双通道实时荧光定量仪

大家好！我做仪器分析，不过还是新手，一切都处在学习阶段，向大家请教！我现在使用的双通道原子荧光光度计，以前做过砷、汞混标，不知道是否任何两种元素都可以做混标吗？如果说，需要测汞和硒元素，就可以将这两种标准溶液做成混标吗？国标5009中关于硒元素的检测，还需要加入铁氰化钾溶液，如果配置成混标溶液呢，是同样也需要加入吗？请有经验的朋友们赐教，不胜感激！

刚才在查询仪器的时候看到单通道火焰原子吸收光谱，荧光光度计的单通道和双通道我倒是略知一二，但是这个原子吸收的双通道和单通道又是怎么回事？

专家您好!!请问原子荧光光度计的原理 单通道与双通道区别??什么叫顺序注射?什么叫连续光源!!!

新手求助：我刚刚使用吉天afs-930双通道原子荧光仪做As-Hg混标，为什么标准曲线相关系数r只能做到0.995左右，老是做不到0.999以上。正常吗？？

各位大虾，您们好！您们哪家的GC是双柱双通道来做样品的初步定性和定量的，两条色谱柱的前端是由一个切换器来转换的，它们转换的时间那个品牌的GC会更快点？？？我们这边是做血液中乙醇含量的测试的

血液分析仪的双通道，简单的说就是WBC和RBC分别单独一个通道进行计数，主要是有两个功能，1、计数速度快一倍左右，单通道的一般是30T/H，双通道是60T/H2、因为WBC和RBC的直径不一样，单通道的小孔一般都比较大，这样会对RBC计数造成一些影响，一般好一点的厂家都有相应的软件补偿技术来保证结果准确

[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]中目前配置比较流行的是双通道，双通道在实际工作中起得作用大吗？你觉得意义大吗？大家来发表一下看法。

请教：在高效液相的检测器中，有双波长、双通道与单波长、单通道等不同的类型，双波长与双通道是不是同一个概念？单波长与单通道是不是同一概念？双与单比较有什么优势？谢谢！

我们实验室有台国产磐诺A91的双通道GC，双通道双进样口两个FID检测器，现在由于职业卫生业务量大大减少，室内空气业务量上升，想把一个液体进样口改成气体进样口外接二次热解析直接进样，同时做室内空气和职业卫生样，大概估算了一下，用程序升温的话好像也能解决柱温的问题，请教一下各位高手，除了进样口和柱温，还有没有要注意的地方，或者说这样做现不现实，如果这样做可以的话，后续只要换检测器就能同时检测很多东西 感觉效率提高了很多

公司扩项做室内环境检测，甲醛氨氡苯TVOC，是买双通道[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]加双通道热解析，还是两台[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]加？

一个样品，2个分析项目，同样的程序升温。一台色谱，双通道，如何做到同时进样？

CZJ-B2双通道轴瓦振动监测仪 测量对象，[color=#444444]江阴三科仪表[/color]有限公司是--中国区域代理，本公司专业销售，我们将用世界领先的产品和技术为您提供最可靠的保障．CZJ-B2双通道轴瓦振动监测仪 测量对象，[color=#444444]江阴三科仪表[/color]有限公司生产的用于对轴承、齿轮、衬套、轴套、直径环、滑轮、收缩环、连接器等多种类型的金属件进行加热.CZJ-B2双通道轴瓦振动监测仪主要功能汽轮机、水轮机、压缩机、鼓风机等旋转类机械的轴瓦振动的监视和保护。CZJ-B2双通道轴瓦振动监测仪功能说明：1. 显示功能振动测量值、Ⅰ值报警、 Ⅱ值报警设定值，可分别在LED数码管上显示。2. 报警功能当振动幅度超过报警设定值时，报警指示灯亮，同时在后面板输出开关信号，保护被监控设备。3. 报警延时时间设定功能报警延时时间调整范围0～3秒，以防止现场干扰引起误报警。4. 自诊断功能具备上电、掉电检测功能，同时断开报警输出回路，能有效地抑制仪表的误报警5. 输出接口设有电流输出接口，可与计算机、DCS、PLC系统,无纸记录仪等设备连接。CZJ-B2双通道轴瓦振动监测仪，配接S-ZS振动速度传感器，可测量各种旋转机械的轴承绝对振动的幅度，可以监测旋转机械的垂直、水平方向的振动，特别适用于具有滚珠轴承的机器，在这种机器里轴承的振动可较多地传到机壳上，对旋转机械进行连续测量和保护，传感器的安装应特别注意，不会导致传感器振幅减低，以及频率影响被改变或所产生的信号不能代表机器的真实振动，对于电机、压缩机、风机等需要测量大量振动点的情况，该监测仪尤其适用。

