载玻片及盖玻片类

JB/T 8230.3-1997显微镜用载玻片JB/T 8230.4-1997 显微镜用盖玻片

在做革兰氏染色前，载玻片该如何清洗才能玻片上保证玻片上无颗粒.

纸浆疏解后，悬浮液滴于载玻片上，烘干后放在显微镜下观察。有的片子觉得有留样价值，不知如何封片，长期保留、储存。不褪色。并有什么盒子专放单个载玻片的吗？想贴上标签放起来。谢谢！

大家制样时用的什么盖玻片啊???我买的盖玻片 洗不干净, 直接看时就能看到 上面分布了 很多裂纹 和 颗粒(其实不是颗粒)状的 点点很麻烦

需要将石英玻璃片与盖玻片粘起来，并将样品密封中间，所以需要用双面胶。盖玻片是60mm*24mm的，在片状的双面胶带上凿出一个框来，用框将石英玻璃与盖玻片粘结在一块。希望双面胶的宽度大于24mm，厚度最好为0.1mm，最好不是那种一卷一卷的，因为在双面胶中间凿出一块比较费事；希望是双面贴纸的，这样凿就比较方便。哪位能给个主意？谢谢了

请教各同行载玻片（副溶）如何制作，需要哪些器皿，具体操作是怎样的，谢谢~~

薄膜样品分析需要glass slide,可以用显微镜的microscopy glass slide吗？还有，上面样品风干后， 怎么储存玻片？用生物课上的玻片夹子可以吗？XRD样品没有盖玻片啊。谢谢回复！

求助行业各位大佬，我用拉曼光谱测液体油，但是800/1200波段的峰被载玻片掩盖了，求问怎么才能去除玻璃对吸收峰的影响。得到样品油在这个波段下的吸收峰

如题，样品中有大颗粒，介质超声不能把颗粒分散。滴到裁片后盖玻片盖不平，硬压一是损坏盖片，第二是颗粒会变形，有什么好办法。

有谁见过显微镜的自动载玻片，最好有图片

有谁用显微镜测过0.17盖玻片的厚度,用OLYMPUS OLS3000激光共聚焦显微镜试试?

求助行业各位大佬，我用拉曼光谱测液体油，但是800/1200波段的峰被载玻片掩盖了，求问怎么才能去除玻璃对吸收峰的影响。得到样品油在这个波段下的吸收峰[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/01/202101221626582196_9721_5054953_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/01/202101221626580410_9205_5054953_3.png[/img]

我做的是在石英玻璃片上沉积的薄膜，因为一次实验要做好多片。过程中需要有个托放石英片的托架，听说有放载玻片的盒（架），不知道能不能用。具体要求：每一个石英片都能跟其他的分开，并且能固定住，而且不能碰到有膜的那一面（因为检测时要到送别的单位去，路上怕弄坏已沉积好的膜），我的石英玻璃尺寸30mm×30mm

用0.1ml藻类计数框、0.1ml的[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/9p][color=#3333ff][url=https://insevent.instrument.com.cn/t/9p][color=#3333ff]移液器[/color][/url][/color][/url]来测水中的藻类计数，用了各种方法加样（包括《水和废水检测方法》），只要盖玻片一盖，都会有水样因虹吸作用溢出一点在框上面和框外面，跟我想象中不一样，请问下有做过的老师，这是正常现象还是属于我操作问题，或者是计数框容积不达标呢？

有个1微米厚的薄膜，在玻璃质的载玻片上，可以把它直接放到SEM的载物台上吗？一般都说要用硅片，我不知道直接放行不行？SEM的电压低于2KV谢谢啦。。。

纺织品成分定性分析中，盖玻片是一次性的吗？还是要反复清洁使用？

成分分析中大家定性用的盖玻片是一次性的，还是清洗后反复用？

固体样品，做共聚焦。普通镜头不加盖玻片。高倍油镜不知道能不能直接测

成分定性分析中，载玻片大家使用什么洗涤剂清洗，又是怎么干燥的？

成分分析定性分析中用到的盖玻片是一次性的吗？

用标准物质校准显微镜熔点仪时，要不要将标准物质（晶型）研碎？还是直接取样放在载玻片上？如果研碎，会不会影响观测？发现显微镜的熔点仪不好判断

求助ISO8037-1 ISO8037-2 ISO8255-1 ISO8255-2

如题，现在我要做聚合物的红外光谱，要么是用溶液，要么就涂膜。用溶剂法麻烦，液体池清洗。现在问题是溶剂涂膜的话我有氟化钠的两块玻片（圆形，较厚）。溴化钾不能用？是因为溶剂中有水吗？每次用完之后得用氯仿之类的溶剂清洗，还不能擦拭？再就是以前看老师们做，就是直接把聚合物溶剂滴在一个类似载玻片一样的玻璃片上，红外灯烤烤干就可以做的？怎么现在要这么麻烦的处理。另外，我是透光的聚合物膜，不能直接放入样品池做红外吗？我用的是岛津的FTIR。很少自己动手用这个设备，一些问题较为初级，请各位前辈指教。

