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叶酸分析标准品

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  • 食品叶酸检测分析

    食品叶酸检测分析

    [align=center][b]食品叶酸检测分析[/b][/align][align=left][b]实验背景:[/b][font=宋体]检验过程中发现经过考察后,食品中叶酸检验结果有增长趋势,[/font][font=宋体]。[/font][font=宋体][b]对数据进行原因分析,结论为实验室之间检测误差导致。[/b][font=宋体]检验方法[/font][font=宋体]1.1仪器与用具:电热鼓风干燥箱、电子天平、旋涡混合仪、立式压力蒸汽灭菌器、紫外可见分光光度计、生物安全柜、生化培养箱、离心管、容量瓶、量筒、试管、[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/9p][color=#3333ff]移液枪[/color][/url]。[/font][font=宋体][font=宋体]注:所用玻璃器皿使用前用盐酸浸泡液或月桂基磺酸钠洗涤剂清洗干净后,[/font][font=宋体]250℃干热1h~2h。[/font][/font][font=宋体]1.2试剂:20%乙醇溶液(2+8)、氢氧化钠乙醇溶液(0.01mol/L)、氢氧化钠溶液(1mol/L)。[/font][font=宋体]1.3培养基:琼脂培养基,叶酸测定培养基。[/font][font=宋体]1.4 标准品:叶酸标准品。[/font][font=宋体]1.5菌种的制备与保存:[/font][font=宋体]菌种:鼠李糖乳杆菌或等效菌株。[/font][font=宋体][font=宋体]储备菌种的制备:将菌种鼠李糖乳杆菌转接至菌种储备用琼脂培养基中,在[/font][font=宋体]36℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h,连续转种2代~3代。取出后放入2℃~4℃冰箱作为储备菌株保存。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]实验前将储备菌株接种至菌种储备用琼脂培养基中,在[/font][font=宋体]36℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h以活化菌株,用于接种液的制备。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]注:保存[/font][font=宋体]2周以上的储备菌种,不能立即用作接种液制备,实验前宜连续传种2代~3代以保证细菌活力。[/font][/font][font=宋体]1.6接种液的制备:实验前一天,取2mL叶酸标准工作液与4mL叶酸测定用培养基混匀,分装至2支试管中,于121℃(0.10MPa~0.12MPa)高压灭菌15min(或根据培养基标签标识进行灭菌)后即为种子培养液。冷却后用接种环将活化的菌株转种至2支种子培养液中,于36℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h。取出后将种子培养液混悬,无菌操作下吸取0.5mL转种至5mL不加叶酸标准工作液的无菌叶酸测定培养基中,于36℃±1℃再培养6h,以消耗种子培养液中残存在菌株中的多余叶酸,制成接种液。[/font][font=宋体]1.7分析步骤(所有操作均需避光进行)[/font][font=宋体][font=宋体]试样提取:准确称取液体试样[/font][font=宋体]0.5mL~2mL,精确至0.001g,转入锥形瓶中,加入80mL氢氧化钠乙醇溶液,具塞,超声振荡0.5h~4h至试样完全溶解或分散,转入100mL容量瓶中,用水定容至刻度。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]稀释:根据试样中叶酸含量用水对试样提取液进行适当稀释,使试样稀释液中叶酸含量在[/font][font=宋体]0.2ng/mL~0.3ng/mL范围内。[/font][/font][font=宋体]1.8试样测定[/font][font=宋体][font=宋体]试样系列管:取[/font][font=宋体]3支试管,分别加入1.0mL、2.0mL、3.0mL试样稀释液(Vx),补水至5.0mL,混匀。每个梯度做2个平行。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]标准系列管:取试管分别加入叶酸标准工作溶液[/font][font=宋体]0.00mL、0.25mL、0.50mL、1.00mL、1.50mL、2.00mL、2.50mL、3.00mL、4.00mL和5.00mL,补水至5.00mL,相当于标准系列管中叶酸含量为0.00ng、0.05ng、0.10ng、0.20ng、0.30ng、0.40ng、0.50ng、0.60ng、0.80ng和1.00ng,混匀。制备2套~3套标准系列管,绘制标准曲线时,以每个标准点平均值计算。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]灭菌:将所有测定系列管、叶酸测定培养基于[/font][font=宋体]121℃(0.10MPa~0.12MPa)高压灭菌15min(或根据培养基要求进行灭菌)。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]接种和培养:待测定系列管冷却至室温后,在无菌操作条件下,每[/font][font=宋体]10mL叶酸测定培养基加入接种液40μL,混匀,每支测定管中加入接种后的叶酸测定培养基5mL,混匀。置于36℃±1℃恒温培养箱中培养20h~40h,获最大混浊度时终止培养。另准备一支标准0管(含0.00ng叶酸)不接种作为0对照管。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]测定:将培养好的标准系列管、试样系列管用旋涡混合仪混匀。用[/font][font=宋体]1cm比色杯,于540nm处,以未接种0对照管调节透光率为100%(或吸光度值为0),依次测定标准系列管、试样系列管的透光率(或吸光度值)。如果0对照管出现浑浊,说明可能有杂菌污染,需重做实验。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]注:适宜的测定光谱范围为[/font][font=宋体]540nm~610nm。[/font][/font][font=宋体]1.9分析结果表述:[/font][font=宋体] [font=宋体]标准曲线:以标准系列管叶酸含量为横坐标,每个标准点透光率(或吸光度值)均值为纵坐标,绘制标准曲线。[/font][/font][font=宋体][font=宋体]试样结果计算:从标准曲线计算试样系列管中叶酸的相应含量([/font][font=宋体]cx),如果3支试样系列管中有2支叶酸含量在0.10ng~0.80ng范围内,且各管之间折合为每毫升试样提取液中叶酸含量的偏差小于10%,则可继续按式进行结果计算,否则需重新取样测定。[/font][/font][font=宋体] [/font][font=宋体]2.检验结果[/font][font=宋体]分析的数据,叶酸含量没有降解趋势,结果符合[/font][font=宋体]GB 29922-2013[/font][font=宋体][font=宋体]的规定,结果如表[/font][font=宋体]1:[/font][/font][img=,620,229]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/07/202307011003010672_7959_2227357_3.png!w620x229.jpg[/img][b]3.[font=宋体]原因分析[/font][/b][font=宋体]GB 5009.211-2014《[/font][font=宋体][font=宋体]食品安全国家标准[/font] [/font][font=宋体]食品中叶酸的测定[/font][font=宋体][font=宋体]》方法为微生物法,实验过程需要将鼠李糖乳杆菌接种至含有样品的培养液中,培养后测定其吸光值,根据含量与透光率的关系,绘制标准曲线并计算出试样中的叶酸含量,整个实验过程人员、所处的环境、菌液的生长差异、吸光值测定时设备台间差,都直接影响检验结果。考察期叶酸含量稳定没有增长[/font][font=宋体]/降解趋势;综合分析[/font][/font][font=宋体]叶酸检验结果有增长趋势,系实验室之间检测误差导致。[/font]实验也是解决问题的过程,持续改进方法,不断增强技术。[font=宋体][font=宋体][/font][/font][/font][/align]

  • CATO独家 | 叶酸杂质标准品

    CATO独家 | 叶酸杂质标准品

    [font=宋体]◇叶酸杂质[/font][font='Segoe UI'][color=#05073b][font=Segoe UI] 叶酸杂质通常是指在叶酸的生产或保存过程中产生的非目标化合物。这些杂质可能会影响叶酸的纯度和效果,因此在叶酸的生产和质量控制过程中需要严格控制其含量。叶酸杂质有多种类型,每一种都具有不同的化学特性,如[/font]CAS号、分子式、分子量等。例如,有一种叶酸杂质CAS号为82778-08-3,分子式为C7H7ClN6HCl,分子量为247.08。另一种叶酸杂质G的CAS号为6810-75-9,英文名称为Folinic Acid Impurity G。此外,叶酸杂质5的CAS号为873397-19-4,纯度为98% HPLC。[/color][/font][font=宋体][font=Calibri] CATO[/font][font=宋体]标准品提供的叶酸全套的杂质[/font][/font][font=宋体],[/font][font=宋体]这些杂质对于药物的纯度和稳定性研究至关重要,也是药物研发过程中不可或缺的一部分[/font][font=宋体]。[img=,602,513]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/02/202402182015587706_5356_6381607_3.png!w602x513.jpg[/img][/font][font=宋体][color=#05073b][back=#fdfdfe] 广州[/back][/color][/font][font='Segoe UI'][color=#05073b][back=#fdfdfe]佳途科技[/back][/color][/font][font=宋体][color=#05073b][back=#fdfdfe]股份有限公司[/back][/color][/font][font='Segoe UI'][color=#05073b][back=#fdfdfe]深知药物研发与质量控制的重要性[/back][/color][/font][font=宋体][font=宋体],[/font][font=Calibri]CATO[/font][font=宋体]标准品厂家,提供叶酸全套[/font][/font][font=宋体]的[/font][font=宋体]杂质,为客户提供更加精准、可靠的分析标准品,助力药物研发事业的快速发展[/font][font=宋体],[/font][font=宋体]以满足客户在药物研发和质量控制方面的需求。[/font]

  • GB 5009.211-2014微生物法测定叶酸 标准中存在问题吗

    GB 5009.211-2014微生物法测定叶酸标准3.5.1叶酸标准储备液20.5ug/mL的配制:精确称取20.mg叶酸标准品,用氢氧化钠乙醇溶液定容至1000mL,然后在256nm处进行了标定,得到浓度为c1。然后3.5.2配制叶酸标准中间液(0.200ug/mL)时,是吸取1mL上述储备液定容至100mL,但没有用到标定浓度c1啊,这不符合试剂配制原理吧,还是说有什么特殊情况?6.7测定 部分,测定时采用的是540nm,但是标定时采用的254nm,为什么不一样呢?问题1:标准储备液标定的作用是什么?问题2:标定和检测时的波长为什么不一致?