双通道不是同时测的意思？

不知道大家用的气相都是几个通道的，我用的是双通道的，俩通道不能同时使用，现象是：通道一进样时，样品峰正常出峰，对应的通道二会出一个相应的方块倒峰。相反在通道二进样时通道一会出倒峰。只有峰高上100会出，100以下不出倒峰。各位同僚，请帮忙解决一下。

（一）、仪器的特点 双传感器同时检测、双通道同步运算，比同类型速度提高6-8倍。 标准加入法、标准曲线法、多种元素同步测定法可任意选择。灵活性、重现性明显优于同类仪器。 嵌入式、一体化系统硬件设计；银色全弧线形外观、高亮LED工作状态显示；低功耗、小体积、高可靠、超强抗震能力，尽显军工级品质，处于同类产品领先地位。 采用最新技术的大容量电子存储模式。 人性化的操作界面，让您的操作更加得心应手。测试曲线和测试结果直观显示。 先进的编程技术与独特的数据处理方法，确保测试结果准确、可靠。 充分的功能预留，可方便实现远程操作、在线升级、无线数据交换。 特制的高性能化学传感器、高阻抗数字放大器、数字化恒压源及数字化x-t记录器，保证了测试仪器的高灵敏度和高稳定性。 该仪器采用特制的高性能化学传感器、超高阻抗数字放大器、数字化恒压源及数字化x-t记录器，保证了测试仪器的高灵敏度及高稳定性，先进的编程技术与独特的数据处理方法，确保测试结果的准确度，被测元素任意选定，最多一次可以选择5种（目前代表国际最高水准），测试曲线和结果直观显示，标准加入法和标准曲线法任意选择，所有方法都可以自动扣除本底值，还可以根据实际情况自我测定本底值，提高测试效率和准确性，资料管理功能便于查询结果和进行统计分析。 人性化的设计宗旨使得仪器操作简便、实用。双通道多参数快速网络微量元素测定仪系统软件完全采用所见即所得的方式。所有参数、技术说明均用汉字显示，分析人员只要按照提示，就能方便、快捷地进行仪器操作。同时，随仪器附带了常用的标准样品、测试底液和必需的工具，因此，仪器可实现快速、连续、准确的定量分析。 样品用量少，前处理简单。例如：测血清取样0.5ml左右，即可测定钙、锌、铜、铅、铁等，样品有些不用前期处理，只需进行一些适当处理便可进行测试。（二）、适用范围 临床检验、环境检测、食品卫生、卫生防疫、职业病防治、科研、教学等领域。

[url=http://www.f-lab.cn/pcr/rpcr-m8.html][b]便携式实时荧光定量PCR仪rpcr-m8[/b][/url]是一款便携式实时荧光定量PCR检测系统和实时PCR仪,为客户提供高效而精确的PCR测试结果,在任何时间,任何地点都能快速提供PCR检测能力。[b]便携式实时荧光定量PCR仪rpcr-m特点[/b]:●便携式：12V直流，高效节能。●用户友好：简单的界面。●小尺寸：便携式设计,可携带到任何地点工作,也可用实验室台面,只有2.1kg 。●灵敏度高：低至1COPY。●样本容量：8x0.2ml PCR管●两个通道：SYBR/FAM, ROX/Texas Red[img=便携式实时荧光定量PCR仪]http://www.f-lab.cn/Upload/RPCR-M8.jpg[/img]●开放系统：与大多数商业试剂兼容。[b]便携式实时荧光定量PCR仪rpcr-m规格参数[/b]光源：高功率LED探测器：光电二极管探测器加热/制冷模式：peltier最大升温速率：最大3℃/s热均匀性：+/-0.2℃温度精度：+/-0.2℃温度范围：4-100℃样品类型：8孔反应容积：10-150微升加热时间：1分钟探测灵敏度：1copy高分辨率融化：支持最高分辨率为0.5℃倍增性能：可探测2种染料,同时探测470/520nm(SYBR/FAM)和565/625nm(ROX/Texas Red)尺寸： 205x190x98mm重量：2.1kg计算机要求：WIN7,WIN8或Win2000工作温度：15-30℃工作湿度：15-90%更多PCR仪请浏览官网：[url]http://www.f-lab.cn/pcr.html[/url]

