用发酵剂(具有超强发酵功能的多菌种复合微生物发酵剂),按一定比例与锯末(木屑、稻壳或粉碎秸秆)进行混合、发酵,形成有机垫料;野猪生活于这种有机垫料上面,野猪的排泄物被微生物作为营养迅速降解、消化,当天就无臭味,只需两三天左右的时间,粪便就被微生物分解成非常细的粉末,消失得无影无踪,有时还因发酵使圈舍略飘洒香味。发酵床养野猪除臭,其奥妙可从以下几个方面分析: 一、减少污染源。氮是排泄物中造成环境污染的主要元素之一。排泄物中氮一般占干物质的2-6%(其中33%在粪便中,67%在尿中)。畜禽主要通过日粮摄入蛋白质态等氮元素,经过消化吸收,被动物机体沉积利用约35%,其余约65%排出体外。野猪粪尿中的NH3、H2S主要是野猪摄入体内的蛋白质未被吸收或吸收不彻底所产生的,提高蛋白质的利用率就能减少恶臭气体的排放。发酵床养野猪是因野猪的拱食而使得从粪便中排出的蛋白质能得到进一步的循环利用,进而提高蛋白质的利用率,减少了污染源,也即污染物的排出已被“减量化”了。 二、物理除臭。所谓物理法除臭就是指将产生恶臭气味的气体吸附在固体或液体介质表面,使其不易散发到空气中。发酵床的垫料是由50公分左右的锯末(木屑或稻壳等)组成,有恶臭成分的气体通过木屑粒子间时,部分恶臭成分被木屑吸收或被木屑间的水分及木屑固有水分溶解,减缓了恶臭成分气体释放的速度和释放的量,从一定程度上控制了臭味的散发。 三、化学除臭。化学除臭就是利用特定的一些化学反应将有臭味的有害气体转变成无毒无害的物质。通过物理吸附使得恶臭气体与发酵床垫料气-液接触,使[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]臭味成分转移至液相,并借发酵床发酵产生的物质与臭味成分的中和、氧化或其它反应去除臭味物质,包括有机硫化物、含氮化合物、有机酸及少数含氧碳氢化合物等。不过这方法只能把臭味分子转成盐类以利于吸收,须再用其它方法把臭味成分破坏或回收。 四、生物除臭。生物除臭是发酵床发酵剂养野猪中没有臭味的最重要原因,主要在两个方面发挥着重要作用。①发酵剂每克本身就含有超过数亿的有益功能活性菌,在发酵开始后有益微生物更呈几何级数大量快速繁殖,在此过程中正好将野猪排泄出的粪尿以及吸附在木屑上的胺硫等恶臭化合物消化吸收,转变成可供野猪拱食的蛋白质和微量元素。随着发酵过程的不断进行,功能微生物的快速繁殖会越来越彻底地将恶臭物质消化吸收。②野猪有拱食的天性,这一习惯在发酵床养野猪过程中正好能被充分利用。发酵剂中的有益微生物随着野猪的拱食而进入野猪的消化道。肠胃中的有益微生物不但能抑制部分病原菌活动,预防疾病,而且还能抑制有害菌的活动,例如抑制威尔士菌活动,这样就阻止了对蛋白质的异状分解,从而减少了氨和吲哚的产生。这几种恶臭物质减少了,野猪粪的臭味自然就减轻了。另外,有益微生物中蛋白酶、脂肪酶和淀粉酶酶活较高,能增强对蛋白质、脂肪等物质的分解,不仅能提高饲料的利用率和吸收率,促进畜禽的生长,而且也能减少恶臭物质的产生。
近日打算做下发酵液中酸的含量测定,发现直接进样效果很差,后来看文献才看到要进行酯化或硅烷化衍生处理,求教各位老师,为何要进行这种处理 另外有何更简单的处理方法? 谢谢
有谁有发酵方面的书籍,关于酒的发酵