  • 【分享】食品中叶酸的测定方法

    1.原理叶酸是酪乳酸杆菌(Lactobacillus casei, L. C, ATCC 7469)生长所必需的营养素。在一定条件下,L.C的生长繁殖与培养基中叶酸含量呈正比关系,细菌增殖的量以光密度值计,通过与标准曲线相比较,计算出样品中叶酸的含量。2.适用范围参考《Methods of Vitamin Assay》,第4版。本方法适用于各类食物中叶酸的测定。检测限为0.1ng。3.仪器与设备(1) 恒温培养箱(2) 离心机(3) 高压消毒锅(4) 震荡器(5) 接种针和接种环(6) 分光光度计4.试剂除特殊说明外,本实验中所有试剂均为分析纯,水为蒸馏水。(1) 菌种:酪乳酸杆菌(Lactobacillus casei, L.C, ATCC 7469)(2) 磷酸缓冲液(0.05mol/L, pH6.8):称取4.35g Na3PO412H2O,10.39g Na2HPO47H2O溶解于800ml水中。临用前用约5g抗坏血酸调节pH至6.8。(注:叶酸对光、热敏感,易被氧化破坏,抗坏血酸有助于保护叶酸被氧化。)(3) 鸡胰酶溶液: 称取100mg干燥的鸡胰酶(Difco公司)(注:含有叶酸轭合酶,用于水解叶酸多谷氨酸盐), 加入20ml磷酸缓冲液制成匀浆,3000rpm离心10min,取上清液备用。临用前现配。(4) 蛋白酶-淀粉酶溶液:分别称取200mg蛋白酶(Sigma公司)和淀粉酶(Sigma公司),加入20ml磷酸缓冲液制成匀浆,离心3000rpm 10min,取上清液备用。临用前配制。(5) 2+8乙醇溶液:量取20ml无水乙醇溶液,加入80ml水混匀。(6) 01mol/L NaOH: 称取0.4g氢氧化钠,加2+8乙醇溶液溶解并稀释至1L。(7) 10mol/L NaOH。称取400g氢氧化钠,加水溶解并稀释至1L。(8) 叶酸标准储备液(200mg/ml):准确称取200mg叶酸标准品(Sigma公司,纯度大于98%),用0.01mol/L NaOH溶解并定容至1L。储存于棕色瓶中。(9) 叶酸标准中间液(200ng/ml):准确吸取1.0ml叶酸标准储备液,用0.01mol/L NaOH 溶解并定容至1L。储存于棕色瓶中。待标定。标定:准确吸取1ml叶酸标准中间液,用0.1mol/L NaOH定容至10ml。以0.1mol/L NaOH调零点,比色杯厚度1cm,波长256nm,测定3次紫外吸光度值,取平均值,按下式计算标准中间液浓度。X1 =A/E×M ×10×10E6 …………………(1) ` 式中:X1 -- 叶酸标准中间液浓度,ng/ml;A -- 标准中间液平均紫外吸光度值;E -- 摩尔消光系数24,500;M -- 叶酸分子量441.42;10-- 测定紫外吸光度值时的稀释倍数;106 -- 由g/L换算成ng/ml的换算系数。(10) 叶酸标准工作液(0.2ng/ml):准确吸取1.0ml叶酸标准中间液,用磷酸缓冲液稀释定容至1L。(11) 2.4mol/L HCl:量取20ml浓盐酸,加水稀释至100ml。(12) 酶解酪蛋白溶液:将8g碳酸氢钠溶解于1L水中,加入60g去维生素酪蛋白(Sigma 公司),用10mol/L NaOH调节pH至 8.0(调pH时应小心,不要过碱后再加酸反复调节,避免酪蛋白结块)。加入300mg胰酶,搅拌20min,使胰酶混匀充分。再加入2.5ml甲苯,置37℃恒温箱酶解48~72h(此步骤是将酪蛋白酶解为L.C可以利用的小分子肽。酶解时间不易超过72h,如时间过长,配成的培养基不利于细菌生长)。将酪蛋白液从恒温箱中取出,121℃高压30min以终止反应并去除甲苯。冷却,加10g硅藻土搅拌,用垫有滤纸的布氏漏斗过滤。向滤液中加入约60ml冰乙酸调节pH至3.7。称取活性炭12g,加入滤液中搅拌10min,用布氏漏斗过滤,重复三次。每次过滤时,布氏漏斗内加有10g硅藻土协助过滤。最后滤液用水稀释至1200ml,4℃冰箱保存1年(活性碳可吸附酪蛋白中的叶酸以减少试剂空白,同时也可吸附肽及氨基酸,应注意控制搅拌时间)。取10ml酶解后的酪蛋白溶液加入已称重的蒸发皿中,沸水浴蒸发至干。将蒸发皿置于100℃恒温烤箱内干燥至恒重,在干燥器中冷却至室温。称量蒸发皿的重量,蒸发皿内固体重量,如固体重量小于400mg,即每毫升酪蛋白溶液中固体含量40mg,则弃除酪蛋白液,重新制备。(13) 黄嘌呤溶液:取0.4g黄嘌呤,加入10ml氨水,加热溶解,用水稀释至100ml。冰箱保存。

  • 注射用水溶性维生素的分析(2)——叶酸,生物素

    注射用水溶性维生素的分析(2)——叶酸,生物素

    [align=center][b]注射用水溶性维生素的分析(2)[/b][/align][align=center][b]——叶酸,生物素[/b][/align]客户提供了注射用水溶性维生素粉针剂及对照品(叶酸,生物素),要求本实验室依据客户所提供方选择合适色谱柱,满足方法中对叶酸,生物素及其前后相邻杂质的分离要求,进而达到准确定量的目的。首先,依据客户提供的色谱条件我们尝试了使用中等极性色谱柱CAPCELL PAK C18 MGII S5 4.6 mm i.d. × 150 mm(A4AB 07251),分析对照品溶液与供试品溶液,结果如图1所示,对照品溶液中叶酸及生物素得到了良好的分离结果;在分析供试品溶液时,叶酸与其后杂质峰能够得到分离度为1.83的良好分离结果。[align=center][img=,673,421]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801110920_3890_2222981_3.jpg!w673x421.jpg[/img][/align][align=center]图1 CAPCELL PAK C[sub]18[/sub] MGII(150 mm)分析对照品及供试品溶液结果[/align]注*峰上所标数字为分离度,下同。[img=,673,298]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801110920_2922_2222981_3.jpg!w673x298.jpg[/img]为提高分离能力,使叶酸峰与其后杂质峰分的更远,我们尝试将色谱柱长度由150 mm换为250 mm,再一次分析供试品及对照品溶液,结果发现叶酸和生物素保留时间均明显延长,叶酸峰由16.97 min延长到29.03 min,此时叶酸峰与其后相邻杂质峰能够得到更好的分离,分离度为4.23,但同时也发现生物素峰被包于杂质峰中(如图2)。[align=center][img=,690,437]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801111011_6191_2222981_3.jpg!w690x437.jpg[/img][/align][align=center]图2 CAPCELL PAK C[sub]18[/sub] MGII(250 mm)分析对照品及供试品溶液结果[/align][align=left][img=,668,303]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801111011_2127_2222981_3.jpg!w668x303.jpg[/img][/align][align=left][/align][align=left]为使客户有更多色谱柱选择,本实验室也尝试了高碳载量的SUPERIOREX ODS色谱柱对对照品溶液及供试品溶液进行分析,同样能够得到待测组分与前后杂质峰的良好分离,分离度均在2.0以上;同时,我们也发现在分析供试品时,由于供试品中复杂基质的影响,叶酸峰会出现一定的拖尾现象(如图3)。[/align][align=left][/align][align=center][img=,619,394]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801111012_1478_2222981_3.jpg!w619x394.jpg[/img][/align][align=center] 图3 SUPERIOREX ODS分析对照品及供试品溶液结果[/align][align=center][/align][align=left][img=,687,297]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801111012_3462_2222981_3.jpg!w687x297.jpg[/img][/align][align=center][/align][align=left]我们也尝试使用可以在100%水系流动相下使用的高极性AQ色谱柱分析供试品溶液及对照品溶液,发现由于整体保留时间过长而使得生物素峰被包于杂质峰中,因此,我们尝试缩短整体保留时间,在药典规定范围内,提高流动相中有机相比例,将流动相比例由磷酸二氢钾缓冲溶液-乙腈(93:7)调整为(91:9),最终发现供试品中叶酸和生物素也能够与其相邻杂质峰取得良好分离结果,且分离度更佳(见图4)。[/align][align=left][/align][align=center][img=,655,416]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801111020_155_2222981_3.jpg!w655x416.jpg[/img][/align][align=center]图4 CAPCELL PAK C[sub]18 [/sub]AQ S3分析对照品及供试品溶液结果[/align][align=left][img=,661,296]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/01/201801111021_778_2222981_3.jpg!w661x296.jpg[/img][/align][align=left][/align][align=left]综上实验结果,使用中等极性的[b]CAPCELL PAK C[sub]18[/sub] MGII S5[/b] 4.6mm i.d. × 150 mm(A4AB 07251)和高碳载量的[b]SUPERIOREX ODS S5[/b] 4.6 mm i.d. × 150 mm(AZAB 12684)色谱柱,在客户原条件下,均能够实现叶酸、生物素及其相邻杂质间的良好分离;[/align][align=left]使用高极性[b]CAPCELL PAK C[sub]18[/sub] AQ S3[/b] 4.6 mmi.d. × 150 mm(A7AB 02100)色谱柱,在药典规定流动相可调整范围内,将流动相中磷酸盐缓冲液和乙腈比例调整为91 / 9(原条件为93 / 7),也可实现注射用水溶性维生素中叶酸和生物素及相邻杂质的良好分离。[/align]

  • 【求助】请教叶酸分析方法

    我在用液相分析叶酸时,做到一个样品含量很低,实在不容易检测,请问各位大虾有没有什么办法进行净化、富集?