这个问题包括两方面，一个是柱流失怎样进行补偿，一个是什么是双通道补偿呵呵。谢谢

谁知道双通道系统色谱适用什么情况，操作条件如柱温如何控制，

请问大家对于Bio Rad 的荧光定量仪（IQ5） 是不是需要Bio Rad专用的PCR 96孔板和 封口膜？我问过Bio rad的，比较贵。如果不需要专用的话，请大家推荐一下用什么品牌的较好？价格一般多少？

[b][url=http://www.f-lab.cn/biosensors/2spr.html]双通道表面等离子体共振系统2SPR[/url][/b]用于制药，药物发现，抗体筛选、蛋白的结构与功能、基因表达调控、生物学和系统生物学。双通道表面等离子体共振系统可为科学研究人员提供重要的分子相互作用的全面表征，这些相互作用包括蛋白质、蛋白质肽、蛋白质核酸和蛋白质小分子。除了生物分子相互作用的研究，xantec SPR传感器还可以用来量化非生物系统，甚至在有机溶剂中的后续芯片表面的固相化学反应过程中的吸附和解吸过程。 [img=双通道表面等离子体共振系统]http://www.f-lab.cn/Upload/SPRSYS.jpg[/img]双通道表面等离子体共振系统：[url]http://www.f-lab.cn/biosensors/2spr.html[/url]

求教：7890A 如何实现双通道自动进样器自动进样测试分析？

在基因扩增仪的几种类型中，荧光定量PCR 因操作方便、运行速度快、实验结果准确，受到越来越多的分子生物学研究者青睐。 　　实验者要购买一款合适的荧光定量PCR，需要考虑各方面的因素，首先要分析实验室目前乃至将来的需求、平衡实验室的预算，更要详细研究各种各样的宣传资料。 　　面对各种不同性能的产品，我们该如何选择呢? 　　首先建议大家走出认识荧光定量PCR的两个误区： 　　误区一：荧光定量PCR仪无需梯度功能 　　对于使用染料法的定量PCR反应，虽然有各种各样的PCR引物设计软件或者经验公式计算熔解温度(Tm值)，但运用的公式不同、引物序列不同，Tm值的差异会很大。 　　引物的熔解温度决定了退火温度。而且模版中碱基的组合千变万化，对于特殊片断，经验公式得到的数据不一定能得出准确的结果，退火温度细微的差异对结果都可能产生决定性的影响，因而“摸条件”一度是让人很头疼的问题。 　　梯度PCR的出现部分解决了一些问题——在反应过程中每个孔的温度控制条件可以在指定范围内按照梯度变化，根据结果，一步就可以摸索出最适合的反应条件。 　　不单是退火温度，连变性温度和延伸温度都可以优化——对于多种聚合酶混合酶扩增如Invitrogen、Clontech、Promega的多数高保真Taq酶来说这个非常重要，因为Taq和校正酶的最佳反应温度可能有显著差异，优化延伸温度就显得很重要。 　　使用有梯度功能的荧光定量PCR可以一次完成以往多次实验才能完成的优化过程，简化了摸索 PCR反应条件的繁琐实验，既节省实验时间提高效率，又节省实验成本。 　　误区二：仪器通道越多越好 　　随着PCR技术的成熟运用，多重扩增越来越热闹，荧光定量PCR仪也不能幸免。 　　从最初ABI公司推出的单通道荧光定量PCR仪发展到如今各个厂家都推出4通道、5通道甚至6通道荧光定量PCR仪，眼花缭乱的选择让人无所适从，就有人一不小心走进了“通道越多越好”的误区。 　　在使用有些厂家5通道的荧光定量仪时，为了确保实验结果的精确性和准确性都要在实验中使用ROX(一种荧光染料)或专用的Reference dye ，这些荧光染料都必须单独使用一个检测通道。 　　所以，真正能检测多重PCR荧光信号的有效通道只有4个，而且使用校正染料可能会增加后期的使用成本。 　　有的荧光定量PCR的检测通道是只为自已厂家的专用的荧光染料或试剂开放的，有效检测通道也绝非像宣传资料中宣称的那么多。 　　在购买前确认荧光定量PCR仪器的有效检测通道尤为重要，不能单单只听宣传。 　　考虑多重荧光定量PCR的通道数的时候也应该从实验室实际情况出发，多重PCR并非人人适用、人人可用，因为它使实验复杂化了。 　　当我们看清误区，在选择一款最适合自己需求的荧光定量PCR仪时，我们又该关注些什么呢?

