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叶绿素荧光与成像分析系统

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叶绿素荧光与成像分析系统相关的仪器

  • FC 00-C/1010GFP封闭式多光谱植物荧光成像系统是一个高度创新的,世界范围内广泛应用的多光谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现测量样品的暗适应。它由一个CCD相机,4个固定的LED发光板,高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为13× 13 cm。适用对象为小植物,离体叶片,海藻稀释物等。系统结构紧凑且易于实现样品的暗适应,功能强大的软件可以控制整个系统,获取数据和处理图像。应用领域植物光合特性和代谢紊乱筛选生物与非生物胁迫检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究基因标记检测转基因表达研究功能特点:实验过程和测量参数荧光诱导过程(Kausky效应)分析叶绿素荧光淬灭过程(NPQ过程)分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II),NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它.实验过程和测量参数稳态荧光测定GFP,EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它荧光蛋白及荧光素荧光诱导过程(Kausky效应)分析叶绿素荧光淬灭过程(NPQ过程)分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II),NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它典型样品叶片,整株植物,小树苗,果实,蔬菜,苔藓,地衣,藻青菌,绿藻,各种转基因植物,适用于不同植物样品的支架,培养皿与多孔板蒙版 操作软件与实验结果内置常用测量程序用户可自定义实验程序,界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持,便于批量处理样品数据可导出为excelWindows 2000, XP, Vista,Win7兼容稳态荧光测定荧光蛋白和荧光素家族具有巨大的光谱多样性,它们通常具有不同的激发光谱和释放光谱。封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮,以及一系列的滤光片组,可以来对GFP,EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它波段荧光蛋白进行检测和成像。高分辨率相机1392 x 1040 像素 可选 640 x 480 像素或512 x 512 像素;低像素模式适用于快速荧光过程的捕获;高像素模式适用于叶绿素荧光和需要长时间曝光的弱稳态荧光测量或者需要高空间分辨率的情景(显微视野)7位滤波轮多色激发光源wtGFP 主激发峰 395 - 397 nm,发射峰 504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420 nm短通,532/28 或 530/25 nm检测.EGFP 主激发峰中心波长488 nm,发射峰 507 - 509 nm. 滤波器建议设置:激发光480 nm短通,532/28 或 530/25 nm检测.BFP 主激发峰 384 nm,发射峰近 448 nm.滤波器建议设置: 激发光400 nm短通,469/35 nm检测. 配置型号指南:标准版1&mdash &mdash 超高速成像版:512 x 512 像素,50幅/秒超快CCD,适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版:1392 x 1040 像素分辨率,适用于高空间分辨率的应用,如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版:可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数,用于修正荧光参数和ETR 标准版4&mdash &mdash 功能增强版:超强STF,强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s,可实现100µ s脉冲,用于QA瞬间饱和与再氧化研究;可同时进行荧光蛋白与荧光素成像,包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等,用于转基因研究。 1.FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数成像进行动力学解析,典型的研究区域为3.5× 3.5 cm。在所有应用中,系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像,光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言,熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统,尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电,稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。 2.FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统专门设计来与光合仪的气体交换叶室安装在一起使用,是一个高度创新的,世界范围内广泛应用的多广谱动力学荧光成像系统。它具备其他荧光成像系统的所有特征。这个系统高度紧凑,且可以实现测量样品的暗适应。叶绿素荧光测量与成像可以与气体交换测量同步进行,获取更丰富准确的信息。而且精确的样品所处环境控制功能,例如影响光合和蒸腾速率的温度、相对湿度和氧气和CO2的分压,远优于普通叶绿素荧光成像系统。系统可与目前市场上绝大多数厂家的光合仪联用,如Licor,ADC,PPS等。3. FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备,具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列,也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积为13× 13 cm ,通过选择光源的尺寸,可调整最大成像面积为20× 20 cm 。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。4. FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统高度紧凑,主要由一个扫描控制系统,CCD相机,4个固定的LED发光板,高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。测量区域为200× 100 cm。该系统适用于实验室或样地中样带植株的原位快速测量,尤其适用于监测多因子实验中植物对各种处理的响应。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。尤其适用于高通量筛查和监测胁迫梯度对植物影响;适合户外与温室使用;结构坚固耐用,光源与相机位置可移动;无需取下或者移动样品;标准成像尺寸为20× 200 cm,其它尺寸可调整。5. FC 900-R野外移动式植物叶绿素荧光成像系统 FC 900-R野外移动式植物荧光成像系统主要由一个可移动支架,CCD相机,4个固定的LED发光板,高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为20× 20 cm,适用于野外较大植物(如大豆、小麦)的原位无损测量。成像高度20 到 150 cm可调,可配真彩镜头。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。适用于野外大尺寸扫描测量面积20× 20 cm.移动系统极其坚固稳定可在粗糙地表轻松移动配置样品暗适应箱从 20 to 150 cm高度可调无需样品分离与破坏6. FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统 FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现对测量样品的3D成像,它由一个CCD相机,LED发光板,拱形支架,高性能PC和兼容软件包组成。FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统通过自动程序获取样品台上整株植物的3D图像,适用于对植物进行3D空间异质性研究以及荧光蛋白与荧光素等荧光标记在植株上表达的空间异质性。专用于三维荧光成像独特耐用的结构支架光源位置可自动调整可移动的相机使得可以从任意角度测量无需分离与移动样品软件可生成3D图像7. XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。该系统可以实现测量样品的暗适应,它由一个CCD相机,4个固定的LED发光板,高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像,成像面积为80× 40 cm。适用对象为整株植物,离体叶片,海藻稀释物等。XY-Plane系统用于自动进行大型植物生长室中植物样品的大量筛选,FC 900-XY/8040植物荧光成像系统安装在一个坚固耐用的柜式结构中,所有部件可被安全存放,人性化的设计使得放置样品非常便捷。柜式结构内是一个光源和成像CCD位置可自由移动的自动控制框架。测量面积80× 40 cm.适用于高通量筛选尤其适合大培养盘中样品的多谱段分析适用于生物和非生物胁迫研究和转基因植物筛查光源与相机的高度和位置可调整无需分离与破坏样品8. FC 2000显微叶绿素荧光成像系统1. Micro-FluorCam FC 2000-ST内含: CCD 相机 简单显微镜架 光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.2. Micro-FluorCam FC 2000-EN内含: CCD 相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW内含: 6位滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 PC高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW内含:6位完全软件控制的滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 详见FKM多功能荧光动态显微监测系统 产地:欧洲 典型应用:1. CLAIRE M. M. GACHON etc. Single-cell chlorophyll fluorescence kinetic microscopy of Pylaiella littoralis (Phaeophyceae) infected by Chytridium polysiphoniae (Chytridiomycota). Eur. J. Phycol., (2006), 41(4): 395&ndash 403Fig. 2. UV激发荧光(壶菌属感染的褐藻过程)。A、C为亮视野图片;B、D为UV激发荧光情况;A、B为单细胞感染对照;C、D为严重感染对照。 Fig. 1.叶绿素荧光动力学(壶菌属感染的褐藻).A为典型Kautsky诱导曲线(实线)与实测曲线比较;B为亮视野图片;C为 Fm值假彩图片;D为NPQ值假彩图片 请致电索取参考文献列表
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  • PlantScreen叶绿素荧光与RGB自动扫描成像分析系统集成了自动化控制系统、FluorCam大型叶绿素荧光成像测量分析、RGB植物真彩成像分析等先进技术,实现对各种培养植物——从拟南芥、水稻到各种其它植物的生理生态与形态结构成像分析,用于高通量植物表型成像分析测量、植物胁迫响应成像分析测量、生态毒理学与污染生态学研究、性状识别及植物生理生态分析研究、作物育种与抗性检测、生物多样性/遗传多样性表型检测分析及土壤种子库研究等。成像平台可在主机箱内XYZ三维自动化移动,自动扫瞄成像范围为1500px x 3225px,植物最大高度约1250px。 系统配置与工作原理: 系统由XYZ三维自动控制箱、XYZ三维移动成像平台及自动控制与分析软件等组成,LED光源、FluorCam叶绿素荧光成像、RGB成像集成于一个可XYZ三维自动化移动的成像平台上,程序控制XYZ三维精确定位和定时,在线数据分析。采用世界上单幅成像面积最大的叶绿素荧光成像系统,成像面积达35×875px。 技术指标:1. XYZ三轴机械臂可自由移动至植物上方成像分析,成像扫瞄面积范围1500px x 3225px(可选配其它大型系统),植物高度1225px,镜物距625px,Z轴最大负重30kg2. 标准配置X轴活动范围0-2525px,精确度±1mm;Y轴活动范围0-1800px,精确度±1mm;Z轴活动范围0-1225px,精确度±5mm;3. 叶绿素荧光成像:镜头分辨率1392x1040像素,单幅成像面积35x875px,测量光橙色618nm,橙色和白色双波长光化学光,饱和光闪为白色,最大光强3600μmol/m2/s,具735nm红外光源4. 叶绿素荧光成像测量参数包括Fo, Fm, Fv, Fo’, Fm’, Fv’, Ft, Fv/Fm, Fv’/Fm’, Phi_PSII, NPQ, qN, qP, Rfd等几十个叶绿素荧光参数5. RGB成像分析测量参数包括:1) 叶面积(Leaf Area: Useful for monitoring growth rate) 2) 植物紧实度/紧密度(Solidity/Compactness. Ratio between the area covered by the plant’s convex hull and the area covered by the actual plant)3) 叶片周长(Leaf Perimeter: Particularly useful for the basic leaf shape and width evaluation (combined with leaf area))4) 偏心率(Eccentricity: Plant shape estimation, scalar number, eccentricity of the ellipse with same second moments as the plant (0...circle, 1...line segment))5) 叶圆度(Roundness: Based on evaluating the ratio between leaf area and perimeter. Gives information about leaf roundness)6) 叶宽指数(Medium Leaf Width Index: Leaf area proportional to the plant skeleton (i.e. reduction of the leaf to line segment))7) 叶片细长度SOL (Slenderness of Leaves)8) 植物圆直径(Circle Diameter. Diameter of a circle with the same area as the plant)9) 凸包面积(Convex Hull Area. Useful for compactness evaluation)10) 植物质心(Centroid. Center of the plant mass position (particularly useful for the eccentricity evaluation))11) 节间距(Internodal Distances)12) 生长高度(Growth Height)13) 植物三维最大高度和宽度(Maximum Height and Width of Plant in 3 Dimensions)14) 相对生长速率(Relative growth rate)15) 叶倾角(Leaf Angle)16) 节叶片数量(Leaf Number at Nodes)17) 其它参数如用于植物适合度估算的颜色定量分级、绿度指数(Other parameters such as color segmentation for plant fitness evaluation, greening index and others)6. 高灵敏度RGB成像传感器,CMOS 1/2”,分辨率2560x1920像素,像素大小2.2μm,四个LEDs高强白色光源,成像信息包括时间和位置,纪录格式为日期-月份-年度-小时-分钟-秒-Pos_X_Y_Z.bmp7. 系统控制与数据采集分析系统:用户友好的图形界面,用户定义、可编辑自动测量程序(protocols),控制单元有主电源开关、紧急关闭、XYZ三维轴启动开关、暂停键、移动键等,用户名和密码保护8. 程序控制XYZ三维精确定位和定时,并纪录带时间和三维空间位置的数据(四维信息数据)9. 三相电源供电,3x230/220VAC,50/60Hz10. 大小规格5000px(长)x3750px(宽)x230(高),重量约400kg 产地:欧洲
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  • PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起,于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统(Heck等,1999;Nedbal等,2000;Govindjee and Nedbal, 2000)。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备,高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内,植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上,隔板7级高度可调;光源由高稳定性供电单元提供电源,4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上,成像面积可达13×13 cm;控制系统通过千兆以太网与计算机相联,并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等,广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内,操作简便、便于移动,既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI(Performance Index)等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可运行单周转饱和光闪(STF)叶绿素荧光诱导动态,光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序(Protocols),包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析(quenching)protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析,预设一个实验程序(Protocols)、测量次数及间隔,系统将自动循环运行成像测量,并自动将数据按时间日期存入计算机(带时间戳)6.具备双色光化学光激发光源,标准配置为红色和白色,可选配红色与蓝色等双波段光化学光,双色光化学光可按不同比例搭配使用,以便实验不同光质对作物/植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块,最大成像面积20×25cm,用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数: 1.测量光为617nm可调制红光,持续时间10µ s–100µ s可调; 2.