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培兰色林

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培兰色林相关的论坛

  • 污泥总磷 空白有蓝色 求助

    CJ/T 221-2005 50.氢氧化钠熔融后钼锑抗分光光度法 做的污泥总磷。空白点有显少许蓝色。但是做出来曲线有4个9。不知道正常不,求解答。

  • 求助!钼酸盐测总磷空白有蓝色?

    空白用的实验室纯水机新制纯水,比色管也用稀硝酸泡过了,抗坏血酸和钼酸铵都没有变质,过硫酸钾是前段时间新配的,但是空白还是有蓝色,纯水调零后测出来吸光度有0.1多,到底为什么啊

  • 革兰氏染色验证试验

    进行革兰氏染色验证试验时,载玻片先用脱脂棉沾酒精擦拭干净,再在酒精灯火焰上来回烤热杀菌下,然后用滴头加入什么液体一~二滴,再用灭菌过的接种针接种一环将培养物涂布再液滴表面,以将培养物涂片开来,我看革兰氏染色操作视频是这样的,但是标准的操作方法并没有提到用滴头加入什么液体一~二滴,而是直接接种涂布啊。

  • 【求助】钼酸盐为什么配出来是有点蓝色的?

    这个月,我把做总磷的药全配了一下,因为化验之后我们就要开始考核了,可是当配钼酸盐溶液的时候,我用烧杯配好了,却发现溶液上层有一缕蓝色,我想可能是进脏东西了,也没当回事,又配了一遍,可是今天早上来一看,又有点蓝了,不知道哪位遇到过这种情况,这是为什么呢?

  • 【分享】大肠菌群革兰氏染色技术的实验研究结果

    [size=18px][font=宋体] 在大肠菌群测定过程中,革兰氏染色(Gram Stain)又是一步很重要的鉴定阶段,革兰氏染色的正确性直接关系到能否正确判断该菌落是不是大肠菌群,而革兰氏染色正是一门难以掌握的最基本的细菌学实验技术,许多分析人员因缺少这方面熟练技术而显得对革兰氏染色结果没有把握,有的只好通过多次反复试验以求得一个仍不很肯定的判断结果,既浪费时间又不能保证染色结果是否正确,很可能还导致大肠菌群测定错误或失败,我们在多年的大肠菌群测定分析的实践基础上,通过纯培养一株大肠杆菌(Escherchiacoli )和一株枯草芽抱杆菌(Bacillus subtilis)并进行多种条件下的革兰氏染色实验比较,以观察革兰氏染色易受哪些因素影响,从而进一步研究这项技术的最佳操作方法。[/font][/size][font=宋体][size=18px][font=宋体]1 [/font][/size][size=18px][font=宋体]实验材料1.1 大肠杆菌 大肠杆菌是大肠菌群中很重要也很有代表性的一种.在某次大肠菌群测定过程中,选取伊红美兰琼脂培养基上不同的典型菌落,按《应用微生物学实验法户〕 中大肠菌群细菌分离法得到甲基红试验阳性、VP 试验阴性、发酵柠檬酸盐阴性、利用脉酸试验阴性等特征的一株大肠杆菌.[/font][/size][font=宋体][size=18px]2 [/size][size=18px]实验结果与分析 2.1菌龄的影响 16h 和24h的大肠杆菌和枯草芽抱杆菌革兰氏染色均能得到正确结果,但32h以上的枯草芽抱杆菌有13.3%出现阴性结果。出现阴性反应的枯草芽抱杆菌同时发现很多菌体已经不呈典型杆状,显然由于培养时间过长,枯草芽抱杆菌(阳性菌)或已死亡或部分菌自行溶解了,造成细胞壁通透性增大而呈假阴性。因此在大肠菌群测定时,细菌在伊红美兰琼脂培养基上培养时间不宜超过24h,以免阳性菌呈假阴性干扰革兰氏染色的正确性.2.2细菌堆积密度影响 涂片时生理盐水中细菌浓厚时,菌体明显堆积在一起,从而影响酒精脱色效果,甚至在细菌堆中仍残留结晶紫,因而无论大肠杆菌还是枯草芽抱杆菌,凡密集成堆的常常呈阳性反应,而均匀分散的大肠杆菌和枯草芽抱杆菌都能得到正确结果,因此测定时应以分散开的细菌的革兰氏染色反应为准. 我们认为在大肠菌群革兰氏染色时菌龄、细菌密集程度、媒染时间、酒精脱色程度这几方面因素会对染色的正确性产生影响.在大肠菌群测定时,革兰氏染色的最佳条件应该是:细菌在伊红美兰琼脂培养基上培养时间不宜超过24h ,涂片时应以分散开的细菌染色为准,碘媒染时间以1 min为宜,酒精脱色程度是革兰氏染色的关键,脱色时间应严格控制在2S 一30S之间。为进一步确证革兰氏染色操作正确,应把未知菌伊红美兰琼脂培养基上的典型菌落(cdony)与已知的大肠杆菌和枯草芽抱杆菌的混合菌同片染色,如果混合菌能分辨出阳性菌和阴性菌,则也能肯定未知菌革兰氏染色结果是正确的.[/size][/font][/font]

