香菇多糖

香菇。研究发现，香菇中含有的真菌多糖是抗癌活性物质，能促进抗体形成，使机体对肿瘤产生免疫力，抑制肿瘤细胞生长。此外，香菇中的真菌多糖不仅能提高免疫力，还可以有效提高人体抗污染能力。

我也不知道要在哪个论坛发布这个求助帖，就在这发个先！急！跪求香菇多糖的毒性报告？谢谢了！

[b][color=#ff483f][size=4][font=KaiTi_GB2312]本人想测定香菇多糖的含量，想请教大家用哪种方法比较好？最好能比较一下这些方法，谢谢啦！[/font][/size][/color][/b]

香菇中的多糖、嘌呤、麦角甾醇、萜类化合物是发挥生理活性的主要物质，香菇多糖的健康作用尤为突出。平时可多吃些新鲜香菇和干香菇，入菜味道好营养价值高。

香菇。研究发现，香菇中含有的真菌多糖是抗癌活性物质，能促进抗体形成，使机体对肿瘤产生免疫力，抑制肿瘤细胞生长。此外，香菇中的真菌多糖不仅能提高免疫力，还可以有效提高人体抗污染能力。

从营养角度来说，香菇富含蛋白质、膳食纤维、钾、钙等营养素，晒干之后还有助补充维生素D。《中国营养科学全书》指出，香菇、牛肝菌、鸡腿菇等菇类中的多糖物质具有免疫功能，能抑制人体癌细胞增殖。

菌类是现在好多家庭喜闻乐见的食物，开发出油菜香菇，小鸡炖蘑菇等等好多菜名，那么香菇有什么样的功能，让人们这么推宠呢？下面让我们总结一下：1.提高机体免疫功能香菇多糖可提高小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬功能，还可促进T淋巴细胞的产生，并提高T淋巴细胞的杀伤活性。2.延缓衰老香菇的水提取物对过氧化氢有清除作用，对体内的过氧化氢有一定的消除作用。3.防癌抗癌香菇中含有的另外一种化合物——香菇嘌呤(也称赤酮嘌呤)可以降低胆固醇的水平。香菇含有的抗氧化剂含量是麦芽的12倍，是鸡肝的4倍。4.降血压、降血脂、降胆固醇香菇中含有嘌呤、胆碱、酪氨酸、氧化酶以及某些核酸物质，能起到降血压、降胆固醇、降血脂的作用，又可预防动脉硬化、肝硬化等疾病。5.治疗疾病香菇还对糖尿病、肺结核、传染性肝炎、神经炎等起治疗作用，又可用于消化不良、便秘等。

[color=#3e3e3e]泡发干香菇的水不要倒掉。很多人在泡发干香菇后，会将泡过香菇的水倒掉。这样做其实是一种浪费。因为干香菇在浸泡过程中，有些营养成分会溶于水中，比如水溶性维生素如B族维生素等，还有具有增强免疫力和抗肿瘤等功效的多糖类物质都会溶于水中。[/color][color=#3e3e3e]泡发干香菇的水营养丰富要正确使用呀！[/color]

最新发现与创新 科技日报上海6月29日电（记者左朝胜）今天，在上海浦东召开的化学糖生物学国际研讨会上，中科院上海药物研究所无限极多糖联合实验室公布了他们的最新研究成果：肠道为香菇多糖（Lentinan）等中草药多糖预留的秘密通道被发现。这些中草药多糖可以经由该通道被人体完整吸收，进而随血液达到全身各处，发挥其各种生物生理功效。 多糖是自然界中含量最丰富的物质之一，广泛存在于动物细胞膜、植物和微生物细胞壁中，对维持生命活动起着至关重要的作用。大量药理和临床研究发现，多糖、特别是中草药多糖，具有调节免疫、抗辐射、抗肿瘤、抗病毒、抗衰老、调节血糖、保护胃肠系统等作用。自1986年日本批准香菇多糖应用于临床以来，目前在中国、美国、韩国、日本及一些欧洲国家，已有几十种多糖被批准应用于疾病的治疗或辅助治疗。同时，多糖还被广泛应用于保健食品。 但由于多糖的分子量一般都很大，如果一个水分子相当面包屑那么大的话，一个高活性多糖分子起码会像一个汉堡包。水分子可以自由进出肠道壁细胞，多糖也可以吗？这个问题一直困惑着中外科学家。 2009年，中科院上海药物研究所丁侃研究员与无限极（中国）有限公司联合开展多糖吸收机制研究，经过几年努力，利用Caco-2细胞、多糖荧光标记等手段，终于找到了肠道给多糖预留的秘密通道——clathrin蛋白。 多糖可借助clathrin蛋白进入肠道细胞内，然后再进入毛细血管，随血液到达全身各处，与其受体结合发挥各种生物活性。该研究成果得到了美国功能性糖组学协会、国际糖复合物组织的赞赏和肯定，并得到世界各国多糖研究领域专家的关注。这项成果为多糖各种生理功效的活性机制研究奠定了坚实的基础，不但为口服吸收与口服有效提供了新依据，而且为多糖靶向治疗提供了可能性。 《科技日报》（2013-6-30 一版）

http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/brow/em09504.gif各位大虾，请教一下多糖分子量分布GPC柱子的选择问题，我想做香菇多糖的分子量分布，对照的分子量分别为10000,21400,41100,133800和2000000，样品的分子量大约为40~50万，请问我选择OHpak SB-803HQ 的柱子合适吗？我在网上查了一下，它的排阻限是 100,000，粒径是 6um，规格I.D.×L（mm） 8.0 x 300。还有这里的排阻限是什么意思啊，是指能通过该柱子的最大分子量吗？多糖的分离与填料的粒径有何关系啊？

