双调制叶片叶绿素荧光动态测量系统

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  • 武汉汉林苑科技有限公司
    武汉汉林苑科技有限公司坐落于湖北省武汉市中南国际城，公司主要以研发、生产、销售一体的经营模式，主要致力于土壤检测仪器，植物检测仪器和环境检测仪器方面的研发销售，是一家集科、工、贸为一体的综合型技术企业。主营产品有主营产品有土壤养分测定仪、土壤温湿度测定仪、土壤水分仪、土壤电导率仪，土壤盐度计，土壤水分温度盐分测定仪、土壤ph测定仪、土壤三参数测定仪、土壤墒情监测系统、土壤土钻，土钻综合套装、根钻套装、原装土壤取样器等；植物光合仪、植物叶片蒸腾速率测定仪、植物呼吸测定仪、植物冠层测量仪、植物根系扫描分析系统、植物叶绿素测定仪、植物叶面积仪、植物茎秆强度仪、植物叶片厚度仪等；物联网自动气象站、手持式气象仪、大棚环境监测站、大棚环境记录仪、温湿度记录仪、CO2记录仪、雨量记录仪、太阳辐射记录仪等仪器。 公司产品主要应用于农业、林业、教学、科研、气象、环境等领域，目前已经有多家农业高校、科研机构、农业推广站、土肥站、农林局等在使用我公司产品，并得到了广大客户一致的好评。公司坚持以优质的售后服务，对销售的每台仪器进行技术培训，定期回访，答疑解惑，深受用户信赖和支持。
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  • 北京易科泰生态技术有限公司 金牌15年
    400-860-5168转1895
    北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为中关村高新技术企业，致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务，特别是在光谱成像技术（高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等）、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面，与国际领先企业PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成，为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80％以上具备硕士或硕士以上学位，并与中国科学院研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。 公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心（与陕西师范大学合作建立）、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备，可以进行实验研究分析、实验培训等，欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。 易科泰公司与欧洲PSI公司（叶绿素荧光技术与表型分析技术）、美国SABLE公司（动物能量代谢技术）、欧洲SPECIM公司（高光谱成像技术）、欧洲WORKSWELL公司（红外热成像技术）、欧洲ATOMTRACE公司（LIBS元素分析技术）、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司（样芯密度扫描与元素分析）、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等国际著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系，在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验，成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone无人机遥感平台、SoilTron多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox土壤呼吸测量技术、PhenoPlot轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等，在中科院修购项目、农业部学科群项目、CERN网络（生态系统监测网络）等项目中发挥重要作用。 “工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态-农业-健康研究与发展提供最优的技术方案和服务。欢迎关注易科泰公众号：
    主营产品： 植物荧光成像   植物表型测量   叶绿素藻类   动物代谢检测  
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  • 上海思帝测量系统公司
    DMS（国际）有限公司是一家专业从事动态信号分析系统的研发、生产、销售并提供测试解决方案和工程服务的高科技企业。公司总部在香港，在上海、北京、南京、武汉、西安、成都等设有办事处。 公司已和国内多所知名高校长期合作，组建了强大的技术研发团队和 强有力的销售团队，为国内企业和实验室提供优质可靠的动态信号分析系统以及相应的技术解决方案，并成功地引进了迄今国际先进水平的工程测试、检测设备及相关软件。公司产品广泛用于航空、航天、船舶、汽车、电子和通讯及国内各高等院校等众多行业，产品涉及系统集成、工程测试、适合多种应用的数据采集、动态信号分析仪、模态测试系统、振动台控制仪及机器人测试设备等多个方面，赢得了众多客户的赞誉。 “以服务求市场、质量求生存、科技求发展、创新求进步”，公司还是一个“年轻”的公司，其全体员工平均年龄在30岁左右；是一个高素质的公司，其员工大专学历以上者占95%%以上。就是这样一个年轻、高效、团结的集体，通过谦逊的工作作风，灵活的思维方式，不怕苦、不怕累、敢拚敢上的干劲，成为国内测试行业中一流的产品供应商。
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双调制叶片叶绿素荧光动态测量系统相关的仪器

  • FL6000双调制叶绿素荧光测量仪 400-860-5168转1895