肉制品生产企业新建检测实验室,应该购置哪些检测仪器,一般是跟企业规模有很大关系。有的肉制品生产企业建设检测实验室只需要满足产品出厂合格即可,有的需要满足政府抽检,有的则需要满足出口国的检测需求.......因此不同需求的肉制品生产企业新建实验室购置仪器并不相同。这个贴子主要是分享一下,2010年发布的《28类食品企业生产许可审查细则》中对发酵肉生产企业检测项目的规定,已经依据的法律法规、检测方法、检测仪器及配备的样品前处理设备等。 发酵肉制品包括:萨拉米发酵香肠、风干发酵火腿等。序号检验项目依据法律法规或标准检测方法检测仪器样品前处理设备1过氧化值/GB/T 5009.37分光光度计——2铅GB 2762GB 5009.12原子吸收分光光度计(原子吸收法)马弗炉、天平、干燥恒温箱、 消解仪或消解装置、可调式电热板或电炉原子荧光光度计(氢化物原子荧光光谱法)电热板 、天平原子吸收光谱仪火焰原子化器(火焰原子吸收光谱法)天平分光光度计(二硫腙比色法)天平极谱分析仪(单扫描极谱法)电炉、天平3镉GB 2762GB/T 5009.15原子吸收分光光度计(石墨炉原子吸收法)电子天平、可调温式电热板、可调温式电炉、马弗炉、恒温干燥箱、微波消解系统4无机砷GB 2760GB/T 5009.11原子荧光光度计(氢化物原子荧光光度法)恒温水浴锅分光光度计(盐银法)测砷装置、恒温水浴锅5亚硝酸盐GB 2760GB 5009.33离子色谱仪(离子色谱法)粉碎机、超声波清洗器、天平、离心机分光光度计(分光光度法)天平、组织捣碎机、超声波清洗器、恒温干燥箱6大肠菌群GB 2726/产品明示标准及质量要求GB/T 4789.3菌落计数器恒温培养箱、冰箱、恒温水浴箱、天平、均质器、振荡器7致病菌(仅适用于牛肉制品)产品明示标准及质量要求/GB 29921GB 4789.4(沙门氏菌)全自动微生物生化鉴定系统冰箱、恒温培养箱、均质器、振荡器、电子天平、pH计GB 4789.10 第二法(金黄色葡萄球菌)酶标仪电子天平、均质器、离心机、微量加样器、自动洗板机GB 4789.30(单核细胞增生李斯特氏菌)全自动微生物生化鉴定系统冰箱、恒温培养箱、均质器、显微镜、电子天平GB/T 4789.36(大肠埃希氏菌O157:H7])全自动微生物生化鉴定系统 [url=http://www.instrument.com.cn/zc/150.html]全自动酶联荧光免疫分析仪 [url=http://www.instrument.com.cn/zc/1657.html]全自动病原菌检测系统天平、均质器、冰箱、恒温培养箱、恒温水浴箱、生物显微镜、浊度计、pH计、样品混合器8总汞/GB/T 5009.17双道原子荧光光谱仪高压消解罐、微波消解炉[url=http://www.instrument.com.cn/zc/407.html]双光束测汞仪(附气体循环泵、气体干燥装置、汞蒸气发生装置及汞蒸气吸收瓶)恒温干燥箱、压力消解器、压力消解罐或压力溶弹可见分光光度计消化装置[url=http://www.instrument.com.cn/zc/1.html]气相色谱仪(配电子捕获鉴定器或氚源电子捕获器)酸度计、离心机9净含量//————10标签//————[/table]
分离发酵液中不同分子量物质我是做豌豆酸浆的发酵的,老板让我先把发酵液分离成不同分子量的两种溶液,一种是大分子量,一种小分子量。我应该用什么来做呢?是超滤还是层析?本人刚做实验属新手。。。。忘大家不吝赐教!!!我的分离后的各组分都需要用。用透析袋透析可以吗?但是我买的透析袋是常常的一条带子,只有2,3十厘米宽。和“袋子”差距很大啊。谁知道怎么用吗?
