双头超声波萃取提取器

[size=18px]即将要开展一些新的测试项目，一些标准方法中用到的设备各不相同，如超声波清洗机、超声萃取机、超声波提取仪，这几种设备有什么区别呀？有特定用途吗？日常的样品溶解、提取，衍生化等应该怎么选用呢？[/size]

实验室现打算参考EPA3550C开发超声波萃取前处理，标准上对超声波装置有这样的要求：“6.2 Ultrasonic preparation -- A horn-type device equipped with a titanium tip, or adevice that will give appropriate performance, must be used.6.2.1 Ultrasonic disrupter -- The disrupter must have a minimum power wattageof 300 watts, with pulsing capability. A device designed to reduce the cavitation sound isrecommended. Follow the manufacturers instructions for preparing the disrupter forextraction of samples with low and medium/high concentrations.6.2.2 Use a 3/4-inch horn for the low concentration method procedure and a1/8-inch tapered microtip attached to a 1/2-inch horn for the medium/high concentrationmethod procedure.中文参考：6.2超声波装置--一个有钛质尖端的角形装置,或是能提供同等性能的其它设备.6.2.1超声波碎裂器-碎裂器功率至少为300w,且具有脉冲的能力.建议使用一个降低空穴声音的设备.在设定碎裂器提取低、中/高浓度的样品时,遵照仪器制造商的指导.6.2.2对于低浓度方法,使用3/4英寸的角.在中/高浓度方法中,将一个1/8英寸的锥形微尖端接到1/2英寸的角上使用.由于没有做过超声萃取，不知有经验的前辈所在的实验室都如何采购超声萃取的装置？有相应的厂家和型号推荐就更加万分感谢了！

请教各位前辈，鞋材纸板检测邻苯，用超声波提取，萃取剂为甲醇，提取效果如何？

[em0815]GB和SN中都提到邻苯二甲酸酯的萃取方法是 超声萃取方式，这个萃取方式我没有用过，标准中提到了一个超声波发生器，并要求是500W，请教各位同行，这个是不是就是超声波清洗机那种啊？还是有什么特殊的仪器啊？还有就是各位用过的有没有什么经验可以传授下，谢谢

谁能告诉我，国内有没有生产用于土壤样品萃取的超声波萃取仪，不是那种超声波清洗仪。

想用超声波萃取仪对分散染料，增塑剂，多环芳烃，多溴二苯醚等进行前处理，因为比索氏快速多了，但是定量不一定好，各位有什么好介绍，现在用什么品牌的超声波萃取仪？效果好不好？我想如果超声波的效果是索氏的八成，我就很满意了。

[b][font=宋体]解答：[/font][/b][font=宋体]与传统萃取技术相比，超声波萃取具有以下特点：[/font][font=宋体]（[/font][font='Times New Roman','serif']1[/font][font=宋体]）[/font][font=宋体]借助各种超声波效应，不仅缩短了萃取时间，还提高了回收率[/font][font=宋体]。[/font][font=宋体]（[/font][font='Times New Roman','serif']2[/font][font=宋体]）[/font][font=宋体]萃取[/font][font=宋体]过程中[/font][font=宋体]内所产生的热效应[/font][font=宋体]促使[/font][font=宋体]萃取溶剂升温[/font][font=宋体]，[/font][font=宋体]但升温幅度[/font][font=宋体]不高，有利于[/font][font=宋体]一些[/font][font=宋体]热敏性[/font][font=宋体]化合物[/font][font=宋体]的提取[/font][font=宋体]。[/font][font=宋体]（[/font][font='Times New Roman','serif']3[/font][font=宋体]）[/font][font=宋体]适当的超声波功率[/font][font=宋体]介[/font][font=宋体]入不会改变所提取[/font][font=宋体]目标化合物的分子结构，不会出现降解的问题[/font][font=宋体]，不依赖于[/font][font=宋体]目标化合物[/font][font=宋体]与溶剂间基于相似相溶原理的化学作用[/font][font=宋体]。[/font][font=宋体]超声波对不同性质（如极性）[/font][font=宋体]目标化合物[/font][font=宋体]的作用几乎一致，因此超声波萃取非常适合农残、兽残等多组分体系的提取[/font][font=宋体]。[/font][font=宋体]（[/font]4[font=宋体]）操作方便、提取完全，可减少提取溶剂的使用量，不仅降低了二次污染，还有利于后续浓缩和检测操作。[/font][font='微软雅黑','sans-serif'][color=black][back=white]领取更多《实战宝典》请进：[url]http://instrument-vip.mikecrm.com/2bbmrpI[/url][/back][/color][/font][font='微软雅黑','sans-serif'][color=black][back=white] [/back][/color][/font]

大家实验室做有机萃取使用超声波，对超声波设备有哪些技术要求？具体使用时候如何控制超声时候内部水温度升高带来的超声处理影响?