    FL6000双调制叶绿素荧光仪是FL3500双调制叶绿素荧光仪的最新升级版，专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻，叶绿体或类囊体悬浮物进行光合作用深入机理研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制，可控制测量样品的温度，并配备单翻转光（STF），内置多种可用户自行修改的测量程序，可进行目前国际上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头，内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs（快速版为1μs）。应用领域： 植物光合特性和代谢紊乱筛选 生物和非生物胁迫的检测 植物抗胁迫能力或者易感性研究 代谢混乱研究 光合系统工作机理研究 受胁迫植物光合生理应对策略研究典型样品： 蓝藻（蓝细菌） 绿藻 叶绿体悬浮物 类囊体悬浮物 植物碎片功能特点： 内置叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等测量程序，是世界上公认的功能最为全面的叶绿素荧光仪 双调制技术，可双色调制测量光，具备调制光化学光和持续光化学光，可进行STF（单周转光闪）、TTF（双周转光闪）和MTF（多周转光闪）及定制FRR技术（Fast Repetition Rate）测量 标准版时间分辨率达4μs，快速版更高达1μs，是目前时间分辨率最高的叶绿素荧光仪 控制单元为双通道，可连接温度传感器用于温度控制、连接氧气测量单元用于希尔反应测量等 具备极高灵敏度，最低检测极限为1μg Chla/L 测量光、光化光、饱和单反转光光源颜色、强度均可定制 主机配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图技术参数： 实验程序：叶绿素荧光诱导测量；PAM（脉冲调制）测量；OJIP快速荧光动力学测量；QA–再氧化动力学；S状态转换；快速叶绿素荧光诱导 荧光参数：ú PAM荧光淬灭动力学测量：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项叶绿素荧光参数与曲线；ú OJIP快速荧光动力学测量：OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数；ú QA–再氧化动力学（QA- reoxidation kinetics）：测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）ú S状态转换（S-state test）：S-state test荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量ú 提供用户自定义protocol功能，可实现PSII天线异质性PSIIα与PSIIβ分析、PSII有效天线截面积（s PSII）等参数的测量（仅限快速版）QA–再氧化动力学曲线和S-state test荧光衰减曲线（Li，2010） 时间分辨率（采样频率）：高灵敏度检测器，标准版时间分辨率为4μs，快速版为1μs 最低检测极限：1μg Chla/L 控制单元：配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图 Superhead测量室：o 测量光闪：617nm红橙光和455nm蓝光，光闪时间2–5μso 单周转饱和光闪：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，最大光强80000 μmol(photons)/m2.s，光闪时间20–50μs o 持续光化学光：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，任选其一，最大光强3000 μmol(photons)/m2.so 样品试管：底面积10×10mm，容积4mlo AD转换器：500 kHz/16–bit 定制superhead测量室（选配）：可分别定制测量光、饱和光闪和光化学光颜色（蓝色、青色、琥珀色等）以及检测波段（ChlA，ChlB） 远红外光源（选配）：用于激发光系统I，波长735nm 氧气测量模块（选配）：测量藻类的氧气释放 温度控制（选配）：TR 2000温度调节器，控温范围0–70℃，精确度0.1℃ 电磁搅拌（选配）：密封不锈钢外壳，IP64防护等级，手动转扭调速100-1000rpm，8mm×3mm标准磁力棒 通讯接口：USB FluorWin软件：定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示典型应用：1. 中科院水生生物所王强研究员使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）和TL植物热释光系统证明亚硝酸盐胁迫首先影响Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受体侧(Zhan X, et al, 2017)。这种光合作用深入机理的研究经常需要这两种仪器来配合完成。 2.中科院新疆生态与地理研究所潘响亮研究员及其课题组使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）深入开展了环境中重金属、盐分、有毒化合物、除草剂、杀虫剂、抗生素等各种有害物质对藻类的毒理研究。通过FL3500独有的高分辨率OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换等叶绿素荧光测量程序，全面揭示了不同浓度与处理时间对藻类光合系统造成损伤的毒理机制及其生态影响。目前，潘响亮课题组已经使用FL3500（FL6000之前型号）在国际SCI期刊与国内核心期刊上发表了二十余篇高水平文章。 产地：捷克部分参考文献：1. Manaa A., et al. (2019) Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-1142. Sicora C. I., et al. (2019) Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–4733. Smythers A. L., et al. (2019) Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-7124. Albanese P., et al. (2018) Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non‐model organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal, Volume96, Issue4, Pages 786-8005. Antal T., Konyukhov I., Volgusheva A., et al. (2018) Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.126936. Antal T. K., Maslakov A., Yakovleva O. V., et al. (2018). Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2 7. Biswas S., Eaton-Rye J. J. (2018). PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209. 8. Bonisteel E. M., et al. (2018). Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.9. Fang X., et al. (2018). Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.10. Kuthanová Trsková E., Belgio E., Yeates A. M., et al. (2018) Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany, Volume 69, Issue 18, 14 August 2018, Pages 4483–4493
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    厂商： 北京易科泰生态技术有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： FL6000
    价格： 10万 - 20万元
  • FL 6000双调制叶绿素荧光仪 400-860-5168转4470
    用途：FL 6000双调制叶绿素荧光仪测量叶绿素a（ChlA）的荧光强度。测量时，一组发光二极管发出持续几微秒、强度很低的测量光，激发叶绿素产生叶绿素荧光，叶绿素荧光由PIN光电二极管检测，并由16位A/D转换器数字化。该仪器支持脉冲光调制测量，同时可以捕捉快速的OJIP瞬态曲线、快速测量QA-再氧化动力学，S状态转换。FL 6000-F快速版双调制叶绿素荧光仪，可以进行闪光荧光诱导(FFI)实验，用于计算光合色素有效天线尺寸、天线连通性和快速光曲线。FL 6000-F的主要特点是配置有高功率的矩形光化光以及620nm的激发光源，特别适用于蓝藻的测量。QA受体的完全还原在25us内即可完成，仪器可以测量在单翻转饱和脉冲时的叶绿素荧光。该技术用于光系统II的有效天线尺寸及异质性和连接性的研究，不受DCMU或其它除草剂的干扰。FL 6000光学检测部件FL 6000-S，标准版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率4us 叶绿素a检测浓度：100ng/L 支持的荧光实验程序： -瞬时荧光 -QA再氧化 -Kautsky诱导效应 -淬灭分析 -快速OJIP曲线 -S状态转换FL 6000-F，快速版双调制叶绿素荧光仪 时间分辨率1us 叶绿素a检测浓度：1mg 支持标准版所有荧光实验程序 特殊实验程序：闪光荧光诱导(FFI) 特点：内置叶绿素荧光诱导测量、PAM脉冲调制测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA再氧化动力学、S状态转化、荧光淬灭测量测序，快速版具有闪光荧光诱导(FFI)测量功能；双调制技术，具备调制光化学光和持续光化学光；标准版时间分辨率达4us，快速版高达1us，是目前时间分辨率较高的叶绿素荧光仪；叶绿素检测灵敏度高，达1ug Chla/L；QA再氧化测量曲线应用领域：光合自养型微生物研究PSII光化学效率的测定水生生物初级生产力估算浮游植物光合性能和代谢扰动的研究光合突变体的筛选生物和非生物胁迫的检测；植物抗胁迫能力或者易感性研究；专业软件，内置淬灭分析、QA-再氧化、Kautsky诱导效应、OJIP等多种实验程序 技术规格：主体实验程序叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、QA再氧化、OJIP曲线、S状态转换、叶绿素荧光淬灭分析PAM荧光淬灭测量FO；FM；FV；FO'；FM'；FV'；FT；FV/FM、FV'/FM'、PhiPSII 、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等50多个叶绿素荧光参数和曲线OJIP快速荧光动力学测量OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数QA再氧化动力学测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）S状态转换荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量测量光标准：620nm和460nm，其他波长可选单翻转饱和脉冲100000µ mol(photon).m-2.s-1，最大持续时间150us光化光最大光强3000µ mol(photons).m-2.s-1；检测器FL 6000-F：1µ sFL 6000-S：4µ s控制单元双通道通用高精度自动微处理器样品管10x10mm，容积4mlA/D16位；500kHz通讯方式USB控制盒尺寸29*20*11cm测量单元尺寸直径16cm*6cm高重量5kg功率20W测量室可选，定制测量光、光化光和饱和脉冲以及检测波段氧气测量模块可选，测量藻类氧气释放温度控制器TR 2000，0-70℃，精度0.1℃，可选电磁搅拌器密封不锈钢，IP64，手动调速100-1000rpm,8x3mm磁力棒，可选远红光LED中心波长730nm，用于光系统I激发，测量Fo’，可选软件功能创建和存储实验草案、可通过FluorWin向导功能自动建立实验方案、实验数据的获取和输出、数据处理和显示 产地：捷克
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    厂商： 点将（上海）科技股份有限公司
    品牌： 捷克PSI
    型号： FL 6000
    价格： 面议
  • 博鹭腾调制叶绿素荧光活体成像系统PlantView230F 400-860-5168转4248