我目前在做微生物降解的题目,想请教高手,我的发酵液直接用液相检测,可行吗?预期产物是多种糖。
发酵工艺学,各种酒类的发酵工艺^_^
[font=微软雅黑][color=#333333]1、发酵罐必须确保所有单件设备能正常运行时使用本系统。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]2、发酵罐在消毒过滤器 时,流经空气过滤器的蒸汽压力不得超过0.17MPa,否则过滤器滤芯会被损坏,失去过滤能力。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]3、发酵罐在发酵过程中,应确保罐压不超过0.17MPa。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]4、发酵罐在实消过程中,夹套通蒸汽预热时,必须控制进汽压力在设备的工作压力范围内,否则会引起发酵罐的损坏。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]5、发酵罐在空消及实消时,一定要排尽发酵罐夹套内的余水。否则可能会导致发酵罐内筒体压扁,造成设备损坏 在实消时,还会造成冷凝水过多导致培养液被稀释,从而无法达到工艺要求。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]做好以五项可以有效避免发酵罐在日常使用中遇到很多是技术难题[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333],[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]给自己减少很多不必要的损失和麻烦。[/color][/font]
我想购买一台全自动不锈钢发酵罐,我在进修的学校里需用的是“上海联环生物工程设备有限公司”的产品使用效果不错,请问哪位老师知道上海联环的联系方法或推荐更好的发酵设备生产厂家
我想咨询一下,我们家用的蒸馒头用的发酵粉,对人好不好
[font=微软雅黑][color=#333333]1、发酵罐必须确保所有单件设备能正常运行时使用本系统。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]2、发酵罐在消毒过滤器 时,流经空气过滤器的蒸汽压力不得超过0.17MPa,否则过滤器滤芯会被损坏,失去过滤能力。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]3、发酵罐在发酵过程中,应确保罐压不超过0.17MPa。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]4、发酵罐在实消过程中,夹套通蒸汽预热时,必须控制进汽压力在设备的工作压力范围内,否则会引起发酵罐的损坏。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]5、发酵罐在空消及实消时,一定要排尽发酵罐夹套内的余水。否则可能会导致发酵罐内筒体压扁,造成设备损坏 在实消时,还会造成冷凝水过多导致培养液被稀释,从而无法达到工艺要求。[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]做好以五项可以有效避免发酵罐在日常使用中遇到很多是技术难题[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333],[/color][/font][font=微软雅黑][color=#333333]给自己减少很多不必要的损失和麻烦。[/color][/font]
发酵实验技术.pdf
[size=10.5pt][font=微软雅黑][b]微生物制剂发酵[/b]的物理条件研究主要有[b]发酵温度[/b]、[b]初始[/b]、[b]溶解氧[/b]。温度是微生物生长的重要环境条件之一。微生物的生长实际是生物体的一系列生物化学反应和酶反应的有机组合,温度是影响这些反应的主要因素。由于不同来源、不同菌株和培养基成分的差异,zui适培养温度有一定的差异。[/font][/size][size=10.5pt][font=微软雅黑]PH值影响微生物的发育增殖和各种能量代谢的化学活性等,在工业发酵过程中,值PH直接影响菌体的生长和目的产物的产生和积累,菌体还会产生酸碱物质导致发酵液值的变化,为保持值的稳定以至于不影响菌体的生长及产物的生成,常常需要补加酸碱来平衡值。