DT-613是德国E+H的新型双通道温度表，采用数字显示技术，双温输入测量大的背光双显示屏可以显示任何 T1,T2,T1-T2中的温度，温度误差都可以显示出来。而且采用了热电偶温度补偿功能，确保测量的准确性，提供最大值保持和数据保持。储存温度在0-50摄氏度之间。 DT-613双通道温度表采用了国际标准智能化设计，数字化温度及非线性补偿，可带HART通迅协议。在电源保护功能上，采用的是自动关机模式，以延长电池寿命，电池采用的是9V电池，重量仅为400克。广泛应用于冶金、电力、石化、热力、污水等行业。

用了这个软件，里面有个双通道检测，可以选择两个波长，怎样才能进一个（次）样品，获得两个波长的峰面积归一报告。

请问双通道的核磁是不是没法做三维谱图？

各位专家、老师、前辈大家好：由于本人之前所接触设备及所了解知识有限，近期刚了解到双通道全自动热解析这一类型的设备，为提升自己知识贮备和眼界，想跟各位使用过或者了解这一块领域的老师请教一下：①使用该热解析是不是指可以同时分析两个样品量？②使用该热解析是否需要配备相对应的[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]，比如是否是同一台[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]中要有两个进样口、两个色谱柱、两个检测器等？③这一类型的设备目前是否技术成熟？有使用过的前辈是否发现有何不足之处？④该设备相关的技术原理等学习资料有推荐的吗？除了以上的问题还可以说说其他方面的见解呦。还望各位老师不吝赐教[img]https://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09506.gif[/img][b]??[/b]

问题: 请问大家个问题，我现在安捷伦液相，走双通道有压力，走单通道没压力，应该是哪里出问题了。回复: 单通道没压力的那个主动阀拧下来，看看弹簧还好么，然后重新拧上，试一下。

Aglient [url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]gc[/url]6890双通道的有两个检测器的信号，如何使其两个信号在同一个府、座标上显示？