  • 微生物法检测叶酸的问题

    哪位高手做过关于用微生物法检测叶酸的呀?最近在做叶酸检测时标准曲线怎么都做不好,我是按照GB/T 5009.211-2008做的,都做了好久了,每次做出来差距都很大,而且都很不好;还有一个问题是,在做标准曲线时,标准上是按不接种的不含叶酸的管调零,但是标准系列管的0管即不含叶酸但加了菌种的吸光度就不会为0了,但是我看了几篇文献也是按国标做的,其标准曲线都经过了原点,我不知道自己做的问题出在了哪里。希望做过这方面实验的高手能够指点一二,感激不尽~~

  • 【原创大赛】补叶酸,补叶酸,补叶酸!

    [font=宋体][color=#333333][back=white] 叶酸是一种水溶性维生素,也叫维生素[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]B9[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]。最初从菠菜中发现了这种生物因子,因此命名为叶酸,叶酸富含于新鲜的水果、蔬菜、肉类食品中,尤以酵母、肝及绿叶蔬菜中含量比较多,但天然叶酸极不稳定,易受阳光、加热的影响而发生氧化,所以人体真正能从食物中获得的叶酸并不多。合成的叶酸在数月或数年内可保持稳定,容易吸收且人体利用度高。[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white] 人体缺少叶酸可导致红血球的异常,未成熟细胞的增加,贫血以及白血球减少。孕妇缺乏叶酸有可能导致胎儿出生时出现低体重、唇腭裂、心脏缺陷等。因此,怀孕前[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]个月就要开始吃[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333]叶酸[back=white],每天[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]0.4mg[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white],即一粒[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333]叶酸,[back=white]可以降低胎儿神经管畸形率至[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]85%[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]。服用[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]5 mg[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]的叶酸则用来治疗女性贫血,消费者可根据不同情况进行选择。[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white] 叶酸测定试剂盒是以化学发光免疫分析法为原理定量测定人血清中叶酸含量的试剂盒,对贫血的临床诊断和治疗起辅助作用,最重要的是判断后期孕妇需不需要继续补充叶酸。叶酸的测定检查一般是在怀孕[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3-4[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]个月进行,判断后期孕妇需不需要继续补充叶酸,检测结果主要有三种:低风险,代表对叶酸的吸收和代谢能力是正常的或者接近正常,可以正常补充叶酸。中度风险,代表对叶酸的吸收和代谢能力存在障碍,可能会出现叶酸缺乏导致胎儿异常。高度风险,出现叶酸缺乏可能性就会非常高,女性需要在整个孕期补充叶酸。[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white] 叶酸测定试剂盒的检测效果至关重要,直接关系到优生优育。相关检测机构一般会按照以下要求对该试剂盒进行检测:[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]1.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]外观:试剂盒各组分应齐全、完整,液体无渗漏。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]2.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]溯源性:生产企业应根据有关规定提供所用叶酸校准品的来源、赋值过程以及测量不确定度等内容。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]准确度:[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]a)[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]相对偏差[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]:[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]使用可用于评价常规方法的有证参考物质[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white](CRM)[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]进行测定,实测值与标示值的相对偏差应在士[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]15%[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]范围内[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white] b)[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]回收试验[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]:[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]回收率应在[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]85%-115%[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]范围内。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white] [/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]4.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]检出限:应不大于[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]1.0ng/mL[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]5.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]线性:在不窄于[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]15-200ng/mL[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]区间内,相关系数[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]r≥0.99[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]6.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]重复性[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]:[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]利用同一批试剂盒对浓度在[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]15-60ng/mL[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]和[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]11-19ng/mL[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]的样本各重复检测[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]10[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]次,其变异系数[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white](CV)[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]应不大于[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]10%[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]7.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]批间差[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]:[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]用[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]个批号试剂盒检测浓度在[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]11-19ng/mL[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]的同一份样本,则[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]个批号试剂盒之间的批间变异系数[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white](CV) 15%[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]。[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]8.[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]稳定性[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]: a)[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]效期稳定性试验生产企业应规定试剂盒的有效期。取效期末的试剂盒检测其试剂准确度、检出限线性和重复性,应符合[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3~6[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]的要求;[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]b)[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]热稳定性试验[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]:[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]取有效期内的试剂盒根据生产企业所声称的热稳定性条件,检测其试剂准确度检出限线性和重复性,应符合[/back][/color][/font][font='Times New Roman',serif][color=#333333][back=white]3~6[/back][/color][/font][font=宋体][color=#333333][back=white]的要求。[/back][/color][/font]

