光合蒸腾作用测定系统

光合作用测定仪是一款集高精度、智能化、便捷性于一体的科学仪器，专门用于测定植物叶片的光合作用相关参数。通过精确测量，研究人员能够深入了解植物的光合作用过程，进而为农业生产和生态研究提供有力支持。　　光合作用测定仪具备多种功能，能够全面、准确地反映植物光合作用的各个方面。首先，它能够测量叶片的净光合速率，即植物在光照条件下吸收二氧化碳并释放氧气的速度。这一指标对于评估植物的生长状态、光合效率以及抗逆性具有重要意义。　　其次，光合作用测定仪还能够测定叶片的蒸腾速率。蒸腾作用是植物通过气孔排放水分的过程，与植物的光合作用密切相关。通过测量蒸腾速率，研究人员可以了解植物的水分利用效率和抗旱能力，为制定合理的灌溉和施肥方案提供依据。　　此外，该仪器还能测量叶片的叶绿素含量。叶绿素是植物进行光合作用的关键色素，其含量的多少直接影响植物的光合效率。通过测定叶绿素含量，研究人员可以判断植物的光合能力，为植物育种和栽培提供指导。　　光合作用测定仪还具有智能化的特点。它采用先进的传感器技术和数据处理算法，能够实时、准确地记录测量数据，并通过软件界面进行直观展示。用户可以通过简单的操作，轻松获取所需数据，并进行进一步的分析和处理。　　总之，光合作用测定仪是一款功能强大、操作简便的科学仪器，能够为植物生理生态研究提供有力的支持。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406041010323380_5237_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=18px]　　光合作用测定仪在实验课程中有哪些应用，光合作用测定仪在实验课程中有多种应用，主要体现在以下几个方面：　　植物生理实验课程：光合作用测定仪是植物生理实验课程中常用的检测仪器。利用它，学生可以开展植物光合作用、呼吸作用、蒸腾作用的相关课题研究以及教学。　　测定光合作用参数：在实验过程中，学生可以将植物样品放入光合作用仪中，调节光源的强度和波长，使其符合实验要求。然后，通过CO2供应系统向光合作用仪中注入一定浓度的CO2，以模拟植物在自然环境中的CO2浓度。在此过程中，学生可以测定光合作用的净速率、光补偿点和CO2补偿点等指标，从而了解植物光合作用的效率。　　测定环境参数：光合作用测定仪还可以测定CO2浓度、叶片温度、光合有效辐射和叶室温湿度等环境参数。通过科学计算，可以得出叶片的光合速率、叶片蒸腾速率、细胞间CO2浓度、气孔导度、水分利用率等光合作用指标，从而更全面地了解植物的生长状况。　　科学研究与指导农业生产：光合作用测定仪的应用不仅限于教学和实验，还可以在科研和生产方面发挥积极作用。例如，在农业生产和农业科研中，可以利用光合作用测定仪来科学指导农业生产，提高作物产量和品质。　　总的来说，光合作用测定仪在实验课程中的应用广泛，是植物生理实验、科研和生产中不可或缺的工具。通过使用该仪器，学生可以更深入地了解植物光合作用的原理和过程，为未来的科研和农业生产奠定坚实的基础。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405210944478055_8620_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=18px]光合蒸腾仪测量方式上手简单吗，光合蒸腾仪的测量方式上手是否简单，取决于多个因素，包括仪器的设计、操作界面的友好程度以及使用者的操作经验和技能水平。一般来说，光合蒸腾仪的测量方式需要按照一定的步骤进行，包括连接气管、设置光源、进行校准和测量等。如果使用者能够仔细阅读说明书，了解仪器的操作方法和注意事项，并在实践中多加练习，那么上手使用光合蒸腾仪进行测量应该是相对简单的。此外，一些光合蒸腾仪具有智能化的操作界面和自动校准功能，这些功能可以进一步简化测量过程，提高测量的准确性和效率。然而，对于初学者来说，可能需要花费一些时间和精力来熟悉和掌握光合蒸腾仪的操作方法。因此，建议在使用前仔细阅读说明书，并在专业人员的指导下进行实践操作，以确保测量的准确性和可靠性。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405210942162370_8741_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405280926503608_6367_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]　　便携式光合仪是一种先进的科学仪器，主要用于测定植物叶片的光合作用、蒸腾作用、呼吸作用等生理过程。它不仅能够提供关于植物生理状态的重要数据，而且有助于科研人员深入理解植物的生长机制，进而优化农业生产和生态环境管理。　　首先，便携式光合仪的核心功能之一是测量植物叶片的光合速率。通过精确测量叶片在一定时间内对二氧化碳的吸收量，仪器能够计算出光合速率，从而评估植物的光合作用效率。此外，光合仪还能够测量叶片的蒸腾速率，即植物通过叶片散失水分的速度，这对于了解植物的水分利用效率和抗旱性具有重要意义。　　除了基本的生理参数测量，便携式光合仪还具有多项扩展功能。例如，它能够测量环境温湿度、叶片温度以及光合有效辐射强度等环境因素，这些因素对植物的光合作用过程具有显著影响。通过综合考虑这些因素，科研人员可以更准确地分析植物的光合作用响应机制。　　此外，现代便携式光合仪通常配备先进的数据处理和分析功能。仪器能够自动记录并保存测量数据，支持数据导出和可视化展示。用户可以通过电脑或手机等终端设备远程查看和管理数据，进行实时分析和比较。这大大提高了科研工作的效率和准确性，使得科研人员能够更便捷地获取和分析植物生理数据。　　总的来说，便携式光合仪是一种功能强大、操作简便的科学仪器。它在农业、生态和环境科学等领域具有广泛的应用前景，对于推动相关领域的科学研究和技术创新具有重要意义。