首先，从营养成分来看，两者基本相当，但干香菇却多了一份特别的宠爱——维生素D。这种维生素能有效预防佝偻病，为身体提供额外的健康保障。而鲜香菇则以它鲜嫩多汁的口感，赢得了食客的喜爱。　　再者，适宜人群也各有不同。干香菇富含维生素D，对于需要补充钙质的儿童和老年人来说，是极佳的选择。而鲜香菇则因其独特的口感，成为年轻人炒菜的佳品。　　味道上，干香菇更胜一筹。在干制的过程中，香菇的内部结构发生了奇妙的转化，生成了更多的香菇精和鸟苷酸，这些香味物质让干香菇炖出的汤香气四溢，口感醇厚。　　储存方面，鲜香菇因水分含量大，需要尽快食用，而干香菇则因其干燥的特性，易于储存和运输。　　从价格角度看，干香菇因其独特的口感和易储存的特性，市场价格通常高于鲜香菇。　　制作过程中，干香菇需要泡发，稍显繁琐 而鲜香菇随买随做，方便快捷。　　但无论选择哪一种，都需适量食用，避免过量引起不适。健康饮食，从点滴做起。

香菇味道鲜美、香气沁人，素有“植物皇后”的美誉，且富含维生素D，可以促进人体对钙的吸收。同时具有提高免疫功能，辅助控血压、控血脂香菇味道鲜美、香气沁人，素有“植物皇后”的美誉，且富含维生素D，可以促进人体对钙的吸收。同时具有提高免疫功能，辅助控血压、控血脂、延缓衰老等好处。【推荐吃法】可炒、可炖汤，干香菇用冷水泡发，更能保存其中的营养成分。、延缓衰老等好处。【推荐吃法】可炒、可炖汤，干香菇用冷水泡发，更能保存其中的营养成分。

香菇搭配黑豆养肾气。在选择香菇时，如果需要长期储存或熬汤等，选择干香菇更为合适；如果需要立即食用或清炒、火锅等，尤其是对于老人小孩来说，选用鲜香菇更为合适。

蘑菇中的多糖可以帮助调节免疫、降低炎症；膳食纤维有助降低餐后血糖；β葡聚糖对改善血脂有明显效果，因此，经常食用蘑菇可帮助降低慢病风险。

多糖类手性固定相在色谱中的应用郑 芸 方积年(中国科学院上海生命科学院上海药物研究所，上海201203)摘要　手性色谱技术是最重要的手性分离方法之一，它不仅可以快速地分析对映体纯度，也可以用于大量制备光学异构体。设计和发展高效的固定相是手性色谱技术的核心。在诸多的手性固定相中，多糖类手性固定相因品种繁多、耐用而被广泛应用。本文综述了多糖类手性固定相在高效液相色谱、模拟移动床色谱、超临界流体色谱及膜分离中的应用。共引用文献52篇。关键词　多糖，手性固定相，色谱，评述1 引 言　　近20年来，用色谱方法分离手性化合物取得了显著进展，已广泛应用于许多领域，如药物化学、不对称合成和生物分析等，不仅可以测定光学纯度，也可用于大量制备光学异构体。　　手性色谱技术的核心是设计和制备适用范围广的手性固定相(chiral stationary phase，CSP)。至今已制备出大量用于色谱的CSP，其中120多种已商品化。CSP可分为两大类：一类是由小分子固定在硅胶载体上构成(刷型或Pirkle型)，另一类是用光学聚合物固定在载体上制成，多孔胶状的聚合物也可直接用作CSP。其中Okamoto等发展的多糖类固定相是非常有用的分离工具，它们种类繁多、耐用而且负荷量大。其它广泛使用的手性固定相有衍生化的酒石酸CSP(Kromasil—TBB) ]、a１一酸性糖蛋白、Pirkle固定相、环糊精、聚丙烯酰胺和大环抗生素，如万古霉素、teicoplanin和瑞斯托菌素以及最新的用分子印记技术及仿生传感技术发展的CSP 。　　多糖，如纤维素和淀粉是自然界大量存在的有光学活性的生物聚合物。它们具有良好的精细结构，能拆分异构体，包括氨基酸衍生物和联苯衍生物的阻转异构体，但它们的手性识别能力不强，适用面也很窄，只能用于毛细管电泳(CE)分析中。半合成的经过改性的多糖适用范围则大大扩展，可用于LC、CE、SFC、TLC、膜分离及萃取中，既可用于分析也可用于制备。经研究发现，多糖类衍生物的手性识别能力与单糖残基的性质、连接位置和连接形式有关。2 高效液相色谱(HPLC)　　多糖类手性固定相在HPLC中的应用相当广泛，常见的商品化多糖类手性固定相及应用实例可参考相关文献。纤维素类多糖为刚性的线形结构，而淀粉类多糖具有螺旋形结构。据报道有84％的小分子外消旋化合物可用Chiralcel OJ、Chiralcel OD、Chiralpak AD、Chiralpak AS分离 。用HPLC分析对映体时，除了常用的UV或示差折光指数检测器，还可使用专门检测手性物质的旋光检测器和圆二色散检测器。这也是HPLC比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]和NMR光谱等其它分析方法的优越之处。　　为提高手性分离效果以利于检测，还可以对样品进行适当的衍生化。Fukushima 用荧光试剂DBD—PZ([4．[(N，N—dimethylamino)一sulfony1]－7一piperazino-2，1，3-benzoxadiazole])和DBD—COHz(4[[(N—hydrazinoformy1)methy1]一N—methy1]amino-7一[N，N一(dimethylamino)sulfony1]-2，1，3-benzoxadiazole)对(RS)-2一芳基丙酸类化合物进行了衍生化，并发现衍生物洗脱顺序发生改变。3 动态高效液相色谱(DHPLC)　　新发展的手性DHPLC方法 可用于研究高温时立体化学稳定的手性化合物，它可得到一系列受温度控制的平顶或峰形曲线，从而可以考察对映体互变的动态过程、动力学数据及对映体互变的能垒。一般在CSP上用色谱方法分离外消旋混合物，最多可以得到收率50％ 的两种纯的光学异构体。而在DHPLC中，利用CSP来达到对映体互变平衡，从而使分离和平衡合二为一，理论上可以从外消旋混合物中以100％收率得到一种纯的光学异构体。它的基本原理是外消旋混合物立体化学稳定在较低温度时对映体互变过程被抑制，而较高温度发生对映体互变。实验中让外消旋混合物先通过一个低温CSP柱子，将先洗脱出来的组分(A)继续通人第二个高温CSP柱子，收集后洗脱组分(B)。(A)进入第二个柱子后停留足够长时间达到对映体互变平衡，再继续洗脱，得到(A)和(B)。如果进行多次循环平衡、过柱，则可得到纯的对映体(B)。如Lorenz等用DHPLC分离一螺环化合物，该化合物可通过螺环处的C—O 键开环和闭环进行对映体互变。将它依次通过0℃和40℃ 的两根Chiralcel OD柱，平衡2h，即可得到32％ ee(enantiomerie excess，ee)的(+)一对映体。4 模拟移动床色谱(SMB)　　至今批次处理色谱在应用中仍占主导地位，但大规模制备需要大量CSP。CSP价格昂贵，而且产品的浓度低，洗脱液消耗量大，难以回收。SMB可以节省90％ 的流动相并得到更高的产率。在批次处理色谱中被分离组分在流动相的驱动力下移动，固定相只有一小部分起作用。在移动床色谱中，不仅流动相发生移动，固定相也要向相反方向移动，易洗脱的化合物(萃余液)随流动相移动，难洗脱的化合物(萃取液)随固定相移动。整个固定相的分离能力被持续利用，明显地提高了系统产率。但就技术而言很难移动固定相，因此采用模拟方式，SMB的环状柱子实际上是用许多小柱依次连接而成，有规律地改变进样口和出样口，可以达到和固定相移动相同的效果。SMB技术起于20世纪60年代UOP(Universal　Oil Products，Des Plaines，IL，USA)从C８ 中分离对二甲苯，后来该技术被广泛用于制药工业，以获得光学纯药物。其中应用于SMB的CSP约有70％是多糖类CSP。如Nagamatsu等用SMB方法替代以前的非对映体结晶的方法，用稍做改性的Chiralcel OF(cellulose 4-chlorophenyl carbamate)分离了一种制药工业的中间体喹啉甲瓦龙酸酯。Francotte等的研究还发现，SMB对于难溶的化合物，如formoterol尤为有用。而且可调节不同参数如进样率和萃取率来达到最佳纯度和产率。

