丙硫克百威

[align=center]蔬菜中敌百虫、丙溴磷、灭多威、克百威、[/align][align=center]敌敌畏残留的快速检测[/align][align=center]1　范围[/align]本方法规定了蔬菜中敌百虫、丙溴磷、灭多威、克百威、敌敌畏残留的快速检测方法。本方法适用于油菜、菠菜、芹菜、韭菜等蔬菜中敌百虫、丙溴磷、灭多威、克百威、敌敌畏残留的快速测定。[align=center]酶抑制（率）法（分光光度法）[/align]2　原理在一定条件下，有机磷和氨基甲酸酯类农药对胆碱酯酶正常功能有抑制作用，其抑制率与农药的浓度呈正相关。正常情况下，酶催化神经传导代谢产物（乙酰胆碱）水解，其水解产物与显色剂反应，产生黄色物质，用分光光度计在412nm处测定吸光度随时间的变化值，计算出抑制率。3　试剂和材料除另有规定外，本方法所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682规定的二级水。3.1　试剂3.1.1　丙酮（CH[sub]3[/sub]COCH[sub]3[/sub]）。3.1.2　磷酸氢二钾（K[sub]2[/sub]HPO[sub]4[/sub]）。3.1.3　磷酸二氢钾（KH[sub]2[/sub]PO[sub]4[/sub]）。3.1.4　5,5-二硫代双（2-硝基苯甲酸）（C[sub]14[/sub]H[sub]8[/sub]N[sub]2[/sub]O[sub]8[/sub]S[sub]2[/sub]）。3.1.5　碳酸氢钠（NaHCO[sub]3[/sub]）。3.1.6　碘化乙酰硫代胆碱（ C[sub]7[/sub]H[sub]16[/sub]INOS）。3.1.7　pH8.0缓冲溶液：分别称取11.9 g无水磷酸氢二钾及3.2 g磷酸二氢钾，溶解于1000 mL水中，混匀。3.1.8　显色剂：分别取160 mg 5,5-二硫代双（2-硝基苯甲酸）（DTNB）和15.6 mg碳酸氢钠，用20 mL缓冲溶液溶解，4 ℃冰箱中保存。3.1.9　底物：取125 mg碘化乙酰硫代胆碱，加15 mL蒸馏水溶解，摇匀后置于4 ℃冰箱中保存备用。保存期不超过两周。3.1.10　乙酰胆碱酯酶：4 ℃冰箱中保存备用。3.2　参考物质3种有机磷和2种氨基甲酸酯类农药参考物质的中文名称、英文名称、CAS登录号、分子式、相对分子质量见表1，纯度均≥98%。[align=center]表1 有机磷和氨基甲酸酯类参考物质中文名称、英文名称、[/align][align=center]CAS登录号、分子式、相对分子质量[/align] [table][tr][td] [align=center]序号[/align] [/td][td] [align=center]中文名称[/align] [/td][td] [align=center]英文名称[/align] [/td][td] [align=center]CAS登录号[/align] [/td][td] [align=center]分子式[/align] [/td][td] [align=center]相对分子质量[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]1[/align] [/td][td] [align=center]克百威[/align] [/td][td] [align=center]Carbofuran[/align] [/td][td] [align=center]1563-66-2[/align] [/td][td] [align=center]C[sub]12[/sub]H[sub]15[/sub]NO[sub]3[/sub][/align] [/td][td] [align=center]221.25[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]2[/align] [/td][td] [align=center]灭多威[/align] [/td][td] [align=center]Methomyl[/align] [/td][td] [align=center]59669-26-0[/align] [/td][td] [align=center]C[sub]5[/sub]H[sub]10[/sub]N[sub]2[/sub]O[sub]2[/sub]S[/align] [/td][td] [align=center]162.23[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]3[/align] [/td][td] [align=center]丙溴磷[/align] [/td][td] [align=center]profenofos[/align] [/td][td] [align=center] 