气体交换叶绿素荧光同步测量系统

全球唯一可同步测量P700与气体交换的系统全球唯一可同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的系统便携式光合-荧光测量系统&mdash &mdash GFS-3000是一台配备高精度4通道绝对开路式非扩散红外气体分析器的光合仪，是目前世界上功能最强大、操作最简单、界面最人性化的光合仪，有多种方式可以进行气体交换与叶绿素荧光的同步测量，包括在人工光下同步测量气体交换与叶绿素荧光、在自然光下同步测量气体交换与叶绿素荧光、同步测量气体交换与荧光成像等。双通道PAM-100荧光仪&mdash &mdash Dual-PAM-100是大名鼎鼎的PAM-101/102/103的升级版，是全球唯一一台可同步测量叶绿素荧光（PS II活性）与P700（PS I活性）的仪器，代表了调制叶绿素荧光与P700测量的最高水平。2009年，WALZ公司设计出一个特制的Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL，可以将Dual-PAM-100与GFS-3000结合起来，在世界上第一次做到了同步测量植物叶片的P700、叶绿素荧光与气体交换！主要功能 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的暗-光诱导曲线 * 同步测量P700、叶绿素荧光与气体交换的光响应曲线和CO2响应曲线 * 典型的气体交换测量，如光合作用、蒸腾作用、呼吸作用 * 典型的叶绿素荧光测量，如诱导曲线、快速光曲线、淬灭分析、暗驰豫等 * 典型的P700曲线测量 * 叶绿素荧光与P700的快速诱导动力学等 * 编程进行复杂的同步或独立测量应用领域植物生理学、植物病理学、农学、林学、园艺学等，特别适合于进行深入的光合作用机理研究，可深入探讨植物光合机构对各种环境胁迫的复杂的变化响应机理。测量参数 * PS II参数：Fo, Fm, F, Fm&rsquo , Fv/Fm, Y(II)=△F/Fm&rsquo , Fo&rsquo , qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO)和ETR(II)等* PS I参数：P700, Pm, Pm&rsquo , P700red, Y(I), Y(ND), Y(NA)和ETR(I)等* 气体交换参数：参比室和样品室的CO2绝对值（CO2abs，CO2sam），参比室和样品室的H2O绝对值（H2Oabs，H2Osam），流速（gas flow），环境气压（Pamb），叶室温度（Tcuv），叶片温度（Tleaf），环境温度（Tamb），环境PAR（PARamb），叶室内叶片正面PAR（PARtop），叶室内叶片背面PAR（PARbot），叶室相对湿度（rH），蒸腾速率（E），水气压饱和亏（VPD），叶片气孔导度（GH2O），净光合速率（A），胞间CO2浓度（Ci），环境CO2浓度（Ca），植物水分利用效率，CO2响应曲线，光响应曲线等Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL 专为DUAL-PAM-100与GFS-3000的同步测量设计，由特制叶室（带温度和PAR传感器）、风扇、导光杆、电子盒与支架构成。同步测量时，光源完全由DUAL-PAM-100的测量头提供，气体交换由GFS-3000的红外分析器检测，P700和叶绿素荧光由DUAL-PAM-100的检测器测量。需要注意的是，3010-DUAL可以连接DUAL-PAM-100的DUAL-DB测量头，但不能连接DUAL-DR测量头。DUAL-DR的光学单元太复杂，连接3010-DUAL容易损伤DUAL-DR。主要技术参数 1）Dual-PAM气体交换叶室&mdash &mdash 3010-DUAL * 设计：专为GFS-3000与Dual-PAM-100或KLAS-100的同步测量设计，叶室上下可通过导光杆与Dual-PAM-100的测量头DUAL-DB（不可连接DUAL-DR！）和DUAL-E连接，叶室的气路与电子盒连接到GFS-3000的主控单元3000-C上。* 叶室温度测量：Pt 100 A型热电阻，测量范围-10～+50℃，精度± 0.1℃* 温度控制：低于环境温度10℃～+50℃* 叶片温度测量：热电耦，测量范围-10～+50℃，精度± 0.2℃* 外置微型光量子传感器：测量PAR，范围0～2000 &mu mol m-2 s-1，精度± 5％* 叶面积：1.3 cm2* 工作温度：-5～+45℃* 尺寸：叶室10 cm x 4 cm 12 cm；电子盒7 cm x 7 cm x 15 cm* 重量：包括叶室、电子盒、电缆与安装架，1.7 kg；工作台ST-101，2 kg2）Dual-PAM-100* P700双波长测量光：LED，830 nm和870 nm* PSII荧光测量光：LED，460 nm（DUAL-DB）或620 nm（DUAL-DR）* 红色光化光：LED阵列，635 nm；最大连续光强2000 &mu mol m-2 s-1* 蓝色光化光：LED，460 nm；最大连续光强700 &mu mol m-2 s-1* 单周转饱和闪光（ST）：200000 &mu mol m-2 s-1，5～50 &mu s可调* 多周转饱和闪光（MT）：20000 &mu mol m-2 s-1，1～1000 ms可调3）GFS-3000* CO2测量：0～3000 ppm，分辨率：0.01ppm* CO2控制：0～2000 ppm* H2O测量：0～75000 ppm，分辨率：0.01ppm* H2O控制：0～100％ rh（可加湿）* 温度测量：-10℃ ～ +50℃* 温度控制：低于环境温度10℃ ～ +50℃* PAR测量：0～2500 &mu mol m-2 s-1* PAR控制：0～2000 &mu mol m-2 s-1* 气压测量：60～110 kPa

Mini-PAM&mdash &mdash 外观Mini，但功能绝不Mini！PNAS、PlantCell、PlantPhysiology等顶级期刊上经常见到它的身影Schreiber教授因发明PAM系列调制叶绿素荧光仪而获得首届国际光合作用协会（ISPR）创新奖1983年，WALZ公司首席科学家、德国乌兹堡大学的UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台调制荧光仪&mdash &mdash PAM-101/102/103，并在植物生理、生态、农学、林学、水生生物学等领域得到广泛应用，出版了大量高水平研究文献。但该仪器比较笨重，不易带到野外。1992年，UlrichSchreiber教授设计制造了全世界第一台便携式调制荧光仪&mdash &mdash PAM-2000（现已升级到PAM-2100），由于其既能在室内使用，也方便野外使用，因此在此后十几年中成为全球最畅销的调制荧光仪。1996年，WALZ公司在浓缩PAM-2000功能的基础上，设计制造了一台更加方便携带的超便携式调制荧光仪&mdash &mdash MINI-PAM。该仪器对PAM-2000的功能进行了浓缩，更加适合野外操作，同时价格也更加便宜。系统描述MINI-PAM采用了独特的调制技术和饱和脉冲技术，从而可以通过选择性的原位测量叶绿素荧光来检测植物光合作用的变化。MINI-PAM的调制测量光足够低，可以只激发色素的本底荧光而不引起任何的光合作用，从而可以真实的记录基础荧光Fo。MINI-PAM具有很强的灵敏度和选择性，使其即使在很强的、未经滤光片处理的环境下（如全日照甚至是10000&mu molm-2s-1的饱和光强下）也可测定荧光产量而不受到干扰。MINI-PAM是野外光合作用研究的强大工具。超便携式调制叶绿素荧光仪MINI-PAM的特点在于快速、可靠的测量光合作用光化学能量转换的实际量子产量。此外，MINI-PAM秉承了WALZ公司PAM系列产品的一贯优点，通过应用调制测量光来选择性的测量活体叶绿素荧光。基于创新性的光电设计和高级微处理器技术，MINI-PAM在达到超便携设计的同时可以得到灵敏、可靠的结果。同时，MINI-PAM的操作非常简单。测量光合量子产量只需一个按键（START）操作即可，仪器会自动测量荧光产量（F）和最大荧光（Fm），并计算光合量子产量（Y＝&Delta F/Fm），得到的数据会在液晶显示屏上显示同时自动存储。此外MINI-PAM还有许多模式（MODE）菜单，包括荧光淬灭分析（qP、qN和NPQ）和记录光响应曲线等，以满足用户的特殊需要。连接光适应叶夹2030-B后，可以测量光合有效辐射（PAR）、叶片温度和相对电子传递速率（rETR）。内置电池可以满足1000次量子产量测量的需要，仪器内存可以存储4000组数据。Windows操作软件WinControl可以进行数据传输、数据分析和遥控操作。标准版的MINI-PAM采用红光作为测量光。根据用户需要，我们也可提供以蓝光（470nm）作为测量光的MINI-PAM。特点1）声誉卓著的PAM-2000的浓缩版2）精巧、准确、迅速、操作简便的高级光合作用检测设备3）可单机操作（采用内置电脑），可连接外置电脑操作（Windows操作软件WinControl）4）超便携式设计，带液晶显示屏和8个按键5）强大的数据收集、分析和存贮功能6）能耗低，内置锂电池可满足长时间野外工作需要，并可连接外置12V电池7）多种叶夹可供选择，专利设计的光适应叶夹2030-B可同时记录PAR和温度变化8）光源选择：自然光，内置光源（提供测量光、光化光和饱和脉冲），可选外置卤素灯光源（特别适合野外研究）功能1）可测荧光诱导曲线并进行淬灭分析（Fo,Fm,Fv/Fm,F,Fm' ,&Delta F/Fm&rsquo ,qP,qN,NPQ,rETR,PAR和叶温等）2）可测光响应曲线和快速光曲线（RLC）3）51个内置模式菜单，方便参数设置和标准测量4）可在线监测植物、微藻、地衣、苔藓等的光合作用变化5）功能强大，特别适合野外操作，实验室内利用WinControl控制时可自编程序应用领域仪器设计特别适合野外使用，可用于研究光合作用机理、各种环境因子（光、温、营养等）对植物生理状态的影响、植物抗逆性（干旱、冷、热、涝、UV、病毒、污染、重金属等）、植物的长期生态学变化等。在植物生理学、植物生态学、植物病理学、农学、林学、园艺学、水生生物学、环境科学、毒理学、微藻生物技术、极地植物光合作用研究等领域有着广泛应用。系统组成MINI-PAM的基本组成包括主机（1）和光纤（2）。主机内置大容量可充电锂电池（12V/2Ah），可供长时间野外操作（约1000次量子产量测定）。标准系统还包括一个电池充电器（3）和一个&ldquo 距离叶夹&rdquo （4），以及一个运输箱（5）。可选附件包括：可在测量荧光参数的同时测量PAR和温度的光适应叶夹2030-B（6）；微型光量子/温度传感器2060-M（7），可用于测量非叶片状样品的PAR和温度；可安装2030-B或2060-M的三角架ST-2101A（8）；暗适应叶夹DLC-8（9），带滑片开关，重4g；微光纤（10），可用于测量微型样品，或与便携式光合作用测量系统GFS-3000的叶室连用在自然光下同步测量气体交换和叶绿素荧光。可与光合仪连用，同步测量气体交换和荧光MINI-PAM可以利用微光纤与便携式光合作用测量系统GFS-3000连用，在完全不遮荫的自然光下同步测量气体交换与叶绿素荧光，特别适合野外生理、生态学研究。技术参数测量光：红色发光二极管（LED），650nm；标准光强0.15&mu molm-2s-1PAR；调制频率0.6或20kHz，自动转换。光化光：卤素灯，8V/20W，蓝色增强，&lambda 710nm；MINI-PAM/B：&lambda 650nm）；选择性锁相放大器（专利设计）。数据存储：CMOSRAM128KB，可存储4000组数据测量参数：Fo,Fm,Fm&rsquo ,F,Fv/Fm(max.Yield),&Delta F/Fm&rsquo (Yield),qP,qN,NPQ,ETR,PAR和叶温等。环境温度：-5～＋40℃，在极地研究中得到成功应用部分文献1.AnjumMA:ResponseofCleopatramandarinseedlingstoapolyamine-biosynthesisinhibitorundersaltstress.ActaPhysiologiaePlantarum2010:inpress.[MINI-PAM]2.BeniwalRS,Langenfeld-HeyserR,PolleA:EctomycorrhizaandhydrogelprotecthybridpoplarfromwaterdeficitandunravelplasticresponsesofxylemanatomyEnvironmentalandExperimentalBotany2010:inpress.[MINI-PAM,HCM-1000]3.DoyleSM,DiamondM,McCabePF:Chloroplastandreactiveoxygenspeciesinvolvementinapoptotic-likeprogrammedcelldeathinArabidopsissuspensioncultures.JournalofExperimentalBotany2010,61(2):473-482.[MINI-PAM]4.DuN,GuoW,ZhangX,WangR:MorphologicalandphysiologicalresponsesofVitexnegundoL.var.heterophylla(Franch.)Rehd.todroughtstress.ActaPhysiologiaePlantarum2010:inpress.[GFS-3000,MINI-PAM]5.FleckI,Peñ a-RojasK,ArandaX:MesophyllconductancetoCO2andleafmorphologicalcharacteristicsunderdroughtstressduringQuercusilexL.resprouting.AnnForSci2010,67(3):308.[MINI-PAM]6.Fü hrsH,