芹菜炒香菇食材准备：芹菜、香菇、小米辣、蒜末。做法流程：1.清洗干净香菇和芹菜，然后将香菇切成薄片、芹菜切成小段准备好，再切好蒜末和小米辣。2.接着热锅烧油，油热以后，放入蒜末和小米辣爆香，然后倒入香菇一起翻炒均匀，炒至香菇变软之后，再加入芹菜继续翻炒。3.加入适量的食盐和鸡精调味提鲜，然后继续翻炒均匀，炒至芹菜和香菇断生后，即可出锅开吃。[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/09/202309121352274620_3311_1642069_3.png[/img]

请问香菇中二氧化硫国家限量标准是多少？香菇中的糖分如何测定呢？请高人指点。

苯酚-硫酸法是一种常用的检测粗多糖含量的方法，其原理是苯酚-硫酸试剂可与游离的寡糖、多糖中的己糖、糖醛酸起显色反应，在480-490 nm处有最大吸收值，吸收值与糖含量呈线性关系。此法是先用标准品多糖制作标准曲线后，再通过多糖的显色反应测定吸光度，然后根据其在曲线上的位置推算出多糖的浓度从而推算其含量。此法操作简单、快速、灵敏、重复性好，对每种多糖仅需制作一条标准曲线[1]。目前大家研究较多的、生物活性较高的一些真菌多糖，如香菇多糖、灵芝多糖、姬松茸多糖、猴头菇多糖、灰树花多糖等[2]，在结构上大多是以β-（1→3）、β-（1→4）或β-（1→6）糖苷键连接的葡聚糖，另外，分子量也一般分布在十几万到几十万之间。因此，由北京卫生防疫站建立，经中国预防科学院营养与食品卫生研究所验证的《粗多糖含量的测定方法》中建议使用50万分子量的葡聚糖作为标准品[3]。为行业内粗多糖含量的测定统一了标准，使各企业之间多糖类产品更具有可比性。燕麦β-葡聚糖是一种β-（1→3）-（1→4）键接的线性葡聚糖，在结构、粘度等其他物理性质上与常见的植物和真菌多糖很相似，适合作为植物、真菌来源多糖含量测定的标准品。但由于多糖纯化困难，市面上不少葡聚糖纯度较低，不适合作为标准品。下面，我们来比较两种不同纯度的燕麦β-葡聚糖产品作为多糖标准品的区别。1 材料与方法1.1 实验材料高纯度燕麦β-葡聚糖PS-Con-Ⅰ由武汉百特纯大分子科技有限公司提供，纯度大于97%（其中，另外3%主要是结合水），低纯度燕麦β-葡聚糖由某食品研究所提供，纯度约50%，苯酚、浓硫酸均为化学纯。1.2 实验方法样品溶解：高纯度燕麦β-葡聚糖经70℃水浴，15min后完全溶解。低纯度燕麦β-葡聚糖70℃水浴，30min后仍有不溶物，升高溶解温度至90℃后继续溶解30min，仍有少量不溶物，过滤。溶液配制：配制0.1mg/ml葡聚糖标准溶液，50mg/ml苯酚溶液备用。标准曲线的制作：精密吸取葡聚糖标准液0.10，0.40， 0.80，1.20，1.60，2.00ml（分别相当于葡聚糖0.01，0.04，0.08，0.12，0.16，0.20mg），补充水至2.0mL，加入苯酚溶液1.0ml，混匀，再加入浓硫酸5ml，混匀，沸水浴2分钟，混匀，冷却后用分光光度计在485nm波长处以试剂空白溶液为参比，测定吸光度值（A），以A为横坐标，葡聚糖含量C为纵坐标绘制标准曲线。2 结果与分析2.1 样品溶解高纯度燕麦β-葡聚糖溶解速度较快，溶液澄清透明，说明此产品溶解性良好。低纯度燕麦β-葡聚糖难以溶解，且溶解1h后仍有不溶物存在，说明此产品溶解性差，杂质较多。 2.2 标准曲线下表为两种标准品分别配制不同葡聚糖浓度（含量）反应后得到的吸光值：葡聚糖含量(mg)0.010.040.080.120.162.00高纯度标样吸光值0.0530.0800.2000.2620.3530.450低纯度标样吸光值0.0010.0550.1130.1730.2400.320通过数据处理，得到标准曲线如下：高纯度燕麦β-葡聚糖 C=0.4657A-0.0068 (R=0.9955)低纯度燕麦β-葡聚糖 C=0.609A+0.0101（R=0.9985）比较这两个标准曲线发现，当待测样品吸光值一定，使用低纯度葡聚糖作为标准品得到的标准曲线计算葡聚糖含量值时，明显高于高纯度标准品。究其原因，低纯度葡聚糖所含杂质较多，在作为标准品时，部分杂质不能溶解，却计入了标准品葡聚糖总量，因此，使得结果偏高。另外，即使溶解的物质中，也有可能存在部分不能参加反应的蛋白等杂质，同样会造成结果偏高。由以上数据和分析可以得出，测定粗多糖含量不能使用低纯度葡聚糖作为标准品，应尽量选用高纯度葡聚糖标准品，按照国家建议方法和行业标准进行检测，这样才能保证各企业多糖系列产品在含量和纯度上的可比性，有利于规范企业行为和保健品市场。参考文献[1] 胡居吾，范青生，肖小年. 粗多糖测定方法的研究. 江西食品工业. 2005, 1[2] 李明元. 真菌粗多糖测定方法的研究. 食品研究与开发. 2007, 5[3] 粗多糖的测定方法. 北京卫生防疫站建立，经中国预防科学院营养与食品卫生研究所验证. 食品伙伴网[em0805]