双色光化光,标配为2红光+2白光,可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合, Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s,Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s;最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用,以便实验不同光质对作物/植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s,可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s,QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板:4块大型高强度封装LED光源板,每个光源板由36颗LED阵列组成,光源板有效面积与成像面积相同13×13cm,另外还具备一个顶部双色光源(735nm红外光源和650nm红色光源)用于PAR吸收和NDVI成像测量;高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源,不会因为用大量光强弱的LEDs(比如几百个)造成光源不稳定、寿命短等问题(使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足,会造成系统出错率的提高,任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用)5.测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm',Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数(选配),每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等b) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数d) 光响应曲线LC:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI(选配)f) QA再氧化动力学(选配)g) GFP等静态荧光成像测量(选配)h) OJIP快速荧光动力学分析(选配):Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率:1360×1024像素c) 时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)e) 像元尺寸:6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式:千兆以太网8.成像面积:13×13cm,可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器(选配),可根据需要选配其它滤波器(选配)10.QA再氧化动力学成像分析(选配):可进行STF荧光动力学分析测量,单周转光闪(STF)光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块(选配):时间分辨率达1µ s,可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括:Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N(QA还原周转数量)、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC(单位反应中心的吸收光量子通量)、TRo/RC(单位反应中心初始捕获光量子通量)、ETo/RC(单位反应中心初始电子传递光量子通量)、DIo/RC(单位反应中心能量散失)、ABS/CS(单位样品截面的吸收光量子通量)、TRo/CSo、RC/CSx(反应中心密度)、PIABS(基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数)、PIcs(基于截面的“性能”指数或称生存指数)12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单13.客户定制实验程序协议(protocols):可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),具备专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)15.快照(snapshot)模式:通过快照成像模式,可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000)17.数据分析模式:具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算”模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱,内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等,方便暗适应操作,样品平台36x30cm,高度7级可调,样品(整株植物)最大高度可达12cm 20.给光制式:静态或动态21.Bios:固件可升级22.尺寸:471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量:Appr. 40 kg 24.电源输入:Appr. 1100 W 25.供电电压:90–240 V 配置组成:1.主机系统,包括暗适应操作箱,内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地:欧洲 附:其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统:可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统:成像面积3.5x3.5cm,具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架,可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统:为便携式荧光成像系统的扩展版,可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统:LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统,是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统,成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统:为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版,可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统:模块式,具备高度可扩展性,可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析,镜头高度可调,成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统:成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统:多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析,可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析,还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统:大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上,方便移动,成像平台可上下移动,成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统:大型成像平台可在100-500cm的支架上对样带进行扫瞄成像,标配扫瞄区域长度为400cm,成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄,可选配RGB真彩扫瞄成像,从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统:属多激发光、多光谱荧光成像系统,不仅可对叶绿素荧光进行成像分析,还可对UV紫外光激发F440(蓝色荧光)、F520(绿色荧光)、F690(红色荧光)和F740(红外荧光)进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性,有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统:是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版,可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析,以分析检测植物的功能表型和形态表型,自动扫瞄范围为60x129cm,定位定时并得到4维(XYZ三维位置信息和时间信息)测量数据
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  • 1、 FluorCam叶绿素荧光成像技术功能特点由于叶绿素荧光技术本身在科学研究中有一系列的局限性。因此从上世纪八十年代末开始,随着Charge-Coupled Device(CCD)成像技术、LED光源板技术、图像分析技术的成熟,不断有科学家和工程师合作探索将这三项技术与PAM脉冲调制技术结合,进而将叶绿素荧光技术升级为叶绿素荧光成像技术(Daley et al. 1989 Raschke et al. 1990 Mott et al. 1993 Genty and Meyer 1994 Bro et al. 1995 Siebke and Weis 1995 Meyer and Genty 1998 Balachandran et al. 1994 Oxborough and Baker 1997)。20世纪90年代末,PSI首席科学家Nedbal和PSI总裁Trtilek等合作,成功研制了与PAM脉冲调制技术结合的FluorCam叶绿素荧光成像技术(Nedbal et al., 2000),并推出第一台商业化叶绿素荧光成像设备FluorCam。这一发明正式开启了叶绿素荧光研究的二维时代。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界,并得到了国际科学界的一致认可。FluorCam叶绿素荧光成像系统已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器。与之前的叶绿素荧光技术相比,FluorCam叶绿素荧光成像技术的主要优势有:• 能够全面反映整株植物、叶片、藻类群体等的不同位置荧光强度变化与分布。• 可测量叶片、果实、麦穗、大型藻/微藻、整株植物乃至植物冠层等各种样品。• 可同时测定几十、甚至上百株个样品。• 能够在显微水平研究叶绿体或藻类细胞。• 尤其适用于环境胁迫早期植物不同部位光合活性的变化规律、突变体不同部位的光合功能差异等研究。同时,FluorCam叶绿素荧光成像技术与同类技术相比具备以下国际领先优势:• 由真正的生物学家、数学家、电子工程师和光学工程师组成的研发团队所开发• FluorCam是脉冲调试式叶绿素荧光成像技术的最早实用化成果• 国际最权威的叶绿素荧光成像技术,仅2019-2021.3可查阅全文的SCI文献就有300篇以上• 可实现高通量植物表型分析、抗性筛选、种质资源检测等科研应用• 激发荧光的LED光源板和获取荧光数据的成像传感器不但技术国际领先,而且为PSI自行开发,具备完全自主知识产权• 测量及成像参数最多,具备叶绿素荧光显微成像、OJIP快速荧光动力学曲线、QA再氧化动力学、荧光蛋白活体成像、多光谱荧光成像、无人值守自动监测、图像阈值分割等世界独有的成像测量功能• 以FluorCam叶绿素荧光成像技术为核心的PlantScreen植物表型成像分析系统为目前国际最先进、安装最多的植物表型组学研究系统• 软件由PSI开发,为客户提供终身免费升级• PSI表型科研中心可进行科研合作并提供实验指导• 系统型号全面,适用于各种实验需求• 几乎无维护费用技术功能特点:1) 仪器型号和配置灵活多样,测量样品涵盖了从叶片、藻类、果实、花朵、整株植物、植物群体/冠层乃至单个微藻/植物细胞、叶绿体等几乎所有不同类型的宏观和微观植物样品,甚至还包括含有叶绿素的细菌和海洋生物;同时满足了从实验室光合机理精细研究到野外大田实地研究,从自然环境到精确可控环境等不同实验条件和尺度的要求。2) 高灵敏度CCD,时间分辨率可达50帧/秒,分辨率720×560像素;可选配高分辨率CCD,最高分辨率1360×1024像素,在最高图像分辨率下时间分辨率可达20帧/秒,用于稳态荧光如GFP荧光测量等;超高灵敏度成像传感器,最高分辨率1280×1024像素,最高时间分辨率高达16000帧/秒,真正实现了OJIP快速荧光诱导动力学曲线的成像测量3) 具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等b) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数d) 光响应曲线:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数e) PAR吸收率、NDVI成像测量(选配)f) GFP、YFP、EBFP、CFP、DsRed等荧光蛋白与DAPI等荧光染料的荧光定量测量(选配)g) 多光谱荧光测量(选配):F440、F520、F690、F740h) QA再氧化动力学曲线(选配)i) OJIP快速荧光诱导动力学曲线(选配):Fo,Fj,Fi,P或Fm,Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI等参数4) 自动重复实验功能,可无人值守自动循环完成选定的实验程序,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机5) 标配4个LED光源板,采用大型预封装LED光源,红/蓝或红/白双色光化光源,可选配其他不同颜色(波长)、不同光强LED光源6) 功能强大的FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单:7) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”两种功能模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差8) 输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2、 FluorCam叶绿素荧光成像系统型号1. FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪• 可测量叶绿素荧光成像,可选配GFP荧光蛋白成像功能• 成像面积:便携式FluorCam 31.5mm×41.5 mm、便携式GFPCam 35mm×46 mm• 配备专用支架和电池包,便携性强,实验室、野外均可使用• 可编辑测量实验程序(protocol)• 具备自动重复测量功能• 配备专用暗适应叶夹,便于在野外对样品进行暗适应无损测量2. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统• FluorCam系列中功能最全面,使用最便捷的型号• 系统集成于暗适应操作箱内,操作简便、便于移动,既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 • 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率达50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变;可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量;也可选配超高灵敏度成像传感器,实现真正的OJIP快速荧光诱导动力学曲线成像测量• 成像面积达13×13cm,可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析• 饱和光光强最高达6000 µmol(photons)/m².s,进行QA再氧化分析使用的单周转饱和光闪STF可达120000µmol(photons)/m².s• 世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序(Protocols),包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等• 可选配GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 可进行自动重复成像测量分析• 4块大型高强度封装LED光源板,具备双色光化光,标配为2红光+2白光,可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合3. FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统• 模块化设计,配置灵活,可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度,方便被测植物的处理、操作等• 4块大型高强度封装LED光源板,具备双色光化光,标配为2红光+2白光,可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合• 可自由选配多种备用不同波长LEDs光源板,用户可简便自行更换,如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多光谱荧光成像测量等• 可进行GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 标准版成像面积13×13cm,大型版成像面积达20×20cm,可对整株植物甚至多株植物(如拟南芥等小型植物)进行实验成像分析• 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率达50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变,可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量4. FluorCam多光谱荧光成像系统FluorCam多光谱成像系统是将稳态荧光成像技术与脉冲调制式叶绿素荧光成像技术完美融于一体,能够在一台仪器上实现GFP、BFP、CFP、YFP、RFP等荧光蛋白成像、DAPI等荧光染料成像、荧光素酶、脉冲调制式叶绿素荧光成像以及NDVI反射光谱成像分析功能,是真正功能全面的植物荧光活体成像系统。同时,除了植物样品外,植物荧光活体成像系统也可以进行藻类、珊瑚共生体、菌落乃至动物的荧光成像分析。• 1360×1024像素高分辨率CCD,可对样品荧光标记的分布进行精准成像分析• 标准版成像面积13×13cm,大型版成像面积达20×20cm,可对整株植物甚至多株植物(如拟南芥等小型植物)进行实验成像分析• 专用荧光激发光源组与滤波器组合,精确测量不同荧光蛋白标记• 软件配置多种用户自定义调色板,可生成真实色彩成像图或对比增强彩色成像图• 可选配新型FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统,一体化完成各种荧光成像测量5. FKM多光谱荧光动态显微成像系统• 目前唯一用于植物/藻类显微叶绿素荧光成像研究的成熟商用仪器• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序,如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等,可获得70余项参数• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜,可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等,通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光,能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量,提高实验精度,也可以进行高温/低温胁迫研究6. FluorCam大型叶绿素荧光成像平台• 世界上单幅成像面积最大的脉冲调制式(PAM)叶绿素荧光成像系统,成像光源板面积70×70cm,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性叶绿素荧光成像分析• LED激发光源、CCD叶绿素荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可自由移动的成像平台上,成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析• 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析• 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等• 可选配GFP绿色荧光蛋白成像分析功能,用于植物转基因研究三、FluorCam叶绿素荧光成像系统应用案例1. 拟南芥叶绿体R-loop调控机制2017年清华大学生命学院孙前文课题组通过分析获得一个新的定位于叶绿体中的核糖核酸酶H蛋白(AtRNH1C),发现该蛋白可以调节叶绿体中R-loop水平的变化,从而维持基因组的稳定性和发育。