41198-08-7[/align] [/td][td] [align=center]C[sub]11[/sub]H[sub]15[/sub]BrClO[sub]3[/sub]PS[/align] [/td][td] [align=center]373.63[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]4[/align] [/td][td] [align=center]敌敌畏[/align] [/td][td] [align=center]Dichlorvos[/align] [/td][td] [align=center]62-73-7[/align] [/td][td] [align=center] C[sub]4[/sub]H[sub]7[/sub]Cl[sub]2[/sub]O[sub]4[/sub]P [/align] [/td][td] [align=center]220.98[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]5[/align] [/td][td] [align=center]敌百虫[/align] [/td][td] [align=center]Dipterex[/align] [/td][td] [align=center]52-68-6 [/align] [/td][td] [align=center]C[sub]4[/sub]H[sub]8[/sub]Cl[sub]3[/sub]O[sub]4[/sub]P[/align] [/td][td] [align=center]257.44[/align] [/td][/tr][/table]3.3　标准溶液的配制3.3.1　克百威、灭多威、敌敌畏、敌百虫标准储备液（1000 μg/mL）：冷藏、避光、干燥条件下保存。3.3.2　丙溴磷标准储备液（100 μg/mL）：冷藏、避光、干燥条件下保存。3.3.3　克百威、灭多威、敌敌畏、敌百虫标准中间液A（100 μg/mL）：精密移取上述标准储备液（1000 μg/mL）（3.3.1）各1mL，分别置于10mL容量瓶中，用丙酮（3.1.1）稀释至刻度，摇匀，制成浓度为100μg/mL的标准液A。3.3.4　克百威、灭多威、敌敌畏、敌百虫、丙溴磷标准中间液B（1 μg/mL）：精密移取标准中间液A（100 μg/mL）（3.3.3）及丙溴磷标准储备液（100μg/mL）（3.3.2）各1 mL，分别置于100 mL容量瓶中，用缓冲溶液（3.1.7）稀释至刻度，摇匀，制成浓度为1μg/mL的标准中间液B。4　仪器和设备4.1　恒温水浴锅。4.2　天平：感量为0.1g。4.3　分光光度计或相应商品化测定仪。4.4　环境条件：温度15℃～35 ℃，湿度≤80%。5　分析步骤5.1　试样的提取5.1.1　整株提取法选取韭菜、芹菜有代表性的样品，擦去表面泥土，称取试样3 g（精确至0.1g）置于表面皿中，加入10 mL缓冲液（3.1.7），残缺面不得接触缓冲液，轻轻振摇50 次，静置2 min以上，取上清液备用。5.1.2　整体测定法选取油菜、菠菜有代表性的样品，擦去表面泥土，剪成1 cm左右见方碎片，称取3 g（精确至0.1 g）放入离心管中，加入10 mL缓冲溶液（3.1.7），振摇50 次，静置2min以上，倒出提取液，静置3 min～5 min，待用。5.2　测定步骤5.2.1　对照液的测定先于反应管中加入3 mL缓冲溶液（3.1.7），再加入适量酶液、0.1 mL显色剂，摇匀后于37 ℃水浴锅中放置15 min。加入0.1 mL底物摇匀，立即测定吸光度，3min后再测定一次，记录反应3min的吸光度值的变化∆ A[sub]0[/sub]。5.2.2　样品液的测定先于反应管中加入3 mL提取液，其他操作与对照液操作（5.2.1）相同，记录反应3 min的吸光度值的变化∆ A[sub]t[/sub]。5.3　质控试验每次测定应同时进行空白试验和加标质控试验。5.3.1　空白试验称取空白试样，按照5.1和5.2步骤与样品同法操作。5.3.2　加标质控试验5.3.2.1　韭菜、芹菜加标实验取空白试样，擦去表面泥土，称取5份试样各3g（精确至0.1 g）置于表面皿中，分别加入检出限水平的有机磷和氨基甲酸酯类标准中间液B（1μg/mL）（3.3.4），加入10mL缓冲液（3.1.7），残缺面不得接触缓冲液，轻轻振摇50 次，静置2min以上，取上清液备用。其余操作按照5.2步骤同法操作。5.3.2.2　油菜、菠菜加标实验取空白试样，擦去表面泥土，剪成1 cm左右见方碎片，称取5 份试样各3 g（精确至0.1g）放入小离心管中，分别加入检出限水平的有机磷和氨基甲酸酯类标准中间液 B（1μg/mL）（3.3.4），加入10mL缓冲溶液（3.1.7），振摇50 次，静置2min以上，倒出提取液，静置3 min～5 min，待用。其余操作按照5.2步骤同法操作。