[/font][/size][size=10.5pt][font=微软雅黑]在好氧微生物发酵时溶解氧是重要的限制性因素,尤其是液体深层发酵对氧的供应要求更高。溶解氧的调节主要靠通气量、搅拌速度、罐压等进行调节。[/font][/size][size=10.5pt][font=微软雅黑]此外,在液体发酵过程中往往要产生大量的泡沫,为了防止逃液和染菌,保证生产顺利进行,需在发酵液中加入消泡剂。常用的消泡剂有植物油,如花生油、豆油等,还有的用一些高分子化合物,如聚醚类消泡剂、高碳醇、有机硅消泡剂等,这类消泡剂的消泡抑泡[/font][/size]
版权声明:转载时请以超链接形式标明文章原始出处和作者信息及本声明http://cnfjgc.blogbus.com/logs/68539628.html 一、传统固态发酵与现代固态发酵 虽然固态发酵与液态发酵相比,具有它独特的优势,但也存在着许多不足。特别是传统固态发酵是发酵工业中古老而又落后工艺的代名词。甚至,在发酵工程或生化工程的教科书中,也很少提到固态发酵。现代发酵技术的关键条件是纯种大规模集约化培养.随着科学技术发展和可持续发展的影响,国内外逐步重视对固态发酵的研究开发,已取得了很大进展。因此,依据固态发酵过程中是否能实现限定微生物纯种培养,分为传统固态发酵与现代固态发酵。现代固态发酵是为了充分发挥固态发酵的优势,针对传统固态发酵存在的问题,使之适应现代生物技术的发展而进行的,可以实现限定微生物的纯种大规模培养。 二、固态发酵的形式 1.按微生物的情况和形成的产品条件不同分类 固态发酵可以以许多不同的形式进行,按照使用的微生物的情况和形成的产品条件不同,固态发酵可分为自然富集固态发酵、强化微生物混合固态发酵、限定微生物混合固态发酵和单菌固态纯种发酵。 自然富集固态发酵是指利用自然界中的微生物,由不断演替的微生物进行的富集混合发酵过程。典型的例子是传统酒曲和酱油、腌莱、烟草发酵、茶叶发酵、青贮、堆肥等。它不需要人工接种微生物,其所需发酵的微生物主要依赖于当地空气和物料中的自然微生物区系,多种微生物演替成最适于生长代谢或共生协作的小生态环境。其微生物富集区系不仅与当地空气和物料中的自然微生物区系有关,而且与小生态环境自然变化密切相关。 强化微生物混合固态发酵是指在自然富集固态发酵的基础上,根据人们部分掌握的微生物代谢机制,人为强化接种微生物茵系不明确的富集培养物或特定微生物培养物所进行的混合发酵过程。强化微生物混合固态发酵除应用于沼气发酵、白酒发酵作用外,在石油采收、湿法冶金、食品发酵等领域同样显示其优势。人们在长期的科学研究和生产实践中却不断发现,不少生命活动及其效应是借助于两种以上的生物在同一环境中的共同作用下进行的,甚至是单独不能或只能微弱进行的。例如废物的处理,纤维索和本质素的降解,甲烷的产生和利用等。自然界的微生物没有一种是单独存在的,单靠纯培养很难反映它们的真实活动情况。因此,强化微生物混合固态发酵微生物资源具有非常广阔的应用前景。 限定微生物混合固态发酵是在对微生物相互作用和群落认识的基础上,接种混合培养的微生物是已知和确定的,通常使用两种或两种以上经过分离纯化的微生物纯种,同时或先后接种同一灭过茵的培养基中,在无污染条件下进行的固态发酵过程。人类对微生物的利用经历过天然混合培养到纯种培养两个阶段,纯培养技术使得研究者摆脱了多种微生物共存的复杂局面,能够不受干扰地对单一目的菌株进行研究,从而丰富了人们对微生物形态结构、生理和遗传特性的认识。但是,在长期的实验和生产实践中,人们不断地发现很多重要生化过程是单株微生物不能完成或只能微弱地进行的,必须依靠两种或多种微生物共同培养完成。虽然微生物混合培养在很多领域中的作用已得到充分肯定,部分成果己成功应用于实践,但对大多混合菌体系中菌间相互关系和作用机制的研究尚不够深入。因此,目前对于具有协同作用关系的菌株筛选和组合还是一个随机过程的,缺乏有效的理论指导,而且对于已经应用的混合培养体系也不能有效地协调菌间的关系,使其达最佳生态水平,发挥最大效应。这严重地阻碍了混合菌培养的发展和应用。因此,如果从生理、代谢和遗传角度对混合茵间关系和协同作用机制进行深入研究,对混合菌培养的理论和应用都将有巨大的突破。随着混合菌培养在各方面应用研究的深入,人们不再满足于传统的反应模式,已开始引人一些新兴的生物工程技术,使该领域的研究更具活力。采用固定化细胞技术固定混合菌可使反应系统多次使用,降低成本,增加效率,在实际应用中很有意义。