测试PBDE，超声波萃取和索氏萃取的优缺点分别是什么？需要按照材质来选择前处理方法吗？

超声波萃取仪一次可以萃取几个样品，知道的麻烦告诉我一下，谢谢啦

超声波提取技术（Ultrasound Extraction, UE）是近年来应用到中草药有效成份提取分离的一种最新的较为成熟的手段。超声波是指频率为20千赫～50兆赫左右的电磁波，它是一种机械波，需要能量载体—介质—来进行传播。超声波在传递过程中存在着的正负压强交变周期，在正相位时，对介质分子产生挤压，增加介质原来的密度；负相位时，介质分子稀疏、离散，介质密度减小。也就是说，超声波并不能使样品内的分子产生极化，而是在溶剂和样品之间产生声波空化作用，导致溶液内气泡的形成、增长和爆破压缩，从而使固体样品分散，增大样品与萃取溶剂之间的接触面积，提高目标物从固相转移到液相的传质速率。在工业应用方面，利用超声波进行清洗、干燥、杀菌、雾化及无损检测等，是一种非常成熟且有广泛应用的技术。超声波萃取的原理超声波萃取中药材的优越性，是基于超声波的特殊物理性质。主要是主要通过压电换能器产生的快速机械振动波来减少目标萃取物与样品基体之间的作用力从而实现固--液萃取分离。（1）加速介质质点运动。高于20 KHz声波频率的超声波的连续介质（例如水）中传播时，根据惠更斯波动原理，在其传播的波阵面上将引起介质质点（包括药材重要效成分的质点）的运动，使介质质点运动获行巨大的加速度和动能。质点的加速度经计算一般可达重力加速度的二千倍以上。由于介质质点将超声波能量作用于药材中药效成分质点上而使之获得巨大的加速度和动能，迅速逸出药材基体而游离于水中。（2）空化作用。超声波在液体介质中传播产生特殊的“空化效应”，“空化效应”不断产生无数内部压力达到上千个大气压的微气穴并不断“爆破”产生微观上的强大冲击波作用在中药材上，使其中药材成分物质被“轰击”逸出，并使得药材基体被不断剥蚀，其中不属于植物结构的药效成分不断被分离出来。加速植物有效成份的浸出提取。（3）超声波的振动匀化（Sonication）使样品介质内各点受到的作用一致，使整个样品萃取更均匀。综上所述，中药材中的药效物质在超声波场作用下不但作为介质质点获得自身的巨大加速度和动能，而且通过“空化效应”获得强大的外力冲击，所以能高效率并充分分离出来。超声波萃取的特点（characteristic）适用于中药材有效成份的萃取，是中药制药彻底改变传统的水煮醇沉萃取方法的新方法、新工艺。与水煮、醇沉工艺相比，超声波萃取具有如下突出特点：（1）无需高温。在40℃－50℃水温F超声波强化萃取，无水煮高温，不破坏中药材中某些具有热不稳定，易水解或氧化特性的药效成份。超声波能促使植物细胞地破壁，提高中药的疗效。（2）常压萃取，安全性好，操作简单易行，维护保养方便。（3）萃取效率高。超声波强化萃取20～40分钟即可获最佳提取率，萃取时间仅为水煮、醇沉法的三分之一或更少。萃取充分，萃取量是传统方法的二倍以上。据统计，超声波在65～70º C工作效率非常高。而温度在65º C度内中草药植物的有效成份基本没有受到破坏。加入超声波后（在65度条件下），植物有效成份提取时间约40分钟。而蒸煮法的蒸煮时间往往需要两到三小时，是超声波提取时间的3倍以上时间。每罐提取3次，基本上可提取有效成份的90%以上。（4）具有广谱性。适用性广，绝大多数的中药材各类成份均可超声萃取。（5）超声波萃取对溶剂和目标萃取物的性质（如极性）关系不大。因此，可供选择的萃取溶剂种类多、目标萃取物范围广泛。（6）减少能耗。由于超声萃取无需加热或加热温度低，萃取时间短，因此大大降低能耗。（7）药材原料处理量大，成倍或数倍提高，且杂质少，有效成分易于分离、净化。（8）萃取工艺成本低，综合经济效益显著；（9）超声波具有一定的杀菌作用，保证萃取液不易变质。目前，实验室广泛使用的超声波萃取仪是将超声波换能器（Transducer）产生的超声波通过介质（通常是水）传递并作用于样品，这是一种间接的作用方式，声振强度较低，因而大大降低了超声波萃取效率。此外，通常实验室所用的超声波发生器功率较大（³ 300W），因而会发出令人感觉不适的噪音（须采取隔音措施或操作期间远离超声波发生器）。超声装置亦分为浸入式和外壁式两种，采用复频共振方式，比单一频率提取效率大大地提高。转载于网络。