6　结果的表述6.1　结果计算抑制率（%）=[（∆ A[sub]0[/sub]-∆ A[sub]t[/sub]）/∆ A[sub]0[/sub]]×100式中：∆ A[sub]0[/sub][sub]───[/sub]对照溶液反应3 min吸光度的变化值；∆ A[sub]t[/sub][sub]───[/sub]样品溶液反应3 min吸光度的变化值；6.2　结果判定结果以酶被抑制的程度（抑制率）表示。当抑制率≥50%时，表示蔬菜中有机磷和氨基甲酸酯类农药残留高于检测限，判定为阳性，阳性结果的样品需要重复检验2 次以上。6.3　质控试验要求空白试验测定结果应为阴性，加标质控试验测定结果应均为阳性。7　结论当检测结果为阳性时，应采用其他分析方法进行确证，进一步确定农药品种和含量。8　性能指标8.1　检测限：敌百虫0.1mg/kg，丙溴磷0.5 mg/kg，灭多威0.2 mg/kg，克百威0.02 mg/kg，敌敌畏0.2 mg/kg。8.2　灵敏度：灵敏度应≥95%8.3　特异性：特异性应≥85%。8.4　假阴性率：假阴性率应≤5%。8.5　假阳性率：假阳性率应≤15%。注：1.性能指标计算方法见附录A。 2.吸光度变化∆ A[sub]0[/sub]值应控制在0.2～0.3之间。具体的酶量，应根据产品说明书上标识的使用量，测定∆ A[sub]0[/sub]值。根据测定值，增加或减少酶量，使∆ A[sub]0[/sub]值控制在0.2～0.3之间。[align=center]检测卡法[/align]9　原理样品中的有机磷和氨基甲酸酯类农药残留经缓冲液提取，有机磷和氨基甲酸酯类农药对胆碱酯酶（白色药片）有抑制作用，抑制胆碱酯酶催化靛酚乙酸酯（红色药片）水解为乙酸与靛酚（蓝色），从而导致速测卡颜色深浅的变化。通过空白颜色比较，对样品中有机磷和氨基甲酸酯类农药进行定性判定。10　试剂和材料除另有规定外，本方法所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682规定的二级水。10.1　试剂10.1.1　丙酮（CH[sub]3[/sub]COCH[sub]3[/sub]）。10.1.2　磷酸氢二钾（K[sub]2[/sub]HPO[sub]4[/sub]）。10.1.3　磷酸二氢钾（KH[sub]2[/sub]PO[sub]4[/sub]）。10.1.4　pH8.0缓冲溶液：分别称取11.9 g无水磷酸氢二钾及3.2 g磷酸二氢钾，溶解于1000 mL水中，混匀。10.2　参考物质同3.2。10.3　标准溶液的配制同3.3。10.4　固化有胆碱酯酶和靛酚乙酸酯试剂的纸片（检测卡）。11　仪器和设备11.1　恒温水浴锅。11.2　天平：感量为0.1 g。11.3　环境条件：温度15℃～35 ℃，湿度≤80%。12　分析步骤12.1　试样的提取12.1.1　整株提取法选取韭菜、芹菜有代表性的样品，擦去表面泥土，称取试样3 g（精确至0.1g）置于表面皿中，加入10mL缓冲液（10.1.4），残缺面不得接触缓冲液，轻轻振摇50 次，静置2min以上。12.1.2　整体测定法选取油菜、菠菜有代表性的样品，擦去表面泥土，剪成1 cm左右见方碎片，称取3 g（精确至0.1 g）放入小离心管中，加入10 mL缓冲溶液（10.1.4），振摇50 次，静置2min以上。12.2　测定步骤吸取2 滴左右待测液于白色药片反应区域，在37 ℃恒温装置中放置15 min进行预反应，预反应后的药片表面必须保持湿润。将速测卡对折，手捏3 min或置于37 ℃恒温装置3min，保证红色药片反应区域与白色药片反应区域完全叠合发生反应。每次测定需有一个缓冲溶液的空白对照。12.3　质控试验每次测定应同时进行空白试验和加标质控试验。12.3.1　空白试验称取空白试样，按照 12.1 和 12.2 步骤与样品同法操作。12.3.2　加标质控试验12.3.2.1　韭菜、芹菜取空白试样，擦去表面泥土，称取5份试样各3g （精确至0.1g）置于表面皿中，分别加入检出限水平的有机磷和氨基甲酸酯类标准中间液B（1μg/mL）（3.3.4），按照12.1和12.2步骤与样品同法操作。12.3.2.2　油菜、菠菜选取空白试样，擦去表面泥土，剪成1 cm左右见方碎片，称取5份试样各3 g（精确至0.1g）放入小离心管中，分别加入检出限水平的有机磷和氨基甲酸酯类标准中间液 B（1μg/mL）（3.3.4），按照12.1和12.2步骤与样品同法操作。13　结果判定白色药片区域不变色或略有浅蓝色为阳性结果；白色药片区域变为天蓝色或与空白对照卡相同，为阴性结果。通过对比空白和样品白色药片区域的颜色变化进行结果判定。目视判定示意图见图1。[img=,524,323]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/04/201904161528477750_5223_2166779_3.png!w524x323.jpg[/img]13.1　无效白色药片区域干燥，表明取样量偏少，检测结果无效。13.2　阴性样品白色药片区域颜色比空白对照卡颜色颜色相当或为天蓝色，表明样品中有机磷和氨基甲酸酯类农药残留低于方法检测限，判定为阴性。