  • 【原创大赛】HPLC法测定果冻类样品中叶酸含量的方法学建立

    [align=center][b]HPLC法测定果冻类样品中叶酸含量的方法学建立[/b][/align][align=center]顾琛 [/align][align=left][b]摘要:目的:[/b]本文采用反相高效液相色谱法建立测定果冻类食品叶酸(folic acid)含量的分析的方法。[b]方法:[/b]使用C[sub]18[/sub]柱作为分析柱,磷酸缓冲液和甲醇作为流动相,紫外检测器作为检测器,叶酸(Pteroylmonoglutamic acid)作为对照品,果冻食品作为样品。[b]结论:[/b]该法在50ng/mL-1000ng/mL之间呈良好的线性,重现性好RSD<2%,回收率在107±2%,稳定性良好,最小检测限20ng/mL。样品测试结果与微生物检测结果相符。本法可以作为测定食品中叶酸含量的一个方法。[/align][b]关键词:[/b]叶酸,HPLC, 果冻样品[b]Abstracts :Aim:[/b] A simple method for the determination offolic acid in gel sample by high-performance liquid chromatography withUV-detection is reported. [b]Methods: [/b]The method was simple by using RP-column (C[sub]18[/sub])with phosphorate -methanol as mobile phase and UV as a detector. [b]Conclusion: [/b]The calibration graph was linear from 50 to1000ng/mL for folic acid with a correlation coefficient of 0.999(n=5). Thedetection limit is 20ng/mL. The method was successfully applied fordetermination of folic acid in the gel sample. The recovery was 107±1.5% and the reletive standard deviation was no morethan 2%. Compared with microbiology method, the results of the samples are same.This method can be used for content determination of the folic acid in gelsample.[b]Key Words:[/b] folic acid, HPLC, gel sample [b]1.前言与文献综述1.1叶酸的理化性质,生物学功能[/b] 叶酸(folic acid)是一组含有碟酰谷氨酸结构的一类化合物统称。食物中的叶酸绝大多数是以喋酰多谷氨酸(或称多谷氨酸叶酸)的形式存在的。叶酸为淡黄色结晶粉末,微溶于水,不溶于乙醇、乙醚及其它有机溶剂;叶酸的钠盐易溶于水,但在水溶液中易被光解破坏,分解成碟啶和氨基苯甲酰谷氨酸盐。在酸性溶液中对热不稳定,而在中性和碱性溶液中却十分稳定。食品中叶酸经受热易损失。 食物叶酸经小肠粘膜细胞内特异叶酰多谷氨酸水解酶的作用,水解为喋酰单谷氨酸(或称单谷氨酸叶酸,PteGlu①)后吸收。吸收后的单谷氨酸叶酸一部分又转变为多谷氨酸叶酸,在肝脏、红细胞及其他组织细胞内贮存,其余部分则以单谷氨酸叶酸的形式分布于血浆、组织液、胆汁及尿液中。肝脏的叶酸浓度是血浆的几百倍,但其单谷氨酸叶酸浓度与血浆相近。叶酸以8种辅酶形式存在于生物体内,为一碳单位的载体参与嘌呤、嘧啶等重要物质的合成。[sup] [/sup]因此叶酸在DNA、RNA、核酸和蛋白质的生物合成中起着重要作用,是细胞增殖和机体发育的物质基础。叶酸在体内的含量直接影响到多种物质如核苷酸的代谢,进而影响血细胞的形成。[b]1.2目前测定叶酸的一些主要方法以及对各个方法的评价1.2.1微生物法[/b] 微生物法是检测生物体内叶酸的经典方法。[color=black]它最根本的原理在于利用了微生物对于某些营养物质的特异性。大量的研究发现,某种微生物会对某种维生素具有极强的特异性,是其正常生长所必需的维生素,并且在一定条件下,其生长与繁殖速度与溶液中该维生素的含量成一定的对应关系,含量高则生长快,反之则慢,微生物法便利用了这种对应关系间接地测定出样品中该维生素的含量。[/color]通常所用的微生物有干酪样乳酸杆菌(L.casei)、粪链球菌和啤酒小球菌属。此3种微生物对不同形式叶酸的敏感度不同。粪链球菌只对非甲基化叶酸敏感,如PteGlu、二氢叶酸(DHF)和四氢叶酸(THF)。 微生物分析叶酸[color=black]具有极高的灵敏度准确度高、先期投入少,见效快、测定结果反映了样品中具有生物活性的被测物含量等优点。许多国际标准方法机构仍旧将微生物法作为叶酸分析的标准方法或第一方法。[/color] 但是微生物法也有许多局限性,如整个实验周期长,批间检测结果重复性差,检测结果受样品中所含抗叶酸药物或抗生素成分的影响,[color=black]只能反映维生素的总含量,不能测定维生素各种异构体的组成和含量[/color]等。[b]1.2.2同位素放射免疫法[/b] 同位素放射免疫法检测血清叶酸始于70年代初。该方法具有快速、简便的特点,同时由于叶酸放射免疫试剂盒的出现,很快得到普及,尤其广泛应用于临床实验室。放射免疫法与微生物法检测叶酸,除原理不同外,检测结果的意义也有所不同。对大量标本总体而言,两种方法结果相关性较好,但对个体标本,两种方法结果的差异较大。微生物法对多谷氨酸叶酸响应值低,不能直接用于检测叶酸含量。但微生物法对所有单谷氨酸叶酸及其衍生物的反应灵敏度相同,故在用叶酸水解酶处理样品使所有叶酸形式转变为单谷氨酸叶酸后进行检测,可得到准确的叶酸值。同位素放射免疫法对多谷氨酸叶酸反应的相对灵敏度有较大的差别,随着叶酸浓度增加,反应的相对灵敏度增加,但多谷氨酸叶酸的反应曲线不可能与单谷氨酸叶酸的反应曲线重合;另一方面,多谷氨酸叶酸与结合蛋白的亲合性与单谷氨酸叶酸相比较高,不同的单谷氨酸叶酸衍生物反应灵敏度不同,放射免疫法也不适用于检测单谷氨酸叶酸衍生混合物。由于上述原因,尽管放射免疫法可用于检测和评价叶酸的营养状况,但从定量检测的角度来讲,难以得到准确的叶酸含量值。[b]1.2.3离子捕获法[/b] Wilson等提出离子 捕获法检测叶酸,该技术可谓叶酸检测技术中的最新方法,即在实验中,样品加入变性剂后叶酸与内源性结合蛋白分离,释放后的叶酸再与带有大量阴离子的亲合试剂结合,合成产物经过离子捕获池而与阳离子纤维结合,最后通过碱性磷酸酶与喋酸(叶酸的类似物)结合物对叶酸结合蛋白上游离结合位点的探查,定量分析样品的叶酸含量。该研究证实,离子捕获法测定血清或红细胞叶酸,其结果与同位素放射免疫法的结果具有良好的相关性,相关系数分别为0.96 和0.93。[b]1.3色谱法和HPLC法在测定食品中叶酸含量的现状[/b][align=left] 色谱法也称层析法,是一种分配平衡为基础的分离分析技术。色谱分离体系包含两相:固定相和流动相。由流动相带领的[color=black]物质分子在固定相间分配达到“平衡”的过程。通过不同物质分配平衡性质的差异达到彼此分离。[/color][/align][align=left][color=black] 20[/color][color=black]世纪[/color][color=black]70[/color][color=black]年代初发展起来的高效液相色谱([/color][color=black]High performance liquidchromatography, HPLC[/color][color=black])吸收了普通液相层析和[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]的优点,经过适当改进发展起来的。它既有普通液相层析的功能(可在常温下分离制备水溶性物质),又有[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]诸多优点(高速、高分辨率和高灵敏度)。适用于很多不易挥发、受热易分解的物质定性定量分析。[/color][sup][/sup][color=black][/color][/align][align=left] 运用高效液相色谱(HPLC)方法来定量食品中叶酸含量在近年来得到了普及。借助于色谱柱的高分离效果和灵敏的检测器,有能力来分离检测不同形式叶酸。中国药典方法使用高效液相色谱-紫外检测器检测叶酸。由于有些叶酸具有荧光特性,D.MP.Johan等[sup][/sup]使用高效液相色谱-荧光-紫外检测器的串连(HPLC-FD-UV)分析面包酵母中叶酸含量。R.Stefania[sup][/sup]等同样使用HPLC-FD-UV分析意大利食品中叶酸含量。由于食品中的干扰物质多,且叶酸含量较少,E.J.M.Konings[sup][/sup] 使用固相萃取法(SPE)对样品进行纯化和富集,然后使用HPLC-FD-UV检测牛奶,肝脏,蔬菜,面粉中的叶酸。L.H Douglas[sup][/sup] 等用HPLC-柱前衍生和HPLC-电化学检测器分别检测牛奶和其它食品中叶酸含量。随着技术的进步,高效液相色谱和质谱联用(HP[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]LC-MS[/color][/url])提供了专一性好,灵敏的方法。A.Freisleben[sup][/sup]使用LC-FD-MS联用检测食品中叶酸含量。[/align][align=center][b]表一:几种液相色谱联用的检测器方法的比较:[/b][/align][align=center][b]Table 1. Comparison of some detectors of HPLC [/b][/align] [table=649][tr][td=1,1,61] [align=center]检测器[/align] [/td][td=1,1,192] [align=center]原理[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]灵敏度[/align] [/td][td=1,1,84] [align=center]专一性[/align] [/td][td=1,1,108] [align=center]检测限②[/align] [/td][td=1,1,132] [align=center]评注[/align] [/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]紫外[/align] [align=center](UV)[/align] [/td][td=1,2,192] 物质在紫外光谱有吸收[/td][td=1,2,72] [align=center]较高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]稍强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]2μg/100mL[/align] [/td][td=1,2,132] 受到食品中其它物质干扰较大。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]荧光[/align] [align=center](FD)[/align] [/td][td=1,2,192] 共轭结构在激发光下电子激发到高能态,退激回基态时能量以荧光形式释放,根据荧光强度得待测物浓度。[/td][td=1,2,72] [align=center]高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]不能检测[/align] [/td][td=1,2,132] 能检测四氢叶酸和5-甲基四氢叶酸。而叶酸(Pt-Glu)③无荧光性质。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]电化学(ECD)[/align] [/td][td=1,2,192] 外加电压使特征物质失去电子,根据失去电子形成电流大小得出待测物质的浓度。[/td][td=1,2,72] [align=center]高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]0.32pmol[/align] [/td][td=1,2,132] 灵敏度高,专一性强。但是装备复杂。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,2,61] [align=center]质谱[/align] [align=center](MS)[/align] [/td][td=1,2,192] 特征碎片离子检测[/td][td=1,2,72] [align=center]较高[/align] [/td][td=1,2,84] [align=center]强[/align] [/td][td=1,2,108] [align=center]0.1μg/100mL[/align] [/td][td=1,2,132] 不普及,价格高。但是发展方向。[/td][td=1,1,0] [/td][/tr][tr][td=1,1,0] [/td][/tr][/table][b]1.4方法学建立的目的和意义以及技术路线1.4.1方法学建立的目的和意义[/b] 由于人体内的叶酸几乎完全依赖于食物的摄入,因此当摄入量不足或利用率低时,体内便会出现叶酸缺乏的状况。