超声波提取技术（Ultrasound Extraction, UE）是近年来应用到中草药有效成份提取分离的一种最新的较为成熟的手段。 超声波是指频率为20千赫～50兆赫左右的电磁波，它是一种机械波，需要能量载体—介质—来进行传播。超声波在传递过程中存在着的正负压强交变周期，在正相位时，对介质分子产生挤压，增加介质原来的密度；负相位时，介质分子稀疏、离散，介质密度减小。也就是说，超声波并不能使样品内的分子产生极化，而是在溶剂和样品之间产生声波空化作用，导致溶液内气泡的形成、增长和爆破压缩，从而使固体样品分散，增大样品与萃取溶剂之间的接触面积，提高目标物从固相转移到液相的传质速率。在工业应用方面，利用超声波进行清洗、干燥、杀菌、雾化及无损检测等，是一种非常成熟且有广泛应用的技术。超声波萃取的原理 超声波萃取中药材的优越性，是基于超声波的特殊物理性质。主要是主要通过压电换能器产生的快速机械振动波来减少目标萃取物与样品基体之间的作用力从而实现固--液萃取分离。（1）加速介质质点运动。高于20 KHz声波频率的超声波的连续介质（例如水）中传播时，根据惠更斯波动原理，在其传播的波阵面上将引起介质质点（包括药材重要效成分的质点）的运动，使介质质点运动获行巨大的加速度和动能。质点的加速度经计算一般可达重力加速度的二千倍以上。由于介质质点将超声波能量作用于药材中药效成分质点上而使之获得巨大的加速度和动能，迅速逸出药材基体而游离于水中。（2）空化作用。超声波在液体介质中传播产生特殊的“空化效应”，“空化效应”不断产生无数内部压力达到上千个大气压的微气穴并不断“爆破”产生微观上的强大冲击波作用在中药材上，使其中药材成分物质被“轰击”逸出，并使得药材基体被不断剥蚀，其中不属于植物结构的药效成分不断被分离出来。加速植物有效成份的浸出提取。（3）超声波的振动匀化（Sonication）使样品介质内各点受到的作用一致，使整个样品萃取更均匀。综上所述，中药材中的药效物质在超声波场作用下不但作为介质质点获得自身的巨大加速度和动能，而且通过“空化效应”获得强大的外力冲击，所以能高效率并充分分离出来。超声波萃取的特点（characteristic） 适用于中药材有效成份的萃取，是中药制药彻底改变传统的水煮醇沉萃取方法的新方法、新工艺。与水煮、醇沉工艺相比，超声波萃取具有如下突出特点：（1）无需高温。在40℃－50℃水温F超声波强化萃取，无水煮高温，不破坏中药材中某些具有热不稳定，易水解或氧化特性的药效成份。超声波能促使植物细胞地破壁，提高中药的疗效。（2）常压萃取，安全性好，操作简单易行，维护保养方便。（3）萃取效率高。超声波强化萃取20～40分钟即可获最佳提取率，萃取时间仅为水煮、醇沉法的三分之一或更少。萃取充分，萃取量是传统方法的二倍以上。据统计，超声波在65～70篊工作效率非常高。而温度在65篊度内中草药植物的有效成份基本没有受到破坏。加入超声波后（在65度条件下），植物有效成份提取时间约40分钟。而蒸煮法的蒸煮时 间往往需要两到三小时，是超声波提取时间的3倍以上时间。每罐提取3次，基本上可提取有效成份的90%以上。（4）具有广谱性。适用性广，绝大多数的中药材各类成份均可超声萃取。（5）超声波萃取对溶剂和目标萃取物的性质（如极性）关系不大。因此，可供选择的萃取溶剂种类多、目标萃取物范围广泛。（6）减少能耗。由于超声萃取无需加热或加热温度低，萃取时间短，因此大大降低能耗。（7）药材原料处理量大，成倍或数倍提高，且杂质少，有效成分易于分离、净化。（8）萃取工艺成本低，综合经济效益显著；（9）超声波具有一定的杀菌作用，保证萃取液不易变质。 目前，实验室广泛使用的超声波萃取仪是将超声波换能器（Transducer）产生的超声波通过介质（通常是水）传递并作用于样品，这是一种间接的作用方式，声振强度较低，因而大大降低了超声波萃取效率。此外，通常实验室所用的超声波发生器功率较大