他们使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统,发现AtRNH1C对叶绿体的发育有重要作用。在使用喹诺酮类药物环丙沙星(CIP)处理后,通过FluorCam叶绿素荧光成像图可以直观发现野生型的生长被抑制,同时叶片变色。而atrnh1c突变体则加强了CIP的毒害效应。这更加证实了AtRNH1C的功能。本实验的荧光成像检测是在易科泰Ecolab实验室完成的。2020年,孙前文课题组又使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统结合分子实验结果,证实了R-loop解旋酶过表达能够拯救由于异常累积HO-TRC触发R-loop共同表达造成的缺陷,从而维持拟南芥叶绿体基因组完整性。参考文献:1. Yang Z, et al. 2017. RNase H1 Cooperates with DNA Gyrases to Restrict R-loops and Maintain Genome Integrity in Arabidopsis Chloroplasts. The Plant Cell, doi:10.1105/tpc.17.003052. Yang Z, et al. 2020. RHON1 Co-transcriptionally Resolves R-Loops for Arabidopsis Chloroplast Genome Maintenance. Cell Reports 30: 243–2562. 构建耐盐生菜品种表型鉴定体系目前,全球农业都受到土壤和灌溉水盐分升高的威胁。大约50%的灌溉农田都受到了盐分的影响。2013年的经济分析指出由于盐分诱发的土壤退化和作物产量损失在全球造成了273亿美元的损失。作为一种重要的蔬菜作物,生菜(Lactuca sativa L.)在世界范围内都进行了广泛的种植。生菜产量最高的国家为美国、欧盟和中国。而生菜对盐分胁迫非常敏感的。盐分胁迫会造成生菜生物量减少、诱发叶烧病和早衰等。美国农业部(USDA)的科学家尝试确定生菜盐胁迫的关键生理表型性状,用于筛选高耐盐的生菜品种,希望从这些数据中筛选出最灵敏的指标构建耐盐生菜品种表型鉴定体系。与传统作物表型测量相比,一方面光系统对各种生物和非生物胁迫因素都非常敏感,而叶绿素荧光成像分析可以无损地直接测量胁迫对光系统的损伤程度和机理,在胁迫初期乃至症状出现前即可检测到胁迫的发生;另一方面,叶绿素荧光成像分析技术与自动传送系统集合,能够实现对大量样品的高通量无损快速检测,非常适用于作物品种的筛选。他们使用的PlantScreen XYZ植物表型成像分析系统就能够将这两方面的优势完美地结合起来。其样带式FluorCam叶绿素荧光成像单元是目前唯一使用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术实现大型整株植物测量的商用化仪器。自动传送系统可以自动调整成像单元的位置与高度,结合专用软件可以对几十株乃至上百株样品进行自动叶绿素荧光成像分析。实验中使用了球生菜、奶油生菜、直立生菜、叶生菜等不同的栽培品种和生菜的野生亲缘种L. serriola L,共240株样品。这些品种中既有耐盐品种,也有盐胁迫敏感品种。所有样品在同样盐胁迫处理下进行了叶绿素荧光成像分析。研究者重点分析了QY_max(Fv/Fm)最大光化学效率、Fv/Fm_L(Fv’/Fm’)光适应最大光化学效率、NPQ非光化学淬灭(最大荧光)、qN非光化学淬灭(可变荧光)、qP光化学淬灭、QY实际光化学效率(量子产额)、Rfd荧光衰减比率等荧光参数。值得一提的是,叶绿素荧光成像图经过校准后,还可以直接获得整株植物具备光合活性的叶面积。结合荧光参数还可以对叶面积进行不同胁迫程度的定量分级和图像分割。本研究中直接使用叶绿素荧光成像获得的光合活性叶面积取代了传统测量的叶面积。荧光数据与鲜重等传统表型数据进行了相关性分析和主成分分析,结果表明敏感栽培种的叶绿素荧光特征是低QY,qN,NPQ和Rfd,而耐受栽培种的特征是高QY_max,Fv/Fm_L和QY_D。与叶绿素荧光参数的高灵敏度相比,大多数样品的叶绿素指数和CO2同化速率在盐胁迫处理前后都没有表现出显著的差异。因此,研究者建议在筛选高耐受品系时以较高的叶面积配合较高的Fv/Fm和QY作为初筛指标。后续,美国农业部又使用加装了高光谱成像单元的PlantScreen表型成像系统与FluorCam结合,通过叶绿素荧光成像数据与高光谱成像数据绘制了生菜水分胁迫响应基因位点的分子图谱。参考文献:1. Adhikari N D, et al. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors, 19: 48142. Kumar P, et al. 2021. Molecular Mapping of Water-Stress Responsive Genomic Loci in Lettuce (Lactuca spp.) Using Kinetics Chlorophyll Fluorescence, Hyperspectral Imaging and Machine Learning. Front. Genet. 12: 634554
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  • CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观,内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像,从而计算植物生长、胁迫,育种,突变株筛选相关等科学研究;滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪,标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲,强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配:385nm紫外,455nm蓝色,530nm绿色,660nm红色,适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能,可以进行0-60摄氏度范围内进行控温,更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域,有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究,用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计;500万像素高清传感器;最大图像尺寸:2456x2054;快门模式:全局及卷帘快门;分辨率:约250DPI(10pix/mm);可测量参数:F0,Fm,Ft,Fm’,Fv/Fm,Yield,qP,qL,qN,NPQ,Y(NPQ),Y(NO),慢速诱导,rETR等。其它功能:ROI,尺寸测量,伪色遮罩,分级统计,自动暗适应等选配功能:385nm灯板,455nm灯板,530nm灯板,660nm灯板,底板控温组件。技术参数成像功能:叶绿素荧光成像及多光谱波段测量;调制叶绿素荧光成像参数:Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等;成像面积:≥20 cm x 20 cm;相机类型:CMOS传感器;相机分辨率:约500万像素颜色深度:12bit(软件扩展至16位);接口:2个USB3.0,1个以太网口;专用嵌入式控制器:提供硬件控制功能;供电:供电:110-230V,最大功耗500W,待机功耗50W;测量光:蓝色LED, 450nm,半峰全宽20nm,最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ,独立触发;饱和脉冲:蓝色LED, 450nm,半峰全宽20nm,最大光强3500 umol m-2 s-1,独立触发;近红外:LED,730nm,半峰全宽20nm,35W;可见光:LED,660nm,半峰全宽20nm,35W,可选蓝色、绿色LED;内置测量程序:内置多种测量功能可选,允许用户编辑设定测定参数 ;图像批处理:支持一键批处理,并可将数据导出至Excel;参数分级功能:支持对任意参数进行多区间分级,支持对分级区间自定义显示颜色,支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示;ROI功能:允许用户自定义多种ROI,并对ROI的数据自动分析;延时成像:支持设定暗适应延迟;支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套
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  • FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统是一款高度灵活、应用广泛的植物生理生态研究仪器,系统采用模块化结构,有四个LEDs光源版、CCD镜头、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成。两对LEDs光源版提供测量光、光化学光和饱和光闪,角度和高度可调;CCD镜头高度可调,且可灵活配置PSI特制高灵敏度CCD镜头或高分辨率镜头,还可装配第五个光源版于镜头周边。标准配置(标准版)的最大成像面积为13×13 cm,大型版最大成像面积达20×20 cm。既可对单个叶片进行叶绿素荧光成像,还可对整株植物进行叶绿素荧光成像,广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物监测、植物抗性、作物育种等研究。 应用领域:1.植物光合特性和代谢紊乱筛选2.生物和非生物胁迫的检测3.植物抗胁迫能力或者易感性研究4.气孔非均一性研究5.代谢混乱研究6.长势与产量评估7.植物——微生物交互作用研究8.植物——原生动物交互作用研究 功能特点:1.模块化,配置灵活,可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度,方便被测植物的处理、操作等2.可自由选配不同波长LEDs光源板,如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多色荧光成像试验测量等3.成像面积大,大型版成像面积达20×20cm,可对整株植物甚至多株植物(如拟南芥等小型植物)进行实验成像分析4.可进行自动重复成像测量,可设置一个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)5.带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达50多个6.可选配TetraCam彩色成像模块,最大成像面积20×25cm,用于叶片或植物形态测量分析7.测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等技术参数:1.成像面积:标准版成像面积达13×13cm,大型版成像面积达20×20cm,可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析2.测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数,每个参数均可显示2维荧光彩色图像 3.具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等b) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数d) 光响应曲线LC:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI(选配)f) GFP等静态荧光成像测量(选配)4.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率:1360×1024像素c) 时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)e) 像元尺寸:6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式:千兆以太网5.光源板:4块大型高强度封装LED光源板,每个光源板由36颗 LED阵列组成,光源板有效面积与成像面积相同,标准版13×13cm,大型版20×20cm6.测量光:标配617nm红光,其它波段可选,持续时间10µ s–100µ s可调7.双色光化光:标配为2红光(617nm)+2白光,可选配2红光(617nm)+2蓝光(470nm或445nm)或其它波长光源组合, Actinic1最大光强300µ mol(photons)/m² .s,Actinic2最大光强2000µ mol(photons)/m² .s;最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s8.饱和光闪:最大光强4000µ mol(photons)/m² .s,可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s9.PAR吸收测量模块(选配):远红光735nm(FAR)、650nm双色LEDs光源板与7位滤波轮及专用滤波片,用于测量PAR吸收及NDVI10.GFP测量模块(选配):蓝色光化光源与7位滤波轮及专用滤波片,用于测量GFP(绿色荧光蛋白)11.7位滤波轮(选配):加装不同波段滤波片,配合选配的专用光源板测量PAR吸收和GFP、YFP等稳态荧光12.紫外LED光源板(选配):365nm或385nm,1)测量多色荧光(详见FluorCam多光谱荧光成像系统);2)测量wtGFP(野生型绿色荧光蛋白)、DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚,一种荧光染料)13.蓝色LED光源板(选配):470nm,1)测量EGFP(增强型绿色荧光蛋白);2)用于气孔功能研究14.绿色LED光源板(选配):530nm,测量YFP(黄色荧光蛋白)15.其他可选配光源板:品蓝(447 nm),青色(505 nm),红色(627 nm),深红(655 nm),琥珀色(590 nm),远红(740nm)等16.测量wtGFP、DAPI、EGFP、YFP等荧光蛋白或荧光染料还需要选配7位滤波轮,高分辨率CCD及相应滤波片 17.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单18.客户定制实验程序协议(protocols):可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),具备专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序19.自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)20.快照(snapshot)模式:通过快照成像模式,可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片21.成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000)22.数据分析模式:具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算”模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 23.输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等24.给光制度:静态或动态25.CCD检测范围:400–1000nm 26.Bios:固件可升级27.通讯方式:千兆以太网28供电电压:90–240V 产地:欧洲 典型应用:
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  • FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是FC 1000-H 的功能增强版本,既能做叶绿素荧光成像也能做GFP成像研究。该系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数和GFP表达情况成像进行动力学解析,典型的研究区域为3.5 x 3.5 cm。在所有应用中,系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像,光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言,熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统,尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电,稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。应用领域 转基因表达和定位植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究工作原理FC 1000系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布,Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取,从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个:F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II),NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等,还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。典型样品 海藻,蓝藻群落整株小植物植物冠层,叶片或者果实小动物其它功能特点:实验过程和测量参数 GFP表达强度与分布位置成像Meter功能荧光诱导过程(Kausky效应)分析叶绿素荧光淬灭过程(NPQ过程)分析光响应曲线分析可测量与计算多达50个参数: Fo, FM, Fs, Fo&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , QY(II), NPQ, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , Rfd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它。技术参数 可测荧光参数:(F0, FM, FV, FO' , FM' , FV' , QY(II)), or 计算参数 (e.g., NPQ, FV/FM, FV' /FM' , Rfd, qN, qP),光合电子传递速率 ETR,及其它4块超亮LED光源板,尺寸4 X 4 cm;均一照明面积3.5 X 3.5 cm。测量光为620nm红光, 455 nm蓝光,持续时间10µ s - 250µ s可调;光化光,标配蓝光蓝光: 大约350 µ mol(photons)/m² .s饱和光,标配蓝光蓝光: 最高 1,000 µ mol(photons)/m² .s远红光:IR735nm给光制度:静态或者动态模式自定义实验程序:多样化的时间顺序,专门的程序语言和脚本CCD检测器带宽:400 &ndash 1000 nmCCD 制式:512 x 512 像素 可选 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素像素尺寸:8.2 µ m x 8.4 µ mA/D 转换分辨率:12 位光谱响应:540 nm处量子效率最高(70 %),400 nm 和 650 nm 处转降50 %读出噪音:低于12eRMS,典型10e满阱容量:大于 70,000 e (unbinned)成像频率:50 张图片每秒Bios:固件可升级通讯方式:USB 2.0重量:1.8 kg叶夹重量:0.2 kg供电模块重量:2.5 kg支架重量:1.5 kg笔记本重量(含所有附件):3.5 kg耗电Max.:200 W供电电压:90 &ndash 260 V ;AC或蓄电池供电尺寸:21.5 cm x 13.5 cm x 13.5 cm 操作软件与实验结果 内置常用测量程序用户可自定义实验程序,界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持,便于批量处理样品数据可导出为excel· FluorCam 软件界面Windows 2000, XP, Vista兼容 典型应用:产地:欧洲请致电索取参考文献列表