以色列PhyTechs PTM-48A植物光合生理及环境监测系统是目前正常环境条件下植物状态分析中更复杂的系统。系统可以利用叶片温度、茎流速率、茎杆微变化、茎杆与果实生长传感器等，来连续监测并记录完整的植物光合与蒸腾速率。 PTM-48M植物光合生理及环境监测系统的特点:12传感器通道设计 1）其中四个输入通道用于自动开合的叶室，测量叶片的光合与蒸腾速率； 2）另外的八个通道用于其他传感器，用于环境(PAR、空气温湿度、土壤湿度)与植物(叶片温度、茎流速率、茎杆微变化、果实生长、茎杆测量仪)监测。植物光合生理及环境监测系统特点： ·可长期、自动循环、同时测量四个叶片的CO2交换情况与光合速率 ·可长期、自动循环、同时测量四个叶片的H2O交换情况与蒸腾速率 ·可长期同时测量植株不同茎杆的茎流量 ·可长期同时测量植物所处的环境因子(空气温湿度、土壤湿度、PAR) ·可长期同时测量植物或者果实的微变化(茎杆微变化、果实生长、茎杆测量仪)植物光合生理及环境监测系统应用： ·4通道植物光合作用与蒸腾作用研究 ·作物的长期监测：实验室、温室和植物生长室中的植物生理学研究 ·野外长期生态监测研究，作物环境条件的变化与CO2的气体交换过程的相互关系等 PTM-48A植物光合生理及环境监测系统系统配置： 下面是系统的一些参数、用户可以根据自己的研究需要可选的传感器以及一般的系统构成可选传感器 ·PIR-1 光合作用辐射传感器 ·TIR-4 总辐射传感器 ·ATH-2 空气温湿度传感器 ·SMS-2 土壤湿度传感器 ·LT-2M 叶片温度传感器 ·SF-4M SF-5M 茎流速率传感器 ·SD-5M 或 SD-6M 茎杆微变化传感器 ·DE-1M 树木生长计 ·FI-LM,FI-MM,FI-SM和FI-XSM果实生长传感器 ·SA-20 茎杆生长计PTM-48A植物光合生理及环境监测系统性能参数 ·叶室数: 4个 ·叶室面积: 20 cm2 ·连接气体管路的标准长度: 6m ·叶室通道的正常空气流速范围: 0.8－1.0L/Min ·CO2浓度测量范围: 0－1000ppm ·CO2交换的额定测量范围: -20到20 μmolCO2m-2s-1 ·H2O交换的额定测量范围: 0－50mgH20m-2s-1 ·可选输入传感器数: 11 ·可选传感器输入范围: 0－10Vdc(12 bit) ·电源需求: 可选 220/110/100 VAC ; 50/60 Hz,150W ·连接串口: RS232 和 RS485(可选) ·终端软件要求系统为 Windows 98, 2000,ME 和 XP ·环境保护指标: IP51

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=16px]　　便携式光合测定仪准确率多少，便携式光合测定仪的准确率主要取决于其技术指标和测量方式。以下是关于便携式光合测定仪准确率的详细说明：　　一、技术指标　　CO?分析器：　　类型：绝对开路式非色散红外分析器　　量程：0~3100 μmol/mol　　准确度：最大误差为±5 μmol/mol(在0~1500 μmol/mol范围内) ±10 μmol/mol(在1500~3100 μmol/mol范围内)　　H?O分析器：　　类型：绝对开路式非色散红外分析器　　量程：0~75 mmol/mol，或40℃露点　　准确度：最大误差为±1.0 mmol/mol　　二、测量方式与准确率　　便携式光合测定仪采用闭路测量方法，这种方法通过创建一个封闭的测量环境，使得气体CO?浓度、空气温湿度、植物叶片温度、光强以及气体流量等要素在测量过程中保持稳定和可控，从而确保测量结果的准确性。　　具体来说，便携式光合测定仪可以准确测定以下要素：　　气体CO?浓度：通过内置的CO?分析仪来测量环境中的CO?浓度，这是评估植物光合作用效率的关键参数之一。　　空气温湿度：仪器配备温湿度传感器，以实时监测和记录环境空气的温度和湿度，这些参数对植物的光合作用和蒸腾作用都有显著影响。　　植物叶片温度：通过红外测温技术或其他温度测量手段，便携式光合测定仪可以准确测定植物叶片的表面温度，这有助于了解植物叶片对环境的热响应。　　光强：仪器配备光强传感器来测量不同波长的光强，从而了解植物对不同光谱的响应。　　气体流量：通过气体流量计，仪器可以测量通过植物叶片的气体流量，这有助于计算光合速率和蒸腾速率等参数。　　三、总结　　便携式光合测定仪的准确率主要取决于其技术指标和闭路测量方法。通过高精度的传感器和精确的测量技术，它能够准确、快速地测定多种与植物光合作用相关的参数，并为植物生理学、生态学、农业生产和环境科学等领域的研究提供有力的工具。然而，由于测量环境、操作方式等因素的影响，实际测量中可能存在一定的误差，因此在使用时需要注意操作规范和数据解读的准确性。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406071117138857_8471_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][size=15px][color=#05073b]　　植物光合作用测定仪反应灵敏度高吗，植物光合作用测定仪的反应灵敏度通常是非常高的，这主要得益于其先进的传感器技术和设计。以下是一些关于植物光合作用测定仪反应灵敏度的详细信息和特点：　　传感器技术：　　植物光合作用测定仪配备了高精度的传感器，用于测量与光合作用相关的关键参数，如二氧化碳浓度、空气温湿度、叶片温度、光照强度等。　　这些传感器通常具有快速响应能力，能够迅速捕捉到微小的环境变化，并准确地转化为数据输出。　　测量精度：　　由于采用了高精度的传感器和先进的测量技术，植物光合作用测定仪能够提供非常准确的测量数据。　　例如，一些光合作用测定仪的二氧化碳测量精度不会受到温度变化的影响，并且具备稳定、高精度、反应灵敏等特性，可以在一秒钟以内完成二氧化碳差值收集。　　智能化系统：　　许多植物光合作用测定仪配备了智能化系统，能够实时显示、储存和传输测量数据。　　这种智能化系统可以大大提高测量的便捷性和效率，同时也能够确保数据的准确性和可靠性。　　稳定性：　　光合作用测定仪通常具有良好的稳定性，能够在长时间连续测量中保持高灵敏度。　　这对于需要进行长时间监测或连续监测的研究项目来说尤为重要。　　多功能性：　　植物光合作用测定仪可以同时测量多个参数，如光合速率、蒸腾速率、细胞间二氧化碳浓度、气孔导度等。　　这种多功能性使得它能够满足不同研究项目的需求，并提供全面的数据支持。　　综上所述，植物光合作用测定仪的反应灵敏度通常是非常高的。它采用了高精度的传感器技术、先进的测量技术、智能化系统和稳定的设计，能够迅速、准确地捕捉到与光合作用相关的微小环境变化，并提供准确的测量数据。这些特点使得植物光合作用测定仪在植物生理学、生态学、农业科学等领域的研究中具有重要的应用价值。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406131144468576_457_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/color][/size][/font]