FC 00-C/1010GFP封闭式多光谱植物荧光成像系统是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多光谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现测量样品的暗适应。它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为13× 13 cm。适用对象为小植物，离体叶片，海藻稀释物等。系统结构紧凑且易于实现样品的暗适应，功能强大的软件可以控制整个系统，获取数据和处理图像。应用领域植物光合特性和代谢紊乱筛选生物与非生物胁迫检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究基因标记检测转基因表达研究功能特点：实验过程和测量参数荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它.实验过程和测量参数稳态荧光测定GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它荧光蛋白及荧光素荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析PAR吸收系数测定QA再氧化过程分析OJIP曲线测定高达1µ s时间分辨率的快速荧光诱导分析可测量与计算多达50个参数: F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它典型样品叶片，整株植物，小树苗，果实，蔬菜，苔藓，地衣，藻青菌，绿藻，各种转基因植物，适用于不同植物样品的支架，培养皿与多孔板蒙版 操作软件与实验结果内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excelWindows 2000, XP, Vista，Win7兼容稳态荧光测定荧光蛋白和荧光素家族具有巨大的光谱多样性，它们通常具有不同的激发光谱和释放光谱。封闭式荧光成像系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一系列的滤光片组，可以来对GFP，EGFP、wtGFP、BFP、YFP或者其它波段荧光蛋白进行检测和成像。高分辨率相机1392 x 1040 像素 可选 640 x 480 像素或512 x 512 像素；低像素模式适用于快速荧光过程的捕获；高像素模式适用于叶绿素荧光和需要长时间曝光的弱稳态荧光测量或者需要高空间分辨率的情景（显微视野）7位滤波轮多色激发光源wtGFP 主激发峰 395 - 397 nm，发射峰 504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.EGFP 主激发峰中心波长488 nm，发射峰 507 - 509 nm. 滤波器建议设置:激发光480 nm短通，532/28 或 530/25 nm检测.BFP 主激发峰 384 nm，发射峰近 448 nm.滤波器建议设置: 激发光400 nm短通，469/35 nm检测. 配置型号指南：标准版1&mdash &mdash 超高速成像版：512 x 512 像素，50幅/秒超快CCD，适用于荧光参数的精细再现标准版2&mdash &mdash 超高分辨率版：1392 x 1040 像素分辨率，适用于高空间分辨率的应用，如气孔动态标准版3&mdash &mdash PAR吸收修正版：可测植物真实F0&rsquo 与PAR吸收系数，用于修正荧光参数和ETR 标准版4&mdash &mdash 功能增强版：超强STF，强度可达120,000 µ mol(photons)/m² .s，可实现100µ s脉冲，用于QA瞬间饱和与再氧化研究；可同时进行荧光蛋白与荧光素成像，包括GFP、wGFP、eGFP、YFP、BFP、CY3, CY5等，用于转基因研究。 1.FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5× 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。 FC 1000-H便携式叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。 2.FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统FC 1000-LC便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统专门设计来与光合仪的气体交换叶室安装在一起使用，是一个高度创新的，世界范围内广泛应用的多广谱动力学荧光成像系统。它具备其他荧光成像系统的所有特征。这个系统高度紧凑，且可以实现测量样品的暗适应。叶绿素荧光测量与成像可以与气体交换测量同步进行，获取更丰富准确的信息。而且精确的样品所处环境控制功能，例如影响光合和蒸腾速率的温度、相对湿度和氧气和CO2的分压，远优于普通叶绿素荧光成像系统。系统可与目前市场上绝大多数厂家的光合仪联用，如Licor，ADC，PPS等。3. FC800-O开放式植物荧光成像系统 FC 800-O开放式荧光成像系统是一款高度模块化的设备，具体配置可以定制。其LED发光板和饱和光源可以任意角度和到样品的距离排列，也可以通过调整CCD的位置来增加精度。标准配置的最大成像面积为13× 13 cm ，通过选择光源的尺寸，可调整最大成像面积为20× 20 cm 。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。4. FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统FC 900-TR开放式植物样带叶绿素荧光扫描成像系统高度紧凑，主要由一个扫描控制系统，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。测量区域为200× 100 cm。该系统适用于实验室或样地中样带植株的原位快速测量，尤其适用于监测多因子实验中植物对各种处理的响应。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。尤其适用于高通量筛查和监测胁迫梯度对植物影响；适合户外与温室使用；结构坚固耐用，光源与相机位置可移动；无需取下或者移动样品；标准成像尺寸为20× 200 cm，其它尺寸可调整。5. FC 900-R野外移动式植物叶绿素荧光成像系统 FC 900-R野外移动式植物荧光成像系统主要由一个可移动支架，CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像。LED发光板的均一性照明面积为20× 20 cm，适用于野外较大植物（如大豆、小麦）的原位无损测量。成像高度20 到 150 cm可调，可配真彩镜头。测量参数与技术指标请参考FC-800-C封闭式植物荧光成像系统。适用于野外大尺寸扫描测量面积20× 20 cm.移动系统极其坚固稳定可在粗糙地表轻松移动配置样品暗适应箱从 20 to 150 cm高度可调无需样品分离与破坏6. FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统 FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。这个系统高度紧凑且可以实现对测量样品的3D成像，它由一个CCD相机，LED发光板，拱形支架，高性能PC和兼容软件包组成。FC 900-A拱形三维立体植物叶绿素荧光扫描成像系统通过自动程序获取样品台上整株植物的3D图像，适用于对植物进行3D空间异质性研究以及荧光蛋白与荧光素等荧光标记在植株上表达的空间异质性。专用于三维荧光成像独特耐用的结构支架光源位置可自动调整可移动的相机使得可以从任意角度测量无需分离与移动样品软件可生成3D图像7. XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统XY-Plane多广谱大型植物叶绿素荧光扫描成像系统是一个高度创新的多广谱动力学荧光成像系统。该系统可以实现测量样品的暗适应，它由一个CCD相机，4个固定的LED发光板，高性能PC和兼容软件包组成。仪器可选配一个8位滤波轮实现多波段成像，成像面积为80× 40 cm。适用对象为整株植物，离体叶片，海藻稀释物等。XY-Plane系统用于自动进行大型植物生长室中植物样品的大量筛选，FC 900-XY/8040植物荧光成像系统安装在一个坚固耐用的柜式结构中，所有部件可被安全存放，人性化的设计使得放置样品非常便捷。柜式结构内是一个光源和成像CCD位置可自由移动的自动控制框架。测量面积80× 40 cm.适用于高通量筛选尤其适合大培养盘中样品的多谱段分析适用于生物和非生物胁迫研究和转基因植物筛查光源与相机的高度和位置可调整无需分离与破坏样品8. FC 2000显微叶绿素荧光成像系统1. Micro-FluorCam FC 2000-ST内含: CCD 相机 简单显微镜架 光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.2. Micro-FluorCam FC 2000-EN内含: CCD 相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW内含: 6位滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 PC高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW内含：6位完全软件控制的滤波轮 CCD相机 带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40) 机械强化光学组件 控制单元 高性能PC 激发光源 软件包 使用手册.Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 详见FKM多功能荧光动态显微监测系统 产地：欧洲 典型应用：1. CLAIRE M. M. GACHON etc. Single-cell chlorophyll fluorescence kinetic microscopy of Pylaiella littoralis (Phaeophyceae) infected by Chytridium polysiphoniae (Chytridiomycota). Eur. J. Phycol., (2006), 41(4): 395&ndash 403Fig. 2. UV激发荧光（壶菌属感染的褐藻过程）。A、C为亮视野图片；B、D为UV激发荧光情况；A、B为单细胞感染对照；C、D为严重感染对照。 Fig. 1.叶绿素荧光动力学（壶菌属感染的褐藻）.A为典型Kautsky诱导曲线（实线）与实测曲线比较；B为亮视野图片；C为 Fm值假彩图片；D为NPQ值假彩图片 请致电索取参考文献列表

ChloroSpec 三维叶绿素荧光分析仪ChloroSpec三维叶绿素荧光分析仪可对植物叶绿素荧光的全光谱和时间分辨率同步测量，解析分离不同的光合作用成分和过程，理解不同的淬灭机制，并描述光反应过程中对各种胁迫的早期反应；仪器配置强大的数据分析软件增强三维测量能力，对各种生物和环境胁迫反应进行早期、快速、精准的洞察；广泛用于光合作用和植物生理学研究以及从事应用植物研究和育种的实验室和机构。已成为植物生理学研究、温室和农田监测以及整个生态系统监测的多功能工具。主要特点全光谱和时间分辨NPQ测量；快速、精准观察植物健康状况；程序控制的多个激发波长、激发条件、强度、脉冲，标准配置为绿光、红光和近红外光源；快速荧光诱导波长分辨率；可以同时测量叶绿素荧光信号和荧光生物传感器的信号；专用样品架，满足叶片和液体悬浮液测量的不同需求；专业的数据分析软件，可以生成三维荧光信号图谱。主要参数电源：90-264 VAC；50-60HZ；功耗：228 VA；工作范围：15-30 C0；尺寸：37 x 27.5 x 60cm（长x宽x高）；重量：23 kg；控制单元：Xilinx XC7Z020-1CLG400C采集接口：4x 16位，5 MHz采样率，用于快速荧光通道和参比通道；3x 16位，1µ s时间分辨率可切换输出，用于LED驱动器；数据传输：通过与主机的以太网连接（点对点，无网络）将数据传输到主机；光学探测器：两种可选的光学光谱仪、CMOS探测器；10µ s 最小响应时间；光谱仪1:测量范围：500至900 nm；2048像素（光学分辨率2.5 nm）；最大输出速率2 kHz，用于完全分辨叶绿素荧光检测；光谱仪2：测量范围：300-900 nm；或350-900 nm，280像素，（光学分辨率约15 nm）；最大输出速率5 kHz；可用于蓝绿色荧光检测；快速荧光和参比通道：4x；分辨率：200nns/point，快速PIN光电二极管探测器；680nm、700nm和730nm波长处的快速荧光检测（标准）（其他波长可根据要求选择）；光源：标准3个，高强度LED，软件控制；LED可选择活化光（CW)、多重闪光(MTF)、单闪光(STF)，标准LED波长：红色（峰值630 nm）、绿色（峰值530 nm）和NIR（峰值730 nm）。其他波长可提供400 nm至650 nm范围内的峰值波长、白光或其他近红外波长；工作范围：红色和绿色LED（也可以选择白色LED）可以在三种模式下工作：i）STF脉冲高达80000µ Einstein/m2/s；15-300µ s脉冲长度；最大占空比1:10；ii）MTF脉冲，高达40000µ Einstein/m2/s；最大脉冲持续时间2s；iii）活化（CW）灯，高达20000µ Einstein/m2/s；近红外发光二极管以及其他波长（400-650 nm）的工作条件与上述相同，但峰值强度约为一半；主机： Windows 10操作系统；推荐CPU：Intel core i7；RAM 8 GB或更高；软件：FPGA中的嵌入式控制软件（链接到FPGA序列号）；标准样品架：样品架可用于分离叶片（样品夹在带垫片的玻璃板之间）、附加叶片（两个样品架分别用于小叶片或大叶片）。大型附加叶片的样品架允许在叶片上方（近轴侧）和下方（远轴侧）分别控制气体供应，小片附加叶片的样品架允许在叶片下方的空间（远轴侧）控制气体供应；提供的样品架：每个单元标准配备2个样品架：1个样品架用于分离叶片，1个样品架用于活体叶片。 产地与厂家：ChloroSpec

FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统植物的光合速率、蒸腾速率、气孔导度等光合作用参数可以全面衡量植物光合作用的强度和能力；而叶绿素荧光不仅能反映光能吸收、激发能传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程，而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成和CO2固定等过程有关。对两者的结合测量在植物光合生理研究中缺一不可。FluorCam便携式光合联用型叶绿素荧光成像系统可以与目前国际上主流的各种光合仪如LCpro、LiCor6400等组成联用系统，在测量光合的同时测定植物的荧光，也可以在实验室或野外独立工作。 功能特点： 可以被安装在LCpro–SD、LiCor6400等光合仪的叶室上进行荧光和光合的同步测量，也可独立工作 便携性强，实验室、野外均可使用 可自己编辑测量实验程序（protocol） 既可进行持续光化学光成像测量，又可进行PAM成像测量 可选配手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块 可选配平板型工控机 技术参数： 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率可达每秒50帧，512×512像素 可测荧光参数：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项参数 4块超亮LED光源板，均一照明面积2.5×2.5 cm 测量光：620nm红光，持续时间10μs–100μs可调 光化学光、饱和光闪：白光、蓝光、红光三选一，也可选配红光+蓝光，标配白光 远红光：IR735nm 给光制度：静态或者动态模式 自定义实验程序：多样化的时间顺序，专门的程序语言和脚本 FluorCam软件包括下列实验测量程序（protocols）：Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线等，可任意调整测量时间、光化学光持续时间、测量间隔、光强等参数 FluorCam软件具图像处理、选区ROI、测量分析等功能，可输出成像视频、图表、直方图等 供电方式：交流供电、电池供电（野外使用） 平板型工控机（可选）：用于野外长时间测量 手持式叶绿素快速荧光动力学测量模块（可选）：可测量OJIP曲线及相关的二十多项参数 CCD检测器带宽：400–1000 nm 像素尺寸：8.2 μm×8.4 μm 通讯方式：USB 2.0 重量：1.8 kg产地：捷克

1 引言叶绿素荧光是反应植物光合作用等生理功能的重要指标之一。通过分析植物叶绿素荧光参数，可以直接反应植物的光合能力、胁迫状况等重要的生理状态。因此，叶绿素荧光参数的测量一直为学者所重视。而调制-饱和-脉冲式荧光仪的出现，使得叶绿素荧光野外测量变得方便，但仍然存在着不能在线测量，每次只能测量一个样品、无法长期监测等问题针对上述问题，我们推出了在线式叶绿素荧光监测系统，可以长时期的连续监测植物的叶绿素荧光参数，并且可以配合无线传输模块，远程传送数据，单个仪器可同时测量多达32个样品，并且简单的编程设置，可以选择任意时间或不同时间重复测量相同的参数，对更深入的研究植物的光合作用机制及环境对植物的影响具有重要的意义。2 观测系统设计2.1 目标1) 坚固紧凑2) 低维护3) 多样品同时测量 4) 用户自定义设置5) 多种测量协议6) 远程数据传输7) 安装方便8) 适用野外长期监测 9) 标准数据输出 2.2 系统组成及技术指标2.2.1 系统由如下部分组成：1) 光适应与暗适应单元；2) 主机；3) 分线器；4) 供电单元；5) 支架等附件6) 远红光单元（可选）；7) 在线数据传输单元（标配WIFI）8) 气象单元（可选） 2.2.2 技术指标：光适应测量参数：l Y(II)： (相关参数采用Loriaux 2013 方法校正)PSII的光量子产额，或ΔF/F’或Yl ETR：相对电子传递速率 l PAR： 光合有效辐射l T：叶片温度l FMS：或FM’，光化光下使用饱和脉冲测的的最大荧光l F：光化光下的荧光信号（饱和脉冲照射之前）暗适应测量参数l FV/FM： PSII的最大光化学效率l FV/FO对胁迫更敏感的一个参数，但不测量植物效率l Fo最小荧光l FM最大荧光l FVl FO’可变荧光远红光（暗适应模块）照射后的最小荧光l FO’计算值淬灭参数：l Hendrickson参数Y(NPQ), Y(NO), Y(II), NPQ, FV/FMl Kramer参数qL, Y(NPQ), Y(NO), Y(II), FV/FMKramer new：NPQ(T), qE(T), & qI(T) （近红色光源）l Puddle参数NPQ, qN，qP,Y(II), FV/FMl 淬灭弛豫（可选）qE、qM、qT、qZ和qIl Ruban/ Murchie 参数pNPQ & qPd快速光曲线：l rETRMAX 最大电子传递速率 l α是通过将ETR与PAR关联而创建的低PAR值处的初始斜率。 它提供了量子效率的量度l Ik光化光强l Im 最佳光化光强硬件参数：光源：蓝色饱和脉冲LED：FM’校正时7000 μmols/m2/s具有方形顶部脉冲的10000 μmols/m2/s可选红色饱和脉冲LED：FM’校正时7000 μmols/m2/s具有方形顶部脉冲的10000 μmols/m2/s调制光源：Blue 455nm – 半波宽18nm的蓝色（455nm）光源可选的半波宽18nm的640nm红色光源光化光源 蓝色，可达5000 μmols红色可选，可达5000 μmols远红光源：用于Fo’测量或者暗适应模式中的预照射。检测方法： 脉冲调制式检测器&滤波器： 具有700 ~ 750带通滤波器的PIN光电二极管 采样速率：1~10000点每秒，根据不同测量自动选择测量时间：使用太阳能或交流电对电池进行供电 存储空间：2GB算法：25ms内8点平均值计算FM, FM' , FO, & FS，降低噪音值输出: CSV文件，可以通过wifi，手机、SD卡、无线点对点，以太网，卫星电话或者U盘传输 供电：可以根据要求提供各种外部12伏电池。可以使用太阳能电源和主电源。操作温度： -10℃~+50℃3 数据处理数据通过主控制器获取，可以通过多种方式下载，所有系统标配Wi-Fi模块，方便客户使用。系统界面为彩色触摸屏，可用于数据采集的编程，也可以使用PC和手机进行远程控制，获得的数据格式同Excel兼容，也可以导入各种数据处理软件进行分析，数采内部自带各种算法，用于计算各种模型参数。 5 产地： 美国