超声波提取技术（Ultrasound Extraction, UE）是近年来应用到中草药有效成份提取分离的一种最新的较为成熟的手段。 超声波是指频率为20千赫～50兆赫左右的电磁波，它是一种机械波，需要能量载体—介质—来进行传播。超声波在传递过程中存在着的正负压强交变周期，在正相位时，对介质分子产生挤压，增加介质原来的密度；负相位时，介质分子稀疏、离散，介质密度减小。也就是说，超声波并不能使样品内的分子产生极化，而是在溶剂和样品之间产生声波空化作用，导致溶液内气泡的形成、增长和爆破压缩，从而使固体样品分散，增大样品与萃取溶剂之间的接触面积，提高目标物从固相转移到液相的传质速率。在工业应用方面，利用超声波进行清洗、干燥、杀菌、雾化及无损检测等，是一种非常成熟且有广泛应用的技术。超声波萃取的原理 超声波萃取中药材的优越性，是基于超声波的特殊物理性质。主要是主要通过压电换能器产生的快速机械振动波来减少目标萃取物与样品基体之间的作用力从而实现固--液萃取分离。（1）加速介质质点运动。高于20 KHz声波频率的超声波的连续介质（例如水）中传播时，根据惠更斯波动原理，在其传播的波阵面上将引起介质质点（包括药材重要效成分的质点）的运动，使介质质点运动获行巨大的加速度和动能。质点的加速度经计算一般可达重力加速度的二千倍以上。由于介质质点将超声波能量作用于药材中药效成分质点上而使之获得巨大的加速度和动能，迅速逸出药材基体而游离于水中。（2）空化作用。超声波在液体介质中传播产生特殊的“空化效应”，“空化效应”不断产生无数内部压力达到上千个大气压的微气穴并不断“爆破”产生微观上的强大冲击波作用在中药材上，使其中药材成分物质被“轰击”逸出，并使得药材基体被不断剥蚀，其中不属于植物结构的药效成分不断被分离出来。加速植物有效成份的浸出提取。（3）超声波的振动匀化（Sonication）使样品介质内各点受到的作用一致，使整个样品萃取更均匀。综上所述，中药材中的药效物质在超声波场作用下不但作为介质质点获得自身的巨大加速度和动能，而且通过“空化效应”获得强大的外力冲击，所以能高效率并充分分离出来。超声波萃取的特点（characteristic） 适用于中药材有效成份的萃取，是中药制药彻底改变传统的水煮醇沉萃取方法的新方法、新工艺。与水煮、醇沉工艺相比，超声波萃取具有如下突出特点：（1）无需高温。在40℃－50℃水温F超声波强化萃取，无水煮高温，不破坏中药材中某些具有热不稳定，易水解或氧化特性的药效成份。超声波能促使植物细胞地破壁，提高中药的疗效。（2）常压萃取，安全性好，操作简单易行，维护保养方便。（3）萃取效率高。超声波强化萃取20～40分钟即可获最佳提取率，萃取时间仅为水煮、醇沉法的三分之一或更少。萃取充分，萃取量是传统方法的二倍以上。据统计，超声波在65～70篊工作效率非常高。而温度在65篊度内中草药植物的有效成份基本没有受到破坏。加入超声波后（在65度条件下），植物有效成份提取时间约40分钟。而蒸煮法的蒸煮时 间往往需要两到三小时，是超声波提取时间的3倍以上时间。每罐提取3次，基本上可提取有效成份的90%以上。（4）具有广谱性。适用性广，绝大多数的中药材各类成份均可超声萃取。（5）超声波萃取对溶剂和目标萃取物的性质（如极性）关系不大。因此，可供选择的萃取溶剂种类多、目标萃取物范围广泛。（6）减少能耗。由于超声萃取无需加热或加热温度低，萃取时间短，因此大大降低能耗。（7）药材原料处理量大，成倍或数倍提高，且杂质少，有效成分易于分离、净化。（8）萃取工艺成本低，综合经济效益显著；（9）超声波具有一定的杀菌作用，保证萃取液不易变质。 目前，实验室广泛使用的超声波萃取仪是将超声波换能器（Transducer）产生的超声波通过介质（通常是水）传递并作用于样品，这是一种间接的作用方式，声振强度较低，因而大大降低了超声波萃取效率。此外，通常实验室所用的超声波发生器功率较大

超声波提取方便，快捷，高效，可同时处理多个样品。各位在用超声波萃取时，选用什么样的超声波仪器呢？是用超声波清洗器来萃取吗？在网上找了下，很少有提供超声波萃取仪的。用超声波清洗器来提取，功率又很难进行监控。[em0802] 如果有比较好的超声波萃取仪，推荐下。谢谢

各位大佬，用超声波萃取PVC中邻苯二甲酸盐使用什么频率和温度进行超声？谢谢！

想用超声波萃取仪对分散染料，增塑剂，多环芳烃，多溴二苯醚等进行前处理，因为比索氏快速多了，但是定量不一定好，各位有什么好介绍，现在用什么品牌的超声波萃取仪？效果好不好？我想如果超声波的效果是索氏的八成，我就很满意了。

在萃取中使用的超声波，是不是功率越大越好？

一般有机样品超声波萃取，我们使用磨口盖子的锥形瓶做器皿，样品放进去后加试剂超声，考虑超声波过程温度升高，溶剂挥发，大家如何保证器皿的密封性问题？

超声波萃取仪需要校准吗？是不是校准温度，频率？频率怎样校准？

计划要买超声波清洗仪和固相萃取仪，超声波清洗仪最好是温度可控在10度以下的，需要冰浴。各位有没有什么好的建议，哪家的设备好用呢？谢谢http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/brow/em09511.gif

请教各位老师，做hj834土壤半挥发性有机物，使用超声波萃取，要怎么才能高效回收，还有就是如何过滤萃取后的溶液，很浑浊。谢谢各位老师了。

超声波法提取荜拨中的胡椒碱，萃取剂为75%乙醇溶液，超声波200W,5min.用料液比分别为1:5、1:10、1:15、1:20、1:25、1:30、1：35、1:40做八组实验，摸索最佳的料液比条件，上机检测发现1:15和1:30的结果异常。重复几次，结果都是这样，无法得出料液比对于萃取的影响，实验陷入迷茫中，求指点！