近年来的研究表明,叶酸缺乏会导致贫血、慢性下痢、食欲不振、发育迟缓等疾病,孕妇补充叶酸可防止因神经系统发育不全而形成的畸胎,儿童服用叶酸可提高智商,促进智力发展。所以,叶酸强化食品的摄取对人类健康具有重要意义。而叶酸强化食品的含量的科学性显得十分重要。 确实食品添加剂的质和量决定着加工类食品的营养和安全性。国外对于食品营养和安全十分关注,通过在加工食品的包装上注明的添加成分、营养物质的含量、适宜人群在产品包装,以利于不同需求的消费者选择。随着国内外交流的加强和HACCP认证的推进以及质量意识的增强,食品安全,食品营养受到了消费者和食品生产企业的关注。随着分析测试仪器的先进化和自动化给食品中各个成分的测定提供了强有力的“武器”,尤其是高效液相色谱的普及,它的高效性、准确性、方便、微量等优点是食品分析的一场“革命”。国内外HPLC法测定食品营养成份和食品添加剂方法发展得很快,相关报道较多。但是由于叶酸在食品中添加量甚微,食品中干扰物质较多,所以相应的文章报道相对较少。基于以上考虑设立本项目,具体目的有以下四点:[list=1][*]建立高效液相色谱方法分离分析果冻类样品中叶酸含量的方法学;[*]通过色谱条件的摸索和优化,获得叶酸分离的最佳条件;[*]对样品前处理条件的摸索和调整,得到简便、快速、有效的样品前处理方法;[*]通过对本套方法学的验证包括线性、精密度、回收率、稳定性等实验,建立可靠、完善、准确的测定果冻类样品中叶酸含量的方法学。本方法的建立,可为检测果冻类样品中叶酸含量提供可靠和准确的手段,也为检测其他食品中叶酸含量提供参考资料,所以本研究具有社会效益和经济价值。[/list][b]1.4.2技术路线[/b] 色谱条件的建立(流动相配比、色谱柱选取、检测波长、流速、柱温) [img=,51,13]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710139504_8563_1626663_3.png[/img] 积分条件的建立 [img=,51,14]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710137869_6909_1626663_3.png[/img] 确立标准品、样品配制方法 [img=,51,13]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710142106_9538_1626663_3.png[/img] 方法学验证(线性回归、精密度、回收率、稳定性、样品含量测定)[img=,40,14]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710143330_4024_1626663_3.png[/img] 方法学的改进 [b]2.实验部分2.1实验样品的描述2.1.1样品性质[/b] 无色或淡黄色果胶类样品。常温下为胶态和液态混合物。样品名称(AminoVital Supersports;AminoVital-1;AminoVital-2)。[b]2.1.2样品中添加的主要物质[/b] 添加氨基酸,维生素类,甜味剂,食用香精,食用色素,有机酸。[b]2.1.3可能的干扰因素[/b] 根据配料表信息,氨基酸、甜味剂、色素等物质在样品中较维生素几十倍量添加,而维生素中又以维生素C添加量最大,叶酸添加量相当少。所以上述物质对叶酸分析造成较大的干扰。[b] 2.1.4标准品和样品保存条件[/b] 标准品避光保存于冰箱冷冻柜中。样品置于-18℃冷藏库中保存。[b]2.2实验条件2.2.1仪器和试剂及标准品[/b]仪器配置:岛津LC-10A系列 泵:LC-10ADVP真空脱气机:DGU-12A控制器:SCL-10AVP紫外检测器:SPD-10AVP自动进样器:SIL-10ADVP柱温箱:CTO-10ASVP积分仪:CR-8A和LC-Solution积分工作站试剂:磷酸二氢钾(GR),氢氧化钾(GR),甲醇(HPLC),氨水(GR),纯水(HPLC)标准品:叶酸标准品(Pteroylglutamic Acid),纯度:98.0~102.0% 和光特级[b]2.2.2HPLC方法条件建立[/b]2.2.2.1流动相配制 0.05mol/L磷酸二氢钾(pH=6.33):甲醇=92:8(体积比),作为流动相。 称取7.0g KH[sub]2[/sub]PO[sub]4[/sub]置于1000mL烧杯,加入800mL纯水,溶解。通过滴加0.1mol/L KOH溶液,调节缓冲液pH值为6.33,转移至1000mL容量瓶中,加入80mL甲醇,再用纯水定容至刻度,摇匀。用0.45μm微孔滤膜过滤。装瓶。2.2.2.2检测器和检测波长 使用紫外检测器。使用λ=285nm作为检测波长。2.2.2.3色谱柱 ODS柱作为本次实验的分离分析柱。2.2.2.4流速和柱温选 流速设0.6mL/min;柱温选定为35.0℃2.2.2.5色谱条件: 色谱柱:Shim-pack VP-ODS 4.6mm×150mm 粒度:5μm (P/N 228-34937-91) 流速:0.6mL/min 检测器:紫外检测器 波长:λ=285nm 进样量:100μL 分析时间:100分钟(对于标准品测试仅需40分钟) 柱温:35.0 ℃ [b]2.3标准品配制(线性浓度配制)[/b] 标准品在使用前先放置于五氧化二磷干燥器至室温,并且避光保存。称取5.1mg叶酸(Pteroylglutamic Acid, 纯度:98.0~102.0% 和光特级)标准品,置于50mL棕色容量瓶中,用0.5%氨水溶液稀释,定容,摇匀。作为贮备液。用移液管吸取叶酸贮备液1mL,移入100mL棕色容量瓶中,用0.5%氨水溶液稀释,定容,摇匀。浓度为1020ng/mL.(STD 5)。分别吸取STD 5溶液1mL, 1mL, 5mL, 5mL, 置于20mL, 10mL, 25mL, 10mL容量瓶中,用0.5%氨水溶液稀释,定容,摇匀。浓度分别为 51ng/mL.(STD 1);102ng/mL.(STD 2);204ng/mL.(STD 3);510ng/mL.(STD 4)。[align=center][b]表二:标准品及对应的浓度[/b][/align][align=center][b]Table 2.Standard and their concentrations[/b][/align][align=center] [table=307][tr][td=1,1,72] [align=center]标准品[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,72] [/td][td=1,1,91] 浓度(ng/mL)[/td][/tr][tr][td] [align=center]STD1[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]51[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD2[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]102[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD3[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]204[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD4[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]510[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]STD5[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1020[/align] [/td][/tr][/table][/align][b]2.4精密度重复性[/b] 5个标准均连续进样6次,测试标准品相对标准偏差。[b]2.5标准品稳定性[/b] 5℃保存的半个月的叶酸标准品贮备液,放至室温。用移液管吸取1mL移入100mL棕色容量瓶中,用0.5%氨水定容,摇匀。再用移液管吸取上述溶液,移入10mL棕色容量瓶中。用0.5%氨水定容,摇匀。连同新试验配制的同浓度标准品一起测试。观察叶酸标准品在0.5%氨水溶液中的稳定性。 [b]2.6样品前处理步骤[/b] 精密称取样品5.00g置于25mL棕色容量瓶中,用0.5%氨水溶解,定容,摇匀。超声波超声10分钟。10000rpm离心10分钟。取上清液,用0.45μm微孔滤膜过滤。作为检液。[b]2.7样品配制[/b] 每个样品测试3次,样品分析后,在各样品中添加1mL STD5标准品,来确定样品溶液中叶酸的保留时间。样品分析时间100分钟。[b]2.8样品回收率[/b] 样品名称:Amino Vital ATP 19582 精密称取样品5.00g,置于25mL棕色容量瓶中,用0.5%氨水溶解,定容,摇匀。10000rpm离心10分钟。吸取上清液,用0.45μm微孔滤膜过滤。作为空白检液。 精密称取10.00g样品,置于50mL棕色容量瓶中,用移液管吸取5mLSTD 5 溶液,移入同一容量瓶中, 用0.5%氨水溶解,定容,摇匀。10000rpm离心10分钟。吸取上清液,用0.45μm微孔滤膜过滤。作为回收率试验检液。[b]2.9确定最小检测浓度[/b] 用移液管吸取STD3标准品1mL置于10mL棕色容量瓶中,用0.5%氨水溶解,定容,摇匀。浓度为20ng/mL.[b]3.结论3.1标准曲线[/b][align=center][b]表三:标准品浓度和峰面积[/b][/align][align=center][b]Table 3.Standard concentration with their peak area[/b][/align][align=center] [table=288][tr][td=1,1,72] [align=center]C(ng/mL)[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,72] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]平均面积[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]51[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]16661[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]102[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]33061[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]204[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]66948[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]510[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]168852[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]1020[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]331618[/align] [/td][/tr][/table][/align][align=center][img=,547,246]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710144650_39_1626663_3.png[/img][/align][align=center][b]图一:叶酸标准品浓度和面积线性关系图[/b][/align][align=center][b]Fig1.Linearity of HPLC method[/b][/align]叶酸标准品线性回归方程: Y=325.58x+555.10 R=0.9999 式中Y是面积;x是浓度;R是相关系数。