    产品介绍PlantView230F调制叶绿素荧光活体成像系统是一款用于研究植物光合活性的科研仪器，采用脉冲-振幅-调制技术来实时测量叶绿素荧光发光值。系统配备超高速数码相机，成像面积达150mmX94mm，具备高时间分辨率和空间分辨率。系统高度集成化，可实现藻类细胞的微距测量到整株植物样品的荧光成像分析。通过专业的软件算法，系统可测量多个荧光参数，通过测量叶绿素荧光反映光合作用的过程和变化以及植物样品的生理状态。测量过程快速、简单，对样品无破坏和干扰。 产品特点● 专业相机具有极高的灵敏度和时间分辨率，用于叶绿素荧光瞬时表达检测；系统采用大功率脉冲式LED光源，保证样品在强激发光下受光均匀；系统配备近红外和红外光源，可测量叶片吸光系数(Abs)，计算光合作用光系统II(PSII)电子传递速率。● 集成系统高度集成化，满足常见植物全株、叶片、果实、藻类等多种样本的荧光成像；高品质滤光片还可以测量绿色荧光蛋白成像，系统功能涵盖从单细胞到生态学，应用广泛。● 智能一键设置即可获得实验所需的各种叶绿素荧光参数；全自动智能仪器控制，轻松上手，快速成像；可预设多种实验方案，模块化设计，流程式操作。● 灵活光源与样品的固定测量距离为170mm，相机和光源可沿Z轴自动升降，测量不同高度、大小的植物；测量的植株最高可达400mm。 智能软件1、测量参数：仪器软件能实时显示Ft、Fo、Fm、Fv/Fm、 Fm’、Y(II)、Y(NPQ)、NPQ、qP、ETR 等18种荧光参数，非计算参数。每个参数均可显示2维荧光彩色图像。2、程序测量功能：可程序测量荧光诱导曲线、快速光曲线和暗弛豫，也可手动测量；在测量过程中能自动分析所有荧光参数的变化趋势。3、感兴趣功能：可在测量前或测量后任意选择感兴趣的区域（ROI），程序将自动对选择的ROI的数据进行变化趋势分析，并在报告文件中显示相关ROI的数据。所有报告文件中显示的数据都可导出到EXCEL文件中。4、软件自动存储以拍摄时间加自定义命名内容为后缀的原始数据，即拍即存，无需繁琐的存储操作及担心数据丢失。5、可预设多种实验方案，模式化设计，流程式操作。6、用户可自定义设置程序，数据结果自动存储并分析。 应用领域叶绿素荧光监测、植物育种筛选、植物生物节律研究、光合作用研究、植物抗逆性研究、海洋湖泊藻类研究、植物生态学研究、植物抗病性研究、水生生态学研究等。 应用案例
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    厂商： 广州博鹭腾生物科技有限公司
    品牌： 博鹭腾/BioLight
    型号： PlantView230F
    价格： 面议
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  • 莱恩德新品|便携式叶绿素测量仪：随时随地测量植物叶片的叶绿素
    点击此处可了解更多产品详情：便携式叶绿素测量仪　　在自然界中，植物是生命之源，通过光合作用将太阳能转化为化学能，为人类提供氧气和食物。在光合作用中，叶绿素是植物体内最重要的色素之一，它可以吸收太阳光能并转化为化学能，进而促进植物的生长和发育。因此，叶绿素含量的测量对于了解植物的生长状况和环境变化具有重要意义。　　　　为了方便快捷地测量叶绿素含量，人们发明了便携式叶绿素测量仪。该仪器采用光谱仪测量植物叶片的光谱反射率和透射率，并利用叶绿素在光谱中的特征吸收峰来计算叶绿素含量。通过该仪器，人们可以在短时间内获取大量植物叶片的叶绿素含量数据，从而对植物的生长状况进行评估和分析。　　　　便携式叶绿素测量仪具有多种优点。首先，它具有便携性，方便携带和操作，可以随时随地测量叶绿素含量。其次，它具有高精度和高可靠性，可以快速准确地测量叶绿素含量，并避免人为误差和环境因素的干扰。此外，该仪器还具有用户友好的操作界面和强大的数据处理能力，可以快速处理和分析测量数据，为科研和生产提供有力的支持。　　　　在应用方面，便携式叶绿素测量仪被广泛应用于农业、林业、生态学和环境科学等领域。在农业生产中，通过测量叶绿素含量可以评估作物的生长状况和营养状况，进而指导施肥和灌溉等管理措施。在林业研究中，叶绿素测量可以帮助人们了解森林生态系统的结构和功能，为森林保护和管理提供科学依据。在生态学领域，叶绿素含量可以反映植物对环境的适应能力和竞争能力，进而研究植物生态系统和全球气候变化等课题。　　　　总之，便携式叶绿素测量仪是一种非常有用的工具，可以帮助人们快速准确地获取植物叶片的叶绿素含量数据，从而对植物的生长状况和环境变化进行评估和分析。随着科学技术的不断发展，该仪器将会得到越来越广泛的应用和推广。莱恩德新品|便携式叶绿素测量仪：随时随地测量植物叶片的叶绿素
    时间： 2023-11-17
    作者： 莱恩德智能科技
  • ASD | 基于叶片光谱的玉米冠层叶绿素和叶片叶绿素的时空变化分析
    冠层叶绿素含量（CCC）可以反映一个种群的总光合生产力，是判断植物个体生长和营养状况的重要依据。通过遥感准确监测冠层和叶片尺度的叶绿素含量是确定作物生长状态和预测产量的关键。玉米是一种高秆作物，叶面积大，冠层深。它具有不均匀的叶片叶绿素含量（LCC）垂直分布，这限制了遥感的叶绿素含量评估。因此，了解LCC和叶片反射光谱的垂直异质性对提高CCC监测的准确性至关重要。 基于此，在本研究中，来自中国农业科学院作物科学研究所和宁夏大学农学院的研究团队以玉米为研究对象，于2019年和2020年在位于中国东部河南省黄淮海玉米生态区的中国农业科学院新乡实验站通过5个氮处理梯度（0、100、200、300和400 kg/hm2（记为N0–N400））建立各种冠层结构，采集不同生长季节作物冠层叶片，并测量了其LCC和叶片光谱反射率（ASD FieldSpec 4光谱仪+植物探头+叶片夹，光谱范围为350-2500 nm）。主要目标为：（1）理解施氮量对玉米冠层叶绿素垂直分布的影响以及生长季节叶绿素分布的动态变化；（2）在不同时空条件下探索冠层叶片光谱反射率特征差异以及验证基于叶片光谱反射率的VI模型是否可以准确反演LCC；（3）确定敏感叶位（可用于表征LCC和CCC之间的关系）以及评估基于叶片光谱的VI模型的鲁棒性和准确性，以评估冠层叶绿素状态。2020年9月2日研究区俯视图 (a)。高光谱反射率测量系统（b）。台式叶绿素分光光度计 (c) 。2020年8月8日五次氮处理（N）下的冠层状况（d）。【结果】2020年生长季节玉米冠层LCC的垂直剖面。（a、c、e）不同位置叶片的光谱反射曲线。（b、d、f）不同叶片位置波段与LCC的相关系数曲线。6种LCC-VI模型的rRMSE（%）：（a）mRER、（b）VOG2、（c）CIred-edge、（d）NDRE、（e）MTCI 和（f） DD。rRMSE用于评估模型反演精度。rRMSE的值较低对应于预测值和观察值更接近。中期模型（a）、后期模型（b）和生殖模型（c）CCC预测值和2019年实测值对比。【结论】 5个施氮水平用于构建不同的玉米冠层结构，揭示玉米冠层叶片叶绿素含量（LCC）的垂直异质性以及叶片光谱反射率特征。基于冠层LCC的垂直分布，建立多元逐步回归（MSR）模型以准确监测冠层叶绿素含量（CCC）；LCC表现出不对称的垂直分布，呈现出底层较低，中层上升，上层下降的趋势。氮处理显著改变了LCC，且不同处理之间LCC的垂直剖面分布基本一致。分析了不同时空条件下叶片光谱反射率特征。绿色波段（531-567 nm）和红边波段（712-731 nm）是监测LCC的敏感波段。