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=16px]　　便携式光合测定仪适用于什么植物，便携式光合测定仪是一种现代化的科研工具，因其小巧轻便、易于携带、智能化程度高以及稳定性强等特点，在植物生理生态学研究中有着广泛的应用。以下是关于便携式光合测定仪适用的植物类型及相关信息：　　适用植物类型：　　便携式光合测定仪可广泛应用于各种植物，包括但不限于大田作物、果蔬、蔬菜、牧草、观赏植物等。该仪器主要用于测量不同植物的叶片光合速率、蒸腾速率、气孔导度等关键参数。　　具体应用场景：　　农林业：科研人员可利用该仪器对农作物叶片的光合速率、气孔导度、胞间二氧化碳浓度等参数进行精确测量，评估不同品种的适应性、抗逆性以及产量潜力。同时，通过测定不同生长环境下的光合参数，为优化农作物的种植管理提供科学依据。　　生态学：生态学家可利用该仪器研究不同生态系统中植物的光合作用特性，了解生态系统对气候变化的响应机制。例如，通过测定不同海拔、纬度或土壤类型下的植物叶片光合参数，揭示生态系统结构、功能以及生物多样性的变化规律。　　园艺和草地科学：该仪器可用于研究观赏植物和牧草的光合作用特性，为品种改良和种植管理提供理论依据。　　测量参数：　　便携式光合测定仪能够测量的参数非常丰富，包括但不限于CO2浓度、H2O浓度、空气温度、叶片温度、相对湿度、蒸汽压亏缺、露点温度、大气压、内置光强、外置光强、净光合速率、蒸腾速率、胞间CO2浓度、气孔导度等。这些参数能够全面反映植物的光合作用状况，为科研工作者提供宝贵的数据支持。　　特点：　　该仪器具有便携性、智能化程度高、稳定性强等特点，适用于野外试验、现场监测等多种环境。同时，它支持活体、离体测量，并且室内外两用，满足了科研工作的多样化需求。　　综上所述，便携式光合测定仪适用于多种类型的植物，包括但不限于大田作物、果蔬、蔬菜、牧草等，能够为科研人员提供全面、准确的光合作用相关参数数据，对于植物生理生态学研究具有重要意义。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406131145594548_7165_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

[b][size=3]目前最流行的测定光合速率的方法[/size][/b][size=2]光合作用是地球上最重要的生命现象，它是唯一能把太阳能转化为稳定的化学能贮藏在有机物中的过程，是维持地球上物质循环的关键环节，也是农作物产量形成的决定性因素。因此，提高光合作用对于提高作物产量具有十分重要的意义。在植物生理学、生态学、作物栽培学、育种学等研究工作中，经常需要测定光合速率，研究者们总想创造出一种快速、准确而又简便的光合速率测定方法，以满足研究工作的要求。[/size][size=2] 根据光合作用的总反应式 [/size][size=2] [b]CO[sub]2[/sub] [/b]+ 2H[sub]2[/sub]O[sup]* [/sup]+ 4.69kJ → (CH[sub]2[/sub]O) +[b] O[sup]*[/sup][sub]2 [/sub][/b]+ H[sub]2[/sub]O[sup][/sup][/size][align=left][size=2] [/size][/align][align=left][size=2] 原则上我们可以测定任一反应物的消耗速率或产物的生成速率来表示光合速率。常用方法的是测定CO[sub]2[/sub]的吸收、O[sub]2[/sub]的释放和有机物的积累三个方面，即通过测定干物质的积累表示光合速率的改良半叶法、通过测定CO[sub]2[/sub]吸收的红外线CO[sub]2[/sub]气体分析仪法（光合仪）以及通过测定O[sub]2[/sub]释放的氧电极法。[/size][/align][align=left][size=2] 改良半叶法只能测得植物叶片的光合速率，而无法测得与光合速率有关的其它参数，如气孔导度、蒸腾速率、细胞间隙CO[sub]2[/sub]浓度、CO[sub]2[/sub]补偿点、光补偿点等，并且该方法所用的实验时间较长（4～5h），如果遇到阴雨天气，则无法进行测定。因此，该方法用于科学研究有很大的局限性，已经慢慢退出了历史舞台。因此，现在最流行的测定光合速率的方法是通过[b]测定CO[sub]2[/sub]吸收的红外线CO[sub]2[/sub]气体分析仪法（光合仪）[/b]以及[b]通过测定O[sub]2[/sub]释放的氧电极法（氧电极）[/b]。[/size][/align]