13.3　阳性样品白色药片区域不变色或略有浅蓝色，表明样品中有机磷和氨基甲酸酯类农残高于检测限，判定为阳性。1.1　质控试验要求空白试验测定结果应为阴性，加标质控试验测定结果应均为阳性。2　结论当检测结果为阳性时，应采用其他分析方法进行确证，进一步确定农药品种和含量。3　性能指标3.1　检测限：敌百虫0.1mg/kg，丙溴磷0.5 mg/kg，灭多威0.2 mg/kg，克百威0.02 mg/kg，敌敌畏0.2 mg/kg。3.2　灵敏度：灵敏度应≥95%3.3　特异性：特异性应≥85%。3.4　假阴性率：假阴性率应≤5%。3.5　假阳性率：假阳性率应≤15%。注：性能指标计算方法见附录A。4　其他葱、蒜、萝卜、韭菜、芹菜、香菜、茭白、蘑菇及番茄汁液中，含有对酶有影响的植物次生物质，容易产生假阳性。处理这类样品时，采取整株蔬菜浸提。对一些含叶绿素较高的蔬菜，也可采取整株蔬菜浸提的方法，减少色素的干扰。本方法所述试剂、试剂盒信息及操作步骤是为给方法使用者提供方便，在使用本方法时不做限定。方法使用者在使用替代试剂、试剂盒或操作步骤前，须对其进行考察，应满足本方法规定的各项性能指标。本方法参比标准为 NY/T 761—2008 《蔬菜和水果中有机磷、有机氯、拟除虫菊酯和氨基甲酸酯类农药多残留的测定》。

关于克百威（以克百威和3-羟基克百威之和计）结果计算问题的请教。想请教一下：当样品中克百威，3羟基克百威都有检出的情况下，按照GB 2763-2019的要求，克百威是“以克百威和3-羟基克百威之和计”，请问是直接将两者进行求和，还是进行换算后再求和。例如：某蔬菜样品中克百威检出值为 A mg/Kg，3-羟基克百威检出值为 B mg/Kg，现在要填报“克百威（以克百威和3-羟基克百威之和计）”的结果，应该怎样计算才正确。计算方式一：样品中 克百威（以克百威和3-羟基克百威之和计）含量=（A+B）mg/Kg，计算方式一：参照 SN/T 0337-2019标准中的计算方式，样品中 克百威（以克百威和3-羟基克百威之和计）含量=（A+B*0.93）mg/Kg。请各位老师指教。附：SN/T 0337-2019 部分截图：[img=,690,459]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/04/202104301427586649_3321_3463672_3.jpg!w690x459.jpg[/img][img=,690,459]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/04/202104301427586649_3321_3463672_3.jpg!w690x459.jpg[/img]

哪位高手帮我做个克百威分解总离子流图（Agilent5973），小弟想比较以下，不甚感激！克百威标液加内标（正十四烷，没有也可以，主要是想看看分解情况）我做的色谱图在附件中色谱分析条件：色谱柱：DB-5MS石英毛细管柱，30m×0.25mm×0.25µ m；氦气作载气，恒流1.0mL/min，采用常规进样口，进样量1µ L，不分流。柱温程序升温条件：起始温度45℃，以5℃/min升至80℃，再以20℃/min升至180℃，保持12 min；离子源为EI源，能量70 eV。离子源温度230oC。传输线温度280oC，四极杆温度150oC。Scan全扫描模式。溶剂延迟4 min。联系方式：QQ：3733818E-mail:yardin@126.com[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2008/01/200801072111_75839_1640263_3.jpg[/img]

仪器为AB 4500 克百威的离子对是222 165/123 DP：70 CE:17/291. 克百威标液浓度为0.005ug/mL、0.01ug/mL、0.05ug/mL、0.1ug/mL、0.2ug/mL。直线r=0.98 混标24种标液，其它直线可以达到0.995以上2. 流动相为纯水+0.005%甲酸+1mM甲酸铵，有机相为纯甲醇。3. 用纯甲醇配制直线，用样品基质配制直线，直线都很差。4. 同时做不直的还有速灭威、辛硫磷，负离子模式下有氟甲腈、氟虫腈硫醚、氟虫腈砜等。5. 不用怀疑配直线的手法，因为其它农药直线很好，做的是24种混标。6. 进样量为5uL。进样量为1uL时也试过，也是这个样子。[img=,527,140]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204071148489957_5150_1645480_3.jpg!w527x140.jpg[/img][img=,690,246]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2022/04/202204071148496446_2797_1645480_3.jpg!w690x246.jpg[/img]