6个经典的VIs用于构建VI-叶绿素模型，其中修正的红边比值植被指数（mRER，R2=0.87）构建的模型最优。VI模型可以准确预测生长中期的LCC（rRMSE=10.9%），但是，上、下叶层VI和LCC的相关性在营养生长早期和成熟阶段发生变化（rRMSE=36%-87%）。通过结合反演精度和多元逐步回归，结果发现在CCC估算中，营养阶段叶位L6以及生殖阶段L11+L14（L12是穗叶）最敏感。这样，基于叶片光谱反射率构建了VI-LCC-CCC模型以估算冠层叶绿素状态。利用2019年和2020年田间试验数据评估了模型性能，结果表明该模型具有良好的鲁棒性和准确性（rRMSE=8.97%）。请点击下方链接，阅读原文：https://mp.weixin.qq.com/s?__biz=MjM5NjE1ODg2NA==&mid=2650312959&idx=1&sn=579c2cd2862e8037f3fe0a32dda8e2ee&chksm=bee1bc00899635161ff79ab90bcff29bc9a96537973b3be2cb439a88caa8d8e36c29108f32eb&token=1852366781&lang=zh_CN#rd
    时间： 2022-07-19
    作者： 理加联合
  • 111万！广西大学水下调制叶绿素荧光仪等采购项目
    项目编号：GXZC2022-J1-002014-KLZB项目名称：专用仪器设备采购采购方式：竞争性谈判预算金额：111.0000000 万元（人民币）最高限价（如有）：111.0000000 万元（人民币）采购需求：水下调制叶绿素荧光仪1台(预算金额：人民币590000元)，珊瑚原位呼吸代谢测量仪1台(预算金额：人民币520000元)。简要技术需求或者服务要求见附件（具体内容详见本竞争性谈判文件）。合同履行期限：自签订合同之日起90日内整体完成供货安装调试。本项目( 不接受 )联合体投标。
    时间： 2022-07-08
    作者： dahua1981
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  • 叶绿素测定仪怎么测量植物的叶绿素相对含量

    [size=16px]　　叶绿素测定仪是一种用于测量植物叶片中叶绿素含量的设备。叶绿素是植物中进行光合作用的关键色素，它们吸收光能并将其转化为化学能以支持植物的生长和发展。以下是一般情况下使用叶绿素测定仪测量植物叶绿素相对含量的步骤：　　样本准备： 从要测量的植物中选取代表性的叶片样本。这些叶片应该是健康的、没有损伤的，并且尽可能避免太老或太嫩的叶片。　　叶片处理： 如果需要，将叶片处理成较小的块状或碎片，以确保测量时样本的均匀性。同时，避免过度损伤叶片，因为这可能会影响叶绿素的测量结果。　　提取叶绿素： 使用适当的提取液(比如乙醇、乙醚等)将叶片中的叶绿素提取出来。提取的过程通常需要在低温下进行，以防止叶绿素的降解。　　测量光吸收： 将提取液中的叶绿素溶液置于叶绿素测定仪中。这种仪器通过照射样本并测量样本对不同波长光的吸收来确定叶绿素的含量。最常见的方法是使用分光光度计，它可以测量不同波长下样本吸收的光强度。　　建立标准曲线： 使用已知浓度的叶绿素标准溶液，进行一系列测量以建立标准曲线。标准曲线可以用来将样本吸收的光强度值转换为叶绿素浓度值。　　测量样本： 使用同样的方法测量你的样本，获取其吸收的光强度值。　　计算叶绿素含量： 根据标准曲线，将样本的光吸收值转化为叶绿素浓度。如果你感兴趣的是叶绿素的相对含量，可以将不同样本的叶绿素浓度与标准样本进行比较。　　请注意，使用叶绿素测定仪需要一定的实验操作技能和基本的化学常识。在操作之前，云唐建议仔细阅读仪器的操作手册，并根据实际情况调整实验步骤。另外，确保在实验过程中遵循安全操作规范，使用适当的防护措施。[/size]

  • 叶绿素荧光显微成像技术在光合作用研究中的应用

    [align=center][size=16px][/size][/align][size=16px] 光合作用是地球上最重要的化学反应，植物、藻类及光合细菌等吸收光能、将[/size][size=16px]CO[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]和水转化为有机物并释放[/size][size=16px]O[/size][font='calibri'][sub][size=16px]2[/size][/sub][/font][size=16px]。获得光能的叶绿素分子从基态跃迁到激发态，激发态的叶绿素分子可通过三种途径释放能量回到基态：推动光化学反应、以热的形式耗散、释放光子产生荧光。这三种途径的总和是一定的，因此叶绿素荧光的变化反映了光化学效率和热耗散能力的变化。叶绿素荧光成像是[/size][size=16px]广泛应用[/size][size=16px]的[/size][size=16px]光合生理研究的重要探针[/size][size=16px]，[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像又将研究尺度进一步拓展到细胞、亚细胞水平。叶绿素荧光技术发展出了很多不同的测量程序，以慢诱导荧光动力学曲线为例，通过测量光（[/size][size=16px]ML[/size][size=16px]）、作用光（[/size][size=16px]AL[/size][size=16px]）、饱和脉冲光（[/size][size=16px]SP[/size][size=16px]）激发样品，记录动力学曲线并计算叶绿素荧光参数[/size][size=16px]，[/size][size=16px]可以用于反映植物光合作用机理和光合生理状况（[/size][size=16px]朱新广[/size][size=16px]，[/size][size=16px]2021[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光成像技术能记录整个叶片、植株等样品不同区域的荧光动力学分布变化，实现从宏观到微观的光合机理研究。叶绿素荧光成像由于其无损、高通量的技术特征，在光合作用相关突变体筛选领域成为了广泛应用的重要技术，为光合作用机理及抗[/size][size=16px]逆研究[/size][size=16px]提供了强大的技术支持。叶绿素荧光显微成像技术最早出现于[/size][size=16px]2000[/size][size=16px]年，[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px]等人将叶绿素荧光脉冲调制式激发光源与显微镜结合，首次获得了显微尺度的叶绿素荧光图像（[/size][size=16px]K[/size][size=16px]ü[/size][size=16px]pper[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2000[/size][size=16px]）。