[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405280917103142_1865_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]　　光合作用测定仪是一款重要的科学仪器，它主要用于测量植物的光合作用过程。通过精确测量植物在光照条件下的气体交换，光合作用测定仪能够帮助科研人员深入理解植物的生长机制，评估环境因素对植物生长的影响，以及优化农业生产的条件。　　首先，光合作用测定仪在植物生理学研究中发挥着不可替代的作用。科研人员可以利用该仪器，实时监测植物在不同光照、温度、湿度等条件下的光合速率、呼吸速率等生理指标，从而揭示植物对环境的适应机制和生理响应。　　其次，在生态学领域，光合作用测定仪也发挥着重要的作用。通过测量不同生态系统中植物的光合作用效率，可以评估生态系统的生产力和稳定性，为生态系统的保护和恢复提供科学依据。　　此外，光合作用测定仪在农业生产实践中也具有广泛的应用价值。通过测量作物在不同生长阶段的光合作用性能，农民和农业科研人员可以制定更为合理的种植管理策略，如调整灌溉、施肥和种植密度等，以提高作物产量和品质。　　最后，随着全球气候变化问题的日益严重，光合作用测定仪在气候变化研究领域也展现出了巨大的潜力。通过长期监测植物的光合作用性能，可以揭示气候变化对植物生长的影响，为应对气候变化提供科学依据。　　总之，光合作用测定仪具有广泛的用途，它在植物生理学、生态学、农业生产和气候变化研究等领域都发挥着重要的作用。随着科学技术的不断进步，光合作用测定仪的性能和应用范围还将不断拓展，为人类认识自然、保护生态和推动可持续发展提供有力支持。

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=16px]　　光合作用测定仪传感器是进口的吗，光合作用测定仪的传感器是否进口，取决于具体的仪器品牌和型号。参考文章中的信息，不同品牌和型号的光合作用测定仪可能采用不同的传感器。　　进口传感器：有些光合作用测定仪确实采用了进口传感器，光合作用测定仪，其强调使用了“进口传感器”。但具体是哪个国家或地区的进口传感器，文章并未提及。　　国产传感器：其他品牌的光合作用测定仪可能使用国产传感器。光合作用检测仪，虽然文章没有直接说明其传感器是否进口，但考虑到其产地为山东，且未特别强调进口传感器，可以推测其可能使用了国产传感器。　　传感器类型：无论是进口还是国产传感器，光合作用测定仪通常都用于测量与植物光合作用相关的参数，如CO2浓度、叶片温度、光合有效辐射等。这些传感器通常具有高精度和稳定性，以确保测量结果的准确性。　　综上所述，光合作用测定仪的传感器是否进口取决于具体的仪器品牌和型号。一些品牌可能采用进口传感器，而另一些品牌则可能使用国产传感器。无论采用哪种传感器，光合作用测定仪都旨在提供准确、可靠的测量数据，以支持植物生理学、生态学等领域的研究和应用。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/06/202406131140373957_9631_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

我们实验室准备购一台价格30万左右的光合作用测定仪，哪位大侠对光合作用测定仪价格和功能了解，能不能给一些这方面的资料或者是信息啊，有劳了。

[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405280924434083_7887_5604214_3.jpg!w690x690.jpg[/img]　　光合速率测定仪是一种专门用于测量植物光合作用的仪器，它能够精确、快速地测定植物的光合速率，为植物生理学、生态学以及农业生产等领域的研究提供有力的支持。　　光合速率测定仪基于光合作用的基本原理，通过测量植物叶片在光照条件下的气体交换过程，来推算出光合速率。仪器一般包含光源、叶片夹持器、气体分析器以及数据记录系统等部分。光源用于模拟自然环境中的光照条件，叶片夹持器则负责固定被测叶片，气体分析器则用于测定叶片在光照条件下的二氧化碳吸收和氧气释放量，最后数据记录系统将这些数据记录下来，并经过计算得出光合速率。　　光合速率测定仪的应用范围非常广泛。在植物生理学研究中，它可以用来研究不同植物品种、不同生长环境下光合速率的差异，为优化植物生长条件、提高产量提供理论依据。在生态学研究中，光合速率测定仪有助于了解不同生态系统中的光合作用特性，揭示生态系统的能量流动和物质循环规律。此外，在农业生产中，光合速率测定仪也可以用于评估农作物的生长状况，指导农民合理施肥、灌溉和修剪，提高农作物的产量和品质。　　随着科学技术的不断发展，光合速率测定仪的性能也在不断提高。未来，我们可以期待更加精确、便携、智能化的光合速率测定仪问世，为植物科学研究和农业生产带来更多的便利和突破。

中国科技网讯 据物理学家组织网6月5日（北京时间）报道，一个由瑞典、德国等多国人员组成的小组，利用短脉冲X射线分析看到了植物进行光合作用的分子结构，发现钙在水分解过程中极为重要，是构建人工光合系统的关键“建材”。这一方法为理解自然界植物的光合作用、光合系统结构与反应机制并最终实现人工光合作用提供了新途径。论文发表在近日出版的《美国国家科学院学报》上。 光合作用可分两步进行：第一步为光反应，由阳光提供能量分解水分子，放出氧气，为下一步暗反应供应能量；第二步为暗反应，利用第一步的能量与CO2反应，生成各种碳水化合物。而光合作用中心的两种不同的光合蛋白复合色素体系，分别进行光合系统Ⅰ（PSⅠ）和光合系统Ⅱ（PSⅡ）两种光化学反应。其中，PSⅡ在光反应过程中激发高能电子、分解水分子、释放氧和推动电子传递，并启动第一步光反应，在该过程中地位非常重要。 瑞典奥默大学化学系教授约翰尼斯·梅辛杰领导的团队试图以“人造树叶”项目模拟植物利用太阳能的方法，开发人工光合作用。但其必须先清楚，光合作用中哪些分子是分解水必不可少的，以及这些分子如何发挥作用。为此，团队设计了一种工具来研究植物在进行光合作用时的光合系统。 此前研究发现，放氧复合物（Mn4O5Ca）是PSⅡ的组成部分，去除钙离子则导致无法放氧。梅辛杰团队从PSⅡ中分离出放氧复合物分子，设法去除了其中的钙离子，再用美国斯坦福大学的X射线自由电子激光设备发出的超短X射线脉冲对分子结构进行了分析，记录下原子50飞秒（1飞秒＝10－15秒）的运动过程。 “放氧复合物中5个氧原子将4个锰离子联合在一起，去除了钙离子后，这种结构没有变化，说明钙离子一定在水分解反应中起着极为重要的作用。”梅辛杰解释说，由于实验所用的X射线脉冲极短暂，所以探测时不会扰乱光合系统。“利用这一新工具，我们最终能够探求水在被分解时，氧原子怎样形成了氧络桥最后产生氧分子的。以往要从细节上研究这一阶段是不可能的。”（记者 常丽君） 总编辑圈点 如果要评选地球上最重要的化学反应，光合作用毫无疑问排在第一，它是目前已知的绝大多数生命的基础。19世纪后半期人们才发现光合作用的存在，而直到今天，科学家也没有完全把握其实质。欧洲科学家此次利用新的光学手段，窥测到转瞬即逝的化学迹象，从而将光合作用的机制还原到了分子级尺度。如此一来，人们就有望模仿自然界，造出高效率的“光合机器”。 《科技日报》（2012-06-06 一版）