利用细胞融合技术和基因工程技术由具有互生或共生关系的微生物构建工程菌,可使工程菌既具有混合培养的功能,又拥有纯培养菌株营养要求单一、生理代谢稳定、易于调控等优点,也是极有前景的研究方向。 单菌固态纯种发酵是在纯培养基础上建立起来的,对于选育良种、保持生理活性和代谢过程中的稳定起很大作用。它对于扩大固态发酵的应用范围和潜力的发挥起到非常重要作用,同时,也是固态发酵一个重要方向。 2.按固态发酵固相的性质分类 根据固态发酵固相的性质,可以把固态发酵分为两种类型。一种是以农作物(如麸皮、豆饼等)为底物的固态发酵方式。这些底物既是固态发酵过程中的固相组成部分,又为微生物生长提供营养,在这里可以称这种发酵为传统固态发酵方式(或固体底物基质固态发酵)。另一种固态发酵方式是以惰性固态载体为固态发酵过程令的固相,微生物生长的营养是吸附在载体上的培养液,称这种发酵方式为惰性载体吸附固态发酵。 同体底物基质固态发酵利用的培养基是既充当固相,又为微生物生长提供营养的初级农作物产物,如麸皮、马铃薯、谷子、豆饼以及其他含淀粉和纤维素的农作物产品。第二种固态发酵采用的固体是惰性载体,这些载体可以是天然的,也可以是人工分成的。这些载体材料有珍珠岩、聚氨酯泡沫体、蔗糖渣和聚苯乙烯等。 固体底物基质固态发酵的一个主要的不足之处就是碳源是它们的结构组成部分,在微生物发酵生长过程中,培养基被分解了,底物容易结块,孔隙率也降低,结果底物的外形和物理特性都发生了变化,降低了发酵过程中的传质和传热。例如,麦片在发酵过程中由于淀粉的降解和水的挥发,会导致固体底物变形结块,结果使传质和传热受到影响。而具有稳定结构的固态载体充当固态发酵的固相可以克服这一缺点,从而更有利于微生物的生长和产物产量的增加。例如,采用聚氨酯泡沫体为载体吸附固态发酵核酸酶P1时,产量和活力分别比采用麸皮固态发酵提高9倍和4倍。 另外,惰性载体吸附固态发酵与固体底物基质固态发酵相比,还具有产物提取简便的优点。可以很容易地从惰性载体中提取到胞外产物,而且所得到的产物含有较少的杂质,载体还可以重复使用。例如,利用聚苯乙烯作为载体,以肋生弧茵产生L-谷氨酰胺酶时,产物比采用麦麸粉固态发酵时得到的产物黏性要低。另外,前者的产物不含蛋白质污染物,而后者含有多余的淀粉酶和纤维素酶等。 与固体底物基质固态发酵相比,惰性载体吸附固态发酵还具有其他很多优点,如:能够对培养基营养成分进行合适的调节;容易了解产物中的各成分并进行分析,从而有利于发酵过程的控制以及动力学研究与模型建立等。
一、灭菌操作1. 关闭所有供水管路及空气管路。开启蒸汽管路阀门。同时稍开启发酵罐夹套的排气阀门,排放夹套剩水。2. 开启发酵罐搅拌电机,转速至200rpm,使发酵液受热均匀。当温度升到95℃以上时,即可停止搅拌。然后待温度升至121℃(罐压在0.1~0.12Mpa)时即可计时开始。3. 当计时开始后,发酵时间一般为20-30分钟。在此时间内应保证温度不低于120℃.同时可进行空气过滤器及空气管道的灭菌。4. 空气过滤器及空气管道的灭菌:稍开过滤器的排水阀门,及空气管道的隔膜阀,保证空气管道的蒸汽灭菌。但不能开的太大,以免蒸汽大量进入罐内,而稀释培养基。5. 出料、采样阀的蒸汽阀门及出口阀稍开,保证该管路灭菌。在发酵罐的盖上的接种口,同样需要放气,使其达到灭菌要求。6. 当保温结束时,应先把空气管路中的隔膜阀关闭。把空气过滤器排水阀关闭,以及关闭取样阀出口阀门和接种口螺帽。然后再关闭各路蒸汽阀门。7. 打开冷却水阀门及排水阀门,同时打开空气流量计和空气放空阀门,把空气过滤器吹干。此时必须注意罐压的变化。绝对不能让罐压低于0.02Mpa。及当罐压达到0.05Mpa时,立即将空气管路打开,保证发酵罐的罐压在0.05Mpa左右。8. 当温度降到95℃时,即可打开搅拌。当温度低于50℃后,即可切入自动控温状态,使培养基达到接种温度,灭菌过程即告结束。二、发酵过程的操作1. 接种:接种方法可采用火焰接种法或差压接种法。(1)火焰接种法:在接种口用酒精火圈消毒,然后打开接种口盖,迅速将接种液倒入罐内,在把盖拧紧。(2)差压法:在灭菌前放入垫片,接种时把接种口盖打开,先倒入一定量的酒精消毒。待片刻后把种液瓶的针头插入接种口的垫片。利用罐内压力和种液瓶内的压力差,将种液引入罐内,拧紧盖子。2. 罐压 发酵过程中须手动控制罐压,即用出口阀控制罐内压力。调节空气流量的,须同时调节出口阀,应保持罐内压力恒定大于0.03Mpa。3. 