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  • 专业□ 相机具有极高的灵敏度和时间分辨率, 用于叶绿素荧光 瞬时表达检测□ 系统采用大功率脉冲式LED光源,保证样品在强激发光下受光均匀□ 系统配备近红外和红外光源,可测量叶片吸光系数(Abs),计算光合作用光系统 II(PSII)电子传递速率集成□ 系统高度集成化,满足常足植物全株、叶 片、果实、藻类等多种样本的荧光成像□ 高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像,系统功能涵盖从单细胞到生态学,应用广泛智能□ 一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数□ 全自动智能仪器控制,轻松上手,快速成像□ 可预设多种实验方案,模块化设计,流程式操作灵活□ 光源与样品的固定测量距离为170mm,相机和光源可沿Z轴自动升降,测量不同高度、大小的植物□ 测量的植株最高可达400mm智能软件□ 可测量Fo, Fo’, Fm, Fm’, Fv, Fv'/ Fm',Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, qN, qP,ETR等多个叶绿素荧光参数□ 专用数据分析软件,智能中英文双语模式自由切换□ 用户可自定义设置程序,数据结果自动存储并分析□ 自带GLP协议,可对实验数据记录、追踪、溯源, 安全可靠,为您的数 据保驾护航□ 多用户登录功能,可对不同的实验室人员进行权限管理,确保实验数据的安全
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  • FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统 FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统专为原位植物表型成像分析及生理生态研究而设计,成像面积可达35×35cm,系统装配在一个可以自由移动的支架上,高度可调,适用于温室乃至野外植物的光合生理研究、植物Phenotyping、植物胁迫生理及抗性筛选、植物优良品种选育、植物生态毒理学研究等。 FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统功能特点:§ 是世界上单幅成像面积最大的叶绿素荧光成像系统,达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行叶绿素荧光成像分析§ 整套系统装配在具备4个轮子的支架上,可在野外自由移动,非损伤原位对植物进行叶绿素荧光成像研究§ 可进行自动重复成像测量,可设置两个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳),从而实现无人职守自动监测功能§ 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等§ 在没有交流电的情况下,可选配直流供电单元供电 FluorCam野外移动式大型叶绿素荧光成像系统技术指标:§ 移动式大型植物荧光成像,成像面积可达35×35cm,具移动轮和暗适应屏幕§ 镜头及光源高度20cm–150cm可调,从而适于不同生长类型不同高度植物的原位非损伤荧光成像测量§ 测量参数包括F0,F0’,Fs,Fm,Fm’,Fp,FtDn,FtLn,Fv,NPQ_Dn,NPQ_Ln,Qp_Dn,Qp_Ln,qN,QY,QY_Ln,Rfd等50多个叶绿素荧光参数§ 高分辨率、高灵敏度2/3”CCD,10.2x8.3mm阵列,最高可达1392x1040像素(15fps),像素大小6.45微米;可2x2、3x3、4x4像素叠加以提高灵敏度和时间分辨率;高速USB2.0图像传输, 480Mbits/秒§ 自动测量分析功能:可预设1个试验程序,系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名§ 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序(protocols),包括Fv/Fm Protocol,Kautsky诱导效应Protocol,荧光淬灭分析Protocol,客户定制光响应曲线等§ 橙色、白色和红外三色激发光,LED光源板72×72 cm,3x64 LEDs § 双色光化学光,标配光化学光1强度达350μmol(photons)/m2.s、光化学光2强度达550μmol(photons)/m2.s,饱和光脉冲可达3500μmol(photons)/m2.s § 防水设计(选配),用于野外实验测量§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具Live(实况测试)、Protocol(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等菜单§ Protocol实验程序可自由编辑,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序§ 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等§ 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差§ 具触摸屏,可通过触摸屏操作和数据浏览§ 规格大小:192cm(高)x 125cm x 100cm§ 供电电压:380V三相交流电,另具备野外发电机供电单元 更多信息请参考产地:欧洲PSI
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  • 仪器简介:植物叶绿素荧光成像一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取,提供2维图像,计算常规的荧光参数。F0, FM, FV, F0&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , RFd, qN, qP,及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广,既可是单个叶绿体或单个细胞(用显微植物荧光成像系统),也可是小的冠层(用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统)。此外,除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外,该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统(植物荧光蛋白成像系统)。还有一种多功能荧光动态显微检测系统,它除具备显微叶绿素荧光成像系统的功能外,还集成了分光光度计SM-9000、PAM荧光测量技术及FL3500双调制荧光测量仪,用于高分辨率快速荧光动态测量和成像。多种激发光源可以激发不同的天线色素,从而分析出那些色素蛋白复合体对光化学荧光淬灭或非光化学荧光淬灭贡献更大。同时还可以对非叶绿素荧光(自发荧光及荧光染料等)动态进行测量分析,超高灵敏度镜头可以在很低的光线下(从而不干扰正常细胞代谢)成像,并且还可以对目前市场上其它镜头捕捉不到的快速过程如QA再氧化、天线联通性及天线大小等进行测量分析。技术参数:1)图象分辨率:12bit, 512x512像素 2)图象抓取速度:每秒50幅 3)数据传输:USB2.0 口 4)该系统的软件功能: 设置和修改实验要求,如控制时间,实验周期,光强和摄象机操作 智能分割图像,显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来,如FV, FV/FM, qP, qN, NPQ, Rfd等,作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块,熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5)分辨率: mm主要特点:植物叶绿素荧光成像采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。显微植物荧光成像系统可成像单个细胞和亚细胞的荧光。所有的常规荧光参数都可成像,分辨率达mm,可用于研究单个的叶绿体或是类囊体。该系统和配置多种显微镜。
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  • FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统植物的光合速率、蒸腾速率、气孔导度等光合作用参数可以全面衡量植物光合作用的强度和能力;而叶绿素荧光不仅能反映光能吸收、激发能传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程,而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成和CO2固定等过程有关。对两者的结合测量在植物光合生理研究中缺一不可。FluorCam便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统可以与目前国际上主流的各种光合仪如LCpro、LiCor6400等组成联用系统,在测量光合的同时测定植物的荧光,也可以在实验室或野外独立工作。 功能特点: 可以被安装在LCpro–SD、LiCor6400等光合仪的叶室上进行荧光和光合的同步测量,也可独立工作 便携性强,实验室、野外均可使用 可自己编辑测量实验程序(protocol) 既可进行持续光化学光成像测量,又可进行PAM成像测量 可选配手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块 可选配平板型工控机 技术参数: 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率可达每秒50帧,512×512像素 可测荧光参数:F0,Fm,Fv,F0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETR等50多项参数 4块超亮LED光源板,均一照明面积2.5×2.5 cm 测量光:620nm红光,持续时间10μs–100μs可调 光化学光、饱和光闪:白光、蓝光、红光三选一,也可选配红光+蓝光,标配白光 远红光:IR735nm 给光制度:静态或者动态模式 自定义实验程序:多样化的时间顺序,专门的程序语言和脚本 FluorCam软件包括下列实验测量程序(protocols):Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线等,可任意调整测量时间、光化学光持续时间、测量间隔、光强等参数 FluorCam软件具图像处理、选区ROI、测量分析等功能,可输出成像视频、图表、直方图等 供电方式:交流供电、电池供电(野外使用) 平板型工控机(可选):用于野外长时间测量 手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块(可选):可测量OJIP曲线及相关的二十多项参数 CCD检测器带宽:400–1000 nm 像素尺寸:8.2 μm×8.4 μm 通讯方式:USB 2.0 重量:1.8 kg产地:捷克
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  • FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数成像进行动力学解析。在所有应用中,系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像,光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了各种常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言,用户可以设计自己的闪光序列和测量过程。FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪是一个轻巧的便携系统,尤其适用于野外实验,也可以在实验室工作。系统可以通过专用电池包在野外进行供电,稳固轻巧的三脚架使得野外测量更加简单易行。 功能特点: 便携性强,实验室、野外均可使用 可自己编辑测量实验程序(protocol) 具备自动重复测量功能 既能进行持续光化学光成像测量,又可进行PAM成像测量 带暗适应叶夹,可对样品无损伤测量 可选高分辨率镜头,具备快照模式、视频模式(binning模式) 可选配手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块 典型样品 藻类如海带、马尾藻、浒苔、蓝藻群落等 地衣、苔藓、结皮等 整株小植物,如拟南芥等 植物冠层、叶片或者果实,如草莓、黄瓜、小番茄、柠檬、瓜类等 其它光合生物技术参数 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm',Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数,每个参数均可显示2维荧光彩色图像 具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm:测量参数包括Fo,Fm,Fv,QY等b) Kautsky诱导效应:Fo,Fp,Fv,Ft_Lss,QY,Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析:Fo,Fm,Fp,Fs,Fv,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多个参数d) 光响应曲线LC:Fo,Fm,QY,QY_Ln,ETR等荧光参数§ 高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率:1360×1024像素c) 时间分辨率:在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)e) 像元尺寸:6.45μm×6.45μmf) 运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式:千兆以太网 成像面积:31.5mm×41.5 mm 光源板:4块超亮LED光源板,每个光源板由5×5 LEDs阵列,尺寸4×4 cm 测量光:620nm红光,持续时间10μs–100μs可调 饱和光:标配白光,可选蓝光(455nm)或红光(620nm)白光:最高 3900 μmol(photons)/m2.s 蓝光:最高 4900 μmol(photons)/m2.s红光:最高 3800 μmol(photons)/m2.s 光化学光:标配白光,可选蓝光(455nm)或红光(620nm)白光:0–1000 μmol(photons)/m2.s 蓝光:0–1400 μmol(photons)/m2.s红光:0–800 μmol(photons)/m2.s 远红光:735nm,用于测量Fo’,4颗高能LED OJIP–test(选配):可对植物快速荧光动态光化学相和热相进行分析 FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单 客户定制实验程序协议(protocols):可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),具备专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序 自动测量分析功能:可设置一个实验程序(Protocol)自动无人值守循环成像测量,重复次数及间隔时间客户自定义,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳) 快照(snapshot)模式:通过快照成像模式,可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片 成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interest,ROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(1000) 数据分析模式:具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算”模式,在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 输出结果:高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等 给光制度:静态或动态(窦式) CCD检测范围:400–1000nm 光谱响应:540nm处量子效率最高(70 %),400nm和650nm处转降50% 读出噪音:低于12eRMS,典型10e 满阱容量:大于70,000 e (unbinned) Bios:固件可升级 通讯方式:千兆以太网 主机重量:1.8 kg 主机尺寸:21.5 cm×13.5 cm×13.5 cm 叶夹:用于夹持测量叶片并进行暗适应 支架系统:1)室内支架,可调整测量高度和角度,用于实验室内测量;2)三角支架(选配),防水防锈材料设计,满足测量稳定性,高度角度可调,最高测量高度1.5m,用于野外测量 供电方式:1)90–240 V交流电,配有专用防电涌稳压电源;2)专用野外电池包(选配),一次充电可支持10小时以上不间断测量 最大功率:200 W 产地:欧洲
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  • 产品介绍PlantView230F调制叶绿素荧光活体成像系统是一款用于研究植物光合活性的科研仪器,采用脉冲-振幅-调制技术来实时测量叶绿素荧光发光值。系统配备超高速数码相机,成像面积达150mmX94mm,具备高时间分辨率和空间分辨率。系统高度集成化,可实现藻类细胞的微距测量到整株植物样品的荧光成像分析。通过专业的软件算法,系统可测量多个荧光参数,通过测量叶绿素荧光反映光合作用的过程和变化以及植物样品的生理状态。测量过程快速、简单,对样品无破坏和干扰。 产品特点● 专业相机具有极高的灵敏度和时间分辨率,用于叶绿素荧光瞬时表达检测;系统采用大功率脉冲式LED光源,保证样品在强激发光下受光均匀;系统配备近红外和红外光源,可测量叶片吸光系数(Abs),计算光合作用光系统II(PSII)电子传递速率。● 集成系统高度集成化,满足常见植物全株、叶片、果实、藻类等多种样本的荧光成像;高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像,系统功能涵盖从单细胞到生态学,应用广泛。● 智能一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数;全自动智能仪器控制,轻松上手,快速成像;可预设多种实验方案,模块化设计,流程式操作。● 灵活光源与样品的固定测量距离为170mm,相机和光源可沿Z轴自动升降,测量不同高度、大小的植物;测量的植株最高可达400mm。 智能软件1、测量参数:仪器软件能实时显示Ft、Fo、Fm、Fv/Fm、 Fm’、Y(II)、Y(NPQ)、NPQ、qP、ETR 等18种荧光参数,非计算参数。每个参数均可显示2维荧光彩色图像。2、程序测量功能:可程序测量荧光诱导曲线、快速光曲线和暗弛豫,也可手动测量;在测量过程中能自动分析所有荧光参数的变化趋势。3、感兴趣功能:可在测量前或测量后任意选择感兴趣的区域(ROI),程序将自动对选择的ROI的数据进行变化趋势分析,并在报告文件中显示相关ROI的数据。所有报告文件中显示的数据都可导出到EXCEL文件中。4、软件自动存储以拍摄时间加自定义命名内容为后缀的原始数据,即拍即存,无需繁琐的存储操作及担心数据丢失。5、可预设多种实验方案,模式化设计,流程式操作。6、用户可自定义设置程序,数据结果自动存储并分析。 应用领域叶绿素荧光监测、植物育种筛选、植物生物节律研究、光合作用研究、植物抗逆性研究、海洋湖泊藻类研究、植物生态学研究、植物抗病性研究、水生生态学研究等。 应用案例