  • 革兰氏染色试验的操作注意事项

    进行革兰氏染色验证试验时,载玻片先用脱脂棉沾酒精擦拭干净,再在酒精灯火焰上来回烤热杀菌下,然后用滴头加入生理盐水一~二滴,再用灭菌过的接种针接种一环将培养物涂布再液滴表面,以将培养物涂片开来,但是标准的操作方法并没有提到用滴头加入生理盐水一~二滴,而是直接接种涂布。

  • 【我们不一YOUNG】还原糖的测定--蓝—爱农(Lane—Eynon)法(菲林法)

    [align=center][font=DengXian]还原糖的测定[/font]--[font=DengXian]蓝—爱农([/font]Lane[font=DengXian]—[/font]Eynon)[font=DengXian]法(菲林法)[/font][/align][font=DengXian]糖分的还原性的测定方法叫还原糖法。[/font][font=DengXian]蓝—爱农([/font]Lane[font=DengXian]—[/font]Eynon)[font=DengXian]法(菲林法)[/font][font=DengXian]比直接法的试剂中少亚铁氰化钾,终点为红色。[/font] [font=DengXian]适于[/font]0.2%[font=DengXian]的还原糖含量。[/font][font=DengXian]斐林试剂甲液([/font]CuSO4[font=DengXian][/font]5H2O[font=DengXian])[/font][font=DengXian]斐林试剂乙液(酒石酸钾钠[/font]+NaOH[font=DengXian])[/font][font=DengXian]甲、乙混合→酒石酸钾钠合铜[/font] [font=DengXian]酒石酸钾钠合铜[/font]+[font=DengXian]葡萄糖[/font] [font=DengXian]→葡萄糖酸[/font] +Cu2O[font=DengXian]↓(红棕)[/font][font=DengXian]终点的确定:[/font] [font=DengXian]葡萄糖[/font]+[font=DengXian]亚甲基蓝(氧化态)→亚甲基蓝(还原态)[/font] [font=DengXian]过量[/font] [font=DengXian]兰色[/font] [font=DengXian]无色[/font] [font=DengXian](兰色消失)[/font] [font=DengXian]终点时的颜色为:兰色消失了的红棕色[/font]2[font=DengXian]、测定[/font][font=DengXian]①预测[/font] [font=DengXian]准确吸取斐林试剂甲液[/font]5.00mL[font=DengXian]、乙液[/font]5.00mL[font=DengXian]→锥形瓶中,△至沸腾,再加入亚甲基蓝指示剂,在加热的条件下,用样液滴至蓝色褪尽。(先快后慢,要求很快达到终点,因为亚甲基蓝易被空气氧化为蓝色,且要求在加热的情况下以除去空气)[/font][font=DengXian]②测定[/font] [font=DengXian]甲液[/font]5mL[font=DengXian]、乙液[/font]5mL[font=DengXian]→锥形瓶中,加入比上述预测量少[/font]0.5[font=DengXian]~[/font]1ml[font=DengXian]样液在[/font]2min[font=DengXian]内沸腾,维持沸腾[/font]2min[font=DengXian],加入[/font]3[font=DengXian]滴亚甲基蓝指示剂,再在[/font]3min[font=DengXian]内滴定至蓝色褪尽。[/font]3[font=DengXian]、计算[/font] F[font=DengXian]还原糖[/font] % = --------------------- [font=DengXian]×[/font]100 ( V1/V )× mm--[font=DengXian]样品质量,[/font]mg[font=DengXian];[/font]V1--[font=DengXian]滴定量[/font]mL[font=DengXian];[/font]V--[font=DengXian]样液总[/font]mL[font=DengXian];[/font]F--[font=DengXian]还原糖因素,[/font]10mL[font=DengXian]费林试剂,相当的还原糖量[/font]mgF[font=DengXian]的求得有两种方法:[/font]A[font=DengXian]、用标准还原糖液用上面同样方法标定[/font]10ml[font=DengXian]费林试剂求得。[/font]B[font=DengXian]、查蓝—爱农法专用“还原糖因数表”附表[/font][font=DengXian]例[/font] [font=DengXian]若[/font]V1=26 [font=DengXian]则[/font]F=49.9