GFS-3000&mdash &mdash 光合作用研究的高端设备德国WALZ公司是全球高端光合作用仪制造商之一，从1972年开始制造气体交换测量系统，先后生产过CMS-400、CQP-130、HCM-1000等光合仪，并在国际上得到广泛应用。在总结30余年设计制造经验的基础上，结合最新的技术进展，WALZ公司于2004年隆重推出了一款功能更加强大、设计更加人性化的便携式光合-荧光测量系统&mdash &mdash GFS-3000。GFS-3000解决了近10年来光合领域在实际测量过程中（特别是野外测量时）遇到的许多技术问题，设计非常人性化。您在使用中会感觉到，在操作的任何一个过程中，GFS-3000都是站在用户的角度切身为您考虑的。GFS-3000的一个特点是允许多种模式同步测量气体交换和叶绿素荧光，解决单一技术无法解释的机理性问题。GFS-3000既可以在人工光下同步测量气体交换和叶绿素荧光，又可以在完全不遮荫的自然光下同步测量气体交换和叶绿素荧光（独家技术！），甚至还可以同步测量气体交换和叶绿素荧光成像（独家技术）！！！1. 特点1.1 H2O、CO2、温度与光照的精确控制与测量1）高精度4通道绝对开路式非扩散红外气体分析器（CO2和H2O各2个通道）2）出色的温度控制范围：从＋50℃到低于环境温度10℃（同类产品中控温范围最大）3）出色的温度控制模式：控制叶室跟踪环境温度；设置恒定叶室温度（叶片温度可变）；设置恒定叶片温度（叶室温度可变）4）干、湿双重H2O控制系统（全球唯一），完全满足从西北干旱区到华南潮湿区的光合作用研究需要(0-75 000 ppm)5）整合式CO2控制系统6）CO2小钢瓶气密性极佳，一次未用完可完全密闭待后续使用（同类产品的CO2小钢瓶打开后1天内气体就会漏完），大大节省耗材费用7）出色的红蓝LED光源控制系统8）外置滤器，方便更换（用户不会再因为将仪器寄回厂家更换滤器而耽误实验了）9）外置流量仪（同类产品都放在主机内部），方便检查夹住叶片后叶室是否密封（如果叶室不密封，则所有测量的光合参数都是错误的！）1.2 出色的叶室设计1）多种叶室可选，样品面积即使低至0.5 cm2也可得到满意的结果2）更换叶室时只需更换配件，大大节省了野外更换叶室所需时间（同类产品多为整体更换，花费大量时间）3）支持用户自定义叶室（最大可达1 L）4）3个PAR探头，分别跟踪记录环境PAR、叶室内叶片正面PAR和叶片背面PAR（叶室内叶片背面PAR探头是第一次出现，大大降低了只根据叶片正面PAR计算光合产量引起的误差）5）叶室双路通风系统，保证叶室上、下部气体迅速混匀1.3 三种模式同步测量气体交换和叶绿素荧光1）可与荧光附件连用，可与MINI-PAM、IMAGING-PAM连用2）在人工光（仪器提供的可控光）下同步测量气体交换和叶绿素荧光3）在自然光下（完全不遮荫）同步测量气体交换和叶绿素荧光(独家技术)4）同步测量气体交换和全叶片荧光成像（独家技术）1.4 方便的操作与数据处理1）大屏幕触摸式显示器，带背景光，可在所有环境下清楚显示2）简单易学的编程功能，可在电脑上模拟操作3）USB 2.0电脑接口，可与所有笔记本电脑连接（抛弃了RS 232接口，因为市面上95％以上的笔记本电脑不带RS 232接口）2. 测量参数2.1 气体交换参数：参比室和样品室的CO2绝对值（CO2abs，CO2sam），参比室和样品室的H2O绝对值（H2Oabs，H2Osam），流速（gas flow），环境气压（Pamb），叶室温度（Tcuv），叶片温度（Tleaf），环境温度（Tamb），环境PAR（PARamb），叶室内叶片正面PAR（PARtop），叶室内叶片背面PAR（PARbot），叶室相对湿度（rh），蒸腾速率（E），水气压饱和亏（VPD），叶片气孔导度（GH2O），净光合速率（A），胞间CO2浓度（Ci），环境CO2浓度（Ca）等。2.2 叶绿素荧光参数：与选择的荧光附件或荧光仪的型号有关，见3.1-3.3节。3. 同步测量气体交换和荧光的三种模式3.1 模式一：与荧光附件3055-FL连用（类型：GFS-3000/FL），在人工光（仪器提供的可控光）下同步测量气体交换和叶绿素荧光。3.2 模式二：与荧光附件3050-F连用（类型：GFS-3000/F），或与超便携式调制荧光仪MINI-PAM连用（类型：GFS-3000/M），在自然光下（完全不遮荫）同步测量气体交换和叶绿素荧光。与调制荧光成像系统IMAGING-PAM（MINI-探头）连用（类型：GFS-3000/IM），同步测量气体交换和全叶片荧光成像IMAGING-PAM可单独使用，测量上述参数的全叶片荧光成像。还可选配IMAGING-PAM的GFP成像探头。4. 基本配置比较测量的荧光参数：Fo, Fm, Fm' , F, Fo' , Fv/Fm , &Delta F/Fm' =Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR等荧光附件3050-F MINI-PAM利用微光纤可与GFS-3000连用连接微光纤后，仍可与红蓝光源连用在人工光下同步测量气体交换与叶绿素荧光测量的荧光参数：3050-F：Fo, Fm, Fm' , F, Fv/Fm , &Delta F/Fm' =Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR等MINI-PAM：Fo, Fm, Fm' , F, Fv/Fm , &Delta F/Fm' , qP, qN, NPQ, rETR等MINI-PAM可单独使用，单独使用时还可测量PAR、叶温和快速光曲线（RLC）等。3.3 模式三：GFS-3000与IMAGING-PAM的MINI-探头连用荧光成像 测量的荧光参数：Fo, Fm, Fm' , F, Fv/Fm , &Delta F/Fm' =Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR, PAR Abs(叶片吸光系数)等的荧光成像。配置GFS-3000/P单纯的气体交换测量系统，不能测量荧光GFS-3000/FL可在人工光下同步测量气体交换和荧光GFS-3000/F可在自然光下同步测量气体交换和荧光GFS-3000/M可在自然光下同步测量气体交换和荧光，两台仪器可分开使用GFS-3000/IM同步测量气体交换和荧光成像，两台仪器可分开使用气体交换系统 主机3000-C（包括CO2注入系统）●●●●●锂电池3025-A●●●●●锂电池充电器LC-02●●●●●交流电适配器3020-N●●●●●叶室 标准叶室3010-S●●●●●叶室配件○○○○○柱状叶室○○○○○针叶/簇叶叶室○○○○○拟南芥植株叶室○○○○○红蓝光源 红蓝LED光源3040-L● ●●●调制荧光系统 荧光附件3055-FL ● 荧光附件3050-F ● 荧光仪MINI-PAM ● 荧光仪IMAGING-PAM ● ● 包含○ 可选WALZ 隆重推出光合仪O2传感器经过WALZ工程师的不懈努力，泽泉科技为广大用户带来了首创的GFS-3000附件&mdash &mdash O2传感器，通过装配在GFS-3000上，可以通过控制条件来监测氧气变化环境下植物的光合荧光同步变化情况。另外该传感器可单独使用。 光呼吸（Photorespiration）是所有进行光合作用的细胞（该处&ldquo 细胞&rdquo 包括原核生物和真核生物，但并非所有这些细胞都能运行完整的光呼吸）在光照和高氧低二氧化碳情况下发生的一个生化过程。它是光合作用一个损耗能量的副反应，过程中氧气被消耗，并且会生成二氧化碳。如果光呼吸发生在进行光合作用的生物中，那么光呼吸会抵消约30%的光合作用。因此降低光呼吸被认为是提高光合作用效能的途径之一。 气体交换技术测量光合速率由于自身技术原因无法排除光呼吸的干扰。为了更准确地反映光合速率，可以通过降低氧气浓度，抑制光呼吸来实现。为此，我们提供了氧气传感器，结合控制实验，来监测外界进入仪器气路的氧气情况，以减少光呼吸对光合的影响。单独使用该传感器时，具有更广泛的应用范围。部分文献1. Zarco-Tejada PJ, Berni JAJ, Suá rez L, Sepulcre-Cantó G, Morales F, Miller JR: Imaging chlorophyll fluorescence with an airborne narrow-band multispectral camera for vegetation stress detection Remote Sensing of Environment 2009, 113(6):15.2. Tian Z-Q, Zheng B-H, Liu M-Z, Zhang Z-Y: Phragmites australis and Typha orientalis in removal of pollutant in Taihu Lake, China Journal of Environmental Sciences 2009, 21(4):440-446.3. Su H, Li Y-G, Lan Z-J, Xu H, Liu W, Wang B-X, Biswis DK, Jiang G-M: Leaf-level plasticity of Salix gordejevii in fixed dunes compared with lowlands in Hunshandake Sandland, North China. Journal of Plant Research 2009:in press.4. Pascual I, Azcona I, Morales F, Aguirreolea J, Sá nchez-Dí az M: Growth, yield and physiology of Verticillium-inoculated pepper plants treated with ATAD and composted sewage sludge Plant and Soil 2009, 319(1-2):291-306.5. Dai Y-J, Shen Z-G, Liu Y, Wang L-L, Hannaway D, Lu H-F: Effects of shade treatments on the photosynthetic capacity, chlorophyll fluorescence, and chlorophyll content of Tetrastigma hemsleyanum Diels et Gilg Environmental and Experimental Botany 2009, 65(2-3):177-182.6. Stoll M, Schultz HR, Baecker G, Berkelmann-Loehnertz B: Early pathogen detection under different water status and the assessment of spray application in vineyards through the use of thermal imagery Precision Agriculture 2008, 9(6):407-417.7. Ranf S, Wü nnenberg P, Lee J, Becker D, Dunkel M, Hedrich R, Scheel D, Dietrich P: Loss of the vacuolar cation channel, AtTPC1, does not impair Ca2+ signals induced by abiotic and biotic stresses. The Plant Journal 2008, 53(2):287-299.8. Kocal N, Sonnewald U, Sonnewald S: Cell wall-bound invertase limits sucrose export and is involved in symptom development and inhibition of photosynthesis during compatible interaction between tomato and Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. 2008:in press.9. Horst RJ, Engelsdorf T, Sonnewald U, Voll LM: Infection of maize leaves with Ustilago maydis prevents establishment of C4 photosynthesis. Journal of Plant Physiology 2008, 165(1):19-28.10. Escher P, Peuke AD, Bannister P, Fink S, Hartung W, Jiang F, Rennenberg H: Transpiration, CO2 assimilation, WUE, and stomatal aperture in leaves of Viscum album (L.): Effect of abscisic acid (ABA) in the xylem sap of its host (Populus x euamericana) Plant Physiology and Biochemistry 2008, 46(1):64-70.11. Dai Y-J, Shao M-M, Hannaway D, Wang L-L, Liang J-P, Hua L, Lu H-F: Effect of Thrips tabaci on anatomical features, photosynthetic characteristics and chlorophyll fluorescence of Hypericum sampsonii leaves. Crop Science 2008, 28(4):327-332.12. BOKHORST S, BJERKE JW, BOWLES FW, MELILLO J, CALLAGHAN TV, PHOENIX GK: Impacts of extreme winter warming in the sub-Arctic: growing season responses of dwarf shrub heathland. Global Change Biology 2008, 14(11):2603-2612.13. Bjerke JW: Ice encapsulation protects rather than disturbs the freezing lichen. Plant Biology 2008, 11(2):227-235.14. Biswas DK, Xu H, Li YG, Sun JZ, Wang XZ, Han XG, Jiang GM: Genotypic differences in leaf biochemical, physiological and growth responses to ozone in 20 winter wheat cultivars released over the past 60 years. Global Change Biology 2008, 14(1):46-59.15. 徐飞, 郭卫华, 王玉芳, 王炜, 杜宁, 王仁卿: 济南市校园６个绿化树种光合荧光特征比较初探. 山东大学学报 2007, 42(5):1-9.16. 徐飞, 郭卫华, 王炜, 徐伟红, 王玉芳, 王仁卿: 黄河三角洲柽柳与芦苇光合特性比较. 山东林业科技 2007(6):29-33.17. Xu H, Biswas DK, Li W-D, Chen S-B, Zhang L, Jiang G-M, Li Y-G: Photosynthesis and yield responses of ozone-polluted winter wheat to drought Photosynthetica 2007, 45(4):582-588.18. Xu F, Guo W-H, Wang Y-F, Wang W, Du N, Wang R-Q: Photosynthetic fluorescence characteristics of six greening tree species on university campuses in the city of Jinan. Acta Chimica Sinica 2007, 42(5):86-94.19. Behnke K, Ehlting B, Teuber M, Bauerfeind M, Louis S, Hansch R, Polle A, Bohlmann J, Schnitzler J-P: Transgenic, non-isoprene emitting poplars don' t like it hot. Plant Journal 2007:in press.20. Barnard RL, Salmon Y, Kodama N, Sorgel K, Holst J, Rennenberg H, Gessler A, Buchmann N: Evaporative enrichment and time lags between ?18O of leaf water and organic pools in a pine stand. Plant Cell and Environment 2007, 30:539-550.

产品介绍 叶绿素a荧光作为光合作用研究的有效指标，广泛应用于植物生理学、植物生态学、农学、林学、园艺学、水生生物学等领域，与光合放氧、气体交换并称为光合作用测量的三大技术。 叶绿素a荧光是研究各种逆境胁迫（干旱、高温、低温、营养状态、污染、病害等）对植物影响，以及对各种水生植物、大型海藻、珊瑚等进行生理生态测量的强大工具。叶绿素a荧光不仅能反映光能吸收、传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程，而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成CO2固定等过程有关。几乎所有光合作用过程的变化均可通过叶绿素a荧光反映出来，而荧光测定技术对生物可进行无损检测。因此通过研究叶绿素a荧光来间接研究光合作用的变化成为一种简便、快捷、可靠的方法。叶绿素a荧光的测量方法和参数分析方法已成为光合作用研究的一个重要领域。 Aquation手持式叶绿素荧光仪 Aquation手持叶绿素荧光仪以及便携式数据采集器用于田间测量植物胁迫(如，光化学有效量子产率ΦII），是一款特别适合野外现场测量的调制叶绿素荧光仪。该较便携手持式设计可快速实现对多个样品单手测量。可立即查看测量结果，也可下载导入到PC机中进行分析。特别适合在野外对样品进行快速、重复测量。Aquation手持式叶绿素荧光仪以及便携数据采集器可帮助实现对多个叶片的原位重复胁迫测量。一个操作员可单手轻松实现对多株植物的测量。该手持叶绿素荧光仪还可以测量环境辐射（如PAR）以及每次ΦIIΦI读数时的叶温度。由于配备易于使用的操作软件AQUATION DIRECT，可通过计算机对荧光传感器进行直接操作。在控制环境下，可在实验台面上进行多个植株胁迫检测。技术参数 测量光：LED，470 nm，小于1 μmol.m2.s-1 光化光：白光LED，较大光强3300 μmol.m2.s-1 饱和脉冲：白光LED，较大光强7800 μmol.m2.s-1 远红光：LED，735 nm，较大光强40 μmol.m2.s-1 工作温度：0°C～45°C 存储温度：-5°C～60°C 内存：2 GB 电池：可充电锂电池测定参数 Fo , Fm , Fv/Fm , F , Fm’, ΦII (△F/Fm’) , Fo’, qP , qL , qN, NPQ , Y(NPQ) , Y(NO) , rETR , PAR , T等。 应用领域 植物光合作用研究；植物生理学、生态学、农学、林学、园艺学、遗传育种、突变株和基因型筛选等；各种非生物逆境（冷、热、旱、涝、UV、营养缺失等）和生物逆境（病虫、病菌等）对植物的影响。

产品介绍 叶绿素a荧光作为光合作用研究的有效指标，广泛应用于植物生理学、植物生态学、农学、林学、园艺学、水生生物学等领域，与光合放氧、气体交换并称为光合作用测量的三大技术。 叶绿素a荧光是研究各种逆境胁迫（干旱、高温、低温、营养状态、污染、病害等）对植物影响，以及对各种水生植物、大型海藻、珊瑚等进行生理生态测量的强大工具。叶绿素a荧光不仅能反映光能吸收、传递和光化学反应等光合作用的原初反应过程，而且与电子传递、质子梯度的建立及ATP合成CO2固定等过程有关。几乎所有光合作用过程的变化均可通过叶绿素a荧光反映出来，而荧光测定技术对生物可进行无损检测。因此通过研究叶绿素a荧光来间接研究光合作用的变化成为一种简便、快捷、可靠的方法。叶绿素a荧光的测量方法和参数分析方法已成为光合作用研究的一个重要领域。 Aquation手持式叶绿素荧光仪 Aquation手持叶绿素荧光仪以及便携式数据采集器用于田间测量植物胁迫(如，光化学有效量子产率ΦII），是一款特别适合野外现场测量的调制叶绿素荧光仪。该较便携手持式设计可快速实现对多个样品单手测量。可立即查看测量结果，也可下载导入到PC机中进行分析。特别适合在野外对样品进行快速、重复测量。Aquation手持式叶绿素荧光仪以及便携数据采集器可帮助实现对多个叶片的原位重复胁迫测量。一个操作员可单手轻松实现对多株植物的测量。该手持叶绿素荧光仪还可以测量环境辐射（如PAR）以及每次ΦIIΦI读数时的叶温度。由于配备易于使用的操作软件AQUATION DIRECT，可通过计算机对荧光传感器进行直接操作。在控制环境下，可在实验台面上进行多个植株胁迫检测。技术参数 测量光：LED，470 nm，小于1 μmol.m2.s-1 光化光：白光LED，较大光强3300 μmol.m2.s-1 饱和脉冲：白光LED，较大光强7800 μmol.m2.s-1 远红光：LED，735 nm，较大光强40 μmol.m2.s-1 工作温度：0°C～45°C 存储温度：-5°C～60°C 内存：2 GB 电池：可充电锂电池测定参数 Fo , Fm , Fv/Fm , F , Fm’, ΦII (△F/Fm’) , Fo’, qP , qL , qN, NPQ , Y(NPQ) , Y(NO) , rETR , PAR , T等。 应用领域 植物光合作用研究；植物生理学、生态学、农学、林学、园艺学、遗传育种、突变株和基因型筛选等；各种非生物逆境（冷、热、旱、涝、UV、营养缺失等）和生物逆境（病虫、病菌等）对植物的影响。