苯酚-硫酸法是一种常用的检测粗多糖含量的方法，其原理是苯酚-硫酸试剂可与游离的寡糖、多糖中的己糖、糖醛酸起显色反应，在480-490 nm处有最大吸收值，吸收值与糖含量呈线性关系。此法是先用标准品多糖制作标准曲线后，再通过多糖的显色反应测定吸光度，然后根据其在曲线上的位置推算出多糖的浓度从而推算其含量。此法操作简单、快速、灵敏、重复性好，对每种多糖仅需制作一条标准曲线[1]。目前大家研究较多的、生物活性较高的一些真菌多糖，如香菇多糖、灵芝多糖、姬松茸多糖、猴头菇多糖、灰树花多糖等[2]，在结构上大多是以β-（1→3）、β-（1→4）或β-（1→6）糖苷键连接的葡聚糖，另外，分子量也一般分布在十几万到几十万之间。因此，由北京卫生防疫站建立，经中国预防科学院营养与食品卫生研究所验证的《粗多糖含量的测定方法》中建议使用50万分子量的葡聚糖作为标准品[3]。为行业内粗多糖含量的测定统一了标准，使各企业之间多糖类产品更具有可比性。燕麦β-葡聚糖是一种β-（1→3）-（1→4）键接的线性葡聚糖，在结构、粘度等其他物理性质上与常见的植物和真菌多糖很相似，适合作为植物、真菌来源多糖含量测定的标准品。但由于多糖纯化困难，市面上不少葡聚糖纯度较低，不适合作为标准品。下面，我们来比较两种不同纯度的燕麦β-葡聚糖产品作为多糖标准品的区别。1 材料与方法1.1 实验材料高纯度燕麦β-葡聚糖PS-Con-Ⅰ由武汉百特纯大分子科技有限公司提供，纯度大于97%（其中，另外3%主要是结合水），低纯度燕麦β-葡聚糖由某食品研究所提供，纯度约50%，苯酚、浓硫酸均为化学纯。1.2 实验方法样品溶解：高纯度燕麦β-葡聚糖经70℃水浴，15min后完全溶解。低纯度燕麦β-葡聚糖70℃水浴，30min后仍有不溶物，升高溶解温度至90℃后继续溶解30min，仍有少量不溶物，过滤。溶液配制：配制0.1mg/ml葡聚糖标准溶液，50mg/ml苯酚溶液备用。标准曲线的制作：精密吸取葡聚糖标准液0.10，0.40， 0.80，1.20，1.60，2.00ml（分别相当于葡聚糖0.01，0.04，0.08，0.12，0.16，0.20mg），补充水至2.0mL，加入苯酚溶液1.0ml，混匀，再加入浓硫酸5ml，混匀，沸水浴2分钟，混匀，冷却后用分光光度计在485nm波长处以试剂空白溶液为参比，测定吸光度值（A），以A为横坐标，葡聚糖含量C为纵坐标绘制标准曲线。2 结果与分析2.1 样品溶解高纯度燕麦β-葡聚糖溶解速度较快，溶液澄清透明，说明此产品溶解性良好。低纯度燕麦β-葡聚糖难以溶解，且溶解1h后仍有不溶物存在，说明此产品溶解性差，杂质较多。 2.2 标准曲线下表为两种标准品分别配制不同葡聚糖浓度（含量）反应后得到的吸光值：葡聚糖含量(mg)0.010.040.080.120.162.00高纯度标样吸光值0.0530.0800.2000.2620.3530.450低纯度标样吸光值0.0010.0550.1130.1730.2400.320通过数据处理，得到标准曲线如下：高纯度燕麦β-葡聚糖 C=0.4657A-0.0068 (R=0.9955)低纯度燕麦β-葡聚糖 C=0.609A+0.0101（R=0.9985）比较这两个标准曲线发现，当待测样品吸光值一定，使用低纯度葡聚糖作为标准品得到的标准曲线计算葡聚糖含量值时，明显高于高纯度标准品。究其原因，低纯度葡聚糖所含杂质较多，在作为标准品时，部分杂质不能溶解，却计入了标准品葡聚糖总量，因此，使得结果偏高。另外，即使溶解的物质中，也有可能存在部分不能参加反应的蛋白等杂质，同样会造成结果偏高。由以上数据和分析可以得出，测定粗多糖含量不能使用低纯度葡聚糖作为标准品，应尽量选用高纯度葡聚糖标准品，按照国家建议方法和行业标准进行检测，这样才能保证各企业多糖系列产品在含量和纯度上的可比性，有利于规范企业行为和保健品市场。参考文献[1] 胡居吾，范青生，肖小年. 粗多糖测定方法的研究. 江西食品工业. 2005, 1[2] 李明元. 真菌粗多糖测定方法的研究. 食品研究与开发. 2007, 5[3] 粗多糖的测定方法. 北京卫生防疫站建立，经中国预防科学院营养与食品卫生研究所验证. 食品伙伴网