[color=#000000][size=16px][font=arial, helvetica, sans-serif]钾是作物生长时需要的大量元素之一,也是上壤中常因供应不足而影响作物产量的一个重要元素。因此，钾肥对作物的生长起着至关重要的作用。这些作用主要体现在哪些方面呢？接着往下看：[/font][/size][/color][color=#000000][size=16px][font=arial, helvetica, sans-serif]1、施用钾肥增加作物的根茎的强度；[/font][/size][/color][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]2、钾能大大的提高作物对氮的吸收利用并很快的转化成蛋白质；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]3、施用钾肥可以减少作物水分蒸腾，有助于提高作物抗旱能力；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]4、钾肥能促进植物的光合作用，可补偿高温下有机物的过渡消耗；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]5、钾肥能增加谷类作物的籽粒的饱满度，增大薯类作物和土豆的块根；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]6、施用钾肥可以促进碳水化合物和氮的代谢；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]7、施用钾肥可以保持细胞的内压，从而防止植物枯萎；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]8、施用钾肥可以增加水果、蔬菜等作物中的糖分含量；[/size][/font][font=arial, helvetica, sans-serif][size=16px]9、施用钾肥可以提高作物的抗逆性，对作物高产、稳产，起着非常重要的保障作用。[/size][/font]

作者：牛红军（山西医科大学）摘要： 目的：初步研究光合细菌生物转化槲寄生的转化机理,并且对光合细菌生物转化槲寄生培养液中具有细胞毒活性的蛋白质和总三萜类物质进行研究。 方法： 实验一：(1)采用pH计测定光合细菌转化槲寄生过程中培养液pH的变化趋势；(2)聚丙烯酰胺凝胶电泳法获得光合细菌(PSB)蛋白质、酯酶、过氧化物酶及超氧化物歧化酶的电泳图谱；(3)槲寄生提取液中添加吲哚,以PSB进行生物转化,通过HPLC法测定靛蓝的生成量来反映PSB加氧酶活性。 实验二：将光合细菌转化槲寄生培养液(PSBT)离心,得到PSBT上清液和菌体沉淀。菌体沉淀用超声波辅助冻融法破碎,离心,上清液即为PSBT菌体沉淀提取液。取PSBT上清液及PSBT菌体沉淀提取液,进行硫酸铵沉淀和透析,分别得PSBT上清液总蛋白提取液和菌体沉淀总蛋白提取液。取不同浓度的总蛋白质提取液,用MTT法测定细胞毒活性。 利用AKTA purifier 10层析系统,Hitrap Desalting和CM Fast Flow等层析柱,采用不同缓冲液体系对PSBT上清液总蛋白提取液进行蛋白质纯化。 实验三：采用紫外分光光度法对槲寄生提取物和PSBT中三萜类化合物进行比较研究；分别采用薄层色谱法和高效液相色谱法(HPLC)对齐墩果酸进行定性分析和含量测定,HPLC色谱条件：色谱柱为Diamonsil C18 (200mm×4.6mm, i.d.5μm),流动相为甲醇-0.18%的磷酸水(86：14),检测波长210nm,柱温25℃,流速1ml/min。结果： 实验一：(1)接种PSB后,纯PSB培养液pH缓慢上升,PSBT的pH迅速下降；(2)PSBT中菌体蛋白质、酯酶、过氧化物酶及超氧化物歧化酶的电泳图谱与纯PSB培养液中菌体的电泳图谱不同；(3)未得到PSBT和纯PSB培养液中菌体的超氧化物歧化酶(SOD)电泳图谱；(4)加入吲哚后,PSBT中有靛蓝类物质生成,而纯PSB培养液中无靛蓝产生。 实验二：各蛋白质样品的细胞毒活性： (1)上清液总蛋白对HO-8910细胞的半数抑制浓度(IC50,mg/mL,按照槲寄生提取液中原药材含量计算,下同)：①IC50200mg/mL:沼泽红假单胞菌转化槲寄生水浸提培养液(浸沼,JZ)是0.18,槲寄生水浸提培养基(浸对,JD)是20,球形红细菌转化槲寄生水浸提培养液(浸球,JQ)是60：②200mg/mLIC502000mg/mL:槲寄生水提培养基(水对,SD)、沼泽红假单胞菌转化槲寄生水提培养液(水沼,SZ)和球形红细菌转化槲寄生水提培养液(水球,SQ);③IC502000mg/mL:球形红细菌转化槲寄生醇提培养液(醇球,CQ)、沼泽红假单胞菌转化槲寄生醇提培养液(醇沼,CZ)和槲寄生醇提培养基(醇对,CD)。 (2)上清液总蛋白对SGC-7901细胞的半数抑制浓度(IC50. mg/mL):①IC50 200mg/mL:JD是8,JZ是20,JQ是78,CQ是150；②200mg/mLIC502000mg/mL:SQ。 (3)菌体沉淀总蛋白对HO-8910细胞的半数抑制浓度(IC50. mg/mL):①IC50 200mg/mL:SZ是84,CZ是122；②200mg/mLIC502000mg/mL:JQ和JZ；③IC502000mg/mL:纯球形红细菌培养液(球,Q)、纯沼泽红假单胞菌培养液(沼,Z)、SQ和CQ。 (4)菌体沉淀总蛋白对SGC-7901细胞的半数抑制浓度(IC50. mg/mL):①IC50 200mg/mL:JZ是14,JQ是18；②200mg/mLIC502000mg/mL:CZ、CQ和SZ。 (5)其它蛋白样品对肿瘤细胞几乎没有抑制作用。 SZ上清液总蛋白、SQ上清液总蛋白和SD总蛋白在CM Fast Flow层析柱的各种层析条件下都至少得到一个穿透峰和一个洗脱峰,另外,SQ上清液总蛋白在pH5.0的缓冲液体系中还额外分离得到的一个洗脱峰；SZ上清液总蛋白和SQ上清液总蛋白都在pH6.5的缓冲液体系中多分离得到一个小穿透峰。 实验三：CQ和CZ的总三萜含量与CD相比分别增加36%、14.7%；CQ和CZ的齐墩果酸含量与CD相比分别增加925%、281%；SQ、SZ及SD的总三萜和齐墩果酸含量均很低。 结论： (1)培养液中加入槲寄生后,光合细菌参与槲寄生的生物转化反应的某些酶被抑制或激活；(2)各种蛋白质提取液中,PSB转化槲寄生水浸提培养液上清液总蛋白的抑瘤活性最大。各种浓度JZ上清液总蛋白、JQ上清液总蛋白和JD总蛋白的细胞毒活性随作用时间变化的规律不同,但都具有时间-剂量依赖性。由此可知：PSB生物转化后,蛋白质的抑瘤活性规律发生了变化,抑瘤活性的蛋白质组分发生了改变。(3)PSBT中有新的蛋白质组分生成,说明光合细菌可以转化槲寄生成分生成新的蛋白质；(4)槲寄生醇提培养基经过光合细菌生物转化后,总三萜和齐墩果酸含量均增加,球形红细菌转化生成总三萜和齐墩果酸的能力比沼泽红假单胞菌强。三萜类化合物含量的增加可能是PSBT抗肿瘤作用增强的部分物质基础。