专业□ 相机具有极高的灵敏度和时间分辨率， 用于叶绿素荧光 瞬时表达检测□ 系统采用大功率脉冲式LED光源，保证样品在强激发光下受光均匀□ 系统配备近红外和红外光源，可测量叶片吸光系数(Abs)，计算光合作用光系统 II(PSII)电子传递速率集成□ 系统高度集成化，满足常足植物全株、叶 片、果实、藻类等多种样本的荧光成像□ 高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像，系统功能涵盖从单细胞到生态学，应用广泛智能□ 一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数□ 全自动智能仪器控制，轻松上手，快速成像□ 可预设多种实验方案，模块化设计，流程式操作灵活□ 光源与样品的固定测量距离为170mm，相机和光源可沿Z轴自动升降，测量不同高度、大小的植物□ 测量的植株最高可达400mm智能软件□ 可测量Fo, Fo’, Fm, Fm’, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, qN, qP，ETR等多个叶绿素荧光参数□ 专用数据分析软件，智能中英文双语模式自由切换□ 用户可自定义设置程序，数据结果自动存储并分析□ 自带GLP协议，可对实验数据记录、追踪、溯源, 安全可靠，为您的数 据保驾护航□ 多用户登录功能，可对不同的实验室人员进行权限管理，确保实验数据的安全

叶绿素(蓝藻)荧光仪 手持式荧光示踪仪产品介绍： 叶绿素(蓝藻)荧光仪 手持式荧光示踪仪是一款低成本手持式仪器，适合在现场或实验室使用。其简单的触摸屏设计允许快速、直接测量藻蓝蛋白、藻红蛋白或叶绿素，以及在一次读数中两者之间的比率（工厂设置）。单位可以 RFU 或标准浓度单位 ug/L 读出。它可用于跟踪水体中浮游植物群落的动态变化，并协助预测潜在的有害藻类或蓝藻水华，目前正被蓝藻监测合作组织用作湖泊监测的低成本工具。协会、饮用水公用事业公司、地方、州和联邦实体监测实时水质状况。现场使用时使用直流 AA 电池，在台式使用时使用交流电源。该荧光计配备了保护性手提箱、启动比色皿和移液器以及用于内部数据存储和检索的软件。产品特点：快速，方便，灵敏使用500µ L微型离心管，500µ L玻璃迷你管液晶触摸显示屏，软件人性化，带有“手触测试"功能USB接口，可将数据传输至电脑可配备便携箱，方便野外测量规格参数：叶绿素a(活体)：精度：0.25 µ g/L量程：0~2500 µ g/L叶绿素a(萃取，非酸化)：精度：0.25 µ g/L量程：0~2500 µ g/L海水蓝绿藻(藻红蛋白)：精度：150 cells/mL量程：0~150,000 cells/mL淡水蓝绿藻(藻蓝蛋白)：精度：150 cells/mL量程：0~150,000 cells/mL技术参数：产品类型：单管荧光计读取类型：离散样品体积：使用标准 1 厘米方形比色皿，1 至 3.5 毫升。（现场套件中包含 64 个带盖塑料比色皿。）快速（5 秒读数）和高灵敏度（PC/PE：1.0-ppb，CHL：0.2-ppb）。测量范围宽（PC/PE：0-20,000-ppb，CHL：0-1,000-ppb，萃取）。一步测量并显示 PC、CHL 或 PE（出厂设置）中的两项以及比率。动态范围： 5 个数量级读出：RFU 或直接浓度校准：两点校准（空白和标准）用户界面：触摸屏液晶显示屏电源：4节AA电池或5V DC电源适配器计算机接口：USB 接口可检索高达 80x3 的数据点尺寸（长x宽x高）：185mm x 90mm x 35mm应用领域：饮用水监测天然水资源监测水库和湖泊管理环境研究电厂监控

PSP32在线叶绿素荧光观测系统1 引言叶绿素荧光是反应植物光合作用等生理功能的重要指标之一。通过分析植物叶绿素荧光参数，可以直接反应植物的光合能力、胁迫状况等重要的生理状态。因此，叶绿素荧光参数的测量一直为学者所重视。而调制-饱和-脉冲式荧光仪的出现，使得叶绿素荧光野外测量变得方便，但仍然存在着不能在线测量，每次只能测量一个样品、无法长期监测等问题针对上述问题，我们推出了在线式叶绿素荧光监测系统，可以长时期的连续监测植物的叶绿素荧光参数，并且可以配合无线传输模块，远程传送数据，单个仪器可同时测量多达32个样品，并且简单的编程设置，可以选择任意时间或不同时间重复测量相同的参数，对更深入的研究植物的光合作用机制及环境对植物的影响具有重要的意义。2 观测系统2.1 特点1) 坚固紧凑2) 低维护3) 多样品同时测量 4) 用户自定义设置5) 多种测量协议6) 远程数据传输7) 安装方便8) 适用野外长期监测 9) 标准数据输出2.2 系统组成及技术指标2.2.1 系统由如下部分组成：1) 标准光适应探头或带暗适应单元的探头；2) 主机；3) 分线器(探头较多时配置)；4) 供电单元(交流或太阳能板供电)；5) 安装支架等附件6) 在线数据传输单元（标配WIFI）7) 远红光单元（可选）； 8）气象单元（可选）带暗适应模块的探头(闭合的状态)带暗适应模块的探头(打开的状态)主机太阳能供电系统可选部件：叶绿素含量传感器，用于监测植物营养胁迫NDVI、NDRE、PPR & CCCI传感器，用于监测植物干旱&氮胁迫地面安装方式带活动臂地面安装方式带活动臂4探头接线盒 8探头接线盒 智能手机modem（可选） 利用测量结果进行外部控制连接的部件 用于外部气象数据输入土壤水分探头和土壤温度探头接入盒 允许PSP32控制液体养分和水的分配2.2.2 技术指标：光适应测量参数：l Y(II)： (相关参数采用Loriaux 2013 方法校正)PSII的光量子产额，或ΔF/Fm’l ETR：相对电子传递速率 l PAR： 光合有效辐射l T：叶片温度l FMS：或FM’，光适应样品使用饱和脉冲测得的最大荧光l F：或Fs，光化光下的荧光信号（饱和脉冲照射之前）暗适应测量参数l FV/FM： PSII的最大光化学效率l FV/FO对胁迫更敏感的一个参数，但不测量植物效率l Fo最小荧光l FM最大荧光l FVl FO’可变荧光远红光（暗适应模块）照射后的最小荧光淬灭参数：l Hendrickson参数Y(NPQ), Y(NO), Y(II), NPQ, FV/FMl Kramer参数qL, Y(NPQ), Y(NO), Y(II), FV/FMKramer new：NPQ(T), qE(T), & qI(T) （近红色光源）l Puddle参数NPQ, qN，qP,Y(II), FV/FM以下参数需要配置暗适应模块l 淬灭弛豫参数（可选）qE、qM、qT、qZ和qIl Ruban/ Murchie 参数pNPQ & qPd快速光曲线：l rETRMAX 最大电子传递速率(Eiler and Peeters) l α是通过将ETR与PAR关联而创建的低PAR值处的初始斜率。 它提供了量子效率的量度l Ik最低饱和光强l Im 最佳光化光强硬件参数：光源：蓝光饱和脉冲强度： FM’校正，7000 μmols/m2/s 方形顶部脉冲，10000 μmols/m2/s可选红光饱和脉冲强度： FM’校正，7000 μmols/m2/s 方形顶部脉冲，10000 μmols/m2/s调制光源： Blue 455nm – 半波宽21nm的蓝色光源 Red 640nm—半波宽17nm的红色光源光化光源 蓝光，可达5000 μmols m-2 s-1红光，可达5000 μmols m-2 s-1远红光源： 结合暗适应模块用于Fo’测量或者暗适应模式中Fv/Fm测量前的预照射。检测方法： 脉冲调制式检测器&滤波器： 具有700 ~ 750带通滤波器的PIN光电二极管 采样速率： 1~10000点每秒，根据不同测量自动选择存储空间： 2GB算法： 25ms内8点平均值计算FM, FM', FO, & FS，降低噪音值输出: CSV文件，可以通过wifi，以太网、U盘传输；可选手机、无线点对点、卫星电话传输方式供电：可以根据要求提供外部12伏电池。可以使用太阳能电源和主电源。操作温度： -10℃~+50℃3 数据处理数据通过主控制器获取，可以通过多种方式下载，所有系统标配Wi-Fi模块，方便客户使用。系统界面为彩色触摸屏，可用于数据采集的编程，也可以使用PC和手机进行远程控制，获得的数据格式同Excel兼容，也可以导入各种数据处理软件进行分析，数采内部自带各种算法，用于计算各种模型参数。智能手机和电脑上软件控制和数据截图 数据采集器上界面5 产地： 美国

水体叶绿素荧光测定仪、水体叶绿素荧光仪*1可以现场测量水体叶绿素 、蓝藻 、 浊度 、溶解氧、水中油 、 罗丹明、荧光染料、可更换成其他参数等水质多参数指标。2、能够现场长期监测，系统标准配置1个传感器接口，可以任意选择叶绿素 、蓝藻 、 浊度 、水中油 、 罗丹明、荧光染料等传感器，3、系统可通过显示器现场读取数据，*4、可选在线监测数据储存模块，实现定点在线监测*5、可选远程传输，实现实时在线监测.*6、系统提供 RS-485输出，方便进行系统集成。7、显示器1）尺寸（W*H*D）：90*180*39mm2）显示屏：带背光，80个字符LCD3）内存：1900个数据4）*定位：GPS内置天线，12通道，自带GPS，可进行测量点定位，并可将测量坐标导入google地图进行标记5）大气压：150mb-1150mb,精度:1mb6）PC接口：USB7）供电：5*AA碱性或可充电Ni-MH电池8）操作温度： -20~70摄氏度8、技术参数：1）光学溶解氧范围：0-500%/0-50.00mg/L分辨率：0.1%/0.01mg/L准确率：0 – 200%:± 1%读数, 200%- 500%: ± 10%读数2）叶绿素 A：范围：0 – 500 μg/L (ppb)分辨率：0.1 μg/L准确率：± 2%3）浅水蓝绿藻范围：0 – 300,000 cells/mL分辨率：0.1 μg/L准确率：± 2%4）海水蓝绿藻范围：0 – 200,000 cells/mL分辨率：0.1 μg/L准确率：± 2%5）浊度范围：0 – 3000 NTU分辨率：两个自动确定的量程：0.0 99.9 NTU, 100 – 3000 NTU准确率：± 2%6）罗丹明范围：0 – 500 μg/L (ppb)分辨率：0.1 μg/L准确率：± 5%7）荧光染料范围：0 – 500 μg/L (ppb)分辨率：0.1 μg/L准确率：± 5%8）成品油范围：0 – 10,000 μg/L (ppb)分辨率：0.1 μg/L准确率：± 2%配置清单1.便携式叶绿素测定仪主机（含AM-200型GPS定位显示器）AP-LITE 1台2.叶绿素传感器 LITE-CPHYLL 1支3.标定液 1瓶4.电缆 3M 1根5.CD软件光盘、USB下载线、标定瓶、说明书、工具、电池等 1套

LI-6800是美国LI-COR公司研发的新一代便携式光合荧光测量系统，原位、准确、高速测量气体交换和叶绿素荧光过程，是植物光合生理研究的强大工具。LI-6800是目前全球先进的兼具光合气体交换、脉冲调制式叶绿素荧光、快速叶绿素荧光诱导动力学曲线、土壤呼吸的多功能测量仪器。技术亮点l IRGA分析仪紧邻样品室l 系统整体测量性能卓越，测量稳定性强l 45 秒完成一个气体交换参数测量l Rapid A-Ci Response（RACiR &trade ）测量方法，快速测量CO2 响应曲线l 250kHz 的荧光信号采集频率，轻松测量OJIP 曲线l 多相闪光技术Multiphase Flash TM 和16000μmol/m2/s 的饱和闪光强度确保准确测定光下最大荧光值Fm′l 气体交换和叶绿素荧光的同步测量l 智能计算叶面积l BP（Background Program）自定义测量过程，灵活设置测量环境，模拟各种过程l Auto Control功能，便于实现“波动光”、温度骤变等实验条件的测量超强的环境控制能力准确极速CO2变化控制在苏打管和CO2小钢瓶作用下，测量室CO2可设定0~＞2000 μmol/mol，可控精度低至1μmol/mol。LI-COR的Rapid A-Ci Response（RACiR &trade ）测量方法1，5分钟完成CO2响应曲线2测量。 自定义气体环境控制用户配气进气口，可以改变测量室气体环境，例如用低O2气体。 H2O控制使用加湿剂和干燥剂，可控制测量室H2O在0~90% RH 超高流速可调流速范围0 到2000cc/min，高流速不仅方便测量更大的样品，也是降低样品室相对湿度RH 的关键。一些需要控制低相对湿度RH、高饱和水气压亏缺VPD 的实验，必须依赖高流速。 光照控制3种光源可选，大面积光照均质性好。6800-01A荧光光源，总光强0-3000 μmol m-2s-1@ 25℃；饱和闪光输出范围：0-16000 μmol m-2s-1@ 25℃6800-02红蓝光源：总输出范围：0~2000 μmol m-2s-1@ 25℃6800-03红绿蓝白大光源：总光强：0-3000 μmol m-2s-1@ 25℃ 叶室增压控制增压范围：0~200 Pa样品室漏气会引发数据波动。LI-6800 样品室适当加压，样品室内部气压比外部略高（可达200Pa）。确保测量过程中，样品室内部的气体浓度免受外部空气影响。 控制边界层导度高速混合风扇(16000r/min)实现边界层导度控制。 温度控制控温模块能够在环境温度±10℃范围内准确控制叶片温度，分辨率＜0.1℃。还可根据实验需要跟踪控温，亦或程序化升温或降温。 分析器头部和叶室紧密相连，无时滞效应 高精度流速计，确保光合气体交换数据测量准确良好的使用体验点击了解更多：20余项自检，一键轻松完成多种多样的光源和叶室荧光叶室 6800-01A3×3cm红蓝光源 6800-02红绿蓝白4色大光源 6800-033×3cm透明叶室 6800-12A土壤碳水通量测量室 6800-09大叶叶室 6800-13小植物叶室 6800-17自制叶室适配器 6800-19苔藓叶室 6800-24昆虫呼吸室 6800-89可选套装LI-6800F光合-荧光全自动测量系统LI-6800P光合作用全自动测量系统LI-6800S光合作用全自动测量系统( 无光源)可选配件背带 三脚架 三脚架云台 单脚架气路取样配件 外源CO2 气路连接配件相关产品6800-18 水生测量室LI-600荧光-气孔测量仪产地与厂家:美国LI-COR公司

产品介绍 Aquation经典叶绿素荧光仪可作为台式使用，也可用于田间，防水设计传感器测量质包括水生植物和珊瑚等也非常方便，同时备选USB以及无线连接。此系列经典叶绿素荧光仪坚固耐用、操作简便、配置灵活多样，使之成为实验室、温室、田间、水下研究和教学实验的理想工具。本系列叶绿素荧光仪可实现全防水野外测量（乃至水下测量）甚至实现无线连接，将测量变的简单便捷。 Aquation经典叶绿素荧光仪使用PAM 测量技术来测量光合系统II的不同荧光，测量值为F,Fo,Fm′,Fm,Fv/Fm, ΦPSII以及其它计算值 (如ΦNO, ΦNPQ)。此类易于使用的PAM荧光仪用在陆生植物、海藻、珊瑚、大型海藻和小型海藻的生理研究，叶绿素浓度通过从获取的相对叶绿素指数进行估计。无线备选允许在无线范围内使计算机远离水；全防水荧光传感器可用于水下研究，可提供台式工作平台基座或将电缆从基座接入。所有命令均通过PC来实现。Aquation公司的经典叶绿素荧光仪使调制叶绿素荧光测量变得非常简单。它们采用饱和脉冲技术来测量较大光合效率和实际光合效率，并提供光化光和远红光。用户可以使用预置程序进行测量，也可编辑自己的程序进行测量。所有的程序测量过程都可以在软件中设置好进行自动重复。 技术参数 测量参数：F, Fo, Fo′, Fm, Fm′，rETR，PAR，T 计算参数：ΦII, Fv/Fm, NPQ，ΦNO, ΦNPQ, qP, qL，qN 光化光 (白 LED) ：4500 Φmol.m-2.s-1 饱和光 (白LED)：10500 Φmol.m-2.s-1 测量光 (470 nm LED) ：0.1W 远红光 (735 nm LED) ：40 Φmol.m-2.s-1 电压：110~240 VAC或 12 V DC 通讯：USB 或2.4 GHz 控制：Windows PC (或 Windows emulator) 温度范围：0~45°C (操作)；-5~ 60°C (储存) 尺寸 (传感器)：45mm (2.4”) 直径x 55mm (2.4”) 尺寸(接口盒)：长127 x 63 x 30 mm (5” x 2.5” x 1.2”) 重量：传感器和电缆 250g/8.8oz 外壳材质：Acetal 塑料和316不锈钢 电池：可充电锂电池 内存：2GB产品特点 使用PAM方法测量叶绿素荧光 配置采用远红光 自动调量程以及自动归零 田间防水设计 无线或USB连接电脑 传感器采用平基座或从基座延伸的电缆 连接到电脑或数据采集仪可实现重复测量 易用软件、界面简洁 预编程光曲线产品应用 植物光合作用 植物生理、生态研究 监控叶绿素含量 各种生物和非生物逆境胁迫 水生植物、藻类、珊瑚研究Aquation经典在线叶绿素荧光仪参考文献 1.Nayar, S. and Bott, K. (2015). Uptake and translocation of ammonium and nitrate by temperate seagrass Zostera nigricaulis in Port Phillip Bay. South Australian Research and Development Institute (Aquatic Sciences), Adelaide. SARDI Publication No. F2014/000665-1. SARDI Research Report Series No. 819. 51pp.Procaccini, G., Ruocco, M., Marín-Guirao, L., et al. 2017. Depth-specific fluctuations of gene expression and protein abundance modulate the photophysiology in the seagrass Posidonia oceanica. Scientific Reports 2.Cui, Y., Tian, Z., Zhang, X. et al. 2015. Effect of water deficit during vegetative growth periods on post-anthesis photosynthetic capacity and grain yield in winter wheat (Triticum aestivum L.). Acta Physiol Plant. 37:196.Dudley, B.D., Hughes, R.F. and Ostertag, R. 2014. Groundwater availability mediates the ecosystem effects of an invasion of Prosopis pallida. Ecological Applications 24(8): 1954–1971