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  • FluorCam大型植物多光谱荧光成像平台是FluorCam叶绿素荧光成像技术的高级扩展产品,LED激发光源、CCD荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可上下自由移动的成像平台上,既可用于叶绿素荧光动态成像分析,又可用于长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发产生的多光谱荧光成像测量分析,还可选配绿色荧光蛋白GFP等稳态荧光的成像测量,成像面积35x35cm,是世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统。可对整株植物或植物群落进行高通量成像分析。 应用领域:实验室或温室植物光合生理生态植物逆境胁迫生理与易感性植物初级代谢与次级代谢气孔功能研究植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测植物表型组学成像分析(Phenotyping)植物遗传育种与抗性筛选种子萌发与活力监测植物生态毒理学研究 功能特点:ü 多激发光-多光谱荧光成像技术:通过光学滤波器技术,仅使特定波长的光(激发光)到达样品以激发荧光,同时仅使特定波长的激发荧光到达检测器。不同的荧光发色团(如叶绿素或GFP绿色荧光蛋白等)对不同波长的激发光“敏感”并吸收后激发出不同波长的荧光,根据此原理可以选配2个或2个以上的激发光源、绿波轮及相应滤波器,对不同波长荧光(多光谱荧光)进行成像分析。如选配红光和兰光及相应滤波器,可以对GFP和叶绿素荧光成像分析,还可选配绿色光源及相应滤波器,以对YFP进行荧光成像分析等; ü UV紫外光激发多光谱荧光成像:长波段UV紫外光(320nm-400nm)对植物叶片激发,可以产生具有4个特征性波峰的荧光光谱,4个波峰的波长为兰光440nm(F440)、绿光520nm(F520)、红光690nm(F690)和远红外740nm(F740),其中F440和F520统称为BGF,由表皮及叶肉细胞壁和叶脉发出,F690和F740为叶绿素荧光Chl-F。紫外光激发多光谱荧光可以用来灵敏、特异性地评估植物生理状态包括受胁迫状态,包括干旱、病虫害、环境污染、氮胁迫等ü 世界上单幅成像面积最 大的植物荧光成像系统,成像面积达35×35cm,可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性多光谱荧光成像分析ü 可进行自动重复成像测量和无人值守监测,可设置两个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)ü 带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、GFP稳态荧光成像及紫外光激发多光谱荧光成像分析等各种通用实验程序(protocols),测量分析参数达60多个ü 成像平台高度可调,以适应于不同高度的植物成像分析ü 可选配PAR吸收/NDVI成像分析模块,对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析ü 可选配RGB成像分析模块,用于植物颜色和形态测量分析等ü 测量样品包括叶片、花卉、果实、根系、植物其它组织及整株植物、藻类、小型动物等 技术指标:1) 大型叶绿素荧光成像平台,成像面积达35x35cm2) 高分辨率CCD镜头,图像分辨率:1360×1024像素、时间分辨率:在最 高图像分辨率下可达每秒20帧、A/D 转换分辨率:16位(65536灰度色阶)、像元尺寸:6.45μm×6.45μm、运行模式:1)动态视频模式,用于叶绿素荧光参数测量;2)快照模式,用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量、通讯模式:千兆以太网3) 标配620nm红色测量光源、620nm与冷白光双色光化学光源(可选配蓝色或其它波长的LED光源),具备735nm红外光源,LED光源板750x750mm4) PAR吸收/NDVI成像模块:680nm红色光源、735nm红外光源及相应滤波器和功能程序模块,700x725x45mm5) 具备7位滤波轮及多光谱荧光相应滤波器 6) 成像平台高度可调,成像距离(平台离植物顶部距离)350-1350mm7) 测量参数:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv' / Fm' ,Fv/ Fm ,Fv' ,Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,qL,QY, QY_Ln, Rfd等50多个叶绿素荧光参数、R_NIR、R_RED、PAR吸收和NDVI等植物光谱反射指数、及UV激发多光谱荧光包括F440、F520、F690、F740等,每个参数均可在软件中直接显示二维彩色图像8) 自动测量分析功能:可预设1个protocols,设置好重复次数及间隔,系统可自动测量储存,数据文件自动按时间命名9) 配置有完备的protocols,包括 多光谱成像Protocol、Fv/Fm Protocol、Kautsky诱导效应 Protocol、荧光淬灭分析Protocol、光响应曲线Protocols等,可对Protocols进行编辑,实时在线数据分析和二维显示 10) 客户定制实验程序协议(protocols),可设定时间(如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等)、光强(如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等),专用实验程序语言和脚本,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序11) FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,具 Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择)、Pre–processing(成像预处理)、 Result(成像分析结果)等菜单 ?12) Live实况测试或称在线功能可对仪器和样品进行在线测试调试、快照、显示实验进度、在线显示荧光瞬变动态视频等13) 成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域(Region of interest,ROI),,成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等14) 功能强大的成像预处理功能还可浏览整个测量视频及任何点、任何区域的荧光动态变化曲线,可进行“选区操作”(参见上条)或“分级操作”(图像阈值分割功能);选区操作不仅可对成像进行自动或手动选区(ROI),还可使用“模具”包括多孔板模具、培养皿模具、桌面模具进行模具选区;分级操作具备荧光强度刻度标尺和四个“游标”,通过移动4个游标可以将成像按不同强度划分成不同的荧光范围组进行分析处理,可设置不同的阈值进行图像阈值分割15) 结果展示报告功能:可展示所有选区(ROI)的叶绿素荧光参数值及其图像、每个参数的频率直方图及每个ROI的荧光动态图及荧光参数列表等,可对原数据(kinetic)、叶绿素荧光参数等导出到excel表,还可对每个参数成像图存储成位图16) 可自动测量多个样品(无限制)荧光动力学曲线及相应参数,程序软件可自动识别多个植物样品(数量不受限制)或多个区域(数量不受限制),也可手动选区(数量不受限制)17) 数据分析具备“信号计算再平均”模式(算数平均值)和“信号平均再计算模式”, 在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式,在低信噪比的情况下选择“信 号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 18) 可选配红外热成像分析单元a) 波段7.5-13.5μm,分辨率640x512,1-14x数码变焦b) 温度成像测量范围-25 °C to +150 °C,灵敏度30mK(0.03°C),传感器已经校准并附校准证书c) 镜头可更换,标配9mm光学镜头、69°视野, 可选配13mm、45°光学镜头d) SBus Protocol:一根电缆支持18通道;视频、图片可通过PWM、SBus或TTL开启和停止e) 有19种调色板供使用,在线测量显示温度范围、中心温度、热点温度、冷点温度、最 大峰值与最 小峰值温度等f) 32GB内存,可存储80000张图片或200分钟视频,图片存储格式为JPEG或TIFF模式g) 可同时在线采集红外热成像视频和彩色视频或图片,图片采集间隔1-60s可调,带GPS信息h) 可用于植物干旱胁迫、气孔动态、病虫害检测分析等产地:欧洲
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  • 仪器简介:植物荧光成像系统一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取,提供2维图像,计算常规的荧光参数。F0, FM, FV, F0&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , RFd, qN, qP,及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广,既可是单个叶绿体或单个细胞(用显微植物荧光成像系统),也可是小的冠层(用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统)。此外,除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外,该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统(植物荧光蛋白成像系统)。用途: 1. 基本型:用于一般叶绿素荧光成像及荧光参数测量研究、Kautsky 诱导效应、 OJIP等 2. 标准型:除上述基本用途外还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率等成像测量 3. GFP+型:基本型加GFP成像测量(或其它颜色荧光) 4. 光合仪配套型:除上述基本用途外还可以接光合仪配合使用 5. 加强型:可用于QA再氧化动力学、荧光快速诱导等 6. 全能型:除上述基本用途外,还可以对Abs、F0&rsquo 、PAR吸收率、GFP等进行成像测量,此外可以与光合仪配合使用技术参数:1)图象分辨率:12bit, 512x512像素 2)图象抓取速度:每秒50幅 3)数据传输:USB2.0 口 4)该系统的软件功能: 设置和修改实验要求,如控制时间,实验周期,光强和摄象机操作 智能分割图像,显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来,如FV, FV/FM, qP, qN, NPQ, Rfd等,作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块,熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5)测量区域:直径8cm的圆形 6)光源:持续时间可调,最大到2秒,最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1主要特点:植物荧光成像系统采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。荧光成像原理:卤素灯提供饱和光脉冲,两个发光二极管板提供测量光和持续性光化学光。 封闭式植物荧光成像系统其核心是CCD摄象机,在测量样品的周围装有两个发光二极管板,带快门的卤素灯。 摄象机的焦距为F1.2/2.8-6 mm,每秒抓取50幅分辨率为12bit 或14bit的512x512像素的图象。图像与测量光一起存储,通过USB2.0接口传输。两个发光二极管板激发10-33ms的闪烁光,每个板都有345个橙色发光二极,lmax = 620 nm,也可提供其它颜色。发光二极管板产生连续光,均匀照射在直径8cm的圆形测量区域。250w的卤素灯产生饱和光脉冲,其持续时间可调,最大到2秒,最大光强可达2000 mmol photons m-1 s-1。该系统用PC或笔记本电脑控制。其技术原理在Nedbal L. et al. 2000, Photosynth.Res. 66: 3-12, Nedbal L. and Whitmarsh J. 2002, Chlorophyll fluorescence imaging of leaves. In: Chlorophyll fluorescence: A signature of photosynthesis, eds. Govindjee and Papageorgiou, G., Kluwer Academic Publishers, in press 有详细介绍。
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  • Kautsky 与 Hirsch 于1931年首次发表论文“CO2同化新实验”,报道了用肉眼发现叶绿素荧光现象,荧光强度的变化与CO2同化速率呈负相关。Ladislav Nedbal教授与Martin Trtilek博士等基于脉冲调制技术(PAM,Pulse Amplitude Modulated technique)与CCD技术,于1996年研制成功FluorCam叶绿素荧光成像技术(Nedbal etc, 2000),使叶绿素荧光得以在二维和显微(细胞与亚细胞水平)水平上进行成像分析。PAM技术基于人工激发光(脉冲调制测量光、光化学光、饱和光脉冲)Protocols诱导成像,如何在自然光(太阳光)条件下对叶绿素荧光进行成像测量,从而实现对植物光合作用成像作图(mapping),成为科学家特别是生态观测、农业遥感等领域科学家的梦想。 AisaIBIS叶绿素荧光高光谱成像仪由芬兰Specim公司与德国Juelich研究中心为欧洲太空局(ESA)地球探测项目(SIFLEX)研制的Hyplant传感器,是世界上第一款商业化高光谱叶绿素荧光成像仪,采用夫琅和费线深度法,可以检测太阳辐射诱导叶绿素荧光(Sun-induced Fluorescence),用于陆空双基植物叶绿素荧光高光谱成像测量分析,可得到NDVI、EVI、F760(植物叶绿素荧光)等参数。 作为一款功能强大的超高光谱分辨率空陆双基成像系统,适用于地面及航空遥感SIF叶绿素荧光高光谱成像测量,AisaIBIS采用“夫琅和费线深度法”,该方法在670 - 780nm的特定光谱区域内,可对两条吸氧谱线底部的微弱荧光信号进行检测和定量。结合高光通量成像光谱仪和先进的sCMOS成像技术,可在飞行条件下以较高的成像速率和优异的光谱采样间隔(0.11nm)采集高质量、低噪声、高动态范围和信噪比的叶绿素荧光高光谱数据,可以安装在易科泰光谱成像与无人机遥感研究中心提供的近地面遥感平台、通量塔或者航空遥感平台,得到不同尺度的NDVI、EVI、F760(植物叶绿素荧光)等参数。适用于农业、林业、草原、湿地生态系统观测,如光合作用与植被胁迫(如病虫害、干旱等)研究、大田作物表型与种质资源检测、生态系统生产力与作物产量评估等。功能特点1.推扫式高光谱成像技术,采用“夫琅和费线深度法”获取SIF叶绿素荧光成像数据,使太阳光诱导叶绿素荧光测量提高到高空间分辨率水平2.科研级超高性能,光谱采样率达到0.11/0.22nm,高透光率F/1.7,高信噪比680:1 3.陆空双基,既可用于航空遥感,也可以安装于近地面遥感平台、通量塔,以获取不同尺度日光诱导叶绿素荧光高光谱成像数据4.结合易科泰生态技术公司提供的便携式叶片水平叶绿素荧光测量设备,可以满足不同尺度水平的观测研究5.可配置易科泰生态技术公司提供的全波段高光谱成像技术、Thermo-RGB红外热成像与RGB融合成像分析技术等 技术指标:1. SIF叶绿素荧光高光谱成像传感器CMOS科研级检测器,快照模式,珀尔贴制冷 波段范围:670-780nm光谱采样:0.11/0.22nm空间分辨率:384/768像素 透光率F/1.7、信噪比680:1、帧频65fps视野:32.3度,0.5m至无穷远 积分时间:在帧像周期内可调 数据接口:CameraLink 16-bit功耗:一般135W,最大200W成像系统重量(含DPU):<25kg支电机械快门,光温稳定功能2. Thermo-RGB红外热成像与RGB真彩成像融合分析技术,可区分阳光照射叶片或冠层、阴影叶片或冠层以及土壤的温度和覆盖度等,以精确反映作物/植物气孔导度动态,使作物冠层温度测量精准区分阳光照射叶片、阴影叶片及土壤背景,并可进行ROI选区分析、频率直方图分析显示及颜色分析等,适宜于高空间解析度冠层温度检测、物候观测、气孔导度观测、高通量作物表型分析等 3. AisaFENIX双镜头全波段高光谱成像:包括VNIR(380-970nm)和SWIR(970-2500nm)双镜头高光谱成像,高信噪比(1000:1)、分辨率,空间分辨率可达1024x像素4. 遥感平台:可选配航空遥感平台、通量塔、或易科泰生态技术公司提供的近地遥感平台5. 光谱成像近地遥感:可选配扫描式或机器人近地遥感光谱成像,包括叶绿素荧光成像(基于PAM技术)、高光谱成像、红外热成像等应用案例1:ESA(欧洲航天局)与NASA(美国国家航空航天局)合作开展生态健康与碳循环动态研究 ESA与NASA合作,采用基于AisaIBIS的HyPlant SIF航空遥感系统、美国NASA研发的基于LiDAR-高光谱-红外热成像航空遥感系统,同步获取森林的太阳光诱导叶绿素荧光成像、冠层结构信息、可见光至短波红外(400-2500nm)光谱反射成像信息、及冠层温度信息,以观测研究生态系统健康与碳循环动态(Middleton etc. The 2013 FLEX-US airborne campaign at the parker tract loblolly pine plantation in North Carolina, USA. Remote Sensing, 2013)应用案例2:AisaIBIS用于监测农作物长势-德国波恩大学农业试验站 德国Julich研究所、西班牙Valencia大学、意大利Milano-Bicocca大学、芬兰Specim公司等科学家,对基予AisaIBIS的HyPlant航空遥感系统(包括AisaIBIS和AisaFENIX)观测冠层(Top-of-Canopy, TOC)光谱反射与SIF叶绿素荧光技术,进行了全面解读,并采用该系统对农田作物进行了遥感作图分析(参见下图),该系统采用AisaIBIS、AisaFENIX全波段空陆双基高光谱成像(400-2500nm)等(Basbian Siegmann etc. The high-performance airborne imaging spectrometer HyPlant-from raw images to Top-of-Canopy reflectance and fluorescence products: Introduction of an Automatized Processing China. Remote Sensing, 2019)应用案例3:AisaIBIS用于估算不同时间作物初级生产力-德国科隆大学 德国科隆大学等科学家采用HyPlant航空遥感系统(基于AisaIBIS SIF叶绿素荧光高光谱成像和AisaFENIX高光谱成像技术),结合地面光合作用(采用Li6400或LCPro T光合仪)和土壤呼吸测量(采用Li8100或SRS2000土壤呼吸测量系统),对植被初级生产力及胁迫进行了观测研究(参见下图),结果表明,F760对现有GPP评估方法可以起到很好的改善和补充,SIF红色叶绿素荧光与远红波段叶绿素荧光比率可以灵敏地反映环境胁迫(S. Wieneke etc. Airborne based spectroscopy of red and far-red sun-induced chlorophyll fluorescence: Implications for improved estimates of gross primary productivity. Remote Sensing of Environment, 2016)其它参考文献:Rascher, U., et al.(2015), Sun-induced fluorescenc – a new probe of photosynthesis: First maps from the imaging spectrometer HyPlant. Global Change Biology.Rossini, M., et al.(2015), Red and far red Sun-induced chlorophyll fluorescence as a measure of plant photosynthesis, Geophys. Res. Lett.Wieneke, S., et al.(2016), Airborne based spectroscopy of red and far-red sun-induced chlorophyll fluorescence: Implications for improved estimates of gross primary productivity. Remote Sensing of Environment.Colombo, R., et al.(2018), Variability of sun-induced chlorophyll fluorescence according to stand age-related processes in a managed loblolly pine forest. Global Change Biology.Gerhards, M., et al.(2018), Analysis of airborne optical and thermal imagery for detection of water stress symptoms. Remote Sensing.Max Gerhards, et al.(2018), Analysis of airborne optical and thermal imagery for detection of water stress symptom. Remote Sensing.Bandopadhyay, S., et al. (2018), Examination of Sun-induced Fluorescence (SIF) Signal on Heterogeneous Ecosystem Platforms using ‘HyPlant’. Geophysical Research Abstracts.Giulia Tagliabue, et al. (2019), Exploring the spatial relationship between airborne-derived red and far-red sun-induced fluorescence and process-based GPP estimates in a forest ecosystem. Remote Sensing of Environment.