BS EN 208-1999 人眼防护.激光和激光系统调节工作用护目镜(激光调节护目镜)

气候系统概述　　气候系统由大气、海洋、陆地表面、冰雪覆盖层和生物圈等五个部分组成。太阳辐射是这个系统的主要能源。在太阳辐射的作用下，气候系统内部产生一系列的复杂过程，各个组成部分之间，通过物质交换和能量交换，紧密地联结成一个开放系统。　　大气是气候系统中最容易变化的部分，例如，当外界热量输入(主要是太阳辐射)发生变化后，通过各种热量输送和交换过程能在一个月的时间内，调整对流层温度的分布。海洋占地球表面面积的71％左右，它能吸收到达地表的大部分太阳辐射能，海水又具有很大的热容量，所以它是气候系统中一个巨大的能量贮存库。洋流在热量输送和全球热量平衡中起着巨大的作用，海洋表层在数月到数年内与大气或海冰相互发生作用，调节其温度。海洋的深层热量调节时间则需要几百年。　　陆地表面具有不同的海拔高度、地形、岩石、沉积物和土壤，以及河、湖、地下水等。河、湖、地下水是水分循环中的重要组成部分，它们也是气候系统中容易变化的部分。陆块位置、高度和地形发生变化的时间尺度，在气候系统的所有组成部分中是最长的。　　冰雪覆盖层包括大陆冰原、高山冰川、海冰和地面雪被等。雪被和海冰有很明显的季节变化，冰川和冰原的变化要缓慢得多。冰川和冰原的体积变化与海平面的变化有密切的联系。冰雪具有很大的反射率，在气候系统中，它是一个致冷因素。　　生物圈指的是陆地上和海洋中的植物以及生存在大气、海洋和陆地的动物。生物对于大气和海洋的CO2平衡、气溶胶的产生，以及其他气体成分和盐类有关的化学平衡都有很重要的作用。植物可以随着温度、辐射和降水的变化而发生自然变化，其变化的时间尺度为一个季节到数千年不等；而且植物反过来又会改变地面反射率和粗糙度,影响水分的蒸发、蒸腾，以及地下水循环。由于动物需要得到适当的食物和栖息地，所以动物群体的变化，也反应了气候的改变。

摘自中科院生态与环境科学稳定同位素实验室如何在生态和环境科学研究中运用稳定同位素？　　稳定同位素技术的出现加深了生态学家对生态系统过程的进一步了解，使生态学家可以探讨一些其它方法无法研究的问题。正如现代分子生物技术大大地推动了基因、生物化学和进化生物学的研究一样，稳定同位素技术对生态学研究也已产生了重要的影响。通过使用稳定性同位素技术，可以使生态学家测出许多随时空变化的生态过程，同时又不会对生态系统的自然状态和元素的性质造成干扰。在过去的十几年中，一些生态与环境科学的最令人瞩目的进步依赖于稳定性同位素技术，稳定性同位素能够被用来解决生态与环境科学的许多问题。 包括：1.植物如何有效地利用水分（13C）？2.植物从土壤哪个层次获得水分（18O, 2H）？3.植物通过氮固定或吸收土壤NH4+及NO3-获得氮素相对比率（15N）？4.如何确定土壤中碳和氮周转速率（13C, 15N）？ 5.区分土壤呼吸释放CO2的来源（植物根系或土壤微生物）（13C, 18O）6.区分光合和呼吸对净生态系统CO2交换或NEE的相对贡献（13C, 18O）7.区分蒸腾和蒸发对净生态系统水交换或蒸散（ET）的相对贡献（2H, 18O）如何8.判定N2O的来源（硝化细菌或反硝化细菌）（15N, 18O）?9.确定食物网初级消费者事物来源（13C, 34S）10.确定食物链的长度（15N）11.如何确定空气和水体污染物的来源（15N, 34S, 18O）12.确定城市能源消耗对大气CO2, CO和氮化物的贡献(（13C , 15N, 18O）13.判断动物如候鸟、蝴蝶等的迁徙路线（18O, 2H）14.判定史前人类社会是否以谷物作为食物来源（13C）15.确定植物的分布区域（15N, 18O, 2H）与其它技术相比，稳定同位素技术的优点在于使得这些生态和环境科学问题的研究能够定量化并且是在没有干扰（如没有放射性同位素的环境危害）的情况下进行。有些问题还只能通过利用稳定同位素技术来解决。例如，植物在光合作用倾向于吸收含有轻碳同位素（12C）的CO2，其吸收程度受有效水含量和光合途径影响，水分有效性和光合途径是干旱或湿润环境植物的重要特性。因此，植物13C组成能够在时间尺度上整合反映植物的水分利用效率。通过测量植物茎水2H和18O组成，也能够判定植物对表层水和深层水的依赖程度。另一方面，通过向土壤添加15NH4+，并监测14NH4+对其稀释速率，就能够测定独立于硝化和固持（NH4+消耗过程）之外的土壤有机物质的矿化速率。通过在原位添加富含15N的NH4+或NO3-，并监测土壤中15N和14N，就能够量化每种微生物转化量。