  • 水和废水总大肠菌群的检测(多管发酵法)中的革兰氏染色操作

    水和废水总大肠菌群的检测(多管发酵法)中的革兰氏染色操作

    大家好。本人是新手,现在在负责水和废水中的总大肠菌群的检测,采用的方法是《水和废水监测分析方法》多管发酵法(第四版)国家环境保护总局(2002年)5.2.5.1前面初发酵,挑选阳性管平板画线到伊红美蓝平板上,如何平板长起典型菌落(标准中所描述的3种典型菌落)。提问:橙色圈,1,2,3分别代表伊红美蓝培养基上的3种典型菌落1号、深紫黑色,具有金属光泽的菌落2号、紫黑色,不带或略带金属光泽的菌落3号、淡紫红色,中心色较深的菌落http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/07/201507291536_557842_1657200_3.jpg涂片操作1描述:平板1有1、2、3号典型菌落,那么做一个涂片,涂片需要把这3种典型菌落都涂布在载玻片上然后染色镜检;平板2有1、3号典型菌落,再对应另外一个涂片,需要把1、3号典型菌落涂布在载玻片上;平板3有2号典型菌落,另外对应一个涂片,需要把2号菌落涂片;平板4有1、2号典型菌落,再对应一个涂片,涂布1、2号菌落。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2015/07/201507291537_557844_1657200_3.jpg涂片操作2描述:只需要在以上4个平板中,挑选1、2、3号菌落做涂片(是1种菌落对应一个涂片,或是3种菌落涂布在同一个涂片?)复发酵接种操作操作1(4个涂片)的染色镜检结果假设如下:平板1中的1、2、3种菌,其中的1、3号菌是革兰氏阴性,2号菌是革兰氏阳性,则需要挑1、3号菌到同一根培养管做复发酵。平板2中1、3号菌是革兰氏阴性,则需要挑1、3号菌到同一根培养管做复发酵。平板3中的2号菌为革兰氏阳性,则该平板不需要挑菌做复发酵。平板4中的1号菌为革兰氏阴性,2号菌为阳性,则挑1号菌到培养管做复发酵。(有没有可能不同平板的1、2、3号菌落的革兰氏结果不一样?例如平板1中2号菌落是阳性,而平板2中2号菌落为阴性?)操作2(1个涂片)的染色镜检结果假设如下:染色镜检结果假设如下:1、3号菌是阴性,2号菌是阳性。然后复发酵接种操作同上请问那些操作过程是正确的?如果都不是,如何操作才是正确的?谢谢大家了

  • 【求助】总磷测定过程出现蓝色沉淀与浑浊

    我们在测一个油田采出水水样时,发生了以下情况:在加入钼酸铵与抗坏血酸后出现了浑浊与蓝色固体,请问这是什么原因. 我们测定时的水样温度大概是18度,TP大概只有10几个ppm. 而且我们在做平行时发现有的平行样会出现以上问题,有的不会出现. 另外我们的水样消解方法是:800W电炉消解(保持微沸30分钟),没有采用高温压力消解或微波消解.我认为出现这种现象有以下几种可能:1、消解不够彻底;2、磷浓度太大,比如几百ppm(排除,我们的样只有几ppm)不知大家在测定水样TP过程中有没有碰到过这种问题,除了我想到的原因外还有其它原因吧,实验进行不下去了,有知道的请速回,先谢了。

  • 【求助】水培虎尾兰的营养液的配方

    水培虎尾兰的营养液的配方很重要的事情,要配制虎尾兰这个植物的水培方法的营养液。希望大家给我出出主意,什么配方好一些!十分重要啊![em0909]

  • 【讨论】富兰克林的风筝实验真实存在吗?

    【讨论】富兰克林的风筝实验真实存在吗?

    富兰克林在科学界广为人知的事迹就是闪电的“风筝实验”了。它也是语文课上的“老段子”。不过,历代“被劈众”大概会对此表示愤慨——主动勾引还能全身而退吗?富兰克林的“风筝实验”是个神话还是真有其事?http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/04/201104120850_288322_2185349_3.jpg传言: 富兰克林曾经与雷电有亲密接触。据说他将一把铜钥匙,系在风筝线的末端。风筝升入雷雨云层,闪电在风筝附近闪烁,雷声隆隆。一道闪电掠过,风筝线上有一小段直立起来,像被一种看不见的力移动着。富兰克林突然觉得他的手有麻木的感觉,就把手指靠近铜钥匙,顷刻之间,铜钥匙上射出一串火花。富兰克林大叫一声,赶紧把手远离了钥匙。他喊到:“威廉!我受到电击了!现在可以证明,闪电就是电”。

  • 关于革兰氏染色试剂

    我最近做总大肠菌群的革兰氏染色镜检的时候,发现沙黄总是没办法染色,最后的颜色不知道是结晶紫脱色不成功留下来的微紫红色,还是什么颜色,没办法对革兰氏阳性菌和阴性菌进行有效区分,大家有谁有用过什么厂家的革兰氏染色试剂盒或者厂家的沙黄好用的给推荐一下,我愁死了

  • 革兰氏染色

    将革兰氏染色的第一液滴加在已固定的涂片上染色,一般染(),用水洗去。 A、30秒 B、60秒 C、80秒 D、90秒

  • 氰化氢标准曲线显红色不显蓝色什么原因

    氰化氢标准曲线不显蓝色什么原因,只显红色,什么原因呢,加乙酸调节中性了,放40分钟还是没一根蓝色,全部试剂都是现配的,标液也是用新买的水中氰50mg/L,求各位大佬指导一下。

  • 滤膜法测水中总大肠菌群,所有菌种都要进行染色镜检和再培养吗?

