二甲氨丁醇

分析二甲基丁醇，三甲基丁醇，样品浓度大约为99%。请教分析方法及使用何种色谱柱？谢谢了！！[em58]

今天实验发现 DB-WAX(30m*0.53mm*1.0um)正丁醇与对二甲苯重叠，有分开过的吗？与间二甲苯也不能重叠

本人最近在做溶剂残留，用HP-INNOWAX色谱柱，今天将异丙醇、正丁醇、二甲苯配在一起，却怎么也分离不出正丁醇和对二甲苯了！！真是着急！请教各位高手，做溶剂残留，用HP－INNOWAX色谱柱时，如何设计合适的程序升温，才能有效的把醇类和苯类分开来呢？谢谢拉！！

正丁醇和二甲基苯分不开，要求分好以后有四个峰，最好是填充柱．

向水饱和正丁醇提取液中加两倍量的氨试液向水饱和正丁醇提取液中加两倍量氨试液的作用是什么？分层后哪层是正丁醇溶液层？氨试液的量必须是两倍量么，加一倍量的氨试液会有什么不良后果？量的多少有什么影响?谢谢……

[color=#444444]我现在用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]分离乙二醇与正丁醇（色谱柱：KB-5MS,柱温：90℃，进样口：250℃，检测器：250℃），两者能够分离，正丁醇的峰型还可以，但是乙二醇的峰拖尾很严重。。。。在不换色谱柱的条件下，有没有更好的方法，使得乙二醇的峰不拖尾。[/color]

用岛津的2010plus[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]做液体，一般做的都是甲醇、乙醇、正丁醇、苯、对二甲苯等纯度较高的产品，怎么样清洗进样用的小瓶，是不是100下烘箱烘干就可以了？

[color=#444444]我现在用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]分离乙二醇与正丁醇（色谱柱：KB-5MS,柱温：90℃，进样口：250℃，检测器：250℃），两者能够分离，正丁醇的峰型还可以，但是乙二醇的峰拖尾很严重。。。。在不换色谱柱的条件下，有没有更好的方法，使得乙二醇的峰不拖尾。。。。请各位支招。。。谢谢了。。[/color]

转基因生物可以将二氧化碳或废料转化为能与汽油兼容的交通燃料。http://www.cn-ferment.com/file/upload/201209/14/09-42-16-76-1.jpg图示：显微图像展示了一组在培养基中的真养产碱杆菌。如本图中所示，它们在自然状态下可以将周围的碳转化为一种生物塑料，即图中细胞膜内浅色的点。但是麻省理工学院研发的生物性改造的真养产碱杆菌可以产生异丁醇燃料，并将其从细胞排放到周围的介质中，从而方便科学家们收集。 图片来源：克里斯托弗.布里格姆（Christopher Brigham）一种叫做真养产碱杆菌（Ralstonia eutropha）的不起眼的土壤细菌具有一种天然性能：只要受到压力，它们就会停止生长并竭尽所能产生复杂的碳化合物。目前，麻省理工学院的科学家们教会了这种微生物一项新技能：他们修补了它的基因，从而使它能够制造一种叫做异丁醇的酒精燃料，可以直接取代或者兑入汽油。麻省理工学院生物系科学家克里斯托弗.布里格姆（Christopher Brigham）致力于开发这种经过生物性改造的细菌，目前他正尝试让这种生物将大量的二氧化碳作为碳源，从而使它能够利用废气制造燃料。该研究论文发表在本月的《应用微生物学与生物技术》（Applied Microbiology and Biotechnology）杂志上，布里格姆是论文的合著者。布里格姆解释道，在微生物的自然状态下，当它的基本营养物质来源，如硝酸盐和磷酸盐受到限制时，“它就会进入储碳模式”，就是在它感觉资源有限时储存食物以备后用。“它所做的就是尽可能获得碳，并将其以多聚体结构储存起来。而这个多聚体的属性与很多用石油制成的塑料相似”，布里格姆说道。通过敲除一些基因，再插入另一个生物的基因，并且修补其他基因的表达，布里格姆和他的同事们成功地使这种微生物不再产生塑料转而产生燃料。尽管团队致力于使微生物将二氧化碳作为碳源，但通过略微不同的调整，同样的微生物就能拥有将包括农业废物和城市垃圾在内的几乎所有形式的碳源转化为有用的燃料的潜力。实验室环境中的微生物已经可以将果糖（一种糖）作为碳源了。目前，由生物学教授安东尼.辛斯基（Anthony Sinskey）领导的，成员包括化学研究生卢京南（Jingnan Lu），生物学博士后克劳迪娅.盖（Claudia Gai）在内的麻省理工学院小组，已经成功地改变了这种微生物的基因，让它们源源不断地将碳转化为异丁醇。“结果表明，持续培养这种微生物可以获得大量的异丁醇”，布里格姆说。目前，研究人员致力于优化系统以提高生产率，同时设计工业化水准的生物反应器。布里格姆说，不像在一些生物工程系统中，微生物需要破坏微生物的细胞才能在体内产生期望的化学物质，真养产碱杆菌天生就能将异丁醇排入周围流体中，进而使其被连续不断地过滤出来，而生产过程不会停止。他说道，“我们不需要额外的转运系统将它转运出细胞”。许多研究小组通过包括其他转基因生物在内的多种途径获得异丁醇产物。至少已经有两家公司做好了将它作为燃料，燃料添加剂或化学产品原料生产的准备。与其他被推荐的生物燃料不同，异丁醇几乎不需要改造就可以用于现有的发动机，一些赛车中已经使用了异丁醇作为燃料。麻省大学达特茅斯分校的生物学副教授马克.希尔比（Mark Silby）指出：“这个方法相比由玉米提炼的乙醇产品有许多潜在的优势。细菌系统具有可扩展性，理论上可以在工业化环境中产生大量的生物燃料”。他补充道：“这个系统的潜力尤其体现在可以从废料或二氧化碳中提取出碳，因此不会影响粮食供应。”总之，他说，“这个方法有很大的潜力”。

