泰诺福韦对映体

求替加环素及泰诺福韦质量标准现在换生产许可证，生产范围扩大了，想找这两个产品的质量标准，哪怕是一些物理性质或是单个含量检测方法也行，万分感谢

求替加环素及泰诺福韦质量标准现在换生产许可证，生产范围扩大了，想找这两个产品的质量标准，哪怕是一些物理性质或是单个含量检测方法也行，万分感谢

HPLC法在药物对映体的分离和测定中的应用 （转） 摘　要：由于药物对映体之间在药理、毒理及吸收等方面存在较大差异，因此，建立分离和测定对映体化合物的方法十分重要。本文综述HPLC法在分离和测定药物对映体的常用方法，包括手性衍生化试剂、手性流动相和手性固定相在药物对映体分离测定中的应用。对对映体化合物的分析鉴定有指导意义。　　手性化合物的拆分是当前分析化学中最为活跃的领域之一，自然界中的许多化合物都是有旋光性的，而合成手性药物中大多（88%）是外消旋体，许多手性药物的对映体在生理过程中显示了不同生理活性。据研究反应停的致畸作用主要是由于其（S）-（-）异构体所致。因此，建立高专属性、高灵敏度、高分离度的对映体拆分和测定方法，对提高药物的活性、减小副作用，深入研究药物的作用机理等具有重要的理论和实际意义。对映体化合物之间除对偏振光的偏转方向不同外，具有完全相同的理化性质，因而其分离比较困难。传统的拆分方法有分步结晶、微生物和酶消化法等，或者用手性衍生化试剂将其转化成非对映体，然后根据其物理性质不同进行分离，但这些方法难于进行微量的分离和测定。80年代以来，随着快速、准确、微量的光学异构体的HPLC拆分及测定方法的建立和发展，使HPLC迅速成为药物对映体分离和测定最为广泛应用的方法。手性HPLC拆分法是以现代HPLC技术为基础，引入手性环境使对映异构体间呈现物理特征的差异而进行分离。通常分间接法和直接法，前者是对映体混合物以手性试剂作柱前衍生，形成一非对映体，然后以常规（偶也见手性）固定相分离。后者是直接以手性流动相（CMP）或手性固定相（CSP）直接进行分离。1　手性衍生化试剂法　　手性衍生化试剂（CDR）法是在分子间引入手性中心，其产物为非对映异构体(diastereomer，DSTM),从而进行分离。下列情况通常选用CDR法进行拆分：(1)不宜直接拆分。添加某些基团，以增加色谱系统的选择性。如游离胺类在CSP上往往是颇弱的色谱性质，生成中性化合物后则获显著改善。(2)提高紫外或荧光检测的效果。刘雁鸣等［1］用 NBD-(L)-APY荧光试剂柱前衍生化测定布洛芬对映体,提高了检测灵敏度。对CDR的要求通常为：溶质分子至少有一个（多个时其性质各不相同）功能团供衍生（多为-NH2，-OH或-COOH）。光学活性试剂必需是手性高纯度；反应条件必须温和、简便；宜附有发色或荧光基团。目前，已有许多商品化的CDR可供选用，常见的CDR可分为以下几类：(1)异硫氰酸酯和异氰酸酯类　此类试剂易与大多数醇类及胺类化合物反应进而被分离，如麻黄素类，肾上腺素类，肾上腺素拮抗剂，儿茶酚胺类等。王亚芹等［2］采用S(+)-1-(1-苯基)乙基异氰酸酯为衍生化试剂分析了血浆中普罗帕酮的对应体，并研究了其在健康人体内的药代动力学。邱宗荫等［3］用乙酰葡萄糖异硫氰酸酯（GITC）为柱前CDR，以反相HPLC法测定血浆中地佐西平对映体的血药浓度，线性范围为5～200μg.L-1。陈冰等［4］用GITC为柱前CDR，用反相HPLC法测定血浆中普罗帕酮对映体的血药浓度，适合用于临床药动药效学研究。(2)萘衍生物类　由于此类化合物有利于提高立体选择性和检测灵敏度，因此萘的各种衍生物用作手性试剂十分普遍。Wainer等［5］选用萘甲醛（NDH）为手性试剂，与其缩合成恶唑烷衍生物，成功地分离了麻黄碱、4-甲氧基麻黄碱、伪麻黄碱。Bhatti［6］等用S-(+)-1-(1-萘基)-乙基异氰酸酯为CDR，用HPLC法测定了人血浆中美托洛尔对映体浓度。(3)酰氯与磺酰氯类　此类试剂可与化合物直接缩合，或与样品反应后，再引入其它基团，合成更有利于拆分与检测的衍生物。Sallustio等［7］以SOCl2与芳丙酸类消炎镇痛药如2-苯丙酸、酮洛芬及非诺洛芬的血浆样品提取物反应，然后再与R-2-苯乙胺成酰胺衍生物，产物以NP（Sil，乙腈∶二氯甲烷，5∶95）分离，异构体均可完全拆分。(4)光学活性氨基酸类　为最早采用的色谱手性试剂，为提高反应活性和定量回收率，常将羧基转化成酰氯、酸酐等。此类试剂广泛用于胺、羧酸及醇类药物，尤其是氨基酸类，其衍生化法多基于肽合成原理。本类方法要求手性药物具有活泼反应基团，同时两个对映体的衍生化速度应相同，否则会引起非对映体与原对映体的组成产生差异，另外要求手性衍生化试剂光学纯度高，反应要迅速、彻底，因此应用受到一定限制。