[img=,553,174]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710143198_4423_1626663_3.png[/img][align=center][b]图二:204ng/mL叶酸标准品色谱图[/b][/align][align=center][b]Fig 2.Chromatogram of folic acid standard (204g/mL)[/b][/align][b]3.2精密度[/b]每个标准品重复测试6次,各相对标准偏差见表四:[align=center][b] [/b][/align][align=center][b]表四:叶酸标准品精密度测试数据[/b][/align][align=center][b]Table4.Percise of standards[/b][/align][align=center] [table=288][tr][td=1,1,72] [align=center]C(ng/mL)[/align] [/td][td=1,1,72] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,72] [align=center] [/align] [/td][td=1,1,72] [align=center]RSD%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]51[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1.13%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]102[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1.20%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]204[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]1.53%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]510[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]0.22%[/align] [/td][/tr][tr][td] [align=center]1020[/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center] [/align] [/td][td] [align=center]0.34%[/align] [/td][/tr][/table][/align][b]3.3样品测试结果表五:HPLC方法测定的果冻类样品中叶酸含量Table 5. Folic acid content in gel samples(μg/100g) by HPLC[/b] [table][tr][td=1,1,516] 样品名 HPLC测定量(μg/100g)[/td][/tr][/table]1.Amino Vital 31.7Supersports 2. Amino Vital-1 17.63.Amino Vital-2                     17.9 [table][tr][td=1,1,516] [/td][/tr][/table][b]3.4 回收率[/b]样品名:Amino Vital  ATP 19582[b] 表六:添加回收率测定Table 6. Recoveries of folic acid to sample[/b] [table][tr][td=1,1,504] Amino Vital 回收率[/td][/tr][/table]1. 106%2 107%3. 109% [table][tr][td=1,1,504] 平均回收率为107±1.5%[/td][/tr][/table][b] [/b][img=,528,162]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710147516_2748_1626663_3.png[/img][align=center][b]图三:回收率测试空白图谱(Amino Vital ATP 19582)[/b][/align][align=center][b]Fig 3.Recovery test chromatogram Blank(Amino Vital )[/b][/align][img=,528,164]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710146335_2905_1626663_3.png[/img][align=center][b]图四:回收率测试添加叶酸标准溶液图谱(Amino Vital )[/b][/align][align=center][b]Fig 4.Recovery test chromatogram by adding folic acid standardsolution(Amino Vital )[/b][/align][b] 3.5 HPLC法与微生物法测试结果比较[/b]日本的国家标准是使用微生物方法测定叶酸的含量。微生物方法测定的是食品中总的叶酸含量,应该比HPLC方法测的的值要大些。为了比较HPLC方法的准确性,通过对应样品比较得知。[b]表七:微生物测定值与HPLC测定值比较Table 7. Comparison of the result of mircobiology method and HPLC method[/b] [table][tr][td=1,1,516] 样品名 微生物测定值(μg/100g) HPLC测定值(μg/100g)[/td][/tr][/table]1.Amino Vital 44 31.7Super sports 2. Amino Vital 18 17.6 3.Amino Vital         20          17.9 [table][tr][td=1,1,516] [/td][/tr][/table][b]3.6总体评价及方法适应性[/b] 通过以上实验以及对实验数据的分析和比较,得出本方法线性拟合良好, 精密度高,最小检测限低。样品添加回收率在107±2%内,并且样品测试结果与微生物方法测试结果作比较,两者数据相近。本方法简便,前处理相对简便,可以为检测果冻类样品中叶酸含量提供可靠和准确的分析手段,同时也为其它食品中叶酸含量的检测提供参考。[b]4.讨论4.1分析条件选取 4.1.1流动相 [/b]流动相在HPLC分离分析中起着至关重要的作用。 过实验确定了本次实验的流动相。原因如下:[list=1][*]叶酸在碱性水溶液中溶解且稳定性较好,而大多数ODS柱在pH=2.0~7.0范围内使用,所以本文使用的流动相pH值在6.3比较适合[*]通过实验发现水相和甲醇的配比为92:8(v/v)分离效果最好。样品中叶酸和前面的杂质完全分离。[*]使用磷酸二氢钾和氢氧化钾来调节离子浓度和pH值。这时色谱峰形呈正态曲线,柱效最高。[/list][b]4.1.2检测器和检测波长[/b] 叶酸中有苯环和碟酰结构,图五。所以可以用紫外检测器来检测。虽然叶酸中有共轭结构,但是通过实验发现Pteroylglutamic Acid 无荧光吸收。所以不能使用荧光检测器。 由于条件限制,无全波长扫描的紫外光度计和二极管阵列检测器。所以通过文献和实验来找最佳波长。根据报道[sup][/sup],叶酸在265nm,285nm至290nm以及365nm处有极大吸收。在265nm,285nm,290nm,365nm分析同一叶酸标准品,发现λ=285nm处峰形最高。[b] [/b][align=center][img=,363,124]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2024/03/202403181710151110_6182_1626663_3.png[/img][/align][align=center][b]图五:叶酸的分子结构[/b][/align][align=center][b]Fig 5. Molecular structure of folicacid (Pteroylglutamic Acid)[/b][/align][b]4.1.3 进样量[/b] 所以根据本实验室条件,100μL的进样量适合并且满足实验要求。[b] 4.1.4分析时间[/b] 由于标准品在30分钟内就已出来,所以标准品采集时间仅需30分钟。但是样品中成分复杂,一定把样品中组分全部出尽才能进下一个样品。通过实验样品的采集时间为100分钟。[b]4.2试样标准的配制讨论 4.2.1样品试液选取[/b] 原则:确保叶酸在溶液中溶解且不被破坏。 实验证明:叶酸不溶解于纯水中,在酸性溶液中不稳定。而使用0.5%氨水溶液较好地溶解叶酸,而且通过稳定性实验,叶酸在该试液中稳定,峰面积无显著变化。[b] 4.2.2标准品浓度选取[/b] 本实验样品的浓度恰好在线性范围内,而且标准品浓度与响应值呈一元线性关系。[b] 4.2.3样品前处理[/b] 样品使用0.5%氨水溶液溶解。由于样品呈液胶状,超声波超声可以击碎胶状物质,使其分散。通过实验发现10分钟超声可以使之形成均一、稳定的溶液。[b]5.后续工作及前景[/b] 由于条件的限制和目的要求的局限,本文只对一种叶酸化合物进行分析测试,而食品中的叶酸形式有五种之多。通过流动相摸索和梯度洗脱完全能够使不同形式的叶酸得到分离,以此扩大分析的范围。同时叶酸分析也可以通过色谱条件的摸索与其它物质(尤其是水溶性维生素)一起分析,达到提高效率的目的。为了使灵敏度提高,高效能的检测器的选择有着可观的前景。现在困扰我们分析叶酸含量的主要问题是样品中叶酸含量甚微,仅仅是ng级。紫外检测器最小检测限也就是这个级别。本文也指出:一味地扩大样品称样量或增加样品进样量会导致噪音增大,同样不能提高灵敏度。所以象一些专属性较强的检测器如荧光检测器,电化学检测器是考虑的一个方向。荧光检测器的灵敏度可以达到pg级。对于荧光检测器不能检测Pteroylglutamic Acid,是由于该物质没有荧光发色基团。我们可以通过柱前或柱后衍生的方法让其接上荧光发色基团,或者是柱前分离柱后通过反应液改变它的结构,提高检测的灵敏度。而使用电化学检测器需要摸索诸如电离电压,流动相等等条件。由于电化学检测器它的专属性很高,不容易受到干扰物质的影响。它应该是一个发展方向。从样品前处理的角度考虑,前处理步骤越少,分析时间更短,目标物在处理时损失越少,相对实验成本越低是改进原有实验方法的目标。一般对于含有复杂成分且目标分析物含量甚微的样品要去除干扰物质然后富集待测组分。固相萃取技术(solidphase extraction, SPE)应当是一个比较好的样品前处理方法。但是固相萃取技术的一个弱点是样品容易损失,回收率不高引起准确性不高。荷兰的Knoing教授使用亲和层析(affinity chromatography)的方法来提高待测物富集和纯化的效率。可见食品中叶酸分析应该还是一个难点,同时又是一个热点。快速高效准确的方法会随着仪器性能的进步和方法的进一步完善成熟而成熟。[b]6.参考文献[/b][list=1][*]中国药典编委会.中国药典(2000)二部,北京:化学工业出版社,2000.[*]Johan D.M. P. Jelena A. J. Sofia B.H., Development of aSimplified Method for the Determination of Folates in Baker’s Yeast by HPLCwith Ultraviolet and Fluorescence Detection. J.Agric. Food Chem. 2005,53:2406-2411.[*]Douglas L.H. RandyL.W. Michael G.Z., Determination ofnative folates in milk and other dairy products by high-performance liquidchromatography. J.Chrom. 1988, 449 : 271-279.[*]Stefania R. Liisa T.V. AlteroA., Determination of folate vitamersin food and in Italian reference diet by high-performance liquidchromatography.J.Chrom A . 1999, 855: 237-245.[*]Konings EJM,A validated LC method for the determinationof folates in vegetables, milk powder, liver and flour.J AOAC Int. 1999, 82: 119-127.[*]Eduward Chu. James C.Drake. Donna Boarman, Mechanism of Thymidylate Synthase Inhibition by Methotrexate inHuman Neoplastic Cell Lines and Normal Human Myeloid Progenitor, J. Biochem.1990,265: 8470-8473.[*]Pamela J.Bagley Jacob selhub,Analysis of Folate Form Distribution by Affinity Followed by Reversed-PhaseChromatography with Electrochemical Detection, Clin. Chem. 2000, 46: 404.[*] FreislebenA. Schieberle P. Rychlik M., Comparison of folate quantification in foods byhight-performance liquid chromatography-fluorescence detection to that bystable isotope dilution assays using high-performance liquid chromatography-tandemmass spectrometry. Anal. Biochem. 2003, 315: 247-255.[*] 赵永芳.生物化学技术原理及应用(第三版).北京:科学出版社,2003.10[*] 吴坤等.营养与食品卫生学(第五版).北京:人民卫生出版社,2005.[/list][hr/] ①PteroylglutamicAcid②检测限是以叶酸(Pt-Glu)来计算。③微生物测定值是日本食品研究所用微生物法测定。