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=18px]　　光合速率测定仪户外检测时注意事项　　当使用光合速率测定仪在户外进行检测时，需要注意以下几个事项：　　天气条件：光合作用是光依赖性的，因此选择晴朗的天气进行实验是很重要的。尽量避免在阴天或多云天气下进行实验，因为这会降低光照强度，影响光合速率的测定结果。　　光照强度：确保光源(如太阳光)的强度适中并保持稳定。如果可能的话，使用遮荫网或调整光源距离来避免过强的光照对植物叶片造成热伤害。　　植物选择：选择健康、无病虫害、处于相同发育阶段的植物叶片作为测定对象。避免使用室内观赏性植物或一年常绿的植物，因为它们的光合特性可能与户外植物有所不同。　　仪器校准：在开始实验之前，确保光合速率测定仪已经校准过，以确保测量结果的准确性。这通常包括零点校准和跨度校准。　　仪器连接：确保光合速率测定仪与手柄、光源等辅助设备正确连接，并且连接牢固可靠。避免因连接不稳造成的数据误差或设备损坏。　　叶片安装：使用手柄夹住待测的植物叶片，并将其放置在测定仪的检测位置上。确保叶片摆放位置正确，避免叶片移动或摆放不当影响数据准确性。　　测试环境：在户外测试时，要注意环境的稳定性。尽量避免风、温度变化等因素对实验结果的干扰。可以使用挡风板、温度控制器等设备来保持测试环境的稳定。　　数据记录：连续记录各种参数，如温度、湿度、光照强度、CO2浓度等，并妥善保存数据以供后续分析和建模。　　仪器保养：在户外使用时要轻拿轻放，避免碰撞和摔落。测试完毕后及时关闭仪器，并进行必要的清洁和维护工作。　　安全注意事项：在户外进行实验时，要注意个人安全。避免在危险的地方进行实验，并遵守相关的安全规定和操作规程。　　通过注意以上事项，可以确保光合速率测定仪在户外检测时能够准确、可靠地工作，为科研和教学提供有力的支持。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405241058401418_5252_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

我们实验室想买叶面积指数仪和光合作用仪，请大家帮忙推荐一下，国产的就可以了。谢谢各位！

据新华社柏林电 （记者郭洋）德国研究人员最新研究发现，一种名为“酸藤子酚”的植物成分可用于抑制肿瘤血管新生，从而减缓肿瘤生长。 德国科隆大学研究人员近日报告说，通过阻断相关生长因子抑制血管新生，从而遏制肿瘤生长已成为当下的通用做法。 酸藤子酚是一种名为酸藤子的植物含有的化学成分之一。研究人员发现，可将酸藤子酚作为“毒药”，给癌细胞线粒体“下毒”，线粒体被称为细胞的“动力工厂”。癌细胞线粒体“中毒”后肿瘤血管新生也受到抑制，而正常血管和组织并未受到太大影响。同时，研究人员在伤口治疗实验中也发现，使用酸藤子酚后，血管形成受阻，伤口愈合放缓。研究人员认为这进一步证明了酸藤子酚的作用机理。 研究人员说，酸藤子酚可抑制肿瘤中血管的新生，且副作用小，利用这种新方法或可有效减缓肿瘤生长。来源：中国科技网-科技日报 2014年04月01日

[align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

[font=-apple-system, BlinkMacSystemFont, &][color=#05073b][size=18px]　　便携式光合仪如何同化CO2的叶片面积，便携式光合仪在测定同化CO?的叶片面积时，主要是通过测量植物光合速率，并结合叶片面积来估算的。以下是一个清晰的步骤说明和归纳：　　步骤说明　　植物光合速率的测定：　　使用便携式光合仪，在精确控制环境因子的条件下，通过红外线气体分析仪检测二氧化碳的消耗速率来测定植物的光合速率。　　这个过程基于红外光被二氧化碳分子吸收的原理，通过测量透射光能量的减少来推算二氧化碳的消耗速率。　　叶片面积的测量：　　可以使用标准方格纸或其他测量工具来测量叶片的实际面积。对于大于或等于半格的部分算作一格，小于半格的部分可以舍去。　　例如，如果使用边长为1厘米的透明方格纸来测量，可以计算出叶片的近似面积。　　同化CO?的叶片面积估算：　　根据测定的光合速率和叶片面积，可以估算出同化CO?的叶片面积。这通常是一个相对值，表示在给定的时间和条件下，叶片同化CO?的能力。　　需要注意的是，这个估算值受到多种因素的影响，如光照、温度、水分等环境因子以及植物本身的生理状态等。　　归纳　　便携式光合仪通过测量植物的光合速率和叶片面积，可以估算出同化CO?的叶片面积。这个过程结合了光合作用的基本原理和叶片面积的测量方法，提供了一种方便、快捷的方式来评估植物的光合作用效率。然而，需要注意的是，这个估算值受到多种因素的影响，因此在实际应用中需要结合具体情况进行综合考虑。[img=,690,690]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405301144376028_9059_6098850_3.jpg!w690x690.jpg[/img][/size][/color][/font]