哪位高手帮我做个克百威分解总离子流图（Agilent5973），小弟想比较以下，不甚感激！克百威标液加内标（正十四烷，没有也可以，主要是想看看分解情况）我做的色谱图在附件中色谱分析条件：色谱柱：DB-5MS石英毛细管柱，30m×0.25mm×0.25µ m；氦气作载气，恒流1.0mL/min，采用常规进样口，进样量1µ L，不分流。柱温程序升温条件：起始温度45℃，以5℃/min升至80℃，再以20℃/min升至180℃，保持12 min；离子源为EI源，能量70 eV。离子源温度230oC。传输线温度280oC，四极杆温度150oC。Scan全扫描模式。溶剂延迟4 min。联系方式：QQ：3733818E-mail:yardin@126.com[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2008/01/200801072116_75841_1640263_3.jpg[/img]

能力验证：青菜、西红柿中毒死蜱、对硫磷、克百威、腐霉利的测定 今年参加了中国检验检疫科学研究院组织的能力验证：蔬菜中毒死蜱、对硫磷、克百威、腐霉利的测定，下面讲下参加此次能力的经历与体会。我们的检测结果：[img=,690,44]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151612509140_6935_2166779_3.png!w690x44.jpg[/img][img=,690,24]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151613008516_7001_2166779_3.png!w690x24.jpg[/img][img=,690,41]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151652122496_6997_2166779_3.png!w690x41.jpg[/img][img=,690,24]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151652195303_1476_2166779_3.png!w690x24.jpg[/img]从这组数据可以看出我们的结果离中位值是非常接近的，能力验证的结果令人相当满意，一次性顺利通过。我们将这四个农药残留分成两组，用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]法（毒死蜱、对硫磷）与[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/bp][color=#3333ff]气质[/color][/url]法（克百威、腐霉利）分别检验。[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]法（毒死蜱、对硫磷）的测定方法及仪器条件：[img=,690,351]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151619289607_6661_2166779_3.png!w690x351.jpg[/img]标准曲线系列使用液配制及工作曲线：[img=,690,211]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151626131033_3915_2166779_3.png!w690x211.jpg[/img][img=,690,392]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151626236993_464_2166779_3.png!w690x392.jpg[/img][img=,690,323]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151626321520_8126_2166779_3.png!w690x323.jpg[/img]50ng/mL毒死蜱、对硫磷标液与试剂空白堆栈色谱图：[img=,690,474]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151629039822_9875_2166779_3.png!w690x474.jpg[/img]标液与样品的堆栈色谱图：[img=,690,456]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151634226583_8520_2166779_3.png!w690x456.jpg[/img][img=,690,127]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151635270939_2835_2166779_3.png!w690x127.jpg[/img]标液与样品加标（加入1000ng/mL毒死蜱、对硫磷混标1.25mL，相当于0.1mg/kg加标水平，与样品同时同样进行前处理：称取12.5克的试样，加入25.0mL乙腈，吸取5.0mL提取液处理定容至2.5mL,这里浓缩比为1，因此理论上机浓度为100ng/mL。