葑醇

甘露醇检测时先出哪个峰？在检测甘露醇时是先出甘露醇的峰还是先出山梨醇的峰？

流动相为纯甲醇，样品为纯甲醇时，没有进样峰，在2.1min除了一个峰，这个峰会是怎样引起的呢？甲醇换个几瓶，仪器也换了，结果都一样，应该和甲醇没关系。走空针时，很干净，应该和柱子也没关系了。样品为纯乙腈时，有进样峰，还是有这个峰。求高人指点呀！！！

做白酒时，甲醇、乙醇出峰分不开，分别打色谱级甲醇、乙醇，它们的出峰时间基本相同，打标样时只出一个峰，要怎么调整才能做出两个峰呢？我用的是福立9790，DB-FFAP毛细管柱，柱温170℃（恒温），检测器190℃，注样器190℃。有人说可以用程序升温，但我的标样里含有水，打进去会不会损坏色谱柱呢？要是不会损坏，那我程序升温怎么设置？

毛细管电泳用甲醇做溶剂，出的甲醇系统峰，可以认为是中性物质出峰时间么，若样品出峰时间晚于系统峰出峰时间，可以认为样品是带负电的么？

新手求助，在进行杂醇油出峰时间确定的时候发现异戊醇的峰是3个峰连一起的这是正常的情况还是有杂质干扰。

现在做白酒中甲醇含量的测定，加标品后（0.02%体积分数）甲醇拖尾导致峰型很难看，以前做其他物质的时候有甲醇峰出现的时候也是如此，其他物质的峰型还不错。请高手给指点一下。仪器参数：安捷伦6890，进样口250，检测器FID250，程序升温：35度1min，3.5℃/min升到120。柱子是 VF-Wax 60*0.25*0.25。甲醇峰在10.3min左右。

芳樟醇 CAS:根据CAS确定的物质一般是指一种纯物质吗？本人用GC-MS分析芳樟醇的标准溶液，采用不同的程序升温，结果不同。以15℃/min分析时，谱图上就一个峰。但以4℃/min分析时，谱图上有四个峰，这是什么个状况啊？四个峰的碎片离子基本一样，就是丰度不同。

流动相是甲醇和水 比例为45:55待测样品用甲醇溶解每次都有一个不明的峰 在同一位置 怀疑是甲醇1、是甲醇吗2、能把它当背景去掉吗 因为有其它峰和她有点重叠

我用的强极性毛细管柱，苯峰在甲醇的拖尾处，乙醇的峰与甲醇又很近，如果乙醇含量高的话，又会积分成苯的峰。我应该用什么极性的柱子分离甲醇（空白溶剂）中乙醇与苯的峰呀，非极性柱子吗？

[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]gc[/url] 甲醇峰和乙醇峰之间有个出峰信号，实验了多种溶剂都不符合，想求助会是什么溶剂或者物质？

流动相是70%甲醇和30%水，进纯甲醇和水在同一时间出峰，但是流动相换成是70%乙腈和30%水，进纯甲醇时就会出来两个峰，这是怎么回事呢？麻烦大家能帮帮我呀，如果是溶剂峰的话为什么用乙腈是两个峰呢？我是色谱新手，多谢大家了

测白酒里的异戊醇，出峰的时候后边一直有一个小峰，加标回收后小峰面积基本不变，但是加标后异戊醇峰甚至会变得更小，加标回收率也一直不稳定，有没有大佬帮帮我，太难了??。

顶空GC-FID db-wax 柱子分析水中甲醇，以前的相同浓度的标样的峰面积都在18左右，前几天色谱出了故障，色谱柱拆到另一台色谱柱上用过，仪器修好之后，又重新换上原来色谱柱，甲醇的峰面积变为了2左右，将甲醇浓度增加10倍，峰面积仍为2左右，保留时间没有变化，似乎已没有线性关系。而这根色谱柱分析苯系物均没有问题。难道色谱柱会有选择性的坏？求各位指点，不胜感激。

峰纯度是如何计算的？因为样品峰型（样品峰型图及其光谱图请见[url]http://bbs.instrument.com.cn/shtml/20100728/2689015/[/url]图7、图8）不是很好，但是以顶峰（样品色谱图的4.806分钟峰）时紫外可见吸收光谱（见同一贴图8）建库，然后检索峰起始至峰结尾时不同保留时间时UV-Vis光谱图，发现重合都很好，但是报告模板中计算结果则显示峰纯度不高，何解？