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The samples were disolved by 50℃ water,extracted by ultrasound,after protein was removed by Isoelectric method, Folic acid was separated on a Waters HSS T[sub]3[/sub] column with gradient elution with the mobile phase of 0.1% formic acid and acetonitrile, and finally detected by positive eletrospray ionization-mass spectrometry(ESI[sup]+[/sup]-MS/MS) in multiple reaction monitoring(MRM) mode. The results showed the linearity of Folic acid was good in the concentration range of 0.02~1 mg/L, and the correlation coefficient was 0.9998. The limit of quantification(LOQ) was 10 ug/100 g,the mean recovery was 83.7%~101%, and the relative standard deviation(RSD) was 2.5%~5.1%(n=6).This method is rapid, sensitive, accurate and suitable for simultaneous determination of Folic acid in infant formula.Key words: UP[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]LC-MS[/color][/url]/MS infant formula Folic acid叶酸([font=helvetica][color=#333333]C[/color][/font][font=helvetica][sub][size=12px][color=#333333]19[/color][/size][/sub][/font][font=helvetica][color=#333333]H[/color][/font][font=helvetica][sub][size=12px][color=#333333]19[/color][/size][/sub][/font][font=helvetica][color=#333333]N[/color][/font][font=helvetica][sub][size=12px][color=#333333]7[/color][/size][/sub][/font][font=helvetica][color=#333333]O[/color][/font][font=helvetica][sub][size=12px][color=#333333]6 [/color][/size][/sub][/font]),[font=helvetica][color=#333333]又名维生素B[/color][/font][font=helvetica][sub][color=#333333]9[/color][/sub][/font][font=helvetica][color=#333333],[/color][/font]是一种水溶性维生素,在人类蛋白质合成、细胞分裂与生长过程中具有重要作用。叶酸缺乏可能会引起婴幼儿[font=helvetica][color=#333333]发生神经闭合不完全[/color][/font],从而导致神经性厌食症,叶酸虽然广泛存在于[font=helvetica][color=#333333]如菠菜等绿叶蔬菜及肝脏等动物源食品中,但在婴幼儿阶段(特别小于6个月婴儿)很长一段时间不能直接食用这些辅食,[/color][/font]这时婴幼儿配方奶粉便成为婴幼儿获取叶酸的重要途径,因此准确测定婴幼儿配方奶粉中叶酸含量有重要意义。目前食品中叶酸测定的国标方法《GB 5009.211-2022 食品安全国家标准 食品中叶酸的测定》为微生物法,该方法是将鼠李糖乳杆菌接种至含有叶酸的培养基中,培养一段时间后测定吸光度,利用在一定范围内叶酸含量与吸光度值符合某种规律而得到叶酸含量数值。该方法对菌种活力、培养条件、检验人员操作水平要求较高,检测周期较长,且容易受到基质干扰、检测结果重复性往往较差。因此,制定一种准确、高效、快速测定婴幼儿配方奶粉中叶酸的检测方法十分必要。[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]-串联质谱测定法具有前处理简单、分析速度快、抗基质干扰能力强等优点,能有效避免叶酸在长时间、繁琐的前处理及检测过程中损失,可以为奶粉中叶酸含量的测定提供一种有效的检测手段。本文建立的超高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]-串联质谱法测定奶粉中叶酸含量[color=black]的方法前处理过程简便、分析时间短、灵敏度高、抗干扰能力强,且用到的都是实验室常用试剂,实验成本较低,特别适用于大批量[/color]婴幼儿配方[color=black]奶粉中叶酸[/color]含量的检测。1 实验部分1.1 材料与试剂[color=black]叶酸(纯度[/color][font=宋体][color=black]≥[/color][/font][color=black]99%,Dr公司);乙腈、甲酸(色谱纯,Fisher公司);盐酸、氢氧化钠(优级纯,科密欧公司);0.2 um水系滤膜;实验用水为Millipore纯水仪制备。[/color]1.2 仪器与设备UPLC XEVO TQ-MS超高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]串联质谱仪(Waters公司);涡旋振荡器。1.3 [color=black]叶酸[/color]标准储备液的配置称取一定量叶酸[color=black]标准品[/color],用甲醇配置成质量浓度为100 ug/mL标准储备液,于-18℃冰箱保存,待用;临用前将溶液回温至室温,并吸取一定体积储备液用水逐级稀释成所需浓度的标准工作液。1.4 样品前处理准确称取2.00 g(精确到0.01 g) 婴幼儿配方奶粉试样于50 mL刻度离心管中,加入10 mL 50℃纯水使奶粉充分溶解,超声提取10 min,然后用2 mol/L盐酸调节试样pH值至1.7,静置5 min后用2 mol/L氢氧化钠调节试样溶液pH至4.5,用纯水定容至25 mL,在离心机中以10000 r/min离心10 min[color=black],取上清液[/color]过0.2 um水系微孔滤膜后供UP[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]LC-MS[/color][/url]/MS分析测定。1.5 [url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]及质谱条件[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]:色谱柱:Waters HSS [font=times new roman]T3(1.8 μm,50mm×2.1mm);柱温:35℃[/font];流速:[font=times new roman]0.3 [/font]mL/min;进样量:[font=times new roman]2[/font] [font=times new roman]μL;流动相A:乙腈;流动相B:0.1%的甲酸水溶液。梯度洗脱程序:0~0.5min,5% A;0.5~3. 0 min,5%~100% A;3. 0 ~4. 0 min,100%A,4 ~4.1min,100% A~5% A,4.1 ~5.0min 5% A。[/font]质谱:离子源:电喷雾离子源( ESI [sup]+[/sup] ) ;扫描方式:正离子扫描;检测方式:多反应监测( MRM);毛细管电压:3.0 kv;离子源温度:150℃;去溶剂气温度:500℃;去溶剂气流量:1000 L /h;定性、定量离子对及碰撞能量见表1。[align=center]表1叶酸的质谱参数[/align][table][tr][td][align=center]分析物[/align][/td][td][align=center]锥孔电压/V[/align][/td][td][align=center]母离子/(m/z)[/align][/td][td][align=center]子离子/(m/z) [/align][/td][td][align=center]碰撞能量/V[/align][/td][/tr][tr][td]叶酸[/td][td][align=center]18[/align][/td][td][align=center]442.3[/align][/td][td][align=center]295﹡[/align]176[/td][td][align=center]18[/align][align=center]30[/align][/td][/tr][/table]﹡为定量离子2 结果与讨论2.1 色谱质谱条件及前处理过程的优化流动相的选择:B族维生素在酸性条件下比较稳定,对比了酸性体系(0.1%甲酸水溶液)与甲醇、乙腈的流动相体系组合,发现叶酸在乙腈体系中响应值更高,故本研究采用0.1%甲酸水溶液+乙腈流动相体系。色谱柱的选择:比较了[font=宋体]Waters [/font]BEH C[sub]18[/sub](1.7 μm,50mm×2.1mm)和[font=宋体]Waters [/font]HSS T[sub]3[/sub](1.8 μm,50mm×2.1mm)两种不同填料的分析柱,实验时发现目标物在C[sub]18[/sub]上保留比T[sub]3[/sub]弱,考虑到若出峰太早可能造成奶粉中一些极性强的基质随目标物共流出,可能会干扰目标物测定,因此本方法采用了HSS T[sub]3[/sub]色谱柱。质谱参数优化:将1.0 mg/L 叶酸标准溶液直接注射到质谱中,在正离子模式下分别进行母离子和子离子全扫描,同时优化质谱条件,找到两对响应好高、干扰小的子离子对,最终确定的质谱条件见表1,相应的色谱质谱图见图1、图2。前处理过程优化:叶酸属于水溶性维生素,易于氧化,这个实验过程需在避光条件下进行。通过查阅相关文献的前处理方法,发现通过先酸化样品再用NaOH调节pH的等电法去除蛋白方式,可以得到很好的提取和净化效果,能大大减少奶粉中蛋白等大分子基质对目标物干扰;调节pH后的溶液产生了蛋白沉淀,需要用过滤或离心方式予以去除,通过实验比较了过滤和离心去除蛋白沉淀的效果,发现高速离心后得到的上清液明显更容易通过0.2 um水系滤膜,综合以上因素本实验最终采用了1.4的前处理方法。[align=center][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/10/202310041348335007_5097_1729077_3.png[/img][/align][align=center]图1 [color=black]叶酸[/color]标准溶液(1 ug/mL)MRM色谱图[/align][align=center][img]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2023/10/202310041348338570_9110_1729077_3.png[/img][/align][align=center]图2 奶粉样品中[color=black]叶酸[/color]MRM色谱图[/align][color=black]2.2 线性范围和定量限[/color][color=black]吸取不同体积的叶酸标准储备液(1.3),用[/color]纯水[color=black]分别配置不同浓度的[/color]上机标准溶液,以各自定量离子的峰面积为Y对应质量浓度X([color=black]m[/color]g/L)做标准曲线,得到的线性方程和相关系数见表2;以10倍信噪比(S/N)计算得到叶酸的定量下限,结果见表2。表2 叶酸标准溶液的线性方程、相关系数和定量下限(LOQ)[table][tr][td][align=center]分析物[/align][/td][td][align=center]线性范围/(mg/L)[/align][/td][td][align=center]线性方程[/align][/td][td][align=center]R[/align][/td][td][align=center]LOQ/(ug/100 g)[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]叶酸[sub] [/sub][/align][/td][td][align=center]0.02~1[/align][/td][td][align=center]Y=12793X-56.759[/align][/td][td][align=center]0.9998[/align][/td][td][align=center]10[/align][/td][/tr][/table][color=black]2.3回收率和精密度[/color][color=black]选用[/color]不添加叶酸的奶粉样品作为基质进行加标。添加水平为:[color=black]20,100,200[/color][size=12px] ug/100g。[/size][color=black]每个[/color]水平重复6次,[color=black]同时做该奶粉的本底实验。[/color]按照1.4前处理方法处理后上机检测,回收率计算结果见表3。结果表明,该方法叶酸的平均回收率为83.7%~101%,相对标准偏差(RSD,n=6)为2.5%~5.1%,均满足实验要求。[align=center]表3 奶粉叶酸的加标回收率和相对标准偏差(n=6)[/align][table][tr][td][align=center]分析物[/align][/td][td][align=center]添加水平(ug/100g)[/align][/td][td][align=center]回收率/%[/align][/td][td][align=center]相对标准偏差/%[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]叶酸[/align][sub] [/sub][/td][td][align=center]20[/align][align=center]100[/align][align=center]200[/align][/td][td][align=center]89.0±5.3[/align][align=center]95.3±2.7[/align][align=center]98.5±2.5[/align][/td][td][align=center]5.1[/align][align=center]3.2[/align][align=center]2.5[/align][/td][/tr][/table][color=black]2.4实际样品分析[/color][color=black]采用本方法随机抽取市售8批次婴幼儿配方奶粉,对其叶酸含量进行测定[/color],实测值、标示值及实测值与标示值比值见表4。结果表明,这些样品中叶酸实测含量均符合《GB 28050-2011 食品安全国家标准 预包装食品营养标签通则》中对维生素等营养成分的规定——婴幼儿配方奶粉中叶酸实际含量不应低于标示值的80%。[align=center]表4 实际样品中叶酸实测值与标示值比对结果[/align][table][tr][td][align=center]样品编号[/align][/td][td][align=center]实测值(ug/100g)[/align][/td][td][align=center]标示值(ug/100g)[/align][/td][td][align=center]比值[/align][/td][/tr][tr][td]1[sub] [/sub]2345678[/td][td][align=center]65[/align][align=center]156[/align][align=center]103.2[/align][align=center]57[/align][align=center]117[/align][align=center]86.5[/align][align=center]79[/align][align=center]101[/align][/td][td]81.3203230134106146198185[/td][td][align=center]1.25[/align]1.302.232.350.911.692.511.83 [/td][/tr][/table]3 结语本文建立了超高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]-串联质谱法(UP[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]LC-MS[/color][/url]/MS)测定婴幼儿配方奶粉中[color=black]叶酸[/color]含量的分析方法。该方法具有较高的灵敏度、准确度和精密度,前处理快速、简单,特别适合大批量样品的检测。参考文献:[1] GB 5009.211-2016 食品安全国家标准 食品中叶酸的测定[s].[2] GB 28050-2011 食品安全国家标准 预包装食品营养标签通则[s].[3]张丽芳,张鑫,周鑫,等. 高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]法同时测定婴幼儿奶粉中7种水溶性维生素[J].[size=13px] [/size]食品工业,2022,43(01):[size=13px] [/size]277-280.[4]刘娜,陈大舟,汤桦,等. 婴幼儿奶粉中8种水溶性维生素的高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]同时测定[J].[size=13px] [/size]分析测试学报,2008,27(4):[size=13px] [/size]408-411.[5]严华,崔凤云,别玮,等. 超高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]-同位素稀释质谱法同时测定婴幼儿奶粉中10种水溶性维生素 [J].[size=13px] [/size]食品安全质量检测学报,2020,17(11):[size=13px] [/size]5871-5878.[6]郭建博,宋莉,牟霄,等.超高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]法快速测定复合维生素产品中的10种水溶性维生素 [J].[size=13px] [/size]食品安全质量检测学报,2017,8(5):[size=13px] [/size]1794-1799.[7]夏静,俞婧,孙磊,等.功能性饮料中9种水溶性维生素的HP[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]LC-MS[/color][/url]-MS同步检测技术 [J]. 食品科学,2014,35(12): 196-199.[/s][/s]