请问专家：用毛细管电泳分离对映体时，两对映体峰中有一峰尖部又发生了分裂，是什么原因？ 还有，在电泳图中，基底吸收为零，还存在负峰，且负峰总在固定位置出现，原因可能是什么？可能是水峰吗？或存在能增强紫外光的物质吗？谢谢！

各位老师： 实验中碰到下面难题：一个含有2个手性中心的化合物，有4个对映异构体；顺利将该化合物四个对映体拆分后，利用在线旋光测出了这四个对映体的旋光性，依次为 (+)/(-)(+)/(-)；问题是：这四个对映体的绝对构型(R)/(S)目前条件没有办法得到；在如何描述这个对映体上碰到了麻烦！ 对于一个仅含有一个手性中心的化合物A，即便不知道其绝对构型，如果测定出了其对映体的旋光性，可以用 (+)-A 或 (-)-A 来表示该手性化合物的两个对映异构体；但对与含2个手性中心，有4个对映体的化合物，不知道其绝对构型，仅知道旋光性，按照上面的命名显然会造成歧义；目前也没有查到率属于上述情况的能供参考的文献，请各位老师支招，有没有比较好的办法来表示这四个对映体？麻烦了，非常感谢！

大家好，请问在新药研发过程中，候选化合物为单手性中心药物时，确定开发消旋体还是单对映体阶段，需要进行哪些方面的工作，选择原则或基准是什么？我初次进行这方面的工作，希望大家回复时越详细越好，谢谢大家！

非对映异构体仅仅是构型上的差别，为何理化性质会差别很大呢？而且液相分析时很多非对映异构体用普通的反相就能分开，为什么仅仅一个构型上的差别会导致这么大的理化性质差异呢？求指教

各位大侠，有谁能告诉我桧烯有几个对映体呀？在NMR氢谱上可以看出区别吗？最近分挥发油，分到桧烯，可是有对映体，需要测光学纯度，但是条件有限，想知道核磁方法可以解决吗？ http://imgsrc.baidu.com/baike/pic/item/814b07d89e5dc77333fa1c8e.jpg

最近想要分离一个手性对映体，原料为L-酪氨酸，S构型，其在反应过程中容易生成另外一种构型，看了一些资料文献，说在不用手性柱的情况下也可以尝试分离，请问这个能否用普通C18柱分离？有几个加手性添加剂的条件，使用L-脯氨酸和硫酸铜，普通C18柱能否用这个流动相？（问了工程师，工程师说是不行，但是很多小伙伴貌似都有使用……）如果使用了这个流动相，需要注意什么，仪器如何清洗比较好?是否有做过此类分离的小伙伴，提供一下经验~~~万分感谢~

请问对映体分离时，两个对映体的有效电泳淌度差和分离度的变化趋势应该是一样的吗，我在考察条件时出现了不一致的现象，不知道是什么原因

我用一个光学纯的化合物合成了双手性碳的产物,过柱后得到的是液态物质,重结晶后获得了一个光泽度较好的片状晶体.我将这种物质拿去过手性柱,试了几个流动相,都只出来一个单峰,郁闷死了,我该怎么办?怎样才知道它是是单一物还是非对映异构体的混合物?

一对对映体在正离子模式下两个峰，负离子模式下只有一个峰这种情况可能吗?