两块玻片 一块是空白的 一块涂有硅之类的膜层 可以直接测这两块玻片 然后通过光谱差减得到膜层的吸收率吗 因为膜层太薄 刮下来几乎没有 所以想直接测 请问有人试过吗 谢谢

如题，我们公司想购买一款XRF，能将扫描样品做成玻片类，再进行扫描分析，大家有没有推荐的

1．新玻璃器皿的洗涤方法 　　新购置的玻璃器皿含游离碱较多，应在酸溶液内先浸泡数小时。酸溶液一般用2％的盐酸或洗涤液（见本小节“3”）。浸泡后用自来水冲洗干净。 2．使用过的玻璃器皿的洗涤方法 　　(1)试管、培养皿、三角烧瓶、烧杯等可用瓶刷或海绵沾上肥皂或洗衣粉或去污粉等洗涤剂刷洗，然后用自来水充分冲洗干净。热的肥皂水去污能力更强，可有效地洗去器皿上的油污。洗衣粉和去污粉较难冲洗干净而常在器壁上附有一层微小粒子，故要用水多次甚至10次以上充分冲洗，或可用稀盐酸摇洗一次，再用水冲洗，然后倒置于铁丝框内或有空心格子的木架（图Ⅰ-10）上，在室内晾干。急用时可盛于框内或搪瓷盘上，放烘箱烘干。 　　玻璃器皿经洗涤后，若内壁的水是均匀分布成一薄层，表示油垢完全洗净，若挂有水珠，则还需用洗涤液浸泡数小时，然后再用自来水充分冲洗。 　　装有固体培养基的器皿应先将其刮去，然后洗涤。带菌的器皿在洗涤前先浸在2％煤酚皂溶液（来苏尔）或0．25％新洁尔灭消毒液内24小时或煮沸半小时，再用上法洗涤。带病原菌的培养物最好先行高压蒸汽灭菌，然后将培养物倒去，再进行洗涤。 　　盛放一般培养基用的器皿经上法洗涤后，即可使用，若需精确配制化学药品，或做科研用的精确实验，要求自来水冲洗干净后，再用蒸馏水淋洗三次，晾干或烘干后备用。 　　(2)玻璃吸管吸过血液、血清、糖溶液或染料溶液等的玻璃吸管（包括毛细吸管），使用后应立即投入盛有自来水的量筒或标本瓶内，免得干燥后难以冲洗干净。量筒或标本瓶底部应垫以脱脂棉花，否则吸管投入时容易破损。待实验完毕，再集中冲洗。若吸管顶部塞有棉花，则冲洗前先将吸管尖端与装在水龙头上的橡皮管连接，用水将棉花冲出，然后再装入吸管自动洗涤器内冲洗，没有吸管自动洗涤器的实验室可用冲出棉花的方法多冲洗片刻。必要时再用蒸馏水淋洗。洗净后，放搪瓷盘中晾干，若要加速干燥，可放烘箱内烘干。 　　吸过含有微生物培养物的吸管亦应立即投入盛有2％煤酚皂溶液或0．25％新洁尔灭消毒液的量筒或标本瓶内，24小时后方可取出冲洗。 　　吸管的内壁如果有油垢，同样应先在洗涤液内浸泡数小时，然后再行冲洗。 　　(3)载玻片与盖玻片用过的载玻片与盖玻片如滴有香柏油，要先用皱纹纸擦去或浸在二甲苯内摇晃几次，使油垢溶解，再在肥皂水中煮沸5—10分钟，用软布或脱脂棉花擦试，立即用自来水冲洗，然后在稀洗涤液中浸泡0．5—2小时，自来水冲去洗涤液，最后用蒸馏水换洗数次，待干后浸于95％酒精中保存备用。使用时在火焰上烧去酒精。用此法洗涤和保存的载玻片和盖玻片清洁透亮，没有水珠。 　　检查过活菌的载玻片或盖玻片应先在2％煤酚皂溶液或0．25％新洁尔灭溶液中浸泡24小时，然后按上法洗涤与保存。