    滤膜法测水中总大肠菌群。按标准操作,先用滤膜培养,再挑选符合特征的菌种,进行革兰氏染色镜检,然后对结果呈阴性的,还要进行一次再培养。那么就有以下的问题,如果滤膜上有50个菌种都符合特征。那么我是从中随机选一个作为代表,还是这50个都要进行染色镜检再培养。一个样品申请如此,如果一天几十上百个样品,那将是一个天大的工作量。

  • 亮蓝铝色淀

    亮蓝铝色淀   Brilliant Blue Aluminum Lake   别名 C.I.食用蓝色2:1号、FD&C蓝色1号铝色淀   编码 GB 08.007;C.I.(1975)42090:1   性状 蓝色微细粉末,不溶于水及有机溶剂,耐光性及耐热性优于亮蓝。   制法 将亮蓝水溶液加入氯化铝、硫酸铝水溶液和碳酸钠作用所形成的氧化铝水合物中,使之沉淀吸咐生成亮蓝铝色淀。   鉴别方法   (1)取本品0.5g溶于5mL浓盐酸中,置于500mL容量瓶中,加入0.1mol/L磷酸氢二钾溶液至刻度,摇匀,然后吸取2mL置于50mL容量瓶中,再用0.1mol/L磷酸氢二钾溶液稀释至刻度,该溶液的最大吸收波长应为630±2nm。   (2)取本品0.1g加入5mL盐酸(1+3),在水浴上加热约5min,时时摇动使之溶解,溶液澄清呈蓝色,冷却后用氨水(1+2)中和,溶液逐渐变成蓝色胶状沉淀。   (3)取本品0.1g加入100g/L氢氧化钠溶液5mL,在水浴上加热约5min,溶液澄清呈蓝色,冷却后用盐酸(1+3)中和至中性,形成蓝色胶状沉淀。   毒理学依据 参见亮蓝。

  • 革兰氏染色

    方法简介  是细菌学中广泛使用的一种鉴别染色法,这种染色法是由一位丹麦医生汉斯·克里斯蒂安·革兰(Hans Christian Gram,1853年-1938年)于1884年所发明,最初是用来鉴别肺炎球菌与克雷白氏肺炎菌之间的关系。   未经染色之细菌,由于其与周围环境折光率差别甚小,故在显微镜下极难观察 。染色后细菌与环境形成鲜明对比,可以清楚地观察到细菌的形态、排列及某些结构特征,而用以分类鉴定。

  • 检测布南色林和N-去乙基布南色林

    检测布南色林和N-去乙基布南色林时,N-去乙基布南色林的两个离子对通道都出现了一个和布南色林保留时间一致的小峰,改变梯度后也是如此,想了解一下是什么原因导致的,应该怎样解决呢?色谱图和两种物质的结构如下[img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405231358246523_5065_6033629_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405231358250909_6107_6033629_3.png[/img][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/05/202405231358248276_3181_6033629_3.png[/img]

  • 请教各位老师关于革兰氏染色

    最近要评审了,这段时间做了个练习。用棉签在厕所擦拭,弄了4个水样,同时做总大肠和粪大肠。结果是粪大肠阳性,按理说总大肠是不是也该阳性?可是我染色镜检的时候,染出来是紫色(革兰氏阳性)。。。。。搜了些资料,都说脱色是革兰氏染色的关键,脱色不够,容易染成假阳性;脱色过度,容易染成假阴性。那么问题来了,怎么把握这个关键呢?各位老师可有什么[color=#33cc00]诀窍[/color]可以指教指教,比如看到什么现象表示脱色刚好,或是脱色过度。。。。先谢过各位老师了。

  • 茶叶遇到自来水变淡蓝色或蓝紫色的原因?

    我有喝茶的习惯,毕业到一家公司上班,平时泡茶都是用纯净水,没发现异常,但是每次把茶叶倒入下水道用自来水冲的时候发现水都是蓝色甚至蓝紫色的,是因为什么呢?我问了一下同事,他们说公司自来水完全是地下水.感觉污染很严重,同事中掉头发的不少,尤其是男同事。

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