[img=,690,477]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151647055906_1701_2166779_3.png!w690x477.jpg[/img][img=,690,115]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151647162417_4281_2166779_3.png!w690x115.jpg[/img]因此样品的测定结果：毒死蜱：0.100mg/kg、对硫磷：0.530mg/kg；加标回收率：毒死蜱：（194.2-100.1）*100%/100=94.1%，对硫磷：（154.5-53.0）*100%/100=101.5%[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/bp][color=#3333ff]气质[/color][/url]法（克百威、腐霉利）的测定：[img=,690,506]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151701460939_2835_2166779_3.png!w690x506.jpg[/img]SIM参数：克百威-1： 164：149：131=100：91.5：35.4；克百威-2： 164：149：131=100：60.1：24.1；腐霉利： 283：285：255=100：53.1：13.0工作曲线系列标液点的配制及工作曲线：[img=,690,242]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151709583853_6309_2166779_3.png!w690x242.jpg[/img][img=,690,462]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151717262679_3036_2166779_3.png!w690x462.jpg[/img][img=,690,470]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151717382189_3152_2166779_3.png!w690x470.jpg[/img][img=,690,480]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151717479531_9618_2166779_3.png!w690x480.jpg[/img]200ng/mL混标的TIC图：[img=,608,554]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151718391939_7088_2166779_3.png!w608x554.jpg[/img]样品测定结果TIC图：[img=,659,624]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151723085151_7389_2166779_3.png!w659x624.jpg[/img]样品加标（加入1000ng/mL克百威、腐霉利混标1.0mL，相当于0.1mg/kg加标水平，与样品同时同样进行前处理：称取10.0克的试样，加入40.0mL乙腈，吸取20.0mL提取液处理定容至5.0mL,这里浓缩比为1，因此理论上机浓度为100ng/mL）测定结果TIC图：[img=,680,625]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/09/201809151724037130_6186_2166779_3.png!w680x625.jpg[/img]因此样品的定量检测结果为：克百威（20.58+75.38）*2*5*0.001/10=0.096mg/kg；腐霉利：0.076mg/kg 加标回收率：克百威（37.44+164.38-96）*100%/100=106%；腐霉利（163.4-75）*100%/100=88.4%结论：1、能力验证的检测要等仪器稳定后（重复进样RSD小于10%）方可进考核样液； 2、前处理过程加标水平与理论上机浓度之间的关系是通过样品处理过程中所得的浓缩比进行换算的，为了简化计算，浓缩比最好为1、10等整数倍 3、考核样也不一定要用基质加标，因为这样会增加检测的难度，可以用溶剂直接配制拉标曲定量，同时做加标回收，如果加标回收率符合要求（80~120）%之间，说明此实验过程满意，检测结果也不用进行回收率的折算。以上是个人参加能力验证的心得体会。