请教各位前辈们检测邻苯二甲酸酯所需的离心机及超声波萃取仪那种品牌好？在哪购买？按YC/T 333-2010标准检测。

一般都是用索氏萃取法。可是有人说用超声波萃取法也可以，请问这样行吗

超声波提取可不可以用超声波洗涤器超声提取？？？？？？？，怎样提取？

http://www.instrument.com.cn/show/Breviary.asp?FileName=C144534%2Ejpg&iwidth=200&iHeight=200 北京祥鹄科技发展有限公司 的 电脑微波超声波紫外光组合合成萃取仪(XH-300UL)已参加“国产好仪器”活动并通过初审。自上市以来，这款产品已经被多家单位采用，如果您使用过此仪器设备或者对其有所了解，欢迎一起聊聊它各方面的情况。您还可以通过投票抽奖、参与调研等方式参与活动，并获得手机电子充值卡。【点击参与活动】 仪器简介： 仪器具有微波、超声波、紫外光波三种模式。大功率侵入式超声波换能器可以在300℃以下的环境中工作，频率为25±1KHz，任意脉冲工作方式可调，应用单片机控制技术和锁相环频率自动跟踪，使超声波功率放大器与换能器的振荡频率经相位取样使锁相环实现频率自动跟踪。超声波功率检测和温度测量电路使单片机实现超声波发射功率超限自动调整和超温保护及报警功能。保证超声换能器能实时的共振，保证高效的超声转化效率。机器采用高精度传感器进行快速实时测温，当达到预设温度将自动改变超声波模式，很好的避免了因为超声波自身发热而不能控制反应物温度的问题。仪器具有紫外光辐照强度的测量显示，为科研提供科学有效的数据。良好的人机交互界面，您可轻松定制不同的实验方案。LCD全程显示实验进程，实验中可随时修改参数，使您的实验过程更加简单，实验结果更加理想。开放式反应体系，可安装滴液漏斗和冷凝管等进行回流反应。微波合成模式时可提供不同速度的磁力搅拌，使反应更加充分，温度更加均匀。1.具有微波、超声波、紫外辐照三种功能，可任意组合也可单一模式工作，任意设定2．微波功率：0～1000W；超声波功率： 0～1500W连续可调；3. 微波频率：2450MHz；超声波频率：25±1KHz；4．仪器具有微波功率恒定模式、温度恒定模式可选；5．超声波频率自动搜频锁频功能，能够在反应物的性质和粘稠度发生变化时保持最大声功率；6．程序执行分段工作：可以设置10段工作参数，每个工作段可以任意设置超声、微波、功率、时间，可以选择不同的工作模式，并可存储设置的参数；7. 紫外光波长：365nm，功率：250W8. 紫外辐照强度探头测量范围：0.1～1.999 X 105µw/㎝2实时显示9．紫外带外区杂光：UV365：小于0.02%10. 测温和控温范围：0～300℃；测温精度:≤±0.2℃；控温精度：≤±1℃；11. 工作时间：连续工作99小时，超声波脉冲时间任意可调；12. 超声波工作环境：0～300℃；13. 反应容积：10～1000ml；14. 超声波探头直径：Ф8mm、Ф18mm适合不同口径的反应容器；15. 先进的电脑温控自学习功能，全自动智能调节保温功率；16. 彩色液晶显示器，380万....【了解更多此仪器设备的信息】

在对青蒿素检测上，由于国内没有统一的国标方法，所以不管是检测机构还是生产企业无非是采用仿生产工艺重量法或者是紫外分光光度法。目前，我们检测中心就是采用的紫外分光光度法，但时间比较长。 在查了一些资料后，我们找了一些超声波清洗器提取青蒿素的资料，时间半小时，提取率可以达到90%以上。 但在昨天我们的测试过程中却没有达到提取目的，最终的测试结果反而没有50度加热搅拌2小时来的真实。 是不是超声波的频率达不到打破细胞壁的要求呢？我们用的是KQ50B型超声波清洗器，超声波频率40KHz。 做过超声波提取的同仁给点建议吧。。。。[em06]

土壤有机氯农药用超声波提取后，提取液可否使用C18小柱（由于本实验室有较多C18固相萃取小柱）代替弗罗里硅土层析柱净化？未发现有此类文献，仅发现水中有机氯农药的检测采用C18小柱固萃较多，由于超声波提取后的提取液为有机溶剂（而非水溶液），请教是否可以尝试C18小柱代替弗罗里硅土净化？这种代替是否在原理上存在谬误？请有经验老师指点！！