1、 FluorCam叶绿素荧光成像技术功能特点由于叶绿素荧光技术本身在科学研究中有一系列的局限性。因此从上世纪八十年代末开始，随着Charge-Coupled Device(CCD)成像技术、LED光源板技术、图像分析技术的成熟，不断有科学家和工程师合作探索将这三项技术与PAM脉冲调制技术结合，进而将叶绿素荧光技术升级为叶绿素荧光成像技术（Daley et al. 1989 Raschke et al. 1990 Mott et al. 1993 Genty and Meyer 1994 Bro et al. 1995 Siebke and Weis 1995 Meyer and Genty 1998 Balachandran et al. 1994 Oxborough and Baker 1997）。20世纪90年代末，PSI首席科学家Nedbal和PSI总裁Trtilek等合作，成功研制了与PAM脉冲调制技术结合的FluorCam叶绿素荧光成像技术（Nedbal et al., 2000），并推出第一台商业化叶绿素荧光成像设备FluorCam。这一发明正式开启了叶绿素荧光研究的二维时代。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界，并得到了国际科学界的一致认可。FluorCam叶绿素荧光成像系统已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像仪器。与之前的叶绿素荧光技术相比，FluorCam叶绿素荧光成像技术的主要优势有：• 能够全面反映整株植物、叶片、藻类群体等的不同位置荧光强度变化与分布。• 可测量叶片、果实、麦穗、大型藻/微藻、整株植物乃至植物冠层等各种样品。• 可同时测定几十、甚至上百株个样品。• 能够在显微水平研究叶绿体或藻类细胞。• 尤其适用于环境胁迫早期植物不同部位光合活性的变化规律、突变体不同部位的光合功能差异等研究。同时，FluorCam叶绿素荧光成像技术与同类技术相比具备以下国际领先优势：• 由真正的生物学家、数学家、电子工程师和光学工程师组成的研发团队所开发• FluorCam是脉冲调试式叶绿素荧光成像技术的最早实用化成果• 国际最权威的叶绿素荧光成像技术，仅2019-2021.3可查阅全文的SCI文献就有300篇以上• 可实现高通量植物表型分析、抗性筛选、种质资源检测等科研应用• 激发荧光的LED光源板和获取荧光数据的成像传感器不但技术国际领先，而且为PSI自行开发，具备完全自主知识产权• 测量及成像参数最多，具备叶绿素荧光显微成像、OJIP快速荧光动力学曲线、QA再氧化动力学、荧光蛋白活体成像、多光谱荧光成像、无人值守自动监测、图像阈值分割等世界独有的成像测量功能• 以FluorCam叶绿素荧光成像技术为核心的PlantScreen植物表型成像分析系统为目前国际最先进、安装最多的植物表型组学研究系统• 软件由PSI开发，为客户提供终身免费升级• PSI表型科研中心可进行科研合作并提供实验指导• 系统型号全面，适用于各种实验需求• 几乎无维护费用技术功能特点：1) 仪器型号和配置灵活多样，测量样品涵盖了从叶片、藻类、果实、花朵、整株植物、植物群体/冠层乃至单个微藻/植物细胞、叶绿体等几乎所有不同类型的宏观和微观植物样品，甚至还包括含有叶绿素的细菌和海洋生物；同时满足了从实验室光合机理精细研究到野外大田实地研究，从自然环境到精确可控环境等不同实验条件和尺度的要求。2) 高灵敏度CCD，时间分辨率可达50帧／秒，分辨率720×560像素；可选配高分辨率CCD，最高分辨率1360×1024像素，在最高图像分辨率下时间分辨率可达20帧／秒，用于稳态荧光如GFP荧光测量等；超高灵敏度成像传感器，最高分辨率1280×1024像素，最高时间分辨率高达16000帧／秒，真正实现了OJIP快速荧光诱导动力学曲线的成像测量3) 具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收率、NDVI成像测量（选配）f) GFP、YFP、EBFP、CFP、DsRed等荧光蛋白与DAPI等荧光染料的荧光定量测量（选配）g) 多光谱荧光测量（选配）：F440、F520、F690、F740h) QA再氧化动力学曲线（选配）i) OJIP快速荧光诱导动力学曲线（选配）：Fo，Fj，Fi，P或Fm，Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等参数4) 自动重复实验功能，可无人值守自动循环完成选定的实验程序，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机5) 标配4个LED光源板，采用大型预封装LED光源，红/蓝或红/白双色光化光源，可选配其他不同颜色（波长）、不同光强LED光源6) 功能强大的FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单：7) 数据分析具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算模式”两种功能模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差8) 输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等2、 FluorCam叶绿素荧光成像系统型号1. FluorCam便携式叶绿素荧光成像仪• 可测量叶绿素荧光成像，可选配GFP荧光蛋白成像功能• 成像面积：便携式FluorCam 31.5mm×41.5 mm、便携式GFPCam 35mm×46 mm• 配备专用支架和电池包，便携性强，实验室、野外均可使用• 可编辑测量实验程序（protocol）• 具备自动重复测量功能• 配备专用暗适应叶夹，便于在野外对样品进行暗适应无损测量2. FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统• FluorCam系列中功能最全面，使用最便捷的型号• 系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析 • 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变；可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量；也可选配超高灵敏度成像传感器，实现真正的OJIP快速荧光诱导动力学曲线成像测量• 成像面积达13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析• 饱和光光强最高达6000 µmol(photons)/m².s，进行QA再氧化分析使用的单周转饱和光闪STF可达120000µmol(photons)/m².s• 世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备• 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等• 可选配GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 可进行自动重复成像测量分析• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合3. FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统• 模块化设计，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等• 4块大型高强度封装LED光源板，具备双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合• 可自由选配多种备用不同波长LEDs光源板，用户可简便自行更换，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多光谱荧光成像测量等• 可进行GFP、YFP、BFP、RFP、CFP、DAPI等荧光蛋白与荧光染料成像• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变，可选配高分辨率CCD用于稳态荧光如GFP荧光测量4. FluorCam多光谱荧光成像系统FluorCam多光谱成像系统是将稳态荧光成像技术与脉冲调制式叶绿素荧光成像技术完美融于一体，能够在一台仪器上实现GFP、BFP、CFP、YFP、RFP等荧光蛋白成像、DAPI等荧光染料成像、荧光素酶、脉冲调制式叶绿素荧光成像以及NDVI反射光谱成像分析功能，是真正功能全面的植物荧光活体成像系统。同时，除了植物样品外，植物荧光活体成像系统也可以进行藻类、珊瑚共生体、菌落乃至动物的荧光成像分析。• 1360×1024像素高分辨率CCD，可对样品荧光标记的分布进行精准成像分析• 标准版成像面积13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析• 专用荧光激发光源组与滤波器组合，精确测量不同荧光蛋白标记• 软件配置多种用户自定义调色板，可生成真实色彩成像图或对比增强彩色成像图• 可选配新型FluorCam-Pro植物多光谱荧光成像系统，一体化完成各种荧光成像测量5. FKM多光谱荧光动态显微成像系统• 目前唯一用于植物/藻类显微叶绿素荧光成像研究的成熟商用仪器• 内置现今叶绿素荧光研究的全部程序，如Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIP快速荧光响应曲线、QA再氧化等，可获得70余项参数• 配备10倍、20倍、40倍、63倍和100倍专用生物荧光物镜，可以清晰观测到叶绿体及其发出的荧光• 激发光源组中包括红外光、红光、蓝光、绿光、白光、紫外光和远红光等，通过红蓝绿三色光还可以调出可见光谱中的任何一种色光，能够研究植物/藻类中任何一种色素分子或发色团。• 可进行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等荧光蛋白、荧光染料的成像分析• 高分辨率光谱仪能够深入解析各种荧光的光谱图• 控温系统可以保证实验样品在同等温度条件下进行测量，提高实验精度，也可以进行高温/低温胁迫研究6. FluorCam大型叶绿素荧光成像平台• 世界上单幅成像面积最大的脉冲调制式（PAM）叶绿素荧光成像系统，成像光源板面积70×70cm，成像面积达35×35cm，可对整株植物及多株植物同时进行非损伤性叶绿素荧光成像分析• LED激发光源、CCD叶绿素荧光成像镜头及滤波轮等集成于一个高度可自由移动的成像平台上，成像平台高度可调，以适应于不同高度的植物成像分析• 可选配PAR吸收／NDVI成像分析模块，对植物PAR吸收及光谱反射指数NDVI进行成像分析• 可选配RGB成像分析模块,用于植物形态测量分析等• 可选配GFP绿色荧光蛋白成像分析功能，用于植物转基因研究三、FluorCam叶绿素荧光成像系统应用案例1. 拟南芥叶绿体R-loop调控机制2017年清华大学生命学院孙前文课题组通过分析获得一个新的定位于叶绿体中的核糖核酸酶H蛋白（AtRNH1C），发现该蛋白可以调节叶绿体中R-loop水平的变化，从而维持基因组的稳定性和发育。他们使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统，发现AtRNH1C对叶绿体的发育有重要作用。在使用喹诺酮类药物环丙沙星（CIP）处理后，通过FluorCam叶绿素荧光成像图可以直观发现野生型的生长被抑制，同时叶片变色。而atrnh1c突变体则加强了CIP的毒害效应。这更加证实了AtRNH1C的功能。本实验的荧光成像检测是在易科泰Ecolab实验室完成的。2020年，孙前文课题组又使用FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统结合分子实验结果，证实了R-loop解旋酶过表达能够拯救由于异常累积HO-TRC触发R-loop共同表达造成的缺陷，从而维持拟南芥叶绿体基因组完整性。参考文献：1. Yang Z, et al. 2017. RNase H1 Cooperates with DNA Gyrases to Restrict R-loops and Maintain Genome Integrity in Arabidopsis Chloroplasts. The Plant Cell, doi:10.1105/tpc.17.003052. Yang Z, et al. 2020. RHON1 Co-transcriptionally Resolves R-Loops for Arabidopsis Chloroplast Genome Maintenance. Cell Reports 30: 243–2562. 构建耐盐生菜品种表型鉴定体系目前，全球农业都受到土壤和灌溉水盐分升高的威胁。大约50%的灌溉农田都受到了盐分的影响。2013年的经济分析指出由于盐分诱发的土壤退化和作物产量损失在全球造成了273亿美元的损失。作为一种重要的蔬菜作物，生菜（Lactuca sativa L.）在世界范围内都进行了广泛的种植。生菜产量最高的国家为美国、欧盟和中国。而生菜对盐分胁迫非常敏感的。盐分胁迫会造成生菜生物量减少、诱发叶烧病和早衰等。美国农业部（USDA）的科学家尝试确定生菜盐胁迫的关键生理表型性状，用于筛选高耐盐的生菜品种，希望从这些数据中筛选出最灵敏的指标构建耐盐生菜品种表型鉴定体系。与传统作物表型测量相比，一方面光系统对各种生物和非生物胁迫因素都非常敏感，而叶绿素荧光成像分析可以无损地直接测量胁迫对光系统的损伤程度和机理，在胁迫初期乃至症状出现前即可检测到胁迫的发生；另一方面，叶绿素荧光成像分析技术与自动传送系统集合，能够实现对大量样品的高通量无损快速检测，非常适用于作物品种的筛选。他们使用的PlantScreen XYZ植物表型成像分析系统就能够将这两方面的优势完美地结合起来。其样带式FluorCam叶绿素荧光成像单元是目前唯一使用脉冲调制式叶绿素荧光成像技术实现大型整株植物测量的商用化仪器。自动传送系统可以自动调整成像单元的位置与高度，结合专用软件可以对几十株乃至上百株样品进行自动叶绿素荧光成像分析。实验中使用了球生菜、奶油生菜、直立生菜、叶生菜等不同的栽培品种和生菜的野生亲缘种L. serriola L，共240株样品。这些品种中既有耐盐品种，也有盐胁迫敏感品种。所有样品在同样盐胁迫处理下进行了叶绿素荧光成像分析。研究者重点分析了QY_max（Fv/Fm）最大光化学效率、Fv/Fm_L（Fv’/Fm’）光适应最大光化学效率、NPQ非光化学淬灭（最大荧光）、qN非光化学淬灭（可变荧光）、qP光化学淬灭、QY实际光化学效率（量子产额）、Rfd荧光衰减比率等荧光参数。值得一提的是，叶绿素荧光成像图经过校准后，还可以直接获得整株植物具备光合活性的叶面积。结合荧光参数还可以对叶面积进行不同胁迫程度的定量分级和图像分割。本研究中直接使用叶绿素荧光成像获得的光合活性叶面积取代了传统测量的叶面积。荧光数据与鲜重等传统表型数据进行了相关性分析和主成分分析，结果表明敏感栽培种的叶绿素荧光特征是低QY，qN，NPQ和Rfd，而耐受栽培种的特征是高QY_max，Fv/Fm_L和QY_D。与叶绿素荧光参数的高灵敏度相比，大多数样品的叶绿素指数和CO2同化速率在盐胁迫处理前后都没有表现出显著的差异。因此，研究者建议在筛选高耐受品系时以较高的叶面积配合较高的Fv/Fm和QY作为初筛指标。后续，美国农业部又使用加装了高光谱成像单元的PlantScreen表型成像系统与FluorCam结合，通过叶绿素荧光成像数据与高光谱成像数据绘制了生菜水分胁迫响应基因位点的分子图谱。参考文献：1. Adhikari N D, et al. 2019. Phenomic and Physiological Analysis of Salinity Effects on Lettuce. Sensors, 19: 48142. Kumar P, et al. 2021. Molecular Mapping of Water-Stress Responsive Genomic Loci in Lettuce (Lactuca spp.) Using Kinetics Chlorophyll Fluorescence, Hyperspectral Imaging and Machine Learning. Front. Genet. 12: 634554