  • 关于GB 5009.211-2022食品中叶酸的测定新国标中微孔板法的一些问题。

    1.在6.4.2.1微孔板法中,试样系列管要求加入100、200、300 μL,补水至500 μL,相当于试管法缩小了10倍;而6.4.2.2标准管则要求按比例缩减至1mL,请问这里的1mL是指加入培养基后的总体积为1mL还是补水至1mL,即缩小十倍还是五倍。2.在7.2试样结果计算中,依然要求叶酸含量在0.1~0.8ng的范围,请问微孔板法是否应该按比例缩小,缩小比例应该是多少。3.在7.2中注的描述是微孔板法对应的Vx分别为1、2、3mL,这里是否只是描述微孔板法与试管法互相对应的梯度,叶酸浓度是否还是用100、200、300 μL进行计算。

  • HPLC分析叶酸精密度和线性都比较差。

    叶酸是溶解于水中,用氨水调PH到9~10之间,再用含少量乙腈的水稀释定容的。流动相就是普通的水和甲醇、离子对试剂,调PH至酸性。峰型还好,但精密度很差,线性一般只有0.99*,有时候是0.999,但液相做到4个9我觉得才是正常的。3个9误差太大了。后来改用水稀释定容试了一下,结果更差。1微克/毫升的出峰比2微克/毫升的小得太多,3微克/毫升比2微克/毫升峰还略小。

  • 【原创大赛】HPLC法测定果冻类样品中叶酸含量的方法学建立(局部)

    摘 要 目的:本文采用反相高效液相色谱法建立测定果冻类食品叶酸(folic acid)含量的分析的方法。方法:使用C18柱作为分析柱,磷酸缓冲液和甲醇作为流动相,紫外检测器作为检测器,叶酸(Pteroylmonoglutamic acid)作为对照品,果冻食品作为样品。结论:该法在50ng/mL-1000ng/mL之间呈良好的线性,重现性好RSD<2%,回收率在107±2%,稳定性良好,最小检测限20ng/mL。样品测试结果与微生物检测结果相符。本法可以作为测定食品中叶酸含量的一个方法。 关键词:叶酸,HPLC, 果冻样品 Abstracts Aim: A simple method for the determination of folic acid in gel sample by high-performance liquid chromatography with UV-detection is reported. Methods: The method was simple by using RP-column (C18) with phosphorate –methanol as mobile phase and UV as a detector. Conclusion: The calibration graph was linear from 50 to 1000ng/mL for folic acid with a correlation coefficient of 0.999(n=5). The detection limit is 20ng/mL. The method was successfully applied for determination of folic acid in the gel sample. The recovery was 107±1.5% and the reletive standard deviation was no more than 2%. Compared with microbiology method, the results of the samples are same. This method can be used for content determination of the folic acid in gel sample. Key Words: folic acid, HPLC, gel sample

  • 【我们不一YOUNG】维生素B11(叶酸)

    [align=center][font=DengXian]维生素[/font]B11([font=DengXian]叶酸[/font])[/align][font=DengXian]绿色蔬菜和动物肝脏中富含叶酸,乳中含量较低。蔬菜中的叶酸呈结合型,而肝中的叶酸呈游离态。人体肠道中可合成部分叶酸。[/font][font=DengXian]分子结构中含有蝶啶、对氨基苯甲酸和[/font]L-[font=DengXian]谷氨酸三部分。[/font][font=DengXian]叶酸缺乏时,脱氧胸苷酸,嘌呤核苷酸的形式及氨基酸的互变受阻,细胞内[/font]DNA[font=DengXian]合成减少,细胞的分裂成熟发生障碍,引起巨幼红细胞性贫血。[/font] [font=DengXian]小肠疾病能干扰食物叶酸的吸收和经肝肠循环的再循环过程,故叶酸缺乏是小肠疾病常见的一种并发症。[/font]

  • 液质联用总离子流图没有出峰(叶酸)

    [color=#444444]各位大神,我用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质联用[/color][/url]0.1%甲酸:甲醇10:90,或者0.5%乙酸:甲醇=50:50等比例跑流动相,配的叶酸标准溶液连总离子流图都没有出峰。请问这是为何啊?[/color]

  • 【求助】国标叶酸的LC测试方法有关问题

    我的样品及对照品的谱图中,除了内标峰,还有一个5min左右的小峰,还有一个面积较大的峰,其保留时间一直在推后,第二天进同一个样品溶液时,这个峰就不见了,这个峰是什么原因产生的呢?是叶酸的峰吗?5min的小峰是什么峰呢?不是溶剂峰。在样品溶液没有变化的情况下,加入了叶酸样品,5min的峰变大,可以由此断定此峰就是叶酸峰吗?请大家指教!!拜谢!!

  • 【讨论】关于总银杏叶酸

    大家在做总银杏叶酸时,如何称取对照品A和B的,图谱里有几个峰呢?多长时间出?用的什么色谱柱呢?问题有点多,希望有兴趣的来讨论下

  • 【原创大赛】Polar-RP和叶酸的亲密接触

    【原创大赛】Polar-RP和叶酸的亲密接触

    继续我的原料入厂检验之旅。这次说的是叶酸的入厂检验。叶酸,Folic acid,维生素B复合体之一,相当于蝶酰谷氨酸(pteroylglutamic acid,PGA),是米切尔(H.K.Mitchell,1941)从菠菜叶中提取纯化的,故而命名为叶酸。有促进骨髓中幼细胞成熟的作用,人类如缺乏叶酸可引起巨红细胞性贫血以及白细胞减少症,对孕妇尤其重要。说到白细胞,可能大家更清楚,旧称白血球,血液中的一类细胞。白细胞也通常被称为免疫细胞。再说到免疫细胞,就不用多说了吧,呵呵。所以说,叶酸是一种非常重要的维生素,特别是对病人来说。对于叶酸的检验,《中国药典》2010年版有收录。本检验也是按照药典要求来进行。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2013/11/201311231857_478956_1609327_3.jpg色谱柱信息为:月旭Ultimate® Polar-RP,4.6mm*250mm,5μm。Ser NO.:661201507,Part NO:00215-31043。对照品溶液的制备:精密称取叶酸对照品(中检所购买)约10mg,置50ml量瓶中,加0.5%的氨溶液30ml溶解后,用水稀释至刻度,摇匀。即为对照品溶液。供试品溶液:精密称取本品约10mg,照对照品溶液同法操作,即为对照液溶液。测定法:精密量取对照品溶液和供试品溶液各10μL,注入液相色谱仪,记录色谱图。按外标法以峰面积计算含量,即得。对照液色谱图为:http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2013/11/201311231905_478957_1609327_3.jpg供试品溶液色谱图:http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2013/11/201311231905_478958_1609327_3.jpg结论:1.月旭Ultimate® Polar—RP来检测叶酸,峰形漂亮,柱效好。2. 从色谱图上,很干净。而叶酸峰的保留时间在12.5min左右。是不是可以通过调整流动相,让出峰时间更早一些呢?我感觉,理论上是可以的。

  • 【原创】求助——测定饲料中的烟酸叶酸

    本人最近做了一个饲料中的烟酸叶酸,方法按照相关国标中测定的。方法很简单,直接提取过滤或者离心就上机,但是回收率为0。重复多次都是这样的结果,多次调整实验中固液比例仍然是此结果。以前也做过饲料中的烟酸叶酸,但是没有遇到过这样的问题。想求助高人解释一下为什么会出现这样的问题

  • 叶酸(维生素BC,维生素M)-----多关心一下自己的身体

    水溶性;   维生素B族中的一种,亦称为维生素BC或维生素M;   计量单位是微克(mcg);   是制造红血球不可缺少的物质;   帮助蛋白质的代谢。   成人的建议每日摄取量是180~200mcg,孕妇加倍,哺乳期的妇女在头6个月需要280mcg,之后的6个月则需260mcg;   在制造核酸(核糖核酸、脱氧核糖核酸)上扮演重要的角色;   是细胞增殖不可少的物质;   人体在利用糖分和氨基酸时的必要物质;   在室温中长时间无遮护的贮存时将被破坏。   效用   促进乳汁的分泌;   防治肠内的寄生虫和食物中毒;   增进皮肤的健康;   有镇痛剂的作用;   与泛酸及对氨基苯甲酸一起服用时,可防止白发;   在身体衰弱(健康状态不良)时,可增进食欲;   防止口腔粘膜溃疡;   预防贫血。   缺乏症   巨红血球性贫血   富含叶酸的食物   深绿叶蔬菜、胡萝卜、动物肝脏、蛋黄、美国甜瓜、杏、南瓜、鳄梨、豆类、全麦、黑裸麦面粉。   营养补品   一般是400mcg的制剂。如果有医生的处方,可以买到lmg(1000mcg)剂量的叶酸。   有的复合维生素B制剂中含有400mcg的叶酸,但大多数复合维生素B制剂中只含有100mcg(请查看标签)。   一般的每日摄取量是400mcg~500mcg。   营养补品   并未发现有副作用。有些人服用后会引起过敏性皮肤炎。   叶酸之敌   水、磺胺药剂、阳光、雌激素、食品加工(特别是煮沸)、高温。   建议   如果您是常喝酒的人,多摄取叶酸为好;   大量的维生素C会加速叶酸的排出,所以,摄取维生素C在2g以上的人必须增加叶酸的量;   正使用苯妥英(抗癫痫药),或是服用雌激素、磺胺类药物、苯巴比妥(安眠药与镇定剂)、阿司匹林时,应该增加叶酸的摄取量;   我曾经发现,有许多人在短期间内每天摄取1~5mg的叶酸,结果皮肤上的斑点消失了。如果您有这方面的烦恼,可以去请教营养医师;   如果您感觉到似乎要生病,或者是已经生病了,必须要摄取抗紧张感的营养补品,切记要先查看其中是否含有充分的叶酸。叶酸不足时,抗体会减少,抵抗力将减弱;   大量摄取叶酸会使服食二苯乙内酰脲的癫痫症患者产生痉挛现象。

  • 乳粉中叶酸的检测

    请问哪位老师做过乳粉中叶酸的检测,用液相色谱或液质的方法,希望可以分享一下。

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