本人实验中要分开γ-丁内酯、1，4-丁二醇和丁二酸二甲酯，但γ-丁内酯和丁二酸二甲酯可以分，加入少量的1，4-丁二醇也可以分，但一旦量大了1，4-丁二醇就显示两个峰，并且如果继续加1，4-丁二醇则又会变为一个峰，试问高手这是怎么回事呀？是不是我条件有问题呀，我用的是程序升温。非极性柱子

正丁醇和丁醇是一样的吗？

我们样品中要添加正丁醇。所以我们正在分析PTG（聚四亚甲基醚二醇）中正丁醇的含量，一般含量在1200ppm左右。我们分析方法是这样的：用的是内标法，内标物是正丙醇，溶剂是环己烷，内标物的配置是5ml的正丙醇用环己烷稀释到2000 .称取样品2g左右，移取20ml的内表液。摇匀，进样0.2ul.分离也很好，但是重现性很不好。同一个人同一个样品上午和下午作有时能相差200ppm.我现在怀疑环己烷是非极性溶剂，而正丁醇是极性的，环己烷能不能萃取出正丁醇？不知道各位大虾有没有什么好的溶剂溶解PTG萃取出正丁醇？还有内标法对进样量好像要求不是很大，那内标法中有哪些因素影响重复性？很急！！！！！

大家好： 一直以来 3-甲基-1-丁醇，3-甲基-2-丁醇的分离问题一直困扰着我，哪位高手能帮忙解决一下，请问用什么样的毛细柱分离，在什么条件下？先谢谢各位了。

哪可买到色谱纯正丁醇，异丁醇，异戊醇，2-甲基丁醇，正丙醇标样？

我想问一下怎么知道峰对应的是什么产物？甲醛，异丁醛，羟基新戊醛，1115酯，异丁醇，异辛醇，新戊二醇

正丁醇部位的分离是天然药物化学专业分离较难的部分，但分到有价值的东西几率较大，所以值得我们为之一搏。 一般来说，正丁醇部位常含有单糖、二糖等小分子糖，多种酚类化合物，以及苷类化合物，极性较大，在硅胶柱上吸附较多，成点性差，分离效果不好。因此，一般说来，对于正丁醇部位可采取以下方法： 1. 大孔树脂柱砍段。 样品水溶解后上样，依次用水，30%、60%、95%乙醇溶液洗脱，分别合并、收集。一般说来目标化合物多在60%段，水，30%段多为一些水溶性单糖、二糖及多酚类化合物，可以考虑弃去。而95%部分多和乙酸乙酯部位大极性段重叠，可以乙酸乙酯部位合并处理。 2. 反相柱分段。 如果正丁醇部位量不是太大，或者课题组有大反相柱，可以考虑用反相柱砍段。本课题组就有一根500g的反相柱，专门用于砍段，效果比正相柱好了许多。唯一需要提醒注意的是，由于我们一般是用正相硅胶板检测化合物分离情况，所以反相柱 砍段后往往各组份在硅胶板上看起来比较混乱，不如硅胶柱砍段后那么直观，一定要小心对比，否则会越分越乱。 3.正相柱分配色谱层析。 如果正丁醇部位量太大，或者课题组没有大的相柱用来分段，那么可以考虑氯仿：甲醇：水 体系来砍段。我一般用8：2：1、7：3：1以及6.5：3.5：1依次洗脱，效果不会很好，但两到三次反复上柱后各部分还是可以看得到点的。这时再会反相柱细分，拿十到二十个点应该没问题的。 总体来说，这部分较难，但等你分到好东西了，难也值得，小小经验和大家分享，祝大家实验顺利！