溶解氧(DO)的测量和控制(1)溶解氧的标定:在接种前,在恒定的发酵温度下,将转速及空气量开到最大值时的溶解氧DO值作为100%。(2)发酵过程的溶解氧DO测量和控制:DO的控制可采用调节空气流量和调节转速来达到。最简单是转速和溶氧的关联控制。其次则必须同时调节进气量(手动)控制。有时需要通入纯氧(如在某些基因工程菌的高密度培养中)才能达到要求的DO值。4. pH 的测量与控制(1) pH值的校正:在灭菌前应对PH电极进行PH值的校正。(2)在发酵过程中PH值的控制使用蠕动泵的加酸加碱来达到的,酸瓶或碱瓶须先在灭菌锅中灭菌。三、控制器的操作1. 控制器的启动:打开电源,先按一下薄膜键盘上的“S/E”键,再按一下“确认”键,发酵控制程序启动;这时,如果加热器中水没有加满,程序会自动进行进水操作;待水加满后,用户可以按照上述的下位机控制器的操作方法进行对各个执行机构进行控制。2. 控制器的操作:使用F1~F6按键将液晶屏中的界面切换到用户需要控制的界面中,使用方向键将界面中的光标移动到需要控制的变量上,如果是改变运行模式,直接按确认键即可,如果需要键盘输入数字,在输入数字后按确认键即可。如:(1)温度控制:在手动方式中,对温度进行手动操作是比较简单,只需要改变手动状态的控制量即可。通过选择快捷键(F1~F5)进入到温度控制界面,然后移动光标使它指向到“手动方式”,按下“确认”键,即进入温度控制的手动方式中。此时,“手动方式”后面会出现一个小手来指示当前的选择是手动方式。将光标移动到手动设置区域, 通过上下移动光标选择到“控制量”。通过按数字键输入所需要设定的控制量输出值,如80,并按“确认”键确认;(注:控制量范围为0~100,当输入控制量大于50时为加热状态,反之为冷却状态)。(2)转速的控制:使用光标移动键,移动光标到“设定值”处。在数字键盘上输入 300, 此时的“设定值”后应该出现“300”的数值;然后按下“确认”键确定输入。若输入有错误,可以按“清除”键清除数据。四、蒸汽发生器的操作1. 打开进水管开关,使蓄水箱水位至最高,保持进水状态2. 连接发生器电源,向锅内供水至正常水位(液位管的50-80%),不得超过最高水位,且不得低于最低水位,关闭蒸汽出汽阀门3. 插上电源,打开电源开关工作指示灯亮,开始加热锅水4. 将蒸汽管连接至发酵罐体夹层管路系统,打开相关阀门,保持管路通畅,同时关闭发酵罐体出气阀。当压力升至工作压力后(2kg/cm2)打开蒸汽出汽阀,即可供汽5.使用完毕,先关闭电源,后关闭进水管,待发生器适当降温后,排掉锅体中污水。【注 意 事 项】1. 安全阀的调定压力已由厂家调整好,不得随意调整,若发现安全阀失灵,应更换新的安全阀。严禁私自改 变压力自动控制功能和参数。2. 在正常运行期间,至少每8小时排污一次,并及时用砂纸给水位探针除垢3. 在使用过程中,严禁关闭安全阀门,严禁私自改装或用堵头堵死4. 压力表存水弯管应定期拆下清洗五、空气压缩机的操作1. 插上空压机电源,开启空压机,使机器在无负荷状态下启动运转15分钟。2. 启动后若无异音,关闭空气出口,并将空压机出气管与空气净化器相连,一并联至发酵罐空气进气管路。3. 当气压升至2kg/cm2打开供气阀,开启空气开关,向已灭菌的发酵罐提供无菌空气。空气压力达到设定压力之后,压力开关自动切断电源,电机停止运转。4. 空气压缩机的使用压力不得高于额定工作压力,若需调整,必须有专门业务员进行,不得自行调整。
我们平常所吃的馒头、面包,都是面经过发酵而制成的,它们蓬松有弹性,口感很好,还带有特殊的香味。而用来发酵的无论是从前的酵头,还是现在的发酵粉,其实都是添加剂酵母菌。现在酵母菌的作用已经不仅仅只停留在发酵作用上了,由于其独特的品性,酵母菌的用途也越来越广,成为一种多功能的食品添加剂。 酵母菌功用之一发酵 发酵是酵母菌最主要的功用。人类很早就开始将酵母菌应用于食品生产中,例如酒精饮料、酱油、食醋、馒头和面包的发酵等等。在面包和馒头的生产中,酵母发酵产生大量二氧化碳.使面团膨胀,形成松软的组织。 在食品工业上常见的酵母菌有啤酒酵母,用于生产啤酒、白酒和酒精,以及制做面包;葡萄酒酵母,也称酿酒酵母,用于酿造葡萄酒和果酒,也用于啤酒和白酒的酿造。其中啤酒酵母是食品工业上应用最为广泛的微生物之一,啤酒酵母菌体内维生素、蛋白质含量很高,其药用价值也很高,还可以用于做饲料,提取核酸、麦角醇、谷胱甘肽、凝血质和三磷酸腺苷等。
初发酵培养24h为阴性,是否可以结束实验,最后查mpn表也以初发酵的结果来查?还是说要继续培养至48h,或者依旧要做复发酵实验?