是否有专家使用微波萃取技术做塑化剂或者PAH等有机物的检测的？微波萃取技术与超声波萃取技术及索氏提取技术等各有哪些优缺点？

[align=left] 超声波浸提提取猴头菇粗多糖的研究[/align][align=left] 超声波提取技术是指以超声波辐射产生的机械振动效应、空化效应和热效应，引起机械搅拌、加速扩散溶解的一种利用外场介入的强化溶剂提取方法[sup][/sup]。“空化现象”产生巨大压力的会破坏原料细胞壁，加速提取物的溶出。“机械振动”和“热效应”使溶出成分进一步扩散，最终实现实现固--液萃取分离，具有时间短，效率高，成本低的特点。目前利用超声波提取猴头菇多糖的研究很多，也取得了较为理想的结果。柴军红[sup][/sup]等人采用超声波法提取猴头菇下脚料多糖，得率为9.56%；张素斌[sup][/sup]等人对比7种提取方法对猴头菇多糖得率的影响，结果表明：超声波与复合酶法的协同作用可使多糖提取率大为提高，达到15.59％。[/align][align=left]1 料液比对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left]猴头菇子实体粉碎成过20目筛，按重量的20倍、30倍、40倍加入蒸馏水，分别在超声波中提取15分钟，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]2 超声时间对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left] 称取等量的子实体粉末（2.00克），按重量的20倍加入蒸馏水，于超声波中分别提取10、15、20分钟，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]3 超声水浴温度对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left]称取同等量的子实体粉末（2.00克）三份，按重量的20倍加入蒸馏水，于，超声波的水浴温度分别为40℃、50℃、60℃中提取二次，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]4 正交试验[/align][align=left] 为进一步探讨浸提参数中的料液比、时间和浸提次数对子实体多糖的影响，进行3因素3水平的正交试验。[/align][align=left] 结果与讨论[/align][align=left]1、料液比对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left] 以猴头菇粉末为实验材料，在水浴温度为50℃、超声时间为20min的条件下，研究料液比对猴头菇粗多糖浸提效果的影响，实验结果如图1。由图1可知，当料液比为1：20时，猴头菇多糖浸出量较大；随着料液比加大，粗多糖提取率提高不显著，为了节约成本及提高效率，故选择料液比为1：20作为水浴浸提的最佳条件。[/align][align=left]表1 料液比对猴头菇粗多糖浸提的影响[/align][align=left]Table1 The effect of the mixture ratio on theextraction yield of [i]H. erinaceus[/i] polysaccharide [/align] [table=585][tr][td=1,1,130] 料液比[/td][td=1,1,68] 1：10[/td][td=1,1,80] 1：20[/td][td=1,1,70] 1：30[/td][td=1,1,89] 1：40[/td][td=1,1,80] 1：50[/td][td=1,1,68] 1：60[/td][/tr][tr][td=1,1,130] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,68] 14.78[/td][td=1,1,80] 15.86[/td][td=1,1,70] 15.41[/td][td=1,1,89] 15.41[/td][td=1,1,80] 15.67[/td][td=1,1,68] 15.28[/td][/tr][tr][td=1,1,130] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,68] 14.31[/td][td=1,1,80] 15.50[/td][td=1,1,70] 15.61[/td][td=1,1,89] 15.41[/td][td=1,1,80] 15.28[/td][td=1,1,68] 15.34[/td][/tr][tr][td=1,1,130] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,68] 14.29[/td][td=1,1,80] 15.41[/td][td=1,1,70] 15.54[/td][td=1,1,89] 15.41[/td][td=1,1,80] 15.19[/td][td=1,1,68] 15.19[/td][/tr][tr][td=1,1,130] 平均提取率（%）[/td][td=1,1,68] 14.46[/td][td=1,1,80] 15.59[/td][td=1,1,70] 15.52[/td][td=1,1,89] 15.41[/td][td=1,1,80] 15.38[/td][td=1,1,68] 15.27[/td][/tr][tr][td=1,1,130] 差异性显著分析[/td][td=1,1,68] Aa[/td][td=1,1,80] Bb[/td][td=1,1,70] Bb[/td][td=1,1,89] Bb[/td][td=1,1,80] Bb[/td][td=1,1,68] Bb[/td][/tr][/table][align=left][img=,564,337]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181709458342_7981_2903169_3.png[/img][/align][align=left]图1 料液比对猴头菇粗多糖浸提的影响[/align][align=left] Fig1 The effect of solid-liquid ratio on theextraction yield of [i]H. erinaceus[/i] polysaccharide[/align][align=left][/align]2 水浴温度对猴头菇多糖提取效果的影响[align=left] 以剪碎后的猴头菇子实体为实验材料，在料液比为1：20、超声时间为20 min的条件下，研究温度对猴头菇粗多糖浸提效果的影响，实验结果如图2。由图2可知，当水浴温度为50℃时，猴头菇多糖浸出量较大；随着温度的升高，粗多糖提取率反而下降，这是因为提取温度过高时，粗多糖类化合物容易降解失活，故选择水浴温度为50℃作为水浴浸提的最佳条件。[/align][align=left]表2 温度对猴头菇粗多糖浸提的影响[/align][align=left]Table2 Theeffect of temperature on the extraction yield of hericium polysaccharide[/align] [table=527][tr][td=1,1,129] 温度（℃）[/td][td=1,1,69] 30[/td][td=1,1,81] 40[/td][td=1,1,75] 50[/td][td=1,1,91] 60[/td][td=1,1,81] 70[/td][/tr][tr][td=1,1,129] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,69] 9.89[/td][td=1,1,81] 12.09[/td][td=1,1,75] 15.56[/td][td=1,1,91] 14.04[/td][td=1,1,81] 11.7[/td][/tr][tr][td=1,1,129] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,69] 9.69[/td][td=1,1,81] 11.87[/td][td=1,1,75] 15.62[/td][td=1,1,91] 13.92[/td][td=1,1,81] 11.54[/td][/tr][tr][td=1,1,129] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,69] 9.79[/td][td=1,1,81] 11.98[/td][td=1,1,75] 15.59[/td][td=1,1,91] 13.98[/td][td=1,1,81] 11.62[/td][/tr][tr][td=1,1,129] 平均提取率（%）[/td][td=1,1,69] 9.79[/td][td=1,1,81] 11.98[/td][td=1,1,75] 15.59[/td][td=1,1,91] 13.98[/td][td=1,1,81] 11.62[/td][/tr][tr][td=1,1,129] 差异性显著分析[/td][td=1,1,69] Aa[/td][td=1,1,81] Bb[/td][td=1,1,75] Bb[/td][td=1,1,91] Bb[/td][td=1,1,81] Bb[/td][/tr][/table][align=left][/align] [table][tr][td=1,1,28] [/td][/tr][tr][td] [/td][td][img=,516,311]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181709456949_597_2903169_3.png[/img][/td][/tr][/table][align=left][/align] 图2 温度对猴头菇粗多糖浸提的影响[align=left] Fig2 The effect of temperature on the extractionyield of hericium polysaccharide[/align][align=left]3 浸提时间对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left] 以剪碎后的猴头菇子实体为实验材料，在料液比为1：20、温度为50℃的条件下，研究浸提时间对猴头菇粗多糖浸提效果的影响，实验结果如图3。由图3可知，当浸提时间为20min时，猴头菇多糖浸出量较大；随着浸提时间的延长，粗多糖提取率反而下降，这是因为浸提时间过长时，粗多糖类化合物易降解失活，故选择浸提时间为20min作为水浴浸提的最佳条件。[/align][align=left]表3 超声时间对猴头菇粗多糖浸提的影响[/align][align=left]Table3 Theeffect of ultrasonic time on the extraction yield of [i]H. erinaceus[/i] polysaccharide[/align] [table=536][tr][td=1,1,132] 时间（min）[/td][td=1,1,67] 10[/td][td=1,1,80] 15[/td][td=1,1,89] 20[/td][td=1,1,89] 25[/td][td=1,1,80] 30[/td][/tr][tr][td=1,1,132] 第一次提取率（%）[/td][td=1,1,67] 13.94[/td][td=1,1,80] 14.87[/td][td=1,1,89] 15.68[/td][td=1,1,89] 15.61[/td][td=1,1,80] 15.58[/td][/tr][tr][td=1,1,132] 第二次提取率（%）[/td][td=1,1,67] 14.21[/td][td=1,1,80] 15.16[/td][td=1,1,89] 15.63[/td][td=1,1,89] 15.42[/td][td=1,1,80] 15.41[/td][/tr][tr][td=1,1,132] 第三次提取率（%）[/td][td=1,1,67] 14.18[/td][td=1,1,80] 15.09[/td][td=1,1,89] 15.46[/td][td=1,1,89] 15.68[/td][td=1,1,80] 15.39[/td][/tr][tr][td=1,1,132] 平均提取率（%）[/td][td=1,1,67] 14.11[/td][td=1,1,80] 15.04[/td][td=1,1,89] 15.59[/td][td=1,1,89] 15.57[/td][td=1,1,80] 15.46[/td][/tr][tr][td=1,1,132] 差异性显著分析[/td][td=1,1,67] Aa[/td][td=1,1,80] Bb[/td][td=1,1,89] Bb[/td][td=1,1,89] Bb[/td][td=1,1,80] Bb[/td][/tr][/table][align=left] [img=,539,343]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181709458336_6635_2903169_3.png[/img] [/align][align=left] 图3 超声时间对猴头菇粗多糖浸提的影响[/align][align=left]Fig3 Theeffect of ultrasonic time on the extraction yield of hericium polysaccharide[/align][align=left]4 最佳条件下水浴提取法的多糖提取率[/align][align=left] 在最佳的因素下，进行了浸提取，结果见表4。 [/align][align=left] 表4 超声提取最优条件下多糖提取率[/align][align=left]Table4 Theextraction rate of polysaccharide under the optimum condition by ultrasonic[/align] [table=537][tr][td=1,1,124] 实验次数[/td][td=2,1,101] [align=center]多糖提取率（%）[/align] [/td][td=2,1,173] [align=center]平均提取率[/align] [align=center]（%）[/align] [/td][td=2,1,132] [align=center] RSD（%）[/align] [/td][td=1,1,7] [/td][/tr][tr][td=2,1,131] [align=center]1[/align] [/td][td=2,1,101] [align=center][color=black]15.01[/color][/align] [/td][td=2,3,173] [align=center]15.13[/align] [/td][td=2,3,132] [align=center]0.76[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,131] [align=center]2[/align] [/td][td=2,1,101] [align=center][color=black]15.24[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,131] [align=center]3[/align] [/td][td=2,1,101] [align=center][color=black]15.14[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,124] [/td][td=1,1,7] [/td][td=1,1,93] [/td][td=1,1,7] [/td][td=1,1,166] [/td][td=1,1,7] [/td][td=1,1,125] [/td][td=1,1,7] [/td][/tr][/table][align=left][color=red] [/color]在最佳的超声波条件下：料液比为1：20、水浴温度：50℃、浸提时间：20分钟的条件下，进行三次平行实验，得到平均粗多糖提取率为15.13%，RSD符合要求。[/align][align=left]表5 L9（3[sup]3[/sup]）正交实验结果及其分析[/align][align=left] Table5 Results and analysis of orthogonal experiment[/align][align=center] [table=558][tr][td=2,2,88] 实验号[/td][td=4,1,332] 因素[/td][td=1,1,138] 实验指标[/td][/tr][tr][td=1,1,78] [align=center]料液比A[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]时间B[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]温度C[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]误差[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]提取率[color=black](%)[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]1[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（1）1:20[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（1）10[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（1）30[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]1[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]9.61[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（1）1:20[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（2）15[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（2）40[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]12.24[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]3[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（1）1:20[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（3）20[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（3）50[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]3[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]15.59[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]4[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（2）1:30[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（1）10[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（2）40[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]3[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]13.21[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]5[/align] [/td][td=1,1,78] （2）1:30[/td][td=1,1,78] [align=center]（2）15[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（3）50[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]1[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]15.52[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]6[/align] [/td][td=1,1,78] （2）1:30[/td][td=1,1,78] [align=center]（3）20[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（1）30[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]9.79[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]7[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（3）1:40[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]（1）10[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（3）50[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]14.11[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]8[/align] [/td][td=1,1,78] （3）1:40[/td][td=1,1,78] [align=center]（2）15[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（1）30[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]3[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]9.97[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]9[/align] [/td][td=1,1,78] （3）1:40[/td][td=1,1,78] [align=center]（3）20[/align] [/td][td=1,1,91] [align=center]（2）40[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]1[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center][color=black]11.98[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,12,36] 总 