甲醇有毒，乙醇没毒，丙醇有毒，丁醇有毒，这是我百度的结果，为啥乙醇有毒呢？不明白，是不是除了乙醇没毒，别的都有毒？是不是醇都容易燃烧？

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最近臭气涉及到方法更新，寻了几家之前合作的供标气的单位，都没有带证书的正丁醇的标气，想问一下大家：1、这个方法更新需要附带有证书的标气才能做吗？2、如果一定要带证书的标气的话，有没有郑州这边的单位提供一下联系方式呢？

三氧化二铝柱能不能进醇类?我想知道丁醇在三氧化二铝柱中的出峰位置，怎么实现？

五种混标用二硫化碳溶解，毛细管柱为安捷伦DB1701,进样口温度250，检测器250，柱温35，程序升温至150，结果只检出甲醇，正丁醇，异戊醇。而乙二醇，异丙醇未检出，是我的仪器条件设置问题吗？求教！

[em0812]我新买回PEG-20M色谱填充柱(3m*3mm)老化后，进正丁醇样后发现正丁醇与异戊醇很难分离，有时还被正丁醇峰覆盖了，我选择的条件是：柱温110，进样器180，检测器180。后来我又改变了条件：柱温（80-110）、进样器（145-180），又调整载气（N2），还是分离不出异戊醇，各为高手有何解决办法？[em0808][em0810][em0811]

国标乳品中碘的测定中,在硫酸条件下碘与丁醇反应生成丁醇与碘的衍生物,到底此衍生为何物?

配了几个异丁醇的标液，溶剂甲醇，10000ppm，5000ppm，1000ppm，但打出来不成线性关系，请问有做过的吗？还是异丁醇配置需要什么注意的地方，谢谢！

现做一原料残留溶剂方法验证，以DMF为溶剂，检测异丁醇、甲醇、乙腈、二氯甲烷、环己烷和甲苯。Vial Temp.: 80℃Loop Temp.: 100℃Transfer Line Temp.: 120℃Vial Equilibration Time: 30 minPresurizing Time: 2.0 minLoop Fill Time: 0.5 minLoop Fill Time: 0.05 minInject Time: 0.05minInjection Port: 140℃N2: 2.5mL/min升温程序初始40℃5min然后10℃/min升温至240℃保持2min问题：1. 空白也就是DMF中在甲醇和异丁醇出峰位置有峰，干扰样品测定，且S/N竟然已经大于了10，不能忽略不计了，怎样才能消除此干扰2. 顶空进样瓶中加入1mL液体，连续进样6针对照，RSD不好，尤其是异丁醇远远大于10%，且峰面积越来越大。什么原因呢？随着时间推移不断进对照峰面积都是逐渐增大（换过衬管和垫片，是否可以排除残留问题）在线坐等高手

求丁醇的国标 感谢

有机化工产品精馏过程副产有丁醇水溶液，取样发现取样瓶内很快就分层了，除了水，丁醇外，还有少量甲醇杂质。[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp][color=#3333ff]气相色谱[/color][/url]有啥办法准确定量其中的丁醇含量。

最近在做气相分析来料溶剂（二甲基乙酰胺、DMAC）的纯度，我用正丁醇作为内标物，做了一系列的实验来验证DMAC的校正因子。我想问的是，做校正因子测试的时候，内标物的加入量是不是固定不变的？如果拿已知DMAC的校正因子是不是可以测任何浓度、只要含DMAC的 溶液？

请教各位大神，用啥柱子能把2-甲基丁醇和3-甲基丁醇在气相色谱图中分开呢？目前我用的是安捷伦 DB-WAX柱，柱子截过几次，两种醇的特征峰重叠了，无法区分。