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  • 蜂巢矩阵叶绿素荧光成像系统HEXAGON-IMAGING-PAM叶绿素荧光成像系统的“六边形战士”精度高,面积大,功能全,应用广,文献多,数据可视化!HEXAGON-IMAGING-PAM是德国WALZ公司最新推出的大型蜂巢矩阵叶绿素荧光成像系统。它凭借高精度的脉冲振幅调制(PAM)技术,可以对20×24cm的区域进行成像。分辨率高达1.2 MP(1000 x 1200 px, 2x2 binning技术,实际是2000×2400),像素尺寸3.45 x 3.45 µm。超高分辨率的基础是成像区域光场的均匀性,在设计过程中,光源阵列中LED的位置是经过精心布局的,以保证测量区域内无阴影,所有成像区域内的样品均匀照光,样品间的差异可以尽收眼底。大功率LED面板的冷却效果非常好,可以最大限度的延长LED的使用寿命。增加远红光(FR)LED 面板,可用于测量所研究样品的Fo' 值。HEXAGON-IMAGING-PAM采用蜂巢矩阵式LED面板拼接技术,单个六边形蜂巢矩阵单元之间LED的不平横可以独立补偿,初衷是为实现样品区域的理想照明提供最佳选择。尽管成像区域很大,但是它依然足够灵活,可以测量各种类型的样品,如盆栽植物,穴盘中培养的植物,培养皿上的植物或多孔板中的藻类悬浮液。滑动门设计,集成安全关闭功能,开门状态下,饱和脉冲的强度会被抑制以保护操作人员的眼睛。主要功能l 原位测量:活体植物叶绿素荧光成像,直观显示样品光合作用光能利用差异,可导出彩色图像。l 成像功能:对Ft、Fo、Fm、Fv/Fm、F、Fm’、Y(II)、Y(NO)、Y(NPQ)、NPQ、qN、qP、qL、PS/50=ETR、Inh等参数进行成像分析。测定调节性能量耗散Y(NPQ),反映植物光保护能力,测定非调节性能量耗散Y(NO),反映植物光损伤程度。l 程序测量功能:可自动程序测量荧光诱导曲线、快速光曲线和暗弛豫,也可手动测量;在测量过程中能自动分析所有荧光参数的变化趋势;可以预编程进行自定义实验流程,如模拟波动光。l AOI功能:可在测量前或测量后任意选择感兴趣的区域(AOI),程序将自动对选择的AOI的数据进行变化趋势分析,并在报告文件中显示相关AOI的数据。所有报告文件中显示的数据都可导出到EXCEL文件中。l 成像异质性分析功能:对任意参数任意时间的成像,可在图像上任意选取两点,软件自动对两点间的数据进行横向异质性分析,并可导出到EXCEL文件中。l 成像数据范围分析功能:对任意参数任意时间的成像,可分析任意两个荧光数值之间有多少个像素点,多少面积(cm2)。l 突变株筛选功能:可跟据成像结果快速筛选光合、产氢/油、抗逆(抗盐、抗旱、抗病等)等突变株。l 微藻毒理研究功能:可同时测量4块96孔板,即384个微藻样品(对照和处理组)的光合活性,软件自动给出处理组样品相对于对照组的光合抑制百分比。应用领域l 光合作用研究:可以在完全相同的条件下同时对大量样品进行成像l 植物病理学:病斑部位(包括肉眼不可见时)成像以及病斑扩散的时空动力学l 植物胁迫生理学:肉眼不可见生物/非生物胁迫损伤的早期检测l 遗传育种:出苗后大规模快速筛选高光合/抗旱/抗热/抗冻/抗病等植株l 突变株筛选:快速筛选模式植物的光合突变株、抗逆突变株、产氢微藻突变株等l 微藻毒理学:不同毒物浓度多个重复的样品一次测完,软件自动计算抑制比率l 其它多种扩展研究成像参数Fo, Fm, F, Ft, Fm' , Fv/Fm, Y(II), qL, qP, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), PS/50=ETR,Inh.等产地:德国WALZ参考文献数据来源:光合作用文献Endnote数据库,原始数据来源:Google Scholar。注:HEXAGON-IMAGING-PAM为最新产品,暂无文献发表,最新研究成果可参考M-IMAGING-PAM发表文章。Salguero-Linares, J., et al. (2022). "Robust transcriptional indicators of immune cell death revealed by spatio-temporal transcriptome analyses." Molecular Plant.Sandoval-Ibáñez, O., et al. (2022). "De-etiolation-induced protein 1 (DEIP1) mediates assembly of the cytochrome b6f complex in Arabidopsis." Nature communications 13(1): 4045.Gao, Y., et al. (2022). "Chloroplast translational regulation uncovers nonessential photosynthesis genes as key players in plant cold acclimation." The Plant Cell.Ma, L., et al. (2022). "SlRBP1 promotes translational efficiency via SleIF4A2 to maintain chloroplast function in tomato." The Plant Cell.Szechynska-Hebda, M., et al. (2022). "Aboveground Plant-to-Plant Electrical Signaling Mediates Network Acquired Acclimation." Plant Cell.Xing, J., et al. (2022). "The plastid-encoded protein Orf2971 is required for protein translocation and chloroplast quality control." The Plant Cell.Dahro, B., et al. (2022). "Two AT-Hook proteins regulate A/NINV7 expression to modulate sucrose catabolism for cold tolerance in Poncirus trifoliata." New Phytologist n/a(n/a).Ivanova, A., et al. (2022). "Mitochondrial activity and biogenesis during resurrection of Haberlea rhodopensis." New Phytologist n/a(n/a).Li, L., et al. (2022). "Genomes shed light on the evolution of Begonia, a mega-diverse genus." New Phytologist n/a(n/a).Moog, M. W., et al. (2022). "The epidermal bladder cell-free mutant of the salt tolerant quinoa challenges our understanding of halophyte crop salinity tolerance." New Phytologist n/a(n/a).Zhang, Y., et al. (2022). "CLE42 delays leaf senescence by antagonizing ethylene pathway in Arabidopsis." New Phytologist n/a(n/a).Ashok, A., et al. (2022). "Food-chain length determines the level of phenanthrene bioaccumulation in corals." Environmental Pollution: 118789.Cai, W., et al. (2022). "CaSWC4 regulates the immunity-thermotolerance tradeoff by recruiting CabZIP63/CaWRKY40 to target genes and activating chromatin in pepper." PLOS Genetics 18(2): e1010023.Castro, P. H., et al. (2022). "SUMO E3 Ligase SIZ1 connects sumoylation and reactive oxygen species homeostasis processes in Arabidopsis." Plant Physiology.Che, L., et al. (2022). "Rubredoxin 1 Is Required for Formation of the Functional Photosystem II Core Complex in Arabidopsis thaliana." Frontiers in Plant Science 13.Chen, Q., et al. (2022). "Strategies of carbon use and photosynthetic performance of the two seaweeds Gracilaria chouae and Gracilariopsis lemaneiformis under different conditions of the carbonate system." Algal Research 64: 102713.Gao, S., et al. (2022). "The growth and photosynthetic responses of white LEDs with supplemental blue light in green onion (Allium fistulosum L.) unveiled by Illumina and single-molecule real-time (SMRT) RNA-sequencing." Environmental and Experimental Botany: 104835.He, J., et al. (2022). "The trans-Golgi-localized protein BICAT3 regulates manganese allocation and matrix polysaccharide biosynthesis." Plant Physiology.Hsieh, W.-Y., et al. (2022). "THIAMIN REQUIRING2 is involved in thiamin diphosphate biosynthesis and homeostasis." The Plant Journal n/a(n/a).Kareem, H. A., et al. (2022). "Nanosized zinc oxide (n-ZnO) particles pretreatment to alfalfa seedlings alleviate heat-induced morpho-physiological and ultrastructural damages." Environmental Pollution 303: 119069.Li, J., et al. (2022). "Melatonin enhances the low-temperature combined low-light tolerance of pepper (Capsicum annuum L.) seedlings by regulating photosynthesis, carotenoid, and hormone metabolism." Environmental and Experimental Botany 199: 104868.Li, T., et al. (2022). "Environmental nitrogen and phosphorus nutrient variability triggers intracellular resource reallocation in Gracilariopsis lemaneiformis (Rhodophyta)." Algal Research 66: 102778.Lin, S., et al. (2022). "Exogenous melatonin improved photosynthetic efficiency of photosystem II by reversible phosphorylation of thylakoid proteins in wheat under osmotic stress." Frontiers in Plant Science 13.Liu, K., et al. (2022). "Melatonin delays leaf senescence and improves cucumber yield by modulating chlorophyll degradation and photoinhibition of PSII and PSI." Environmental and Experimental Botany 200: 104915.Liu, Y., et al. (2022). "Brassinosteroids promote starch synthesis and the implication in low-light stress tolerance in Solanum lycopersicum." Environmental and Experimental Botany 201: 104990.Lu, S., et al. (2022). "VvERF17 mediates chlorophyll degradation by transcriptional activation of chlorophyll catabolic genes in grape berry skin." Environmental and Experimental Botany 193: 104678.Lynch, T., et al. (2022). "ABI5 binding protein2 inhibits ABA responses during germination without ABA-INSENSITIVE5 degradation." Plant Physiology.Lynch, T., et al. (2022). "ABI5 interacting protein2 inhibits ABA responses during germination without ABA-INSENSITIVE5 degradation." Plant Physiology.Okereke, C. N., et al. (2022). "Impact of heat stress of varying severity on papaya (Carica papaya) leaves: major changes in stress volatile signatures, but surprisingly small enhancement of total emissions." Environmental and Experimental Botany: 104777.Om, K., et al. (2022). "Pyruvate, phosphate dikinase regulatory protein impacts light response of C4 photosynthesis in Setaria viridis." Plant Physiology.Pan, X., et al. (2022). "Transcriptional and physiological data revealed cold tolerance in a photo-thermo sensitive genic male sterile line Yu17S." BMC Plant Biology 22(1): 44.Pandey, K., et al. (2022). "Coordinated regulation of photosynthesis and sugar metabolism in guar increases tolerance to drought." Environmental and Experimental Botany 194: 104701.Roach, T., et al. (2022). "Acquisition of desiccation tolerance in Haematococcus pluvialis requires photosynthesis and coincides with lipid and astaxanthin accumulation." Algal Research 64: 102699.Rotasperti, L., et al. (2022). "The barley mutant happy under the sun 1 (hus1): An additional contribution to pale green crops." Environmental and Experimental Botany 196: 104795.Shindo, A., et al. (2022). "Interactive effects of temperature and irradiance including spectral light quality on the photosynthesis of a brown alga Saccharina japonica (Laminariales) from Hokkaido, Japan." Algal Research 66: 102777.Sohail, H., et al. (2022). "Genome-wide identification of plasma-membrane intrinsic proteins in pumpkin and functional characterization of CmoPIP1-4 under salinity stress." Environmental and Experimental Botany: 104995.Song, W., et al. (2022). "Functional characterization and comparison of lycopene epsilon-cyclase genes in Nicotiana tabacum." BMC Plant Biology 22(1): 252.Szádeczky-Kardoss, I., et al. (2022). "Elongation factor TFIIS is essential for heat stress adaptation in plants." Nucleic Acids Research.Trainin, T., et al. (2022). "Physiological characterization of the wild almond Prunus arabica stem photosynthetic capability." Frontiers in Plant Science 13.Xue, S., et al. (2022). "Effects of enhanced UV-B radiation on photosynthetic performance and non-photochemical quenching process of intertidal red macroalgae Neoporphyra haitanensis." Environmental and Experimental Botany: 104888.Yang, L., et al. (2022). "Salt interferences to metabolite accumulation, flavonoid biosynthesis and photosynthetic activity in Tetrastigma hemsleyanum." Environmental and Experimental Botany 194: 104765.Yang, L., et al. (2022). "Physiological Mechanism of Exogenous 5-Aminolevulinic Acid Improved the Tolerance of Chinese Cabbage (Brassica pekinensis L.) to Cadmium Stress." Frontiers in Plant Science 13.Zhang, J., et al. (2022). "Early evaluation of adjuvant effects on topramezone efficacy under different temperature conditions using chlorophyll fluorescence tests." Frontiers in Plant Science 13.Zhou, X., et al. (2022). "Physiological mechanism of strigolactone enhancing tolerance to low light stress in cucumber seedlings." BMC Plant Biology 22(1): 30.Zhu, S., et al. (2022). "Cold stress tolerance of the intertidal red alga Neoporphyra haitanensis." BMC Plant Biology 22(1): 114.