1、制作干香菇之前肯定要浸泡一下，一般都是用凉水浸泡，前一天晚上浸泡到第二天中午就可以用了，如果干香菇的个头比较小，泡的时间就可以短一些，一般十个小时左右就可以了，如果体积比较大，那么至少要泡12个小时，这样才能够更好的泡发开来。　　2、干香菇也可以用温水泡发，在制作之前先把香菇表面清洗一下根部去除，然后放到温水里面浸泡1到2个小时，等到变软褶皱打开就可以朝着一个方向旋转，这样泥沙就能够很快的沉到盆底，最好用25度左右的温水来泡发。　　3、还可以用快速泡发干香菇的方法，有的时候需要做菜，但是香菇还没有泡，这个时候就可以用热水快速的浸泡一下，放到容器里面，再加入五十度左右的热水，盖上盖子摇晃五分钟左右就泡好了，这种方法非常快速。

[size=4]求香菇的上氟乐灵，甲基毒死蜱，毒死蜱，氯杀螨，乙硫磷，氯苯嘧啶醇[font=Times New Roman] [/font][font=宋体]氟虫腈的前处理方法，能够有效去除杂质的，谢谢大家，这个香菇上的杂质太多了，用弗洛里硅土不管用，杂质很多。[/font][/size]

看：外形菇肉厚实，菇面平滑，大小均匀，菇褶紧实细白，菇柄短而粗壮，边缘内卷、肥厚。色泽黄褐或黑褐的为好，好菇面会稍带白霜。 闻：具有浓郁的、特有的香菇香气。无香味，或有其他怪味、霉味的品质就差。 摸：干香菇要干燥，含水量以11%~13%为宜。但不能太干，一捏就碎的，这样的品质不好。 曾担任韩国《文化日报》医学专栏记者的金妍秀在其书中写道，韩国女性每日必吃干香菇。女人过50岁后，腰就会弯，身高也会降低，预防的最好措施就是提前补充钙以及帮助钙吸收的维生素D,而干香菇正是含有这两种营养元素的食物。 需要提醒的是，这里的香菇一定是在阳光下经过暴晒的干香菇，这是因为香菇中含有麦角甾醇，这种物质和太阳光接触即变成维生素D,可促进身体的正常生长和发育。购买新鲜香菇后，均匀地铺在报纸上晒干，1次1把，煎后泡茶，每天饮用。时下的干香菇不少是直接用机器加工，韩国人经常买回家后再次晒干，这样也更安全。 浙江林学院旅游管理学院健康管理系主任冯磊提醒，除了吃一些干香菇外，还是应该多吃牛奶、豆制品、小虾皮，这样补充钙质更为充分。而多晒晒太阳，维生素D的补充也更为充分。 干香菇无论蒸、炒、焖、炖都可以，最好与荤食搭配。需要注意的是，干香菇对清洗条件较为苛刻，操作不当会破坏其有效营养成分。泡干香菇时，用水先将其表面的尘土冲掉，再放入适量温水中浸泡约一小时，注意浸泡的时间不要过长。然后用手指朝着一个方向搅动或是将香菇的蒂部朝下在水中抖动，以脱去泥沙。