前一段时间在百度中搜索，发现多年前写的一个关于荧光定量PCR技术的PPT有很多人看过或引用过，考虑到自己作荧光定量PCR工作已经了五年了，做的实验以及解决的问题远比五年前多了，因此利用过年的时间，写点荧光定量PCR实验中的一些注意事项及感想，无论对错，都是希望对相关的人员有些参考价值。 荧光定量PCR原理等大家都已经很熟了，我就不细说了，主要是写一些有人问过的事，希望写的内容是大家都关心的。普通PCR与荧光定量PCR技术区别？简单的讲PCR技术最早是用于扩增一段特异的PCR片段，用于克隆、测序等实验，后来也将其用于样本中特异的PCR片段有无或非很粗的相对定量，而荧光定量PCR技术则是为了测定样本中特异的PCR片段相对及绝对量，是一种测定特异的PCR片段含量的方式。如测定病人样本中病原体的含量、实验样本中某一特定的mRNA的含量等。前些年有人讲过普通PCR后，通过电泳也可以进行定量，其实是将PCR产物的定量与PCR样本中模板定量相混了。近两年没有人再讲这类的话了。Sybr Green、Taqman、Molecular beacon、LUX这些方法如何选择？从实验成本来讲，Sybr Green是最好的，基本上就是普通PCR加上一点Sybr Green I 荧光染料即可，其信号强度也很好，还可以进行融解曲线分析等，但缺点是只能在一个反应管内进行一种PCR反应的检测，另一个问题是非特异性扩增会影响实验结果，当然也有一些技术解决这些问题，后面会讲到。对于研究人员来讲，如果需要检测的基因很多，而每个反应管中进行一种PCR反应的检测可以满足实验要求，则Sybr Green是最好的选择。如果需要进行多通道实验，即在一个反应管中进行2种或以上的反应，则要选择其他的方法，最常用的是Taqman、Molecular beacon，这两种都是探针的方式，由于增加了探针的特异性，因此其扩增曲线反映的就是特异性产物的扩增曲线，不含有非特异性扩增的成分。因此商业用途的检测试剂盒大都采用这一技术，以减少非特异性产物造成错误结论的可能性。其缺点在于探针成本较高，有时设计的探针并不合适，有造成损失的可能性。并且要进行较多的实验条件的优化。这两种探针技术用于商业目的时都有专利问题，据说取得Molecular beacon的许可权的成本相对较低，但只是据说。另一种值得一提的是LUX探针，它也可进行多通道实验，但它没有Taqman和Molecular beacon方法的增加探针特异性的功能，因此只能是一种折中的方案，如果不考虑多通道实验，则不如Sybr Green法选择单通道实验还是多通道实验？这是要根据实验需要来选择的，如果有一个、两个或是三个基因要进行比较，并用看家基因进行对照，可以考虑选择多通道实验。多通道实验的好处是可以消除样本加样的误差。但要克服的困难也比较多，一是条件的优化比较麻烦，即多种PCR反应以及探针要在同一个反应条件下进行，并且效率都要比较高，另一个困难是要求相互之间没有干扰，因为干扰会影响到实验结果。还有一个困难是当一个基因的模板数显著大于其他基因时，因为共用核苷酸等资源的原因，会让模板数少的基因的定量值变小或变为零。因此一般两通道的实验比较多些，即一个基因进行多样本比较，用看家基因进行对照。可以看出，如果单通道实验可以解决问题，就不要选择多通道实验了。三个以上的基因进行比较时就最好用单通道。因为一般的仪器最多也只有四个通道，就是有更多的通道，实验条件的优化也是足够麻烦了。双通道实验时如何克服反应条件、干扰以及模板数差别很大等困难？对于反应条件的优化，可通过两个单独实验的标准曲线来优化，主要是复性温度，可用PCR仪的温度梯度功能来选择，然后找到一个合适的复性温度。对于如何确定是否存在相互干扰，则要通过两个独立的单通道实验与双通道实验的结果进行比较，如果差别不大，则表明没有干扰。至于模板数差别很大的问题，可以通过降低引物浓度的方法来实现，即primer limited，在一般的PCR反应中，引物的浓度是足够高的，基本上可以将反应液中的核苷酸全部消耗尽，在优化引物浓度时，用不同的引物浓度进行实验，找到不影响反应的C(t)值的最低引物浓度。这样在实际反应中，模板数高的基因在引物耗尽后，反应液中仍然有足够的核苷酸等用于另一个基因的反应。引物设计中的几个注意事项1、 引物设计最好用相关的软件来进行设计，考虑引物自身回折、错配、引物二聚体、复性温度、产物变性温度等问题，其中产物的变性温度是大家不太关心的问题，但有些产物在一般的95度条件下不能充分解链，会严重影响实验结果。2、 引物所设计的片断一定要有足够的特异性，选择好片段后，最好到互联网中进行相关的搜索，看在样本的基因组有没有相拟的基因以及假基因等，如果有，则可选择特异性更高的区域。3、 在进行mRNA表达量的定量，可以在引物设计时考虑基因组的污染问题，即在引物设计时让两个引物跨一个内含子，这样基因组污染所造成的扩增可以区别出来，或因为片段过大而不能扩增4、 由于mRNA表达量的定量有一个逆转录的过程，如果逆转录是用poly（T）作引物，则设计的片段尽量靠近poly（A），以免逆转录的效率影响到实验结果。如果用特异性引物进行逆转录，则要考虑引物区是否存在RNA二级结构的问题5、 产物片段的大小：定量PCR一般产生片段都不大，不会超过600bp。Sybr Green法一般选择250-600bp，过大会影响到PCR扩增的效率，过小则很难通过融解曲线与引物二聚体分开，但并不是绝对的。Taqman法的扩增片段都很小，几十或是100多，这是其原理造成的。Molecular beacon法对片段大小的要求不高，只要不是太长即可。Sybr Green法的实验策略：实验可分为三个阶段，即实验条件的优化、预实验和正式实验。一、 实验条件的优化阶段，这一阶段是最花时间的，1、 要找到一个阳性的模板，可以是克隆有基因质粒、强阳性样本或纯化的PCR产物等。有了阳性的模板才能进行最基本的定量扩增实验，如果有普通PCR的实验条件，也可以此为基础进行实验。2、 扩增出的产物要通过电泳方法确定其大小，以确认定量PCR扩增的产物是你的目的基因，有些用户就发生过优化了几天的条件才发现扩增片段的大小不对，不是自己想要的基因。当然，能测个序什么的最好。并通过融解曲线实验来确定产生的Tm值以及所用的变性温度是否已经足够，个别情况下会出来解键不充分的现象。3、 有了基本的PCR条件后，要将阳性模板进行倍比稀释，一般用10倍稀释。将稀释的模板带上阴性对照，分成多份进行温度梯度实验，对复性温度进行优化，以找出复性温度范围，复性温度最好能满足以下条件：高中低模板浓度下PCR扩增效率都很高、阴性模板没有扩增。选择满足条件的中间温度，这样可以提高实验的稳定性，不会因为样本管在加热模块中的位置不同而影响实验结果。4、 如果找不到合适的条件，如引物二聚体过多，可对引物浓度、Mg2+离子浓度、DMSO含量等进行优化，然后再进行复性温度梯度实验。其中Mg2+离子浓度、DMSO含量都会影响Tm值以及所用的变性温度。