AquaPen手持式藻类荧光测量仪AquaPen AP110手持式藻类荧光测量仪是一款用于快速、精确测量水体藻类与蓝藻叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。AquaPen有两种探头型号。AP110-C配备比色杯试管测量室，将要测量的水体、悬浊液或培养溶液采集到比色杯中进行测量，配备455nm蓝色和620nmLED红色光源，既可以测量叶绿素荧光，又可以测量680nm和720nm光密度。AP110-P配备了浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量，也可测量大型藻类。AquaPen 具备极高的敏感度，可检测最 低0.5μg Chl/L的叶绿素荧光，可以检测浮游植物浓度极低的自然水体，可用于野外和实验室测量。AquaPen采用调试式荧光测量技术，可设置多种参数，方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧，方便携带，设计新颖，操作简单，经济耐用，精度高稳定性好。应用领域 藻类、蓝藻光合特性研究 水体藻类含量检测 光合突变体筛选与表型研究 生物和非生物胁迫的检测 藻类抗胁迫能力或者易感性研究 经济藻类育种、病害检测、长势与产量评估教学功能特点：§ 结构紧凑、便携性强，LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内，重量仅290g§ 功能强大，是叶绿素荧光技术的高端结晶产品，具备了大型荧光仪的所有功能，可以测量所有叶绿素荧光参数§ 内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序，包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP–test等§ 高时间分辨率，可达10万次每秒，自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数§ AquaPen两种探头型号：比色杯试管测量室，既可以测量叶绿素荧光，又可以测量680nm和720nm光密度；浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量，也可测量大型藻类§ FluorPen专业软件功能强大，可下载、展示叶绿素荧光参数图表，也可以通过软件直接控制仪器进行测量§ 具备无人值守自动监测功能§ 内置蓝牙与USB双通讯模块, GPS模块，输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表§ 可选配水下自动监测式荧光仪，防水防尘设计，最 大深度10m测量程序与功能 Ft：瞬时叶绿素荧光,暗适应完成后Ft＝F0 QY：量子产额，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应状态)或ΦPSII (光适应状态)。 OJIP：快速荧光动力学曲线，用于研究植物暗适应后的快速荧光动态变化 NPQ：荧光淬灭动力学曲线，用于研究植物从暗适应到光适应状态的荧光淬灭变化过程。 LC：光响应曲线，用于研究植物对不同光强的荧光淬灭反应。 OD：光密度，反映藻类密度（限AP110-C）。技术参数测量参数包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶绿素荧光参数，OD680和OD720（限AP110-C）及3种给光程序的光响应曲线、3种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等OJIP–test时间分辨率为10μs（每秒10万次），给出OJIP曲线和26个参数，包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等测量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、OD680和OD720（限AP110-C）、Multi无人值守自动监测测量光：每测量脉冲最 大光强0.09μmol(photons)/m2.s，10-100 %可调光化学光：10–1000μmol(photons)/m2.s可调饱和光：最 大光强3000μmol(photons)/m2.s，11-100 %可调探头型号：AP110-C试管式、AP110-P探头式 光源：AP110-C：620nm红光和455nm蓝光测量叶绿素荧光，680nm和720nm红外光测量OD；AP110-P：455nm蓝光试管容积（限AP110-C）：4ml叶绿素荧光检测限：0.5μg Chl/L检测器：PIN光电二极管，667–750nm滤波器尺寸大小：超便携，手机大小，165×65×55mm（不包括探头），重量仅290g数据存储：容量16Mb，可存储149000数据点显示与操作：图形化显示，双键操作，待机5分钟自动关闭供电：2000mA可充电锂电池，USB充电，可连续工作48小时，低电报警工作条件：0–55℃，0–95%相对湿度（无凝结水）存贮条件：-10–60℃，0–95％相对湿度（无凝结水）通讯方式：蓝牙+USB双通讯模式，蓝牙在20m距离最 大传输速度3MbpsGPS模块：内置，最 高精度1.5m软件：FluorPen1.1专用软件，用于数据下载、分析和图表显示，输出Excel数据文件及荧光动力学曲线图，适用于Windows 7及更高操作系统操作软件与实验结果 南极Mendel站使用AquaPen叶绿素荧光仪监测南极温度升高对地衣/藻类的影响产地: 欧洲参考文献1. Zhang, C., Huang, X., Chu, Y., Ren, N. & Ho, S.-H. An overlooked effect induced by surface modification: different molecular response of Chlorella pyrenoidosa to graphitized and oxidized nanodiamonds. Environ. Sci.: Nano 10.1039.D0EN00444H (2020)2. Arakaki, A. et al. Analysis of UV irradiation-induced cell settling of an oleaginous diatom, Fistulifera solaris, for efficient biomass recovery. Algal Research 47, 101834 (2020)3. Contreras, J. A. & Gillard, J. T. F. Asparagine-based production of hydrogen peroxide triggers cell death in the diatom Phaeodactylum tricornutum. Botany Letters 1–12 (2020) 4. Moraes, L. et al. Bioprocess strategies for enhancing the outdoor production of Nannochloropsis gaditana: an evaluation of the effects of pH on culture performance in tubular photobioreactors. Bioprocess Biosyst Eng (2020)5. Yaisamlee, C. & Sirikhachornkit, A. Characterization of Chlamydomonas Very High Light-tolerant Mutants for Enhanced Lipid Production. J. Oleo Sci. 69, 359–368 (2020)6. Xu, M. et al. Co-culturing microalgae with endophytic bacteria increases nutrient removal efficiency for biogas purification. Bioresource Technology 314, 123766 (2020).7. González-Camejo, J., Barat, R., Aguado, D. & Ferrer, J. Continuous 3-year outdoor operation of a flat-panel membrane photobioreactor to treat effluent from an anaerobic membrane bioreactor. Water Research 169, 115238 (2020).8. Deng, X. et al. Cultivation of Chlorella sorokiniana using wastewaters from different processing units of the silk industry for enhancing biomass production and nutrient removal. J Chem Technol Biotechnol 95, 264–273 (2020).9. Tiwari, S., Verma, N., Prasad, S. M. & Singh, V. P. Cytokinin alleviates cypermethrin toxicity in Nostoc muscorum by involving nitric oxide: Regulation of exopolysaccharides secretion, PS II photochemistry and reactive oxygen species homeostasis. Chemosphere 259, 127356 (2020).10. Wu, Y., Zhang, M., Li, Z., Xu, J. & Beardall, J. Differential Responses of Growth and Photochemical Performance of Marine Diatoms to Ocean Warming and High Light Irradiance. Photochem Photobiol php.13268 (2020) 11. Abiusi, F., Wijffels, R. H. & Janssen, M. Doubling of microalgae productivity by oxygen balanced mixotrophy. ACS Sustainable Chemistry & Engineering 8, 6065–6074 (2020).12. Rolton, A. et al. Early biomarker indicators of health in two commercially produced microalgal species important for aquaculture. Aquaculture 521, 735053 (2020).13. Shen, X. et al. Effect of GR24 concentrations on biogas upgrade and nutrient removal by microalgae-based technology. Bioresource Technology 312, 123563 (2020).14. Zhu, Q. et al. Effects of ambient temperature on the redistribution efficiency of nutrients by desert cyanobacteria- Scytonema javanicum. Science of The Total Environment 737, 139733 (2020).15. Marticorena, P., Gonzalez, L., Riquelme, C. & Silva Aciares, F. Effects of beneficial bacteria on biomass, photosynthetic parameters and cell composition of the microalga Muriellopsis sp. adapted to grow in seawater. Aquac Res are.14711 (2020)

6800-18 藻类和水生生物测量系统是LI-6800高级光合-荧光测量系统的新一款测量室，专为测量藻类悬浮液等样品的稳态碳同化及叶绿素荧光而设计。6800-18使得LI-6800测量样品的范围进一步扩大。LI-6800在测量陆地植物光合作用碳同化和叶绿素荧光方面，是全球权威科学家信赖的仪器。LI-6800配备了高精度的CO2和H2O分析仪及自动控制系统，在探索光合生理的前沿科学方面应用广泛。6800-18 藻类和水生生物测量系统将其测量能力拓展到水生样品，让研究者可以探索藻类悬浮液的光合作用科学问题。工作原理传统的藻类光合测量方法是根据溶解氧浓度随时间变化而得出的。与之不同，LI-6800是一个开放的、稳态气体交换测量系统。在测量过程中，进入腔室的CO2和O2浓度及其他环境要素保持恒定。分析仪测量进入和离开测量室气流中CO2和H2O的浓度，通过计算气流物质的浓度差得到液体样品的光合同化速率。将悬浮液样品计量为细胞密度、质量或叶绿素含量后，样品光合碳同化速率可用μmol CO2 cell-1 s-1、μmol CO2 mg-1 s-1和μmol CO2 μg-1 s-1来表示。同时，6800-18还使用脉冲幅度调制技术（PAM）测量样品的叶绿素荧光。综合两方面的测量结果，获取样品更全面的光合作用信息。 主要优点测量过程自动化、智能化：提供高级设置，自动化控制测量环境和过程；文件管理便捷。BP用户自定义自动测量程序：使用Python语言或内置图形编程界面完成编程提供pH传感器接入：适合通用的12mm直径pH电极支持配气进气口，为样品提供各种需要的气体环境实时数据图形输出，测量过程全程监控备注信息输入功能数据格式是文本和Excel文件（含计算公式），方便重计算应用领域测量微藻等样品的光合作用相关参数，包括：净光合速率A、实际光化学量子效率ΦPSII、非光化学淬灭NPQ、光系统II反应中心受体侧关闭程度1-qL等探索藻类悬浮液、珊瑚、苔藓、地衣等任何小型水生生物的生理活动技术参数样品腔室润湿材料：316不锈钢，浮法玻璃，Viton氟橡胶，PTFE，硅酮，缩醛腔室工作容积：0 – 20 mL, 推荐样品容积15 mLCO2气体分析仪工作原理：非色散红外分析仪（NDIR）精确度：400 μmol/mol时，RMS≤0.1μmol/mol@4s平均信号测量范围： 0 – 3100 μmol/molCO2控制范围：0-2,000 μmol/mol可通过用户配气进气口接入其它气体。 荧光仪（6800-01A）红蓝作用光输出：0 – 3000 μmol m-2 s-1远红光输出：0 – 20 μmol m-2 s-1饱和闪光强度：0 – 16,000 μmol m-2 s-1红色作用光波峰波长：625 nm蓝色作用光波峰波长：475 nm远红光波峰波长：735 nm温度工作温度：0~50℃（无太阳直射，不结冰）保存温度：-20~60℃，测量室保持清洁干燥温度控制：自备水浴，#10-32螺纹连接至测量室操作液体环境温度：结冰点至50℃盐度：0 – 35 %辅助接口pH计（须另购）：12mm直径O型密封圈，配备放大器。基于被动玻璃电极的pH探针，BNC接口（标称-59 mV/pH斜率，用户校准）Septa: Silicone-PTFE septa6800-18 叶绿素a/藻类和水生生物测量分析仪

PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起，于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统（Heck等，1999；Nedbal等，2000；Govindjee and Nedbal, 2000）。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破，使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。 FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端叶绿素荧光技术设备，高分辨度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内，植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上，隔板7级高度可调；光源由高稳定性供电单元提供电源，4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上，成像面积可达13×13 cm；控制系统通过千兆以太网与计算机相联，并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等，广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。 主要功能特点:1.系统集成于暗适应操作箱内，操作简便、便于移动，既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析2.是世界上唯一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI（Performance Index）等26个参数3.是世界上唯一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备，可运行单周转饱和光闪（STF）叶绿素荧光诱导动态，光强在100µ s内可达到120,000 µ mol(photons)/m² .s4.备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序（Protocols），包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、叶绿素荧光淬灭分析（quenching）protocols、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析、OJIP快速荧光动力学分析及GFP绿色荧光蛋白成像等5.可进行自动重复成像测量分析，预设一个实验程序（Protocols）、测量次数及间隔，系统将自动循环运行成像测量，并自动将数据按时间日期存入计算机（带时间戳）6.具备双色光化学光激发光源，标准配置为红色和白色，可选配红色与蓝色等双波段光化学光，双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益 7.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析 技术参数： 1.测量光为617nm可调制红光，持续时间10µ s–100µ s可调； 2.双色光化光，标配为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合， Actinic1光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s。双色光化学光可按不同比例搭配使用，以便实验不同光质对作物／植物的光合效益3.饱和光光强可达4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s，QA再氧化分析单周转饱和光闪STF可达120000µ mol(photons)/m² .s4.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同13×13cm，另外还具备一个顶部双色光源（735nm红外光源和650nm红色光源）用于PAR吸收和NDVI成像测量；高强度高稳定性LED提供持续、稳定、均一的光源，不会因为用大量光强弱的LEDs（比如几百个）造成光源不稳定、寿命短等问题（使用大量弱光LED用于弥补每个LED的不足，会造成系统出错率的提高，任何一个LED出现问题都会造成系统的不稳定甚至不能使用）5.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm'，Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP，QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数及PAR吸收和NDVI植物光谱反射指数（选配），每个参数均可显示2维荧光彩色图像6.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) QA再氧化动力学（选配）g) GFP等静态荧光成像测量（选配）h) OJIP快速荧光动力学分析（选配）：Mo（OJIP曲线初始斜率）、OJIP固定面积、Sm（对关闭所有光反应中心所需能量的量度）、QY、PI等26个参数7.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网8.成像面积：13×13cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析9.7位滤波轮及叶绿素荧光滤波器、PAR吸收与NDVI成像测量滤波器（选配），可根据需要选配其它滤波器（选配）10.QA再氧化动力学成像分析（选配）：可进行STF荧光动力学分析测量，单周转光闪（STF）光强达120000 µ mol(photons)/m² .s in 100µ s11.OJIP快速荧光动力学模块（选配）：时间分辨率达1µ s，可测定分析OJIP曲线与二十几项相关参数包括：Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N（QA还原周转数量）、Phi   _Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC（单位反应中心的吸收光量子通量）、TRo/RC（单位反应中心初始捕获光量子通量）、ETo/RC（单位反应中心初始电子传递光量子通量）、DIo/RC（单位反应中心能量散失）、ABS/CS（单位样品截面的吸收光量子通量）、TRo/CSo、RC/CSx（反应中心密度）、PIABS（基于吸收光量子通量的“性能”指数或称生存指数）、PIcs（基于截面的“性能”指数或称生存指数）12.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单13.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序14.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）15.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片16.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）17.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差18.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等19.暗适应操作箱，内置光源、CCD镜头、滤波轮及滤波器、控制单元、散热装置等，方便暗适应操作，样品平台36x30cm，高度7级可调，样品（整株植物）最大高度可达12cm 20.给光制式：静态或动态21.Bios：固件可升级22.尺寸：471 mm(W)×473 mm (D)×512 mm (H) 23.重量：Appr. 40 kg 24.电源输入：Appr. 1100 W 25.供电电压：90–240 V 配置组成：1.主机系统，包括暗适应操作箱，内置LEDs光源、滤波轮及滤波器、CCD镜头、控制单元、高度可调样品隔板、散热装置等2.高稳定性电源转换器3.FluorCam系统控制与数据分析软件4.笔记本电脑 产地：欧洲 附：其它FluorCam叶绿素荧光成像系统1.FluorCam便携式光合联用叶绿素荧光成像系统：可与LCProSD光合仪、Licor光合仪等联用2.FluorCam便携式叶绿素荧光成像系统：成像面积3.5x3.5cm，具暗适应叶夹及多功能轻便三脚架，可用于实验室或野外测量和监测3.FluorCam便携式Chl/GFP荧光成像系统：为便携式荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析4.FluorCam封闭式叶绿素荧光成像系统：LED光源、CCD荧光监测镜头、控制单元等集成于暗适应操作箱内形成一个完整的主机系统，是世界上唯一可进行QA再氧化动力学和OJIP测量分析的叶绿素荧光成像系统，成像面积13x13cm5.FluorCam封闭式Chl/GFP荧光成像系统：为封闭式叶绿素荧光成像系统的扩展版，可同时进行叶绿素荧光成像分析和GFP绿色荧光蛋白成像分析6.FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统：模块式，具备高度可扩展性，可自由选配不同的激发光源及相应滤波器以对叶绿素荧光动态及稳态荧光等进行成像分析，镜头高度可调，成像面积13x13cm7.FluorCam开放式大型版叶绿素荧光成像系统：成像面积可达20x20cm8.FKM多光谱荧光动态显微成像与光谱分析系统：多激发光、多光谱荧光成像与光谱分析，可对叶绿素荧光动态、QA再氧化、OJIP快速荧光动力学进行显微成像分析和光谱分析，还可对GFP荧光、细胞荧光染色等进行显微成像分析9.Fluorcam移动式大型叶绿素荧光成像系统：大型叶绿素荧光成像平台安装在具轮子的支架上，方便移动，成像平台可上下移动，成像面积达35x35cm10.FluorCam样带扫瞄式叶绿素荧光成像系统：大型成像平台可在100－500cm的支架上对样带进行扫瞄成像，标配扫瞄区域长度为400cm，成像平台可沿样带精确定位自动扫瞄，可选配RGB真彩扫瞄成像，从而实现叶绿素荧光成像和真彩成像分析11.FluorCam多光谱荧光成像系统：属多激发光、多光谱荧光成像系统，不仅可对叶绿素荧光进行成像分析，还可对UV紫外光激发F440（蓝色荧光）、F520（绿色荧光）、F690（红色荧光）和F740（红外荧光）进行成像分析用于全方位研究检测植物胁迫与抗性，有标准配置、扩展配置和大型配置3种型号12.PlantScreen叶绿素荧光与RGB真彩自动扫描成像系统：是PlantScreen系列高通量植物表型成像分析系统的基础版，可对叶绿素荧光和植物RGB真彩进行成像分析，以分析检测植物的功能表型和形态表型，自动扫瞄范围为60x129cm，定位定时并得到4维（XYZ三维位置信息和时间信息）测量数据