[b] 水浴浸提猴头菇粗多糖的研究[/b][align=left] 目前多糖的传统提取方法有水提醇沉、酸液/碱液提取、酶解法等。近年来，微波、超声波,膜处理和CO超临界萃取等方法作为辅助提取或精制，也取得了较好的提取效果。考虑到多糖是一种极性大分子化合物，溶于水而不溶于有机溶剂，本研究采用了不易导致多糖降解的水浴浸提法，并在此基础上辅以微波和超声波两种方式复合提取，不仅操作简便，缩短提取时间，并能有效提高多糖得率。[/align][align=left]水浴浸提法[/align][align=left] 一般植物性多糖的提取多采用热水浸提法，其原理是借助于热力作用使细胞膨胀，发生质壁分离，水渗入细胞壁和细胞质中，溶解液泡中的物质，使其穿过细胞壁，扩散到外部溶剂中。[/align][align=left]1 浸提时间对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left]猴头菇子实体粉碎成过20目筛，称取等量的子实体粉末（2.00克），按重量的20倍加入蒸馏水，分别于90℃水浴中浸提4 h、6 h、8 h，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]2 浸提温度对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left]称取等量的子实体粉末（2.00克），按重量的20倍加入蒸馏水，分别于85℃、90℃、95℃水浴中提取4h，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]3 料液比对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left]称取同等量的子实体粉末（2.00克），按重量的15倍、20倍、25倍加入蒸馏水，分别于90℃水浴中提取4h，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]4 浸提次数对猴头菇多糖提取效果的影响[/align][align=left] 称取同等量的子实体粉末（2.00克）三份，按重量的20倍加入蒸馏水，分别于90℃水浴中提取1、2、3次，用3号玻璃坩埚过滤并洗涤残渣得清液，合并清液并定容至250mL，清液用超纯水再稀释10倍后，取1mL滤液测定多糖浓度,每个处理3个重复。[/align][align=left]5 正交试验[/align][align=left]为进一步探讨浸提参数中的时间、温度、料液比和浸提次数对子实体多糖的影响。在单因素试验和分析的基础上，进行综合4因素3水平的正交试验。[/align][align=left]结果与讨论[/align][align=left][/align][align=left]1、浸提时间对猴头菇子实体多糖的影响[/align][align=left][/align][align=left] 以过20目筛的猴头菇粉末（下面的试验相同）为实验材料，研究浸提时间对猴头菇多糖浸提效果的影响，在90℃分别浸提4h、6h、8h，实验结果如表2-2。由表2-2可知，猴头菇多糖浸提6h时，多糖浸出量较大；随着浸提时间的延长，多糖浸出量增大不显著，为了节约成本及提高效率，故选择6h作为水浴浸提的最佳条件。[/align][align=left] 表1 浸提时间对猴头菇粗多糖提取的影响[/align][align=left] Table 1 Effects of extracting time on polysaccharide yield[/align][align=left][/align] [table=492][tr][td=1,2,188] 项目[/td][td=3,1,304] 不同浸提时间的吸光值[/td][/tr][tr][td=1,1,100] 4h[/td][td=1,1,96] 6h[/td][td=1,1,108] 8h[/td][/tr][tr][td=1,1,188] OD[sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.963[/td][td=1,1,96] 1.245[/td][td=1,1,108] 1.316[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.884[/td][td=1,1,96] 1.233[/td][td=1,1,108] 1.210[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.902[/td][td=1,1,96] 1.239[/td][td=1,1,108] 1.289[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 平均值[/td][td=1,1,100] 0.916[/td][td=1,1,96] 1.239[/td][td=1,1,108] 1.272[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 多糖（以葡萄糖计）(ug.mL[sup]-1[/sup])[/td][td=1,1,100] 59.248[/td][td=1,1,96] 80.359[/td][td=1,1,108] 82.516[/td][/tr][tr][td=1,1,188] *差异性显著分析[/td][td=1,1,100] Aa[/td][td=1,1,96] Bb[/td][td=1,1,108] Bb[/td][/tr][/table][align=left][/align]备注：*：单因素重复性差异显著性结果，以95%为概率。[align=left][/align]2 、浸提温度对猴头菇子实体多糖的影响[align=left][/align][align=left]以猴头菇粉末为实验材料，研究浸提温度对猴头菇多糖浸提效果的影响，分别在85℃、90℃、95℃浸提6h，其多糖浸出量如表3所示。由表3可知，在90℃下产量最高，随着温度的升高，多糖浸出量反而减少，差异达到极显著，这可能是由于温度使多糖部分降解的原故。[/align][align=left] [/align]表2 浸提温度对猴头菇的多糖浸提的影响[align=left][/align]Table 2 Effectsof extracting temperature on polysaccharide yield[align=left][/align] [table=468][tr][td=1,2,188] 项目[/td][td=3,1,280] 不同浸提温度的吸光值[/td][/tr][tr][td=1,1,100] 85℃[/td][td=1,1,96] 90℃[/td][td=1,1,84] 95℃[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.574[/td][td=1,1,96] 0.963[/td][td=1,1,84] 0.414[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.562[/td][td=1,1,96] 0.889[/td][td=1,1,84] 0.453[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.581[/td][td=1,1,96] 0.945[/td][td=1,1,84] 0.462[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 平均值[/td][td=1,1,100] 0.572[/td][td=1,1,96] 0.932[/td][td=1,1,84] 0.443[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 多糖（以葡萄糖计）(ug.mL[sup]-1[/sup])[/td][td=1,1,100] 36.765[/td][td=1,1,96] 60.294[/td][td=1,1,84] 28.333[/td][/tr][tr][td=1,1,188] *差异性显著分析[/td][td=1,1,100] Aa[/td][td=1,1,96] Bb[/td][td=1,1,84] Bb[/td][/tr][/table][align=left][/align] 备注：*：单因素重复性差异显著性结果，以95%为概率。[align=left][/align]3 料液比对猴头菇子实体多糖的影响[align=left][/align]以猴头菇粉末为实验材料，研究料液比对猴头菇多糖浸提效果的影响，分别在90℃浸提6h，料液比为1：15、1：20、1：25，结果见表3，由表3可知，各处理间的差异性极显著。在料水为1：20时，多糖的得率最高。[align=left][/align] 表3 料液比对猴头菇的多糖浸提的影响[align=left][/align]Table3 Effectsof extracting feed-water ratio on polysaccharide yield[align=left][/align] [table=468][tr][td=1,2,188] [align=center]项目[/align] [/td][td=3,1,280] 各料液比的吸光值[/td][/tr][tr][td=1,1,100] 1 ：15[/td][td=1,1,96] 1 ：20[/td][td=1,1,84] 1 ：25[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.829[/td][td=1,1,96] 0.884[/td][td=1,1,84] 0.441[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.687[/td][td=1,1,96] 0.856[/td][td=1,1,84] 0.563[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.734[/td][td=1,1,96] 0.810[/td][td=1,1,84] 0.478[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 平均值[/td][td=1,1,100] 0.750[/td][td=1,1,96] 0.850[/td][td=1,1,84] 0.494[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 多糖（以葡萄糖计）(ug.mL[sup]-1[/sup])[/td][td=1,1,100] 48.399[/td][td=1,1,96] 54.935[/td][td=1,1,84] 31.667[/td][/tr][tr][td=1,1,188] *差异性显著分析[/td][td=1,1,100] Aa[/td][td=1,1,96] Bb[/td][td=1,1,84] Bb[/td][/tr][/table][align=left][/align]备注：*：单因素重复性差异显著性结果，以95%为概率。[align=left][/align] 4 浸提次数对猴头菇子实体多糖的影响[align=left][/align][align=left]以猴头菇粉末为实验材料，研究浸提次数对猴头菇多糖浸提效果的影响，分别在90℃水浴锅中浸提1、2、3次，时间为6h,结果见表4。由表4知，在浸提2次下多糖得率最高。[/align][align=left][/align]表4 浸提次数对猴头菇的多糖浸提的影响[align=left][/align]Table 4 Effectsof extracting times on polysaccharide yield[align=left][/align] [table=468][tr][td=1,2,188] [align=center]项目[/align] [/td][td=3,1,280] 不同浸提次数的吸光值[/td][/tr][tr][td=1,1,100] 1次[/td][td=1,1,96] 2次[/td][td=1,1,84] 3次[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.566[/td][td=1,1,96] 1.215[/td][td=1,1,84] 1.220[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.576[/td][td=1,1,96] 1.220[/td][td=1,1,84] 1.242[/td][/tr][tr][td=1,1,188] [i]OD[/i][sub]490[/sub][/td][td=1,1,100] 0.581[/td][td=1,1,96] 1.209[/td][td=1,1,84] 1.119[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 平均值[/td][td=1,1,100] 0.574[/td][td=1,1,96] 1.215[/td][td=1,1,84] 1.194[/td][/tr][tr][td=1,1,188] 多糖（以葡萄糖计）(ug.mL[sup]-1[/sup])[/td][td=1,1,100] 36.895[/td][td=1,1,96] 78.791[/td][td=1,1,84] 77.418[/td][/tr][tr][td=1,1,188] *差异性显著分析[/td][td=1,1,100] Aa[/td][td=1,1,96] Bb[/td][td=1,1,84] Bb[/td][/tr][/table][align=left][/align]备注：*：单因素重复性差异显著性结果，以95%为概率。[align=left][/align][align=left]5 单因素最佳条件下水浴提取法的多糖提取率[/align][align=left][/align][align=left]在单因素的最佳条件下：浸提时间：6h，浸提次数：2次，浸提温度：90℃下进行三次平行验证实验，试验结果（表5）：平均粗多糖的含量为60.0 ug.mL[sup]-1[/sup]，提取率为7.40%，RSD符合要求。[/align][align=left][/align]表5 水浴提取最优条件下多糖提取率[align=left][/align]Table5 Theextraction rate of polysaccharide under the optimum condition by water bath[align=left][/align] [table=568][tr][td=1,1,114] 实验次数[/td][td=1,1,114] 多糖含量(ug.mL[sup]-1[/sup])[/td][td=1,1,114] 多糖提取率（%）[/td][td=1,1,114] [align=center]平均提取率[/align] （%）[/td][td=1,1,114] RSD（%）[/td][/tr][tr][td=1,1,114] 1[/td][td=1,1,114] 58.48[/td][td=1,1,114] 7.31[/td][td=1,3,114] 7.40[/td][td=1,3,114] 1.0[/td][/tr][tr][td=1,1,114] 2[/td][td=1,1,114] 61.84[/td][td=1,1,114] 7.43[/td][/tr][tr][td=1,1,114] 3[/td][td=1,1,114] 59.76[/td][td=1,1,114] 7.47[/td][/tr][/table][align=left][/align][align=left]6 正交试验结果[/align][align=left][/align][align=left] 为进一步探讨工艺参数中的浸提次数（A）、料液比（B）、浸提时间（C）、浸提温度（D）对猴头菇多糖得率的影响。在单因素试验和分析的基础上，其浸提次数（A）、料液比（B）浸提时间（C）、浸提温度（D）4值作为试验水平，以猴头菇粗多糖提取率为评价指标，选用L9（3[sup]4[/sup]）正交表安排试验。试验结果如表6所示。