叶绿素荧光显微成像技术在国外已经展开多方面研究应用，[/size][size=16px]目前国内的叶绿素荧光成像显微研究尚处于起步阶段，多个课题组都[/size][size=16px]正[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索[/size][size=16px]这项技术[/size][size=16px]在[/size][size=16px]不同研究领域中[/size][size=16px]的[/size][size=16px]应用。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿素荧光技术[/size][size=16px]适用研究样品微观结构上光[/size][size=16px]合功能[/size][size=16px]的空间差异，例如叶片横截面栅栏组织与海绵组织的差异，[/size][size=16px]C[/size][size=16px]4[/size][size=16px]植物花环结构[/size][size=16px]中维管束鞘细胞与叶肉细胞的差异[/size][size=16px]，藻类中有差异的单个细胞、异形胞[/size][size=16px]等。我们多年来与[/size][size=16px]吉林师范大学、四川省农业科学研究院[/size][size=16px]等[/size][size=16px]单位[/size][size=16px]合作[/size][size=16px]，[/size][size=16px]目前已合作发表的[/size][size=16px]3[/size][size=16px]篇相关论文是国内该领域[/size][size=16px]开创性[/size][size=16px]的应用成果，[/size][size=16px]以叶绿素荧光显微成像的特色优势技术[/size][size=16px]为光合作用的微观[/size][size=16px]探究提供有力支撑[/size][size=16px]。[/size][size=16px][/size][size=16px] Yu[/size][size=16px]等[/size][size=16px]发现[/size][size=16px]狗枣猕猴桃[/size][size=16px]（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia [/size][size=16px]kolomikta[/size][size=16px]）[/size][size=16px]的白化[/size][size=16px]叶片[/size][size=16px]通过调整叶片结构及基因表达调控，仍然保持了相对较高的光合能力[/size][size=16px]。[/size][size=16px]应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像技术[/size][size=16px]比较了[/size][size=16px]白化和绿色叶片栅栏组织、海绵组织的叶绿素荧光参数，[/size][size=16px]揭示了白化叶片海绵组织光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强的机理[/size][size=16px]。[/size][size=16px]绿叶中栅栏组织[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（最大光化学效率）[/size][size=16px]更高，而白叶中海绵组织[/size][size=16px]显著增厚，[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更高[/size][size=16px]，[/size][size=16px]光[/size][size=16px]合能力[/size][size=16px]增强，补偿[/size][size=16px]了[/size][size=16px]白化的影响，成为叶片光合作用主力组织[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Yu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）[/size][size=16px]。[/size][size=16px]接下来[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px]等又比较了两种猕猴桃白化叶片的光保护策略差异[/size][size=16px]，狗枣猕猴桃的白叶[/size][size=16px]主要通过反射实现光保护，强光下花青素[/size][size=16px]积累，叶片[/size][size=16px]转变为粉色[/size][size=16px]，更有效地保护叶片[/size][size=16px]；[/size][size=16px]而[/size][size=16px]葛[/size][size=16px]枣猕猴桃（[/size][size=16px]A[/size][size=16px]ctinidia[/size][size=16px] [/size][size=16px]polygama[/size][size=16px]）[/size][size=16px]强光下[/size][size=16px]仍为白色[/size][size=16px]，[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有更[/size][size=16px]强[/size][size=16px]的叶绿[/size][size=16px]素荧光参数，说明[/size][size=16px]它[/size][size=16px]具有更高的强光适应能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Chen[/size][size=16px] [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 202[/size][size=16px]3[/size][size=16px]）。