英国AQUAREAD 水体叶绿素荧光计,便携式水中水下叶绿素测定仪，水下叶绿素荧光仪，便携式水中叶绿素检测仪，水下叶绿素荧光仪，水体叶绿素计英国AQUAREAD 水体叶绿素荧光计,AP-LITE水体叶绿素荧光测定仪/便携式水体叶绿素监测仪/水体叶绿素a监测仪由Aquameter读数表、AP-LITE传感器罩以及LITE-CPHYLL叶绿素传感器三个主要部分组成，用于测量水体叶绿素含量，系统可通过GPS Aquameter现场读取和采集数据。AP-LITE水体叶绿素荧光测定仪/便携式水体叶绿素监测仪/水体叶绿素a监测仪其中叶绿素传感器可更换为其他光学传感器（浊度，淡水蓝绿藻类，海洋蓝绿藻类，若丹明，成品油等）AP-LITE水体叶绿素荧光测定仪/便携式水体叶绿素监测仪/水体叶绿素a监测仪 技术参数：Aquameter读数表：尺寸（W*H*D）：90*180*39mm重量（含电池）：450g显示屏：带背光，80个字符LCD内存：1900个数据GPS：内置天线，12通道，精度±10m大气压：150mb-1150mb，精度1mb供电：5*AA碱性或可充电Ni-MH电池操作温度：-20~70 ?C防护等级：IP67英国AQUAREAD 水体叶绿素荧光计,便携式水中水下叶绿素测定仪，水下叶绿素荧光仪，便携式水中叶绿素检测仪，水下叶绿素荧光仪，水体叶绿素计传感器罩：直径：24mm长度：250mm叶绿素a传感器：测量范围：0-500μg/L (ppb)分辨率：0.1 μg/L重复性：读数的± 2%

AP-LITE水体叶绿素荧光测定仪/便携式水体叶绿素监测仪/水体叶绿素a监测仪由Aquameter读数表、AP-LITE传感器罩以及LITE-CPHYLL叶绿素传感器三个主要部分组成，用于测量水体叶绿素含量，系统可通过GPS Aquameter现场读取和采集数据。AP-LITE水体叶绿素荧光测定仪/便携式水体叶绿素监测仪/水体叶绿素a监测仪其中叶绿素传感器可更换为其他光学传感器（浊度，淡水蓝绿藻类，海洋蓝绿藻类，若丹明，成品油等）AP-LITE水体叶绿素荧光测定仪/便携式水体叶绿素监测仪/水体叶绿素a监测仪 技术参数：Aquameter读数表：尺寸（W*H*D）：90*180*39mm重量（含电池）：450g显示屏：带背光，80个字符LCD内存：1900个数据GPS：内置天线，12通道，精度±10m大气压：150mb-1150mb，精度1mb供电：5*AA碱性或可充电Ni-MH电池操作温度：-20~70 ?C防护等级：IP67AP-LITE传感器罩：直径：24mm长度：250mm叶绿素传感器：测量范围：0-500μg/L (ppb)分辨率：0.1 μg/L重复性：读数的± 2%

CV-100植物叶绿素荧光成像系统CV-100植物叶绿素荧光成像系统采用箱体式外观，内置多波段LED用于测量光、饱和脉冲及反射率测量。基于机器视觉成像原理进行叶绿素荧光成像，从而计算植物生长、胁迫，育种，突变株筛选相关等科学研究；滤光系统允许叶绿素荧光波段光线进入传感器并成像。不同于传统的只能做点状测量的光纤式荧光仪，标准版CV-100成像面积高达20x20cm,可以同时对多个样品、整个叶片或小尺寸植株进行荧光成像。高功率LED提供饱和脉冲，强度≧3000μmol/m2/s PAR。同时CV-100提供多种不同灯板选配：385nm紫外，455nm蓝色，530nm绿色，660nm红色，适用于植物、藻类、苔藓、地衣等不同光合生物。并且提供底板控温选配功能，可以进行0-60摄氏度范围内进行控温，更方便的检测样品在温度胁迫时光合能力的变化。广泛应用于植物学、农学、林学、环境科学等植物相关领域，有助于进行植物生长、胁迫、育种、突变株筛选等相关学科光合研究，用于植物生理生态及表型研究。主要特点高集成度式设计；500万像素高清传感器；最大图像尺寸：2456x2054；快门模式：全局及卷帘快门；分辨率：约250DPI（10pix/mm）；可测量参数：F0，Fm，Ft，Fm’，Fv/Fm，Yield，qP，qL，qN，NPQ，Y（NPQ），Y（NO），慢速诱导，rETR等。其它功能：ROI，尺寸测量，伪色遮罩，分级统计，自动暗适应等选配功能：385nm灯板，455nm灯板，530nm灯板，660nm灯板，底板控温组件。技术参数成像功能：叶绿素荧光成像及多光谱波段测量；调制叶绿素荧光成像参数：Fo、Fm、Fv/Fm、Ft、Fm'、Fo'、PS、rETR、NPQ、Y(NO)、Y(NPQ)、qN、qP、qL、动力学曲线等；成像面积：≥20 cm x 20 cm；相机类型：CMOS传感器；相机分辨率：约500万像素颜色深度：12bit(软件扩展至16位)；接口：2个USB3.0，1个以太网口；专用嵌入式控制器：提供硬件控制功能；供电：供电：110-230V，最大功耗500W，待机功耗50W；测量光：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强大于3500 umol m-2 s-1 ，独立触发；饱和脉冲：蓝色LED， 450nm，半峰全宽20nm，最大光强3500 umol m-2 s-1，独立触发；近红外：LED，730nm，半峰全宽20nm，35W；可见光：LED，660nm，半峰全宽20nm，35W，可选蓝色、绿色LED；内置测量程序：内置多种测量功能可选，允许用户编辑设定测定参数 ；图像批处理：支持一键批处理，并可将数据导出至Excel；参数分级功能：支持对任意参数进行多区间分级，支持对分级区间自定义显示颜色，支持将分级成像结果叠加到可见光图像上进行展示；ROI功能：允许用户自定义多种ROI，并对ROI的数据自动分析；延时成像：支持设定暗适应延迟；支持图像背景、伪彩色标尺。系统配置主机1套控制和分析软件1套

描述 美国Seapoint公司的叶绿素荧光传感器（SCF）是一款高性能的叶绿素测量装置。它具有体积小、能耗低、灵敏度高、量程宽等特点，同时拥有深达6000米的承压级别，这使得它在各种条件下对叶绿素测量都具有很高的灵活度。SCF叶绿素荧光传感器利用蓝色LED灯和一个蓝色激发滤片来激发叶绿素a，叶绿素a分子激发出的荧光经由一个红色发射滤片过滤后，被硅光电二极管所检测，低位信号再经同步解调电路处理，生成与叶绿素a浓度成比例的输出电压。SCF叶绿素荧光传感器也可配备水泵进行操作。SCF传感器的感应区域可直接开放于水体，也可对感应部位加盖封闭帽，使水在泵压下均匀流过封闭帽内部（感应区）。四个量程档通过两条控制线进行设定，控制线可以是硬接线或通过微处理器控制，能针对具体应用提供一个合适的量程和分辨率。传感器可方便连接数据采集系统；提供一根5英尺长的尾线。 性能特征● 超低能耗● 可测量连续流（需配备封闭帽和泵）● 体积小● 6000米深度级别● 防止环境光干扰● 与叶绿素a浓度成比例的线性输出● 四个量程设定● 低温度因子● 低补偿电压，不需要额外调节● 接口同浊度传感器及其他荧光传感器相兼容● 轻松连接数据采集系统● 坚固、抗腐蚀材质 规格参数电源： 8-20 VDC，平均15mA，最高27mA输出： 0-5.0 VDC输出时间常量： 0.1秒启动瞬变周期： 1秒激发波长： 470nm发射波长： 685nm感应区： 340mm3最低检出线： 0.02ug/L灵敏度/量程： 档位 灵敏度（V/ug/L） 量程（ug/L） 30X 1.0 5 10X 0.33 15 3X 0.1 50 1X 0.033 150 温度系数： 0.2% / ℃ 深度级别： 6000米（19,685英尺）净重： 1000g（2.2磅）操作温度： 0~65℃材质： ABS塑料，环氧的水下连接器： 推动型AG-306/206

产品介绍PlantView230F调制叶绿素荧光活体成像系统是一款用于研究植物光合活性的科研仪器，采用脉冲-振幅-调制技术来实时测量叶绿素荧光发光值。系统配备超高速数码相机，成像面积达150mmX94mm，具备高时间分辨率和空间分辨率。系统高度集成化，可实现藻类细胞的微距测量到整株植物样品的荧光成像分析。通过专业的软件算法，系统可测量多个荧光参数，通过测量叶绿素荧光反映光合作用的过程和变化以及植物样品的生理状态。测量过程快速、简单，对样品无破坏和干扰。 产品特点● 专业相机具有极高的灵敏度和时间分辨率，用于叶绿素荧光瞬时表达检测；系统采用大功率脉冲式LED光源，保证样品在强激发光下受光均匀；系统配备近红外和红外光源，可测量叶片吸光系数(Abs)，计算光合作用光系统II(PSII)电子传递速率。● 集成系统高度集成化，满足常见植物全株、叶片、果实、藻类等多种样本的荧光成像；高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像，系统功能涵盖从单细胞到生态学，应用广泛。● 智能一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数；全自动智能仪器控制，轻松上手，快速成像；可预设多种实验方案，模块化设计，流程式操作。● 灵活光源与样品的固定测量距离为170mm，相机和光源可沿Z轴自动升降，测量不同高度、大小的植物；测量的植株最高可达400mm。 智能软件1、测量参数：仪器软件能实时显示Ft、Fo、Fm、Fv/Fm、 Fm’、Y(II)、Y(NPQ)、NPQ、qP、ETR 等18种荧光参数，非计算参数。每个参数均可显示2维荧光彩色图像。2、程序测量功能：可程序测量荧光诱导曲线、快速光曲线和暗弛豫，也可手动测量；在测量过程中能自动分析所有荧光参数的变化趋势。3、感兴趣功能：可在测量前或测量后任意选择感兴趣的区域（ROI），程序将自动对选择的ROI的数据进行变化趋势分析，并在报告文件中显示相关ROI的数据。所有报告文件中显示的数据都可导出到EXCEL文件中。4、软件自动存储以拍摄时间加自定义命名内容为后缀的原始数据，即拍即存，无需繁琐的存储操作及担心数据丢失。5、可预设多种实验方案，模式化设计，流程式操作。6、用户可自定义设置程序，数据结果自动存储并分析。 应用领域叶绿素荧光监测、植物育种筛选、植物生物节律研究、光合作用研究、植物抗逆性研究、海洋湖泊藻类研究、植物生态学研究、植物抗病性研究、水生生态学研究等。 应用案例

一．叶绿素荧光仪用途植物养分测定仪可以即时无损测量植物的叶绿素相对含量（单位 SPAD）或绿色程度、氮含量、叶面湿度、叶面温度，从而了解植物真实的硝基需求量并且了解土壤硝基的缺乏程度或是否过多地施加了氮肥。可以通过此款仪器来增加氮肥的利用率，并可保护环境。可广泛应用于农林相关科研单位和高校对植物生理指标的研究和农业生产的指导。二．叶绿素荧光仪技术指标1．检测项目：叶绿素含量、氮含量、叶面温度、叶面湿度2.测量范围 叶绿素：0.0-99.99SPAD 氮含量：0.0-99.99mg/g叶面湿度：0.0-99.9RH% 叶面温度：-10-99.9℃3．测量面积：2mm*3mm4．测量精度 叶绿素：±1.0 SPAD单位以内 (室温下，SPAD值介于0-50) 氮含量： ±5% 叶面湿度：±5% 叶面温度：±0.5℃5．叶绿素荧光仪重复性 叶绿素：±0.3 SPAD单位以内 (SPAD值介于0-50) 氮含量：±0.5mg/g 叶面湿度：±0.5RH% 叶面温度：±0.2℃6．测量时间间隔：小于0.8秒7．数据存储：16GB 可根据用户需求进行分组存储8．电源：4.2V可充电锂电池9．电池容量：3000mah10．重量：230g11．工作及存储环境：-10℃~50℃ ≤85%相对湿度三．叶绿素荧光仪功能特点1.快速无损植物活体检测，测量时只需将叶片插入即可，不需要采摘叶片，不影响作物正常生长，可以在作物生长过程中全程对叶片进行监测，从而得到更科学的分析结果2.测量精度高(精度：± 1.0 SPAD，重复性：±0.3 SPAD) ，，内置防强光干扰系统3.一次操作可同时测定所有参数，叶绿素、氮含量、叶面温度、叶面湿度四种参数同一屏幕同时显示，且可同时储存4.16GB大存储空间，数据可进行分组存储、查看、导出5.多功能USB接口，可实现数据导出与充电功能，可将仪器与电脑直接联机，数据导出无需上位机软件，还可选择使用内存卡直接导出数据，操作简单方便6.数据浏览：可在仪器上浏览、转存、清空历史数据7.GPS定位功能：可以实时显示卫星定位经纬度，明确当前检测位置。8.叶绿素荧光仪器内置4G无线传输模块，支持野外环境实时上传数据，检测结果可直接传至专属云农业数据中心，分配企业专属云农业数据中心账户，该账户中心可查看不同检测人员的上传数据。9.云农业数据中心可按照任意时间段检索历史数据，可查看测量时间、叶绿素含量、氮含量、叶面温度、叶面湿度、GPS定位信息等数据，显示每种参数过程曲线趋势，最大值、最小值查看，放大、缩小功能，支持在线下载、EXCEL导出、分析、打印10.高对比度LCD显示屏，强光下也可清晰显示数据11.低功耗模式设计，内置大容量锂离子充电电池，具有防过充功能，节能环保并方便进行户外操作12.内置中英文双语显示，一键切换，无缝对接13.叶绿素荧光仪标准配置： 主机、充电器、USB数据线、内存卡、读卡器、便携铝箱，合格证、说明书等

AP-C100手持式叶绿素荧光测量仪采用调试式荧光测量技术，可设置多种参数，方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧，方便携带，设计新颖，操作简单，经济耐用，精度高稳定性好。应用领域 适用于光合作用研究和教学，植物及分子生物学研究，农业、林业，生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究典型样品地表结皮地衣、苔藓表层水体藻类其它工作原理利用调制式荧光测量技术，采用LED光源，选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。功能特点：实验过程和测量参数测量光密度OD680和OD720Ft：瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft＝FoQY：光量子效率，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv&rsquo /Fm&rsquo (光适应完成的样品)OJIP：叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。NPQ：非光化学淬灭，表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。光曲线：Qy对不同光强的适应曲线。PAR测量：可在荧光仪上显示PAR值，可计算20次检测值的平均。另外还具有GPS定位功能技术参数测量参数：Fo, Ft, Fm, Fm´ ,QY， OJIP, NPQ 1,2和光曲线1,2,3。测量光：蓝光（可选红光或白光）光化学光和饱和光：0&ndash 3000µ mol.m-2.s-1可调波长检测范围：697nm-750nm· 光曲线测量方案BOIS：可升级通讯：可选蓝牙、USB或串行接口存储：4M数据存储：100,000个显示：2 x 8字符黑白液晶屏键盘：密封防水设计2键自动关机：5分钟无操作电源：4 AAA碱性电池或充电电池电池寿命：持续测量70 h低电报警尺寸：120 x 57 x 30 mm 4.7" x 2.2" x 1.2"重量：180 g, 6.5 oz操作条件：温度：0 ～ 55 º C；相对湿度：0 ～ 95 %非冷凝存储条件：温度：-10 to +60 º C；相对湿度：0 ～ 95 %非冷凝软件：FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*，实时显示和遥控，植入GPS绘图，EXCEL输出PAR传感器：读数单位µ mol(photons)/m² .s，可显示读数，检测范围400-700 nm操作软件与实验结果配置型号指南：标准配置&mdash &mdash AP-C100 + GPS模块 + PAR传感器：功能完备简化配置&mdash &mdash AP-C100：无PAR数据+ 无GPS数据 产地: 欧洲