[/align][align=left] 表6 L9（3[sup]4[/sup]）正交实验结果及其分析[/align][align=left][/align] Table6 Resultsand analysis of orthogonal experiment[align=left][/align][align=center] [table=555][tr][td=2,2,88] 实验号[/td][td=4,1,329] 因素[/td][td=1,1,138] 实验指标[/td][/tr][tr][td=1,1,78] A(次数)[/td][td=1,1,78] B（料液比）[/td][td=1,1,88] C（时间）[/td][td=1,1,84] D（温度）[/td][td=1,1,138] 提取率%[/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]1[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]1（1）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]1（15）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]1（4）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]1（85）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]51.8[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]1（1）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]2（20）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2（6）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]2（90）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]59.2[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]3[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]1（1）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]3（25）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]3（8）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]3（95）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]76.5[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]4[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]2（2）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]1（15）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2（6）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]3（95）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]41.7[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]5[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]2（2）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]2（20）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]3（8）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]1（85）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]74.3[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]6[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]2（2）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]3（25）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]1（4）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]2（90）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]62.3[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]7[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]3（3）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]1（15）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]3（8）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]2（90）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]67.5[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]8[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]3（3）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]2（20）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]1（4）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]3（95）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]83.0[/align] [/td][/tr][tr][td=2,1,88] [align=center]9[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]3（3）[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]3（25）[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2（6）[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]1（85）[/align] [/td][td=1,1,138] [align=center]74.7[/align] [/td][/tr][tr][td=1,12,36] 总 糖[/td][td=1,1,51] K[sub]11[/sub][/td][td=1,1,78] [align=center]200.8[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]161[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]197.1[/align] [/td][td=1,1,84] 2.008[/td][td=1,12,138] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]12[/sub][/td][td=1,1,78] [align=center]189.0[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]216.5[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]175.6[/align] [/td][td=1,1,84] 1.890[/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]13[/sub][/td][td=1,1,78] [align=center]201.2[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]213.5[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]218.3[/align] [/td][td=1,1,84] 2.012[/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]k1[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]66.9[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]53.7[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]65.7[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]66.9[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]k2[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]63.0[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]72.2[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]58.5[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]63.0[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]k3[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]67.1[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]71.2[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]72.8[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]67.1[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] R[/td][td=1,1,78] [align=center]4.07[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]18.50[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]14.23[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]0.0407[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]21[/sub][sup]2[/sup][/td][td=1,1,78] [align=right]40320.6 [/align] [/td][td=1,1,78] [align=right]25921.0 [/align] [/td][td=1,1,88] [align=right]38848.4 [/align] [/td][td=1,1,84] 4.032[/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]22[/sub][sup]2[/sup][/td][td=1,1,78] [align=right]35721.0 [/align] [/td][td=1,1,78] [align=right]46872.3 [/align] [/td][td=1,1,88] [align=right]30835.4 [/align] [/td][td=1,1,84] 3.572[/td][/tr][tr][td=1,1,51] K[sub]23[/sub][sup]2[/sup][/td][td=1,1,78] [align=right]40481.4 [/align] [/td][td=1,1,78] [align=right]45582.3 [/align] [/td][td=1,1,88] [align=right]47654.9 [/align] [/td][td=1,1,84] 4.048[/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]Q[/align] [/td][td=1,1,78] [align=right]38841.0[/align] [/td][td=1,1,78] [align=right]39458.5[/align] [/td][td=1,1,88] [align=right]39112.9[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]38841.0[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,51] [align=center]S[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]32.03[/align] [/td][td=1,1,78] [align=center]649.5[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]303.9[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]32.03[/align] [/td][/tr][/table][/align][align=left][/align] 表7 正交试验方差分析表[align=left][/align] Table7 Theanalysis of variance table for orthogonal experiment[align=left][/align][align=center] [table=651][tr][td=1,1,133] 变异来源[/td][td=1,1,74] [align=center]平方和[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]自由度[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center]均方[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]F值[/align] [/td][td=1,1,172] [align=center]显著水平[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,133] [align=center]次数A[/align] [/td][td=1,1,74] [align=center]411.7[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center]205.9[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]32.4251[/align] [/td][td=1,5,172] [align=center] [/align] [align=center]F[sub]0.05[/sub]（3,2）=19.164[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,133] [align=center]液料比B[/align] [/td][td=1,1,74] [align=center]32.03[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center]16.0[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2.5222[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,133] [align=center]时间C[/align] [/td][td=1,1,74] [align=center]649.5[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center]324.8[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]51.1507[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,133] [align=center]温度D[/align] [/td][td=1,1,74] [align=center]303.9[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]2[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center]151.9[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]23.9323[/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,133] [align=center]误差[/align] [/td][td=1,1,74] [align=center]19.05[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]3[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center]6.3[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center] [/align] [/td][/tr][tr][td=1,1,133] [align=center]总和[/align] [/td][td=1,1,74] [align=center]1416.19[/align] [/td][td=1,1,88] [align=center]11[/align] [/td][td=1,1,97] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,88] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,172] [/td][/tr][/table][/align][align=left][/align][align=left]从本试验的极差分析可知，对猴头菇多糖提取量的影响大小依次为浸提时间、浸提次数及浸提温度，料液比几乎不起影响。由方差分析表可知，相对来说A因素、C因素和D因素为重要因素， B因素为次要因素。从表2-7中可看出对猴头菇子实体总糖热水浸提的最佳工艺条件为：A[sub]3[/sub]B[sub]2[/sub]C[sub]3[/sub]D[sub]3[/sub]。通过验证实验，三次平行实验得到多糖的提取量为67.2ug.mL[sup]-1[/sup]，平均多糖提取率为8.40%。未低于实际的多糖提取量7.40%，因此，正交实验法的最佳提取条件为：即在次数为3次，料液比为20：1，浸提时间为8h，浸提温度为95℃。[/align][align=left][/align][align=left][/align][align=left][/align]