发酵过程优化原理与实践的资料分享,需要的自己下载!第1章 绪论http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/797.html第2章 发酵过程优化原理 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/798.html第3章 系统优化 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/799.html第4章 赖氨酸发酵过程优化 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/800.html第5章 丙酮酸发酵过程优化 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/802.html第6章 透明质酸发酵过程优化 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/803.html第6章 透明质酸发酵过程优化2 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/804.html第7章 谷氨酰胺转氨胺酶发酵过程优化http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/805.html第8章 聚羟基烷酸酯发酵过程优化 http://www.biodiscover.com/news/unclass/library/806.html希望能够帮到大家!
1.果汁前期处理:可选择低温浸渍,8-10℃,加入果胶酶CL,30-50ppm,快速水解分解果胶,作用时间不超过48小时。2.待发酵原汁回温到22℃左右,活化酵母F33或VL1都可(推荐VL1专用白兰地酵母),添加量200ppm,推荐使用发酵助剂SuperstartBlanc200ppm吨,同时跟酵母活化,20倍纯净水恒定38℃,酵母投入搅拌均匀,静置25分钟后接种,注意温差不要超过10摄氏度.3.酒精发酵启动后注意温度变化,如果设备允许,可以控制温度在26-28左右即可,注意前期每天循环通氧1-2次。4.若要发酵结束后酒体快速澄清,可在酒精发酵启动24小时后添加植物蛋白VEGEfine,150ppm,使酒体更加干净清爽、增加出酒率,快速下胶。5.酒精发酵启动48小时后开始第一次补充营养剂Thiazote,100ppm即可。6.酒精发酵中期,以目标11°为例,酒精度大概在7-8°左右再次添加营养剂150ppm左右。7.酒精发酵末期观察发酵速率,可根据实际情况适当添加营养剂。8.酒精发酵结束后,可以进行皂土下胶,酒体澄清度较好对于后期蒸馏的指标、香气、口感等大有帮助。9.蒸馏后原酒需要进行陈化、降度调整,终端产品要根据市场需要调配,我司提供专业白兰地天然香精、焦糖色、橡木制品、橡木桶等,针对不同终端市场,我们可以提供不同的成本方案。
【序号】:1【作者】:【题名】:传统发酵永川豆豉和速成豆豉增香发酵关键香气物质基础比较研究【DOI】:【年、卷、期、起止页码】:【全文链接】:https://kns.cnki.net/kcms/detail/detail.aspx?dbcode=CMFD&dbname=CMFDTEMP&filename=1022668517.nh&uniplatform=NZKPT&v=-pkDn13uwgh_bZsxKyJgNZk4kMs3M9KWQqS16ZYjFxMm8850QTqh_TJQ7p6frfYL
下载请回帖哦^_^第一节、发酵过程中的主要控制参数第二节、发酵过程中的代谢变化第三节、菌体浓度影响及其控制第四节、基质的影响及其控制第五节、温度的影响及其控制第六节、pH的影响及其控制第七节、溶氧的影响及其控制第八节、二氧化碳的影响及其控制第九节、补料的作用和控制第十节、泡沫的影响及其控制第十一节、发酵终点的判断