玻璃器皿的清洗方法清洁的玻璃器皿是实验得到正确结果的先决条件，因此，玻璃器皿的清洗是实验前的一项重要准备工作。清洗方法根据实验目的、器皿的种类、所盛放的物品、洗涤剂的类别和沾污程度等的不同而有所不同。现分述如下： 1. 新玻璃器皿的洗涤方法新购置的玻璃器皿含游离碱较多，应在酸溶液内先浸泡数小时。酸溶液一般用2％的盐酸或洗涤液（见本小节“3”）。浸泡后用自来水冲洗干净。 2. 使用过的玻璃器皿的洗涤方法(1)试管、培养皿、三角烧瓶、烧杯等可用瓶刷或海绵沾上肥皂或洗衣粉或去污粉等洗涤剂刷洗，然后用自来水充分冲洗干净。热的肥皂水去污能力更强，可有效地洗去器皿上的油污。洗衣粉和去污粉较难冲洗干净而常在器壁上附有一层微小粒子，故要用水多次甚至10次以上充分冲洗，或可用稀盐酸摇洗一次，再用水冲洗，然后倒置于铁丝框内或有空心格子的木架上，在室内晾干。急用时可盛于框内或搪瓷盘上，放烘箱烘干。 玻璃器皿经洗涤后，若内壁的水是均匀分布成一薄层，表示油垢完全洗净，若挂有水珠，则还需用洗涤液浸泡数小时，然后再用自来水充分冲洗。 装有固体培养基的器皿应先将其刮去，然后洗涤。带菌的器皿在洗涤前先浸在2％煤酚皂溶液（来苏尔）或0.25%新洁尔灭消毒液内24小时或煮沸半小时，再用上法洗涤。带病原菌的培养物最好先行高压蒸汽灭菌，然后将培养物倒去，再进行洗涤。盛放一般培养基用的器皿经上法洗涤后，即可使用，若需精确配制化学药品，或做科研用的精确实验，要求自来水冲洗干净后，再用蒸馏水淋洗三次，晾干或烘干后备用。 (2)玻璃吸管吸过血液、血清、糖溶液或染料溶液等的玻璃吸管（包括毛细吸管），使用后应立即投入盛有自来水的量筒或标本瓶内，免得干燥后难以冲洗干净。量筒或标本瓶底部应垫以脱脂棉花，否则吸管投入时容易破损。待实验完毕，再集中冲洗。若吸管顶部塞有棉花，则冲洗前先将吸管尖端与装在水龙头上的橡皮管连接，用水将棉花冲出，然后再装入吸管自动洗涤器内冲洗，没有吸管自动洗涤器的实验室可用冲出棉花的方法多冲洗片刻。必要时再用蒸馏水淋洗。洗净后，放搪瓷盘中晾干，若要加速干燥，可放烘箱内烘干。 吸过含有微生物培养物的吸管亦应立即投入盛有2％煤酚皂溶液或0．25％新洁尔灭消毒液的量筒或标本瓶内，24小时后方可取出冲洗。 吸管的内壁如果有油垢，同样应先在洗涤液内浸泡数小时，然后再行冲洗。 (3)载玻片与盖玻片用过的载玻片与盖玻片如滴有香柏油，要先用皱纹纸擦去或浸在二甲苯内摇晃几次，使油垢溶解，再在肥皂水中煮沸5-10分钟，用软布或脱脂棉花擦试，立即用自来水冲洗，然后在稀洗涤液中浸泡0．5-2小时，自来水冲去洗涤液，最后用蒸馏水换洗数次，待干后浸于95％酒精中保存备用。使用时在火焰上烧去酒精。用此法洗涤和保存的载玻片和盖玻片清洁透亮，没有水珠。检查过活菌的载玻片或盖玻片应先在2[/