【序号】：【作者】： 赵丰丽 张云鸽 宁良丹【题名】：红菇多糖的提取分离及其抗氧化活性的研究【期刊】：中国酿造 【年、卷、期、起止页码】：2009年11期 【全文链接】：http://61.164.36.250:8001/asp/Detail.asp

GH/T1013-2015《香菇》标准解读2015年3月27日中华全国供销合作总社发布新修订的GH/T1013-2015《香菇》标准（以下简称新标准），并于2015年6月1日正式实施，代替GH/T1013-1998《香菇》标准（以下简称旧标准）。新标准与旧标准比较，主要修订内容如下：一．适用范围　　新标准适用于段木香菇和代料香菇，取消旧标准中原木香菇。二．术语和定义　　1、取消原木香菇、等外菇 、片菇、保鲜菇、鲜花菇的定义。　　2、新增段木香菇、褐色菌褶、虫孔菇、霉斑菇、畸形菇的定义。

原创 香菇中镉含量的调查研究摘要镉是出口香菇的高风险超标项目。为了找到香菇中镉的来源和含量分布，本科研通过分析香菇生产工艺，对香菇中镉的主要来源——菌棒进行了分析，得到了出口香菇基地菌棒及由此产出香菇的镉的富集系数，为出口香菇基地控制香菇中镉含量提供依据。另外，本科研还检测了香菇不同部分——菌柄和菌盖——的镉含量。结论为香菇中镉主要分布在菌盖中，这一结论为香菇中镉的检测以及食用香菇时镉摄入的风险评估提供了重要的实验数据。请多指正。

有没有做多糖结构分析的同仁？尤其是肝素，依诺肝素，硫酸软骨素结构解析，如果有相关资料或者书籍希望能共享，在附件里有篇质谱解析肝素的文献，有兴趣的可以看看

[color=#3e3e3e]清洗黑木耳和香菇的新方法。在洗黑木耳的水中加入一勺面粉，顺一个方向搅拌几下，静置十分钟左右再清洗面粉有粘性会把木耳表面的泥沙带下来，然后再用清水冲洗干净就行了，干香菇也是比较难清洗的食材也可以用同样的方法进行清洗。[/color]

[em0809] 大家好，我提取的多糖想上液相前纯化一下，买的酸性氧化铝针筒式预柱，但是不知道活化，洗涤，洗脱液都用什么，那些原理我都看了，只是不知道具体到操作步骤怎么弄， 哪位帮帮忙啊，谢谢[em0808]