FL6000双调制叶绿素荧光仪是FL3500双调制叶绿素荧光仪的最新升级版，专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻，叶绿体或类囊体悬浮物进行光合作用深入机理研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制，可控制测量样品的温度，并配备单翻转光（STF），内置多种可用户自行修改的测量程序，可进行目前国际上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头，内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs（快速版为1μs）。应用领域： 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 代谢混乱研究 光合系统工作机理研究 受胁迫植物光合生理应对策略研究典型样品： 蓝藻（蓝细菌） 绿藻 叶绿体悬浮物 类囊体悬浮物 植物碎片功能特点： 内置叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等测量程序，是世界上公认的功能最为全面的叶绿素荧光仪 双调制技术，可双色调制测量光，具备调制光化学光和持续光化学光，可进行STF（单周转光闪）、TTF（双周转光闪）和MTF（多周转光闪）及定制FRR技术（Fast Repetition Rate）测量 标准版时间分辨率达4μs，快速版更高达1μs，是目前时间分辨率最高的叶绿素荧光仪 控制单元为双通道，可连接温度传感器用于温度控制、连接氧气测量单元用于希尔反应测量等 具备极高灵敏度，最低检测极限为1μg Chla/L 测量光、光化光、饱和单反转光光源颜色、强度均可定制 主机配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图技术参数： 实验程序：叶绿素荧光诱导测量；PAM（脉冲调制）测量；OJIP快速荧光动力学测量；QA–再氧化动力学；S状态转换；快速叶绿素荧光诱导 荧光参数：ú PAM荧光淬灭动力学测量：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项叶绿素荧光参数与曲线；ú OJIP快速荧光动力学测量：OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数；ú QA–再氧化动力学（QA- reoxidation kinetics）：测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）ú S状态转换（S-state test）：S-state test荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量ú 提供用户自定义protocol功能，可实现PSII天线异质性PSIIα与PSIIβ分析、PSII有效天线截面积（s PSII）等参数的测量（仅限快速版）QA–再氧化动力学曲线和S-state test荧光衰减曲线（Li，2010） 时间分辨率（采样频率）：高灵敏度检测器，标准版时间分辨率为4μs，快速版为1μs 最低检测极限：1μg Chla/L 控制单元：配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图 Superhead测量室：o 测量光闪：617nm红橙光和455nm蓝光，光闪时间2–5μso 单周转饱和光闪：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，最大光强80000 μmol(photons)/m2.s，光闪时间20–50μs o 持续光化学光：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，任选其一，最大光强3000 μmol(photons)/m2.so 样品试管：底面积10×10mm，容积4mlo AD转换器：500 kHz/16–bit 定制superhead测量室（选配）：可分别定制测量光、饱和光闪和光化学光颜色（蓝色、青色、琥珀色等）以及检测波段（ChlA，ChlB） 远红外光源（选配）：用于激发光系统I，波长735nm 氧气测量模块（选配）：测量藻类的氧气释放 温度控制（选配）：TR 2000温度调节器，控温范围0–70℃，精确度0.1℃ 电磁搅拌（选配）：密封不锈钢外壳，IP64防护等级，手动转扭调速100-1000rpm，8mm×3mm标准磁力棒 通讯接口：USB FluorWin软件：定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示典型应用：1. 中科院水生生物所王强研究员使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）和TL植物热释光系统证明亚硝酸盐胁迫首先影响Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受体侧(Zhan X, et al, 2017)。这种光合作用深入机理的研究经常需要这两种仪器来配合完成。 2.中科院新疆生态与地理研究所潘响亮研究员及其课题组使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）深入开展了环境中重金属、盐分、有毒化合物、除草剂、杀虫剂、抗生素等各种有害物质对藻类的毒理研究。通过FL3500独有的高分辨率OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换等叶绿素荧光测量程序，全面揭示了不同浓度与处理时间对藻类光合系统造成损伤的毒理机制及其生态影响。目前，潘响亮课题组已经使用FL3500（FL6000之前型号）在国际SCI期刊与国内核心期刊上发表了二十余篇高水平文章。 产地：捷克部分参考文献：1. Manaa A., et al. (2019) Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-1142. Sicora C. I., et al. (2019) Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–4733. Smythers A. L., et al. (2019) Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-7124. Albanese P., et al. (2018) Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non‐model organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal, Volume96, Issue4, Pages 786-8005. Antal T., Konyukhov I., Volgusheva A., et al. (2018) Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.126936. Antal T. K., Maslakov A., Yakovleva O. V., et al. (2018). Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2 7. Biswas S., Eaton-Rye J. J. (2018). PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209. 8. Bonisteel E. M., et al. (2018). Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.9. Fang X., et al. (2018). Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.10. Kuthanová Trsková E., Belgio E., Yeates A. M., et al. (2018) Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany, Volume 69, Issue 18, 14 August 2018, Pages 4483–4493

FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是FC 1000-H 的功能增强版本，既能做叶绿素荧光成像也能做GFP成像研究。该系统被设计用来在田间和实验室内对叶片和小植物的荧光参数和GFP表达情况成像进行动力学解析，典型的研究区域为3.5 x 3.5 cm。在所有应用中，系统可以对光化光和饱和光诱导的荧光瞬变过程进行成像，光化光照射的时间和强度可以由用户自定义的程序来决定。软件包中包含了最常用的实验程序和简单实用且功能强大的程序设计语言，熟练的研究人员可以设计自己的闪光序列和测量过程。FC 1000-H/GFP便携式GFP/叶绿素荧光成像系统是一个轻巧的便携系统，尤其适用于野外实验。系统可以通过肩背便携包中的密封铅酸电池在野外进行供电，稳固轻巧的三脚架使得野外测量变得简单易行。应用领域 转基因表达和定位植物光合特性和代谢紊乱筛选生物和非生物胁迫的检测植物抗胁迫能力或者易感性研究气孔非均一性研究代谢混乱研究长势与产量评估植物&mdash &mdash 微生物交互作用研究植物&mdash &mdash 原生动物交互作用研究工作原理FC 1000系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布，Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取，从而提供2维荧光图像。测量与计算参数多达50多个：F0, FM, FV, F0' , FM' , FV' , QY(II)，NPQ, &Phi PSII, FV/FM, FV' /FM' , RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率ETR等。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等，还可研究因病变、衰老、环境胁迫或基因突变造成的荧光变化。典型样品 海藻，蓝藻群落整株小植物植物冠层，叶片或者果实小动物其它功能特点：实验过程和测量参数 GFP表达强度与分布位置成像Meter功能荧光诱导过程（Kausky效应）分析叶绿素荧光淬灭过程（NPQ过程）分析光响应曲线分析可测量与计算多达50个参数: Fo, FM, Fs, Fo&rsquo , FM&rsquo , FV&rsquo , QY(II)， NPQ, FV/FM, FV&rsquo /FM&rsquo , Rfd, qN, qP, PAR-吸光系数, 电子传递速率(ETR), 及其它。技术参数 可测荧光参数：(F0, FM, FV, FO' , FM' , FV' , QY(II)), or 计算参数 (e.g., NPQ, FV/FM, FV' /FM' , Rfd, qN, qP),光合电子传递速率 ETR,及其它4块超亮LED光源板，尺寸4 X 4 cm；均一照明面积3.5 X 3.5 cm。测量光为620nm红光， 455 nm蓝光，持续时间10µ s - 250µ s可调；光化光，标配蓝光蓝光: 大约350 µ mol(photons)/m² .s饱和光，标配蓝光蓝光: 最高 1,000 µ mol(photons)/m² .s远红光：IR735nm给光制度：静态或者动态模式自定义实验程序：多样化的时间顺序，专门的程序语言和脚本CCD检测器带宽：400 &ndash 1000 nmCCD 制式：512 x 512 像素 可选 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素像素尺寸：8.2 µ m x 8.4 µ mA/D 转换分辨率：12 位光谱响应：540 nm处量子效率最高(70 %),400 nm 和 650 nm 处转降50 %读出噪音：低于12eRMS，典型10e满阱容量：大于 70,000 e (unbinned)成像频率：50 张图片每秒Bios：固件可升级通讯方式：USB 2.0重量：1.8 kg叶夹重量：0.2 kg供电模块重量：2.5 kg支架重量：1.5 kg笔记本重量（含所有附件）：3.5 kg耗电Max.：200 W供电电压：90 &ndash 260 V ；AC或蓄电池供电尺寸：21.5 cm x 13.5 cm x 13.5 cm 操作软件与实验结果 内置常用测量程序用户可自定义实验程序，界面友好可自动重复测量视野内单个植物或样品的自动识别与标记视野内所有样品数据的动力学分析多图像处理工具条形码读卡器支持，便于批量处理样品数据可导出为excel· FluorCam 软件界面Windows 2000, XP, Vista兼容 典型应用：产地：欧洲请致电索取参考文献列表

仪器简介：植物叶绿素荧光成像一般用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布。Kautsky过程、萃灭分析及其它瞬时的过程都可被摄取，提供2维图像，计算常规的荧光参数。F0， FM， FV， F0&rsquo ， FM&rsquo ， FV&rsquo ， NPQ， &Phi PSII， FV/FM， FV&rsquo /FM&rsquo ， RFd， qN， qP，及其它荧光参数图像可用于研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广，既可是单个叶绿体或单个细胞（用显微植物荧光成像系统），也可是小的冠层（用拱形植物荧光成像系统和区域植物荧光成像系统）。此外，除了可成像常规的叶绿素荧光发射过程外，该系列植物荧光成像系统还提供一款成像各种荧光蛋白发射荧光过程的系统（植物荧光蛋白成像系统）。还有一种多功能荧光动态显微检测系统，它除具备显微叶绿素荧光成像系统的功能外，还集成了分光光度计SM－9000、PAM荧光测量技术及FL3500双调制荧光测量仪，用于高分辨率快速荧光动态测量和成像。多种激发光源可以激发不同的天线色素，从而分析出那些色素蛋白复合体对光化学荧光淬灭或非光化学荧光淬灭贡献更大。同时还可以对非叶绿素荧光（自发荧光及荧光染料等）动态进行测量分析，超高灵敏度镜头可以在很低的光线下（从而不干扰正常细胞代谢）成像，并且还可以对目前市场上其它镜头捕捉不到的快速过程如QA再氧化、天线联通性及天线大小等进行测量分析。技术参数：1）图象分辨率：12bit， 512x512像素 2）图象抓取速度：每秒50幅 3）数据传输:USB2.0 口 4）该系统的软件功能： 设置和修改实验要求，如控制时间，实验周期，光强和摄象机操作 智能分割图像，显示所选图像的荧光曲线 将计算参数与不同阶段摄取的图像联系起来，如FV， FV/FM， qP， qN， NPQ， Rfd等，作进一步分析。 软件包中设置了常规实验模块，熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序。 5）分辨率： mm主要特点：植物叶绿素荧光成像采用用户自行设置的光照和测量时间测量、记录叶绿素荧光成像。两个或多个装有超强发光二极管板提供测量用的光源。带有快门或额外液晶显示屏的卤素灯提供连续光照或饱和脉冲光驱动光化学反应。荧光成像由CCD摄像机抓取。显微植物荧光成像系统可成像单个细胞和亚细胞的荧光。所有的常规荧光参数都可成像，分辨率达mm，可用于研究单个的叶绿体或是类囊体。该系统和配置多种显微镜。

FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统是一款高度灵活、应用广泛的植物生理生态研究仪器，系统采用模块化结构，有四个LEDs光源版、CCD镜头、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成。两对LEDs光源版提供测量光、光化学光和饱和光闪，角度和高度可调；CCD镜头高度可调，且可灵活配置PSI特制高灵敏度CCD镜头或高分辨率镜头，还可装配第五个光源版于镜头周边。标准配置（标准版）的最大成像面积为13×13 cm，大型版最大成像面积达20×20 cm。既可对单个叶片进行叶绿素荧光成像，还可对整株植物进行叶绿素荧光成像，广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物监测、植物抗性、作物育种等研究。 应用领域:1.植物光合特性和代谢紊乱筛选2.生物和非生物胁迫的检测3.植物抗胁迫能力或者易感性研究4.气孔非均一性研究5.代谢混乱研究6.长势与产量评估7.植物——微生物交互作用研究8.植物——原生动物交互作用研究 功能特点:1.模块化，配置灵活，可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物的处理、操作等2.可自由选配不同波长LEDs光源板，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多色荧光成像试验测量等3.成像面积大，大型版成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析4.可进行自动重复成像测量，可设置一个实验程序（Protocols）自动循环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）5.带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个6.可选配TetraCam彩色成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态测量分析7.测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等技术参数：1.成像面积：标准版成像面积达13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，可对植物叶片、植物组织、藻类、苔藓、地衣、整株植物或多株植物、96孔板、384孔板等进行成像分析2.测量参数：Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多个叶绿素荧光参数，每个参数均可显示2维荧光彩色图像 3.具备完备的自动测量程序（protocol），可自由对自动测量程序进行编辑a) Fv/Fm：测量参数包括Fo，Fm，Fv，QY等b) Kautsky诱导效应：Fo，Fp，Fv，Ft_Lss，QY，Rfd等荧光参数c) 荧光淬灭分析：Fo，Fm，Fp，Fs，Fv，QY，ΦII，NPQ，Qp，Rfd，qL等50多个参数d) 光响应曲线LC：Fo，Fm，QY，QY_Ln，ETR等荧光参数e) PAR吸收与NDVI（选配）f) GFP等静态荧光成像测量（选配）4.高分辨率TOMI-2 CCD传感器a) 逐行扫描CCDb) 最高图像分辨率：1360×1024像素c) 时间分辨率：在最高图像分辨率下可达每秒20帧d) A/D 转换分辨率：16位（65536灰度色阶）e) 像元尺寸：6.45µ m×6.45µ mf) 运行模式：1）动态视频模式，用于叶绿素荧光参数测量；2）快照模式，用于GFP等荧光蛋白和荧光染料测量g) 通讯模式：千兆以太网5.光源板：4块大型高强度封装LED光源板，每个光源板由36颗 LED阵列组成，光源板有效面积与成像面积相同，标准版13×13cm，大型版20×20cm6.测量光：标配617nm红光，其它波段可选，持续时间10µ s–100µ s可调7.双色光化光：标配为2红光（617nm）+2白光，可选配2红光（617nm）+2蓝光（470nm或445nm）或其它波长光源组合， Actinic1最大光强300µ mol(photons)/m² .s，Actinic2最大光强2000µ mol(photons)/m² .s；最大光化学光可升级至3000µ mol(photons)/m² .s8.饱和光闪：最大光强4000µ mol(photons)/m² .s，可升级至6000 µ mol(photons)/m² .s9.PAR吸收测量模块（选配）：远红光735nm（FAR）、650nm双色LEDs光源板与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量PAR吸收及NDVI10.GFP测量模块（选配）：蓝色光化光源与7位滤波轮及专用滤波片，用于测量GFP（绿色荧光蛋白）11.7位滤波轮（选配）：加装不同波段滤波片，配合选配的专用光源板测量PAR吸收和GFP、YFP等稳态荧光12.紫外LED光源板（选配）：365nm或385nm，1）测量多色荧光（详见FluorCam多光谱荧光成像系统）；2）测量wtGFP（野生型绿色荧光蛋白）、DAPI（4',6-二脒基-2-苯基吲哚，一种荧光染料）13.蓝色LED光源板（选配）：470nm，1）测量EGFP（增强型绿色荧光蛋白）；2）用于气孔功能研究14.绿色LED光源板（选配）：530nm，测量YFP（黄色荧光蛋白）15.其他可选配光源板：品蓝（447 nm），青色（505 nm），红色（627 nm），深红（655 nm），琥珀色（590 nm），远红（740nm）等16.测量wtGFP、DAPI、EGFP、YFP等荧光蛋白或荧光染料还需要选配7位滤波轮，高分辨率CCD及相应滤波片 17.FluorCam叶绿素荧光成像分析软件功能：具Live（实况测试）、Protocols（实验程序选择定制）、Pre–processing（成像预处理）、Result（成像分析结果）等功能菜单18.客户定制实验程序协议（protocols）：可设定时间（如测量光持续时间、光化学光持续时间、测量时间等）、光强（如不同光质光化学光强度、饱和光闪强度、调制测量光等），具备专用实验程序语言和脚本，用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序19.自动测量分析功能：可设置一个实验程序（Protocol）自动无人值守循环成像测量，重复次数及间隔时间客户自定义，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）20.快照（snapshot）模式：通过快照成像模式，可以自由调节光强、快门时间及灵敏度得到清晰突出的植物样本稳态荧光和瞬时荧光图片21.成像预处理：程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域，也可手动选择区域（Region of interest，ROI）。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数，样品或区域数量不受限制（1000）22.数据分析模式：具备“信号计算再平均”模式（算数平均值）和“信号平均再计算”模式，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来的误差 23.输出结果：高时间解析度荧光动态图、荧光动态变化视频、荧光参数Excel文件、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等24.给光制度：静态或动态25.CCD检测范围：400–1000nm 26.Bios：固件可升级27.通讯方式：千兆以太网28供电电压：90–240V 产地：欧洲 典型应用：