第一部分 葡萄酒分类 Dry red wine：干红葡萄酒 Semi-dry wine：半干葡萄酒 Dry white wine：干白葡萄酒 Rose wine：桃红葡萄酒 Sweet wine：甜型葡萄酒 Semi-sweet wine：半甜葡萄酒 Still wine：静止葡萄酒 Sparkling wine：起泡葡萄酒 Claret：新鲜桃红葡萄酒（波尔多产） Botrytised wine：贵腐葡萄酒 Fortified wine：加强葡萄酒 Flavored wine：加香葡萄酒 Brut wine：天然葡萄酒 Carbonated wine：加气起泡葡萄酒 Appetizer wine( Aperitif)：开胃葡萄酒 Table wine：佐餐葡萄酒 Dessert wine：餐后葡萄酒 Champagne：香槟酒 Vermouth：味美思 Beaujolasis：宝祖利酒 Mistelle：密甜尔 Wine Cooler：清爽酒 Cider：苹果酒 Brandy：白兰地 Fruit brandy：水果白兰地 Pomace Brandy：果渣白兰地 Grape brandy：葡萄白兰地 Liquor（Liqueur）：利口酒 Gin：金酒（杜松子酒） Rum：朗姆酒 Cocktail：鸡尾酒 Vodka：伏特加 Whisky：威士忌 Spirit：酒精，烈酒 Cognac(France) ：科尼亚克白兰地（法） Armagnac(France) ：阿马尼亚克白兰地（法） Sherry(Spain) ：雪莉酒（西班牙） Port(Portuguese) ：波特酒（葡萄牙） BDX：波尔多红酒 第二部分 酿酒微生物 Yeast：酵母 Wild yeast：野生酵母 Yeast hulls：酵母菌皮 Dry activity yeast：活性干酵母 Bacteria：细菌 Malolactic bacteria(MLB) ：乳酸菌 Lactic acid bacteria(LAB) ：乳酸菌 Acetic acid bacteria：醋酸菌 Spoilage yeast：败坏酵母 第三部分 生理生化过程 Transpiration：蒸腾作用 Evaporation：蒸发 Photosynthesis：光合作用 Maillard Reaction ：麦拉德反应 Veraison：转色期 Saturation：饱和 Alcoholic fermentation(AF) ：酒精发酵 Stuck (Sluggish) Fermentation：发酵停滞 Primary Fermentation：前发酵，主发酵 Secondary Fermentation；二次发酵 Heterofermentation：异型发酵 Malolactic fermentation(MLF) ：苹果酸-乳酸发酵 Malo-Alcohol Fermentation(MAF)：苹果酸-酒精发酵 Methode Charantaise：夏朗德壶式蒸馏法 Maceration Carbonique ：CO2浸渍发酵 Whole bunch fermentation ：CO2浸渍发酵 Beaujolasis method：宝祖利酿造法 Unareobic fermentation：厌氧发酵法 Thermovinification：热浸渍酿造法 Charmat method：罐式香槟法 Enzymatic browning：酶促褐变 Acetification：酸败 Ageing：陈酿 Sur lies：带酒脚陈酿 Esterify：酯化 Saccharify：糖化 Liquefy： 溶解、液化 Bottle ageing：瓶内陈酿 Amelioration：原料改良 Chaptalization：加糖 Distillation：蒸馏 Fractional Distillation：分馏 Rectification：精馏 Clarification：澄清

文章来源：科学网 时间：2012.05.21　　近日来自厦门大学药学院的研究人员在新研究中从传统中草药雷公藤分离出活性成分雷公藤甲素（triptolide），并在体内外实验中证实其可以调控tRXRα介导的癌细胞存活信号通路。相关研究论文发布在《Plos ONE》杂志上。　　厦门大学的曾锦章教授和张晓坤教授为这篇文章的共同通讯作者。陆娜和刘金星两位硕士研究生是该文章的共同第一作者。　　从天然产物中寻找抗肿瘤活性成分是发展抗肿瘤药物的重要策略之一，雷公藤是我国一种资源比较丰富的传统中草药，其结构多样的有效成分具有明显的抗炎、免疫抑制和抗肿瘤等作用，是开发治疗药物的一个宝藏，但雷公藤具有很大的毒性，分子靶点和作用机制不清楚，是迄今制约雷公藤发展成真正治疗药物的关键。　　在这篇文章中，研究人员从中药雷公藤中分离出活性成分雷公藤甲素，并证实其调控了tRXRα介导的癌细胞存活信号通路。研究结果显示雷公藤甲素依赖于细胞内的tRXRα表达水平强有力地诱导了癌细胞凋亡，证实了tRXRα是雷公藤甲素一个重要的细胞内靶点。　　tRXRα是核受体视黄醇X受体-α（RXRα）的一种在其N-端截短的突变体，普遍存在于各种肿瘤组织中，与其全长RXRα?主要定位于细胞核不同，tRXRα?通常转位于细胞质，通过与p85相互作用激活PI3K/AKT信号转导通路，是肿瘤微环境中大量表达的肿瘤坏死因子TNFα?所依赖的生存通道，tRXRα的高度表达对于肿瘤的生长有重要的促进作用。　　研究人员证实雷公藤甲素选择性地诱导了tRXRα降解，并抑制了tRXRα依赖的AKT活性，但却没有影响全长的RXRα。研究人员还证实雷公藤甲素靶向tRXRα强有力地激活了TNFα死亡信号，并促进了其他化疗的抗癌活性。　　新研究确定了雷公藤甲素是tRXRα依赖的存活信号通路的一个新的调控物质，从而提供了关于雷公藤甲素作用诱导癌细胞凋亡机制的新见解。雷公藤甲素代表了具有不良副效应的传统中草药天然产物最有希望的一个治疗先导物。新研究发现为开发出用于癌症治疗的改良雷公藤甲素类似物提供了分子基础和新方向。