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  • ChloroSpec 三维叶绿素荧光分析仪ChloroSpec三维叶绿素荧光分析仪可对植物叶绿素荧光的全光谱和时间分辨率同步测量,解析分离不同的光合作用成分和过程,理解不同的淬灭机制,并描述光反应过程中对各种胁迫的早期反应;仪器配置强大的数据分析软件增强三维测量能力,对各种生物和环境胁迫反应进行早期、快速、精准的洞察;广泛用于光合作用和植物生理学研究以及从事应用植物研究和育种的实验室和机构。已成为植物生理学研究、温室和农田监测以及整个生态系统监测的多功能工具。主要特点全光谱和时间分辨NPQ测量;快速、精准观察植物健康状况;程序控制的多个激发波长、激发条件、强度、脉冲,标准配置为绿光、红光和近红外光源;快速荧光诱导波长分辨率;可以同时测量叶绿素荧光信号和荧光生物传感器的信号;专用样品架,满足叶片和液体悬浮液测量的不同需求;专业的数据分析软件,可以生成三维荧光信号图谱。主要参数电源:90-264 VAC;50-60HZ;功耗:228 VA;工作范围:15-30 C0;尺寸:37 x 27.5 x 60cm(长x宽x高);重量:23 kg;控制单元:Xilinx XC7Z020-1CLG400C采集接口:4x 16位,5 MHz采样率,用于快速荧光通道和参比通道;3x 16位,1µ s时间分辨率可切换输出,用于LED驱动器;数据传输:通过与主机的以太网连接(点对点,无网络)将数据传输到主机;光学探测器:两种可选的光学光谱仪、CMOS探测器;10µ s 最小响应时间;光谱仪1:测量范围:500至900 nm;2048像素(光学分辨率2.5 nm);最大输出速率2 kHz,用于完全分辨叶绿素荧光检测;光谱仪2:测量范围:300-900 nm;或350-900 nm,280像素,(光学分辨率约15 nm);最大输出速率5 kHz;可用于蓝绿色荧光检测;快速荧光和参比通道:4x;分辨率:200nns/point,快速PIN光电二极管探测器;680nm、700nm和730nm波长处的快速荧光检测(标准)(其他波长可根据要求选择);光源:标准3个,高强度LED,软件控制;LED可选择活化光(CW)、多重闪光(MTF)、单闪光(STF),标准LED波长:红色(峰值630 nm)、绿色(峰值530 nm)和NIR(峰值730 nm)。其他波长可提供400 nm至650 nm范围内的峰值波长、白光或其他近红外波长;工作范围:红色和绿色LED(也可以选择白色LED)可以在三种模式下工作:i)STF脉冲高达80000µ Einstein/m2/s;15-300µ s脉冲长度;最大占空比1:10;ii)MTF脉冲,高达40000µ Einstein/m2/s;最大脉冲持续时间2s;iii)活化(CW)灯,高达20000µ Einstein/m2/s;近红外发光二极管以及其他波长(400-650 nm)的工作条件与上述相同,但峰值强度约为一半;主机: Windows 10操作系统;推荐CPU:Intel core i7;RAM 8 GB或更高;软件:FPGA中的嵌入式控制软件(链接到FPGA序列号);标准样品架:样品架可用于分离叶片(样品夹在带垫片的玻璃板之间)、附加叶片(两个样品架分别用于小叶片或大叶片)。大型附加叶片的样品架允许在叶片上方(近轴侧)和下方(远轴侧)分别控制气体供应,小片附加叶片的样品架允许在叶片下方的空间(远轴侧)控制气体供应;提供的样品架:每个单元标准配备2个样品架:1个样品架用于分离叶片,1个样品架用于活体叶片。 产地与厂家:ChloroSpec
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  • 叶绿素荧光光谱包含了植物丰富的光合作用的信息,一直是光合生理研究的热点课题,且被成为研究植物光合作用快速无损的敏感探针。结合荧光光谱的特征和叶绿素等生化生理参数的测定,可为不同水、肥、病胁迫下荧光光谱指标与其他生化参数间的关系,为精准农业和林业研究等提供优化调控和精准管理的理论依据和技术支持。 由于仪器硬件的限制,长久以来,对植物叶绿素荧光的限制光谱的研究大都限制在实验室研究或者卫星高光谱数据的分析,而无法通过有人机载平台进行大面积高精度的高光谱成像遥感探测。作为全球高光谱成像仪领军的制造商之一,Headwall公司推出的 Hyperspec Fluorescence叶绿素高光谱成像仪,专门针对日光诱导叶绿素荧光(Solar-Induced chlorophyll Fluorescence, SIF)的光谱范围(670-780nm),以0.1~0.2nm的光谱分辨率为用户提供叶绿素a和叶绿素b科研级的高光谱立方体数据。 Hyperspec Fluorescence基于Headwall公司独占的像差校正型凸面全息反射光栅专利技术,并选用TE制冷型sCMOS感光器件,以峰值120:1的信噪比(SNR,unbinned),为用户提供高质量的荧光高光谱数据基础。 Hyperspec Fluorescence结构紧凑,尺寸 30 x 30 x 20cm,重量仅为6.3kg左右,可满足众多有人机平台的挂载要求。主要特点:亚纳米级分辨率,具有分辨日光诱导叶绿素荧光的能力制冷型科学级CMOS探测器,在弱光下也有极高的灵敏度在670-780nm范围内,具有2160个光谱通道,光谱采样率约为0.05nm可选配Trimble APX-15 高精度IMU/GNSS模块和紧凑型高速数据处理单元组成机载高光谱系统
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  • 一、产品介绍便携式/叶绿素荧光成像仪HXIN-PSIMAGE100不仅可用于叶绿素荧光成像,还可用于植物、动物或其组织器官及菌落等绿色荧光蛋白(GFP)分布异质性成像分析研究。该系统由四组高亮度发光二极管提供高强度测量光或适度可持续光,高强度测量光脉冲可以使荧光信号成像测量在很高的背景光下进行。荧光信号通过高灵敏度CCD摄像头探测成像,动态荧光图像可以通过所附带的软件进行分析。 二、硬件参数1. 荧光光源:蓝光450nm(460nm可选),测量光强度0.5 μmol m-2 s-1,最大光化光强度 3700 μmol m-2 s-1,饱和脉冲强度 8200 μmol m-2 s-1。2. 吸光系数测量光源:红光650 nm(660nm可选)和近红外(780 nm)LED,用于测量样品PAR 吸光系数。3. 信号检测:光谱范围350~1100 nm,1920*1080像素,成像面积24×32 mm,采集速率30 帧/秒,带选择性锁相放大器。4. 成像功能:获得Ft、Fo、Fm、Fv/Fm、F、Fm’、Y(II)、Y(NO)、Y(NPQ)、NPQ、qN、qP、qL、ETR等参数进行成像分析。5. 光强异质性:测量区域光强异质性小于 ±7%。6. 光学滤光片:6种高质量光学干涉滤光片,包括荧光、红光、绿光、蓝光、花青素和近红外滤光片。7. 程序测量:可程序测量荧光诱导曲线、快速光曲线和暗弛豫,也可手动测量。8. 项目管理:预约存多次测量的植物影像及参数,延时(缩时)摄影功能。
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  • 天津瑞暄科技发展有限公司,专注于土壤、植物、水环境、环境气象、食品农产品分析、光谱设备、精准农业与物联网、实验室通用设备的研发和销售,代理国内外多个仪器品牌,提供专业的技术咨询和售后服务。 更多产品详情: 3D IMAGING-PAM 3D 调制叶绿素荧光成像系统:可测Fo, Fm, F, Ft, Fm' , Fv/Fm, Y(II), qL, qP, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), ETR, Abs, NIR 和Red、叶片数,角度,常态,形状,面积,莲座形态,结构,总面积,莲座周长等参数。测定调节性能量耗散Y(NPQ),反映植物光保护能力,测定非调节性能量耗散Y(NO),反映植物光损伤程度。应用领域:光合作用研究、植物表型研究、植物病理学、植物胁迫生理学、遗传育种、突变株筛选、微藻毒理学、分子生物学
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  • 全球唯一可同步测量P700与气体交换的系统全球唯一可同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的系统便携式光合-荧光测量系统&mdash &mdash GFS-3000是一台配备高精度4通道绝对开路式非扩散红外气体分析器的光合仪,是目前世界上功能最强大、操作最简单、界面最人性化的光合仪,有多种方式可以进行气体交换与叶绿素荧光的同步测量,包括在人工光下同步测量气体交换与叶绿素荧光、在自然光下同步测量气体交换与叶绿素荧光、同步测量气体交换与荧光成像等。双通道PAM-100荧光仪&mdash &mdash Dual-PAM-100是大名鼎鼎的PAM-101/102/103的升级版,是全球唯一一台可同步测量叶绿素荧光(PS II活性)与P700(PS I活性)的仪器,代表了调制叶绿素荧光与P700测量的最高水平。2009年,WALZ公司设计出一个特制的Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL,可以将Dual-PAM-100与GFS-3000结合起来,在世界上第一次做到了同步测量植物叶片的P700、叶绿素荧光与气体交换!主要功能 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的暗-光诱导曲线 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的光响应曲线和CO2响应曲线 * 典型的气体交换测量,如光合作用、蒸腾作用、呼吸作用 * 典型的叶绿素荧光测量,如诱导曲线、快速光曲线、淬灭分析、暗驰豫等 * 典型的P700曲线测量 * 叶绿素荧光与P700的快速诱导动力学等 * 编程进行复杂的同步或独立测量应用领域植物生理学、植物病理学、农学、林学、园艺学等,特别适合于进行深入的光合作用机理研究,可深入探讨植物光合机构对各种环境胁迫的复杂的变化响应机理。测量参数 * PS II参数:Fo, Fm, F, Fm&rsquo , Fv/Fm, Y(II)=△F/Fm&rsquo , Fo&rsquo , qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO)和ETR(II)等* PS I参数:P700, Pm, Pm&rsquo , P700red, Y(I), Y(ND), Y(NA)和ETR(I)等* 气体交换参数:参比室和样品室的CO2绝对值(CO2abs,CO2sam),参比室和样品室的H2O绝对值(H2Oabs,H2Osam),流速(gas flow),环境气压(Pamb),叶室温度(Tcuv),叶片温度(Tleaf),环境温度(Tamb),环境PAR(PARamb),叶室内叶片正面PAR(PARtop),叶室内叶片背面PAR(PARbot),叶室相对湿度(rH),蒸腾速率(E),水气压饱和亏(VPD),叶片气孔导度(GH2O),净光合速率(A),胞间CO2浓度(Ci),环境CO2浓度(Ca),植物水分利用效率,CO2响应曲线,光响应曲线等Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL 专为DUAL-PAM-100与GFS-3000的同步测量设计,由特制叶室(带温度和PAR传感器)、风扇、导光杆、电子盒与支架构成。同步测量时,光源完全由DUAL-PAM-100的测量头提供,气体交换由GFS-3000的红外分析器检测,P700和叶绿素荧光由DUAL-PAM-100的检测器测量。需要注意的是,3010-DUAL可以连接DUAL-PAM-100的DUAL-DB测量头,但不能连接DUAL-DR测量头。DUAL-DR的光学单元太复杂,连接3010-DUAL容易损伤DUAL-DR。主要技术参数 1)Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL * 设计:专为GFS-3000与Dual-PAM-100或KLAS-100的同步测量设计,叶室上下可通过导光杆与Dual-PAM-100的测量头DUAL-DB(不可连接DUAL-DR!)和DUAL-E连接,叶室的气路与电子盒连接到GFS-3000的主控单元3000-C上。* 叶室温度测量:Pt 100 A型热电阻,测量范围-10~+50℃,精度± 0.1℃* 温度控制:低于环境温度10℃~+50℃* 叶片温度测量:热电耦,测量范围-10~+50℃,精度± 0.2℃* 外置微型光量子传感器:测量PAR,范围0~2000 &mu mol m-2 s-1,精度± 5%* 叶面积:1.3 cm2* 工作温度:-5~+45℃* 尺寸:叶室10 cm x 4 cm 12 cm;电子盒7 cm x 7 cm x 15 cm* 重量:包括叶室、电子盒、电缆与安装架,1.7 kg;工作台ST-101,2 kg2)Dual-PAM-100* P700双波长测量光:LED,830 nm和870 nm* PSII荧光测量光:LED,460 nm(DUAL-DB)或620 nm(DUAL-DR)* 红色光化光:LED阵列,635 nm;最大连续光强2000 &mu mol m-2 s-1* 蓝色光化光:LED,460 nm;最大连续光强700 &mu mol m-2 s-1* 单周转饱和闪光(ST):200000 &mu mol m-2 s-1,5~50 &mu s可调* 多周转饱和闪光(MT):20000 &mu mol m-2 s-1,1~1000 ms可调3)GFS-3000* CO2测量:0~3000 ppm,分辨率:0.01ppm* CO2控制:0~2000 ppm* H2O测量:0~75000 ppm,分辨率:0.01ppm* H2O控制:0~100% rh(可加湿)* 温度测量:-10℃ ~ +50℃* 温度控制:低于环境温度10℃ ~ +50℃* PAR测量:0~2500 &mu mol m-2 s-1* PAR控制:0~2000 &mu mol m-2 s-1* 气压测量:60~110 kPa