同为极性柱子，为什么乙醇叔丁醇在PEG20M的柱子上乙醇出峰在前，FFAP的柱子顺序相反呢？

气相色谱岛津2014分析甲醇和乙醇含量，毛细管柱，柱温55，进样口120，检测器160，已经做过一年多了都很正常，中间一个多月没有用柱子，再用就有很多杂峰，老化处理，换了石英棉后，杂峰不见了，可是甲醇乙醇峰分不开了，请教高手

用FID测乙醇中的甲醇，乙醇出峰吗？

各位老师，按理说甲醇比乙醇极性大。为啥在极性柱上，确实甲醇先出峰，乙醇后出峰ne

流动相使用95%甲醇+5%水，不进空白试剂时一级质谱TIC图中没有出现峰，当空白溶剂使用甲醇（质谱级）或乙腈（色谱级）并进质谱时，两个不同溶剂居然在TIC图中的相同位置出峰，并且峰对应的质谱图主峰相同，从色谱柱后面接一小瓶流动相作为空白试剂进样没有出峰，柱子是刚换的新柱子，不可能出现污染等问题，甲醇和乙腈不是不应该出峰的吗？请各位大佬帮忙分析一下，感谢

最经用hp-innowax30*0.25*0.25 测试样品，升温程序为：初始50℃，以3℃/min升到250℃，发现乙醇溶剂峰在10-12min出峰，计算乙醇溶剂峰温度在80-86℃之间，因此，为了避免乙醇溶剂峰，优化升温程序为90℃（保持2min），以3℃/min升到150℃，然后以5℃/min升到200℃，在以10℃升高到250℃（10min）后发现，在10min左右还是有乙醇溶剂峰！！这是为什么呢？2.改用乙腈作为溶剂时，发现同样的现象，不管怎么提高初始温度，总是有乙腈溶剂峰？难道是柱子选的不对？对优化升温程序带来很大的困扰。现在只能在这个时间段关闭质谱检测器，急盼老师指导！

本人按2010版药典中乙醇的气相检测时发现，乙醇的保留时间会相错很多，一般DB-624的色谱柱，乙醇的出峰时间是很快的，一般5分钟左右。然而我最近在作这个检品是有两次却慢的出奇，一次13分钟出乙醇峰，还有一次21分钟才出主峰，这到底是什么原因造成的，请各位专家赐教。

用的FFAP毛细管柱，甲醇为空白溶剂，苯峰在甲醇峰的拖尾处，乙醇与苯峰又很近。当乙醇含量高时又会积分成苯峰。用什么极性的柱子可以分离这三个峰呀。

最近购回一台岛津GC-2010用的是全进样，但是这两天分析时，发现醇峰出得特高！14C上打出来只有3％左右的醇，在2010上醇含量能到20％，[em06] 请大家帮帮忙，不胜感激！[em61]

我在做农药残留，跑的三氯杀螨醇，柱子是HP-5，单标出了4个峰，分别在13.806min，16.485min,19.109min,20.485min，对应峰面积分别是6303.8，1840.4，2053.9，1571，我前任以前就选的最后一个峰代表的三氯杀螨醇，那么究竟选哪个峰呢？第一个峰面积大是大，但峰形不好，最后一个太小了，倒是16.485这个峰形也好，峰面积也还可以？究竟是哪个呢？大家又是怎么定的呢？都来说说。

我是按5009做的，单点，结果已经做出来，于是上来参与讨论一下，发现自己做的杂醇油总量要比别人做的小，百思不得其解。后来看到有网友问异戊醇的出峰问题，好些人说只出一个峰，但我历来做的都是两个峰的，异戊醇旁边的峰是活性戊醇。以前用30m的柱子这两个峰是分不开，用CPWAX 57cb 50m的才行，这个柱子的是CNAS专家建议采购的，因为几年前CNAS现场评审考核时候就是因为异戊醇的问题，没有做好。所以现在我看到我做的数比别人的要小，但是不知道怎么报，虽然自己的数是可能对的，但如果有好多数人的结果都是把活性戊醇和异戊醇当成了异戊醇，那我的结果最后肯定是偏离值了。我试了一下，把活性戊醇和异戊醇当一个峰计算，那结果就和其他人一致。 A / B甲醇：0.110 / 0.0944杂醇油：0.198 / 0.180

个人觉得甲醇中的苯系物标样分析中甲醇的峰过大，容易影响至苯的峰，同时实验中可能会因残留的甲醇易干扰采集样品的测试。现那里还有CS2中的七个苯系物标样卖