糖[/td][td=1,1,51] K[sub]11[/sub][/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]37.44[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]36.93[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]29.37[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]37.11[/color][/align] [/td][td=1,12,138] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]12[/sub][/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]38.52[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]37.73[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]37.43[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]36.14[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]13[/sub][/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]36.06[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]37.36[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]45.22[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]38.77[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]k1[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]12.48[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]12.3[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]9.8[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]12.4[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]k2[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]12.8[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]12.6[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]12.5[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]12.0[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]k3[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]12.0[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]12.5[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]15.1[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]12.9[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] R[/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]2.46[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]0.8[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]15.85[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]2.63[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]21[/sub][sup]2[/sup][/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1401.754[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1363.825[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]862.5969[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]1377.152[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]22[/sub][sup]2[/sup][/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1483.79[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1423.553[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]1401.0049[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]1306.1[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]23[/sub][sup]2[/sup][/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1300.324[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1395.77[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]2044.8484[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]1503.113[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]Q[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1395.289[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1394.382[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]1436.150067[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]1395.455[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]S[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]1.01[/color][/align] [/td][td=1,1,78] [align=center][color=black]0.11[/color][/align] [/td][td=1,1,91] [align=center][color=black]41.87[/color][/align] [/td][td=1,1,84] [align=center][color=black]1.18[/color][/align] [/td][/tr][/table][/align][align=left] 表6 正交试验方差分析表[/align][align=left] Table6 Analysis of variance table for orthogonalexperiment[/align][align=left][/align][align=center] [table=641][tr][td=1,1,131] 变异来源[/td][td=1,1,73] [align=center]平方和[/align] [/td][td=1,1,86] [align=center]自由度[/align] [/td][td=1,1,96] [align=center]均方[/align] [/td][td=1,1,86] [align=center]F值[/align] [/td][td=1,1,170] [align=center]显著水平[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,131] [align=center]料液比A[/align] [/td][td=1,1,73] [align=center][color=black]1.01[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black]2[/color][/align] [/td][td=1,1,96] [align=center][color=black]0.51[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black]0.86[/color][/align] [/td][td=1,4,170] [align=center] [/align] [align=center]F0.05（2，2）=19.0[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,131] [align=center]时间B[/align] [/td][td=1,1,73] [align=center][color=black]0.1[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black]2[/color][/align] [/td][td=1,1,96] [align=center][color=black]0.1[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black]0.09[/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,131] [align=center]温度C[/align] [/td][td=1,1,73] [align=center]41.9[/align] [/td][td=1,1,86] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,96] [align=center]20.9[/align] [/td][td=1,1,86] [align=center]35.51[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,131] [align=center]误差[/align] [/td][td=1,1,73] [align=center][color=black]1.2[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black]2[/color][/align] [/td][td=1,1,96] [align=center][color=black]0.6[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black] [/color][/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,131] [align=center]总和[/align] [/td][td=1,1,73] [align=center][color=black]44.2[/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center][color=black]8[/color][/align] [/td][td=1,1,96] [align=center][color=black] [/color][/align] [/td][td=1,1,86] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,170] [/td][/tr][/table][/align][align=left] 从本试验的极差分析可知，对猴头菇多糖提取量的影响大小依次为浸提温度C、料液比A及浸提时间B。即在料液比为1：20， 浸提时间为20min，浸提温度为50℃，粗多糖浸出量最高。[/align][align=left][/align][align=left][/align][align=left][/align] [align=left][/align][align=left][/align]