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  • 1 引言叶绿素荧光是反应植物光合作用等生理功能的重要指标之一。通过分析植物叶绿素荧光参数,可以直接反应植物的光合能力、胁迫状况等重要的生理状态。因此,叶绿素荧光参数的测量一直为学者所重视。而调制-饱和-脉冲式荧光仪的出现,使得叶绿素荧光野外测量变得方便,但仍然存在着不能在线测量,每次只能测量一个样品、无法长期监测等问题针对上述问题,我们推出了在线式叶绿素荧光监测系统,可以长时期的连续监测植物的叶绿素荧光参数,并且可以配合无线传输模块,远程传送数据,单个仪器可同时测量多达32个样品,并且简单的编程设置,可以选择任意时间或不同时间重复测量相同的参数,对更深入的研究植物的光合作用机制及环境对植物的影响具有重要的意义。2 观测系统设计2.1 目标1) 坚固紧凑2) 低维护3) 多样品同时测量 4) 用户自定义设置5) 多种测量协议6) 远程数据传输7) 安装方便8) 适用野外长期监测 9) 标准数据输出 2.2 系统组成及技术指标2.2.1 系统由如下部分组成:1) 光适应与暗适应单元;2) 主机;3) 分线器;4) 供电单元;5) 支架等附件6) 远红光单元(可选);7) 在线数据传输单元(标配WIFI)8) 气象单元(可选) 2.2.2 技术指标:光适应测量参数:l Y(II): (相关参数采用Loriaux 2013 方法校正)PSII的光量子产额,或ΔF/F’或Yl ETR:相对电子传递速率 l PAR: 光合有效辐射l T:叶片温度l FMS:或FM’,光化光下使用饱和脉冲测的的最大荧光l F:光化光下的荧光信号(饱和脉冲照射之前)暗适应测量参数l FV/FM: PSII的最大光化学效率l FV/FO对胁迫更敏感的一个参数,但不测量植物效率l Fo最小荧光l FM最大荧光l FVl FO’可变荧光远红光(暗适应模块)照射后的最小荧光l FO’计算值淬灭参数:l Hendrickson参数Y(NPQ), Y(NO), Y(II), NPQ, FV/FMl Kramer参数qL, Y(NPQ), Y(NO), Y(II), FV/FMKramer new:NPQ(T), qE(T), & qI(T) (近红色光源)l Puddle参数NPQ, qN,qP,Y(II), FV/FMl 淬灭弛豫(可选)qE、qM、qT、qZ和qIl Ruban/ Murchie 参数pNPQ & qPd快速光曲线:l rETRMAX 最大电子传递速率 l α是通过将ETR与PAR关联而创建的低PAR值处的初始斜率。 它提供了量子效率的量度l Ik光化光强l Im 最佳光化光强硬件参数:光源:蓝色饱和脉冲LED:FM’校正时7000 μmols/m2/s具有方形顶部脉冲的10000 μmols/m2/s可选红色饱和脉冲LED:FM’校正时7000 μmols/m2/s具有方形顶部脉冲的10000 μmols/m2/s调制光源:Blue 455nm – 半波宽18nm的蓝色(455nm)光源可选的半波宽18nm的640nm红色光源光化光源 蓝色,可达5000 μmols红色可选,可达5000 μmols远红光源:用于Fo’测量或者暗适应模式中的预照射。检测方法: 脉冲调制式检测器&滤波器: 具有700 ~ 750带通滤波器的PIN光电二极管 采样速率:1~10000点每秒,根据不同测量自动选择测量时间:使用太阳能或交流电对电池进行供电 存储空间:2GB算法:25ms内8点平均值计算FM, FM' , FO, & FS,降低噪音值输出: CSV文件,可以通过wifi,手机、SD卡、无线点对点,以太网,卫星电话或者U盘传输 供电:可以根据要求提供各种外部12伏电池。可以使用太阳能电源和主电源。操作温度: -10℃~+50℃3 数据处理数据通过主控制器获取,可以通过多种方式下载,所有系统标配Wi-Fi模块,方便客户使用。系统界面为彩色触摸屏,可用于数据采集的编程,也可以使用PC和手机进行远程控制,获得的数据格式同Excel兼容,也可以导入各种数据处理软件进行分析,数采内部自带各种算法,用于计算各种模型参数。 5 产地: 美国
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  • Fluorescence高分辨率叶绿素荧光机载高光谱成像光谱仪特点:全反射同心光学设计,原始全息光栅科研级数据用于O2-A和O2-B用于远距离测量大面积地理区域内的叶绿素荧光发射等科研级应用,可探测在670nm到780nm之间的光谱适用于植被遥感等应用。基本参数:光谱范围(nm)670-780光谱分辨率(FWHM)(nm)0.1-0.2光谱通道2160空间像素1600重量(包括25mm镜头)6.3kg应用案例:G-LiHT 检测系统/森林生物量、外来树种监测等
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  • 产品描述 CHL-2000荧光法在线叶绿素分析仪采用浸入式传感器,基于荧光法对叶绿素的浓度进行测量。该仪表广泛应用于地表水监测、生物学/环境生态学研究、 海水监测、 水体剖面/走航研究等领域。□产品原理 叶绿素在外加470nm光源的激发下,在某个可见光谱区域吸收光线(主要在红蓝色光区域),并以荧光的方式在较长波长680nm 附近重新释放一小部分吸收能量,通过分析其吸收特性即可计算出水中叶绿素的浓度。产品特点●具备高灵敏度●具备连续运行的高稳定性●具备自动日光补偿功能●无活动部件,基本无故障●监测范围及方式不受限制●坚固耐用,可承受一定的侧力撞击●低运行成本,极少日常维护,只须少量的清洗工作●实时出数,测量周期小于1 秒,真正意义的预警仪表●无试剂,无污染,是真正环保产品□技术参数传感器测量方法:荧光光谱法光源:超亮度LED灯(波峰470nm)测量范围:0~20/200μg/L,量程自动选择灵敏度:0.02μg/L分辨率:0.01μg/L准确度:±3%F.S电源:传感器供电12V 15W工作温度:0~45℃工作压力:0-6bar,可用于水下60 米传感器防护等级:IP68电极外壳:不锈钢316L尺寸:φ48×250mm(不含接口)电极工作方式:可流通式或浸入式安装传感器重量:主机0.7kg(不锈钢外壳) 变送器现场显示:240*160背光液晶显示数字接口:RS485接口模拟输出:2路4-20mA输出,负载500欧姆继电器输出:2路报警继电器和1路清洗继电器输出触点容量250VDC,3A操作温度:-20-50℃ 避免阳光直射相对湿度:5%-90%(无冷凝)防护等级;PC外壳,IP65供 电:220VAC,15W重 量:1.5公斤(标准)外形尺寸:234/185/118mm,L/W/H
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  • 手持式荧光叶绿素测定仪XY-900S叶绿素分析仪青岛新业环保产品介绍 便携式叶绿素分析仪由便携式主机以及便携式叶绿素传感器组成。叶绿素传感器是利用叶绿色素在光谱中有吸收峰和发射峰这一特性,在叶绿素的光谱吸收峰发射单色光照射到水中,水中的叶绿素吸收单色光的能量,释放出另外一种波长发射峰的单色光,叶绿素发射的光强与水中叶绿素的含量成正比。便携式水中叶绿素分析仪典型应用: 广泛应用于水产养殖、地表水、科研高校等行业和领域水中叶绿素的现场便携式监测。产品特点1.便携式主机IP66防护等级。2.人体工学曲线设计,带有橡胶垫圈,适于手握操作,在潮湿环境中容易掌握。3.出厂标定,一年无需校准,可现场标定。4.数字化传感器,现场使用方便、快捷,和便携式主机实现即插即用。5.带有USB接口,可以实现对内置电池充电,并可通过USB接口实现数据导出。手持式荧光叶绿素测定仪XY-900S叶绿素分析仪青岛新业环保手持式荧光叶绿素测定仪XY-900S叶绿素分析仪青岛新业环保产品参数测量范围:0.5-500 ug/L测量精度:±5%外壳材料:便携式主机:ABS+PC叶绿素传感器:SUS316L存储温度:0到50℃工作温度:0到40℃传感器尺寸重量:直径12mm*长度120mm传感器尺寸重量:主机尺寸:203*100*43mm主机重量:0.5KG防护等级:主机IP66 传感器IP68电缆长度:标配3米电缆(可延长)显 示:3.5寸彩色显示屏幕,背光可调数据存储:8G数据存储空间
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  • 袖珍植物叶绿素荧光仪/植物效率分析仪产品介绍: 袖珍植物叶绿素荧光仪/植物效率分析仪可准确记录叶绿素荧光诱导动力学曲线的快相部分,每秒钟可以连续记录10万次荧光踪迹数据,能在1秒钟内完整测定叶绿素的OJIP 荧光诱导曲线,测定的基本参数为:Fo,Fm,Fv,Fv/Fm,Tm(Fm出现的时间),Fo与Fm曲线之间的面积(该面积反映PSII电子受体库的大小),PI(光合性能指数),以及由OJIP荧光诱导曲线计算出来的全部参数,屏幕直接显示Fv/F及PI参数。技术参数:1.每秒钟连续记录10万次荧光踪迹数据, 1秒钟内完整测定叶绿素的O J I P 荧光诱导曲线。2.存储200个1秒钟的荧光动力学曲线的全数据。3.光源:红色二极管聚光光源,波长峰在650nm,谱线半宽22纳米,叶片表面光强度为3500 μmolm-2s-1, 记录时间有1秒和10秒2个选择档次。4.内置锂电池,连续使用时间长达4小时。5.测定参数:FO, Fm,Fv,Fv/Fm,Ft ,FJ ,FI,FP ,Tm, ψO,φEo,φDo,Vt,VJ,WK,PIABS,PICS,ABS/RC,TRO/RC,ETO/RC,DIO/RC,RC/CSO,RC/CSM等五十多个OJIP荧光诱导曲线计算出来的荧光参数。产品特点:具有单键操作的快速筛选功能板载存储多达 200 个完整数据集自动计算参数,包括 Fv/Fm 和 OJIP 分析带有密封高强度光学器件的坚固外壳100kHz 采样频率,16 位分辨率标配 Bluetooth? 无线数据传输包含强大的 Windows数据传输和分析软件技术参数:尺寸:175毫米(长)x 75 毫米(宽)x 35 毫米(深)重量:250g通信:Bluetooth? 无线通信运行条件:0°C – 40°C、非冷凝湿度。电池:环保(0%铅、镉汞)锂聚合物3.7V,570 mAhr充电器:一体式开关模式充电器输入电压 100V – 240V 50Hz – 60Hz输出电压 12V DC输出电流 3 安培。显示:2 行 x 12 字符 LCD 显示屏照明:具有 NIR 短通截止滤光片的光学稳定、聚焦、亮红色 LED峰值波长 627nm。*大限度、叶面强度:高达 3,500 μmol m -2 s -1检测器:具有 RG9 长通滤波器的快速响应 PIN 光电二及管电子产品:高性能16位微控制器16位分辨率 A/D 10微秒采集速率用于光源控制的8位 DAC实时时钟。记录长度:1、3 或 10 秒记忆:512 Kbits 非易失性存储器足以进行多达 200 次、时长10秒的完整跟踪数据记录。
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  • 一.叶绿素荧光仪用途植物养分测定仪可以即时无损测量植物的叶绿素相对含量(单位 SPAD)或绿色程度、氮含量、叶面湿度、叶面温度,从而了解植物真实的硝基需求量并且了解土壤硝基的缺乏程度或是否过多地施加了氮肥。可以通过此款仪器来增加氮肥的利用率,并可保护环境。可广泛应用于农林相关科研单位和高校对植物生理指标的研究和农业生产的指导。二.叶绿素荧光仪技术指标1.检测项目:叶绿素含量、氮含量、叶面温度、叶面湿度2.测量范围 叶绿素:0.0-99.99SPAD 氮含量:0.0-99.99mg/g叶面湿度:0.0-99.9RH% 叶面温度:-10-99.9℃3.测量面积:2mm*3mm4.测量精度 叶绿素:±1.0 SPAD单位以内 (室温下,SPAD值介于0-50) 氮含量: ±5% 叶面湿度:±5% 叶面温度:±0.5℃5.叶绿素荧光仪重复性 叶绿素:±0.3 SPAD单位以内 (SPAD值介于0-50) 氮含量:±0.5mg/g 叶面湿度:±0.5RH% 叶面温度:±0.2℃6.测量时间间隔:小于0.8秒7.数据存储:16GB 可根据用户需求进行分组存储8.电源:4.2V可充电锂电池9.电池容量:3000mah10.重量:230g11.工作及存储环境:-10℃~50℃ ≤85%相对湿度三.叶绿素荧光仪功能特点1.快速无损植物活体检测,测量时只需将叶片插入即可,不需要采摘叶片,不影响作物正常生长,可以在作物生长过程中全程对叶片进行监测,从而得到更科学的分析结果2.测量精度高(精度:± 1.0 SPAD,重复性:±0.3 SPAD) ,,内置防强光干扰系统3.一次操作可同时测定所有参数,叶绿素、氮含量、叶面温度、叶面湿度四种参数同一屏幕同时显示,且可同时储存4.16GB大存储空间,数据可进行分组存储、查看、导出5.多功能USB接口,可实现数据导出与充电功能,可将仪器与电脑直接联机,数据导出无需上位机软件,还可选择使用内存卡直接导出数据,操作简单方便6.数据浏览:可在仪器上浏览、转存、清空历史数据7.GPS定位功能:可以实时显示卫星定位经纬度,明确当前检测位置。8.叶绿素荧光仪器内置4G无线传输模块,支持野外环境实时上传数据,检测结果可直接传至专属云农业数据中心,分配企业专属云农业数据中心账户,该账户中心可查看不同检测人员的上传数据。9.云农业数据中心可按照任意时间段检索历史数据,可查看测量时间、叶绿素含量、氮含量、叶面温度、叶面湿度、GPS定位信息等数据,显示每种参数过程曲线趋势,最大值、最小值查看,放大、缩小功能,支持在线下载、EXCEL导出、分析、打印10.高对比度LCD显示屏,强光下也可清晰显示数据11.低功耗模式设计,内置大容量锂离子充电电池,具有防过充功能,节能环保并方便进行户外操作12.内置中英文双语显示,一键切换,无缝对接13.叶绿素荧光仪标准配置: 主机、充电器、USB数据线、内存卡、读卡器、便携铝箱,合格证、说明书等
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  • 叶绿素a 在线分析仪Chlorophyll a Online Analyzer产品型号(Product Type): BX-ChlaBX-Chla 叶绿素a 在线分析仪是利用叶绿素本身特有的荧光效应来进行检测的,此分析仪采用特定波长的高亮度LED 激发水样中植物细胞内的叶绿素,叶绿素会相应的发出荧光,分析仪中的高灵敏度光电传感器会捕捉微弱的荧光信号从而转化为叶绿素浓度数值。性能参数1、测量原理:荧光法。2、量程:(0~400)μg/L,可设定。温度(0~50)℃。3、测量精度:±1%F.S。4、分辨率:0.01μg/L。5、标定周期:3 个月。6、清洗系统:清洁刷自动清洗。7、防护等级:IP68,最大水深30 米(3bar)。8、供电电压:12~24V DC,电流50mA (非清洗时)。9、装配:投入式(浸入式)测量。10、通讯方式:支持RS-485,Modbus 协议。11、线缆长度:5 米或10 米,可定制。12、材质:316L 或钛合金。13、尺寸(D×L):Φ36mm×198mm。
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  • 仪器概述 JY-ChlA68 系列在线式叶绿素分析仪,是基于JY 光学水质分析平台开发的数字式叶绿素分析仪,该型分析仪采用特定波长的高亮度LED 激发水样中植物细胞内的叶绿素,叶绿素会发出荧光,分析仪中的高灵敏度光电传感器会捕捉微弱的荧光信号从而转化为叶绿素浓度数值,同时该型分析仪采用数字化、智能化传感器设计理念,能够自动补偿电压波动、器件老化、温度变化对测量值的影响;直接输出标准化数字信号,在无控制器的情况下就可以实现组网和系统集成。 仪器特点 ? 采用高亮度LED 做为激发光源,发光效率稳定、寿命长? 采用独特的光学和电子滤光技术,消除环境光和其他物质荧光对测量的影响? 数字化传感器,RS485 信号输出,抗干扰能力强,传输距离更远? 开放的通信协议,可以实现和其他设备的集成和组网? 清洁刷自动清洗,大大减少了维护工作量? 操作简便,支持软件在线升级 性能 型 号JY-ChlA68测量参数叶绿素a、温度量 程(0 ~ 500)ug/L (可根据需求定制)测量精度叶绿素a: ≤ ±1% 读数重复性叶绿素a: ≤ 2% 读数零点漂移±1%F.S量程漂移±1%F.S标定周期6 个月分辨率叶绿素a: 0.1ug/L清洗系统清洁刷自动清洗( 选配)供电电压(9- 30)VDC功 耗1.1W(非清洗模式下)通讯方式RS485防护等级IP68、水下60m温度范围(0 ~ 50)℃外形尺寸207 mm × φ51 mm材 质不锈钢(316L)、POM
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