20X106 copy/ml，并持续至少一年，其中四例HbeAg阳性。加用替诺福韦酯后，经24到30周治疗，患者HBV载量降至均数为5460 copy/ml（4000-7800），前后对比差异显著。10例经拉米夫定治疗出现耐药，换用阿德福韦再次出现耐药的慢性乙肝患者，经替诺福韦酯单一治疗，至12个月时HBV DNA下降4.4log10 copy/ml，治疗17个月时，5例患者HBV DN

请问外消旋体在碳谱和氢谱上有什么特点,如何利用核磁来区分对映异构体和非对映异构体

[color=#444444]液相色谱质谱联用时，比如在液相色谱端进一针DL-苯丙氨酸，那么在液相的色谱图上理论上会出现DL-苯丙氨酸对映体的两个峰，那么当样品流到质谱检测器时，质谱的总离子图上是出现一个峰还是两个峰？液相负责分离，质谱负责定性，质谱可以确定化合物的分子量和分子式，但是可以确定化合物的左右旋对映体么？[/color]

替诺福韦杂质是一种化学物质，它是替诺福韦的同分异构体或相关化合物。替诺福韦是一种核苷酸逆转录酶抑制剂，用于治疗HIV和乙型肝炎。COTO标准品是一种高纯度的标准物质，用于测定替诺福韦及其杂质的纯度、含量和化学性质。通过与COTO标准品进行对比和分析，可以确定替诺福韦及其杂质的结构、组成和含量，从而保证替诺福韦的质量和安全性。在药物研发和生产过程中，COTO标准品的使用非常重要。它可以提供可靠的参照物，用于质量控制、药物分析和化学计量学研究。通过使用COTO标准品，可以确保替诺福韦及其杂质的准确性和可靠性，为药物的安全性和有效性提供保障。总的来说，COTO标准品在替诺福韦杂质的研究和控制中具有重要作用。通过使用COTO标准品，可以更好地了解替诺福韦及其杂质的性质和含量，从而确保药物的安全和有效性。同时，也需要加强生产过程中的管理和监督，加强质量标准和监管措施的执行力度，确保药物质量和安全。

各位版友，大家好。 目前手上有1化合物及其对映体，纯度均大于95%，需开发检测方法，其本身无紫外吸收。为提高效率，准备委外与自行开发并行，现寻求各位版友帮助，帮忙提供一些第三方拆分机构信息。PS：已联系大赛璐，YMC,菲罗门（均无对应检测器），研创已送样。望各位版友提供更多的资源，万分感谢。[img]http://simg.instrument.com.cn/bbs/images/default/em09505.gif[/img]

各位版友，小弟我最近在开发一个拥有4个手性中心的化合物的HPLC，目前已经购买了这个化合物的5个杂质对照品了，其中一个杂质是对映异构体，准备买大赛璐的手性柱进行分离，其他4个杂质均为非对映异构体，目前分别采用了0.1%的三氟乙酸作为流动相与乙腈梯度洗脱，5mM磷酸二氢钾（PH7.0)/(PH2.5)与乙腈梯度洗脱，采用前一个流动相峰宽有点宽，后一个流动相峰形很好，但是无法分开，想请教有分离非对映异构体的版友们支招啊！兄弟我不甚感激！

用普通的反相柱跑对映异构体，为什么会出现双峰？用的是普通反相柱而不是手性柱，对映异构体是纯品，无杂质，双峰峰高基本一致，请教其中的原理。

为何要在对映体水平研究手性污染物（手性农药）？相比在外消旋体水体的研究，在对映体水平的研究有何不同？

rt核磁能检测并区分手性对映体吗？

条件已经建立 这个需要做线性吗 怎么做线性 有必要做线性吗 欢迎讨论药品对映体只有一个

一个药物有多个手性碳，已知一个异构体的结构，能否通过NMR来判断另外几个非对映异构体的结构？希望各位多多帮助，谢谢！

[size=3][b]请问在对手性化合物（RS）原料药进行光学纯度控制中，用手性柱对其杂质对映异构体（SR）进行控制，而用普通的C18柱对非对应异构体（RR+SS）进行控制，但此RR与SS在C18上是重合的，这样可以吗？前提是该四个异构体无法在手性柱的一个流动相体系中出现，所以才出此下策。[/b][/size]

选择R-（+）-苯乙基异氰酸酯作为手性衍生化试剂,与非索非那定生成氨基甲酸酯衍生物,通过反相高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]法实现对映体的分离分析。非索非那定两个对映体衍生物在25~100 ng/ml浓度范围内线性关系良好（R~2=0.9992,0.9989）,日内、日间精密度均小于10%。建立的非索非那定对映体柱前手性衍生化反相高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]分析方法灵敏、准确,可用于体外细胞模型中盐酸非索非那定立体选择性分析。 详见姚青青等，浙江大学学报(医学版). 2014,43(02)。

在对映体水平上研究手性农药的一般思路是什么?

对映体手性碳原子上连接的H原子的化学位移一样吗？手性异构的碳原子（R构型、S构型）对连接在其碳原子上的氢原子的屏蔽效应会不同吗？对与其临近的碳原子上的H原子屏蔽效应相同吗? 为什么？