[b]悬滴法[/b] 用悬滴法，通过镜检观察细菌细胞是否具有运动性，可以通过普通显微镜或相差显微镜检查。用普通显微镜时光线不宜太强，要适当减弱。具体操作步骤方法如下。 待测菌株先在肉汤中培养18 h~24 h,也可以从生长了18 h-24 h的营养琼脂斜面上挑取少量菌落用1滴肉汤或生理盐水乳化，注意菌株的浓度不要太大。通过以下方法可以将1滴菌悬液悬浮在凹槽载玻片的盖玻片上。 1. 具体操作步骤 （1）取一洁净的盖玻片，在盖玻片四周点上凡士林 （2）用接种环挑取一小环菌株置于操作好的干净盖玻片上，不要让液滴散开 （3）将凹槽载玻片盖在盖玻片上，保持菌滴在槽中间，缓慢用力压下载玻片，借助凡士林的黏性使载玻片和盖玻片结合在一起(见图5-18),快速平稳地将玻片反转过来，菌滴应处于悬滴状态，尽快观察。 （4）观察悬滴玻片时，将镜下聚光镜从其正常位置略微下调，并使光圈几乎处于全关闭状态。这是因为未染色的菌体在太亮的环境下难于被观察到，而且，光造成的热效应会使菌体丧失运动性。 （5）首先用低倍物镜聚焦悬液的边缘，移动载玻片，让悬液在视野的中央。通过观察液滴边缘线外出现的小冷凝水滴能够很容易识别出悬滴的位置。换成高倍物镜(40倍)对液滴边缘重新聚焦。必要时，略微打开光圈。这时细菌应很容易观察到，尤其在液滴的边缘，深度较浅，细菌停留在有限的空间领域。用油镜观察玻片时，因为聚焦时镜头的移动可能造成盖玻片移动，从而造成液滴流动。这会严重影响观察效果，没有经验的人员甚至还会误认为是菌体在运动。 注意：必须正确区分布朗运动(一种液体中悬浮的微小粒子的连续运动，是由于液体周围的分子不对称的撞击造成的)、玻片轻微倾斜造成的一个方向上的漂移和真正的菌体运动。 有时可以根据运动方式的不同来鉴定菌种，如李斯特氏菌是翻跟头式的运动，噬胞菌为滑行运动。要想通过运动方式来鉴定菌种，就必须熟悉不同菌种的运动方式，观察比较已知菌株的运动情况可以不断积累经验。 2. 注意事项 检验时应注意以下几点： （1）细菌细胞间有明显位移者，才能判定为运动性。由于细菌细胞太小，在悬液中有布朗运动，即每个细胞均在原地颤动，彼此的位置关系却没改变，切不可将这种现象误判为具运动性。由于载玻片与盖玻片之间悬液过多，在使用油浸物镜调焦时，悬液在盖玻片下流动。这时可看到大批细菌细胞都以同一速度向同一方向运动，这也不是真正的运动性。真正的运动性应是细菌细胞彼此的位置关系明显的改变。细菌的运动性因种或菌株而异。有的运动迅速，有的运动缓慢。能运动的菌株也不一定每个细胞都同时运动，常常是大多数细胞不运动，少数细胞明显运动。 （2）有些细胞不以鞭毛运动，而是滑动。镜检时应注意与游动区分开。一般游动速度高，滑动则迟缓。游动只能在悬液中运动，滑动则须附在固体表面进行。 （3）如室温太低，以致载物台温度太低。有的细菌会因温度太低而不能运动，应该设法提高载物台或载玻片的温度，达到试验菌能运动的温度(如在室温较高的试验室镜检，或将载玻片放置保温箱中一会儿再观察)。 （4）镜检好氧菌时，则可能因盖玻片下供氧不足而使试验菌不能表现出运动性，遇到这种情况则应使盖玻片下残留一两个小气泡，镜检气泡四周或盖玻片边缘的细菌运动性。 （5）用油镜观察时，盖玻片的厚度以不超过0. 17 mm为宜。用过厚的盖玻片，调焦有困难。用相差油镜观察时载玻片的厚度以约为1.2 mm为宜。 [b]半固体穿刺[/b] 根据有鞭毛的细菌可以在半固体培养基中游动却又不能任意游走的现象，观察细菌生长情况，判定试验菌是否有运动性，可使用试验菌能良好生长的培养基，在其中加入0.3%~0.6%的琼脂(所用琼脂的量可因品牌不同而异),一般半固体培养基应是放倒试管不流动，而在手上轻轻敲打时琼脂即破裂为宜。对一般常见细菌可结合葡萄糖氧化发酵试验观察运动性。 用直针穿刺接种试验菌于半固体培养基内(见图5-20),适温培养。细菌的运动性可用透射光目测。如生长物只生长在穿刺线上，边缘十分清晰，则表示试验菌无运动性；如生长物由穿刺线向四周呈云雾状扩散，其边缘呈云雾状，则表明试验菌株有运动性。对生长快的细菌培养1d后观察。如第一天不能判定可在第2d-3d再观察。如2d-3d时仍不能判定是否有运动性，可延迟5d-6d再观察一次。因为游动力弱的细菌，在半固体培养基中第1d-2d中尚不能从穿刺线游开，故需多培养几天再观察。如试验菌在半固体培养基中产气泡会影响穿刺线上的生长物的扩散情况，不可误将不运动的细菌判为有运动性。如试验菌是好氧细菌，穿刺线上生长物很少，可检查从培养基表面向下渗入的生长物的情况。

我们实验课需要用到矿物晶相结构薄片（偏光显微镜或者金相显微镜上使用），但原来的已经使用太长时间了，想换一下，请问哪个地方有售？谢谢！