[/size][size=16px]Liu[/size][size=16px]等比较了干旱处理下的玉米叶肉细胞和维管束鞘细胞，发现这两种细胞具有不同的不同光保护策略[/size][size=16px]。对玉米[/size][size=16px]完整叶片的分析显示，[/size][size=16px]随着干旱处理程度增强，[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]（实际光化学效率）[/size][size=16px]降低，[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]（非光化学猝灭[/size][size=16px]系数[/size][size=16px]）[/size][size=16px]显著升高[/size][size=16px]。进一步应用[/size][size=16px]叶绿素荧光显微成像[/size][size=16px]的分析结果[/size][size=16px]与完整叶片[/size][size=16px]相符合，并且发现[/size][size=16px]与叶肉细胞相比，维管束鞘细胞[/size][size=16px] [/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]v[/size][/sub][/size][/font][size=16px]/[/size][size=16px]F[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]m[/size][/sub][/size][/font][size=16px]、[/size][size=16px]Φ[/size][font='calibri'][size=14px][sub][size=16px]PSII[/size][/sub][/size][/font][size=16px]更低，干旱胁迫后[/size][size=16px]NPQ[/size][size=16px]升高更显著[/size][size=16px]，[/size][size=16px]不同细胞的变化趋势[/size][size=16px]差异[/size][size=16px]表明它们[/size][size=16px]具有不同的光保护策略[/size][size=16px]，[/size][size=16px]维管束鞘细胞中可能具有更强的热耗散能力[/size][size=16px]（[/size][size=16px]Liu [/size][size=16px]et al.[/size][size=16px], 2022[/size][size=16px]）。[/size][size=16px][/size][size=16px] 叶绿[/size][size=16px]素[/size][size=16px]荧光显微成像技术在光合作用的微观研究领域具有独特的技术优势，在[/size][size=16px]光合作用机理研究、环境及毒理胁迫与抗性筛选、优良品系选育等领域[/size][size=16px]具[/size][size=16px]有广阔的应用前景。目前多家单位的科研人员[/size][size=16px]都[/size][size=16px]在[/size][size=16px]探索该技术[/size][size=14px][size=16px]的新应用，我们也正在[/size][size=16px]将该技术拓展到[/size][size=16px]多个新的领域，例如对[/size][size=16px]原生质体[/size][size=16px]以及[/size][size=16px]种子、茎秆等非叶片器官的[/size][size=16px]研究[/size][size=16px]。[/size][/size][font='黑体']参考文献：[/font][font='calibri'][size=13px][1] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]朱新广[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]许大全主编[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]光合作用研究技术[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]上海科学技术出版社[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2021[/size][/font][font='calibri'][size=13px][2] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Küpper[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]I[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]?etlík[/size][/font][font='calibri'][size=13px], [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Trtílek[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Photosynthetica[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2000, 38, s553-570 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][3] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]M[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Yu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]D[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] H[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 856732 [/size][/font][font='calibri'][size=13px][4] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] D[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Q[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Wen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] G[/size][/font][font='calibri'][size=13px]. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]L[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] Shi[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]et al.[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Physiol. Plant.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2023, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]175:[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]e13880[/size][/font][font='calibri'][size=13px][5] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]W[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] J[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]H[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Liu, [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Y[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] E[/size][/font][font='calibri'][size=13px].[/size][/font][font='calibri'][size=13px] [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Chen[/size][/font][font='calibri'][size=13px],[/size][/font][font='calibri'][size=13px] et al. [/size][/font][font='calibri'][size=13px]Front. Plant Sci.[/size][/font][font='calibri'][size=13px], 2022, 13: 885781[/size][/font]

  • 叶绿素测定仪是干什么的仪器

    叶绿素测定仪是一种用于测量植物或其他生物样品中叶绿素含量的仪器。叶绿素是植物中的关键色素之一，它在光合作用中扮演着重要的角色，将光能转化为化学能。测定叶绿素含量可以用来评估植物的生长状况、健康状态以及光合作用效率。　　叶绿素测定仪在许多领域都有广泛的应用，主要涉及到植物生长、生态系统研究、环境监测和农业等。以下是叶绿素测定仪的一些主要应用范围：　　植物生长与健康评估： 叶绿素测定仪可以用于评估植物的健康状况和生长状态。通过测量叶绿素含量，可以推断出植物的光合作用活性、养分吸收能力以及受到的环境影响。　　农业领域： 叶绿素测定仪在农业中被用来监测作物的生长情况和健康状态。这有助于决定适宜的施肥、灌溉和其他农业管理措施，以提高农作物产量和质量。　　生态学研究： 叶绿素测定仪在生态系统研究中非常有用。通过对植物叶片和水体中叶绿素的测量，可以了解生态系统的光合作用活动、能量流动和生态链的结构。　　水质监测： 叶绿素测定仪可用于评估水体中的藻类和蓝藻数量，从而判断水体的富营养化程度和水质。这对于保护水体生态平衡和提供饮用水质量至关重要。　　环境污染监测： 叶绿素测定仪可以用于检测污染物对植物生长和光合作用的影响。它们可以帮助监测工业排放、空气污染和土壤污染等对环境的影响。　　生物学研究： 叶绿素测定仪在生物学领域中用于研究不同生物体中叶绿素的含量和分布，如藻类、植物、海洋生物等。　　教育与科普： 叶绿素测定仪也可用于教育和科普活动，帮助人们理解光合作用的基本原理以及叶绿素在生态系统中的作用。　　总之，叶绿素测定仪在植物学、生态学、环境科学、农业和生物学等多个领域中都发挥着重要作用，帮助人们更好地了解和评估生态系统、植物健康和环境状况。

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  • 透射叶片夹 如海光电 叶片透射率 农作物叶片透射光谱
    1. 产品简介透射叶片夹是用于薄片、薄膜、农作物叶片透射率光谱测量配件、该配件需要搭配卤钨灯光源（HL10000-MINI）、光纤和光谱仪使用。 2. 产品外观 3. 产品特点? 使用简单：符合测量场景，测量简单；? 高反射率：内部采用PTFE材料,可见端反射率９７％。4. 产品参数产品参数LC-38-INT内部材料漫反射朗伯特性材料　反射率～97%积分球直径38mm光纤接口SMA905固定孔位M3,间距25mm尺寸164×59×78mm重量300g5. 操作演示(配合钨灯光源使用）
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    品牌： 如海光电
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  • SUS搅拌轴（带叶片）
    SUS搅拌轴（带叶片） SUS撹拌棒 IMPELLER SUS 编号 型号 直径× 长（mm） 旋转叶片直径（&phi mm） RMB（含税） 1-9068-01 小 &phi 8× 300 50 ¥ 500.00 1-9068-02 中 &phi 8× 350 50 ¥ 510.00 1-9068-03 大 &phi 8× 450 80 ¥ 530.00 1-9068-04 特大 &phi 8× 500 80 ¥ 570.00特点: 金属制，叶片可以打开。规格: 材质：不锈钢（SUS304）
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    品牌： DGM
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