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氟苯氧苯甲酸标准溶液

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氟苯氧苯甲酸标准溶液相关的论坛

  • 苯甲酸山梨酸标准溶液的配置方法探讨

    [align=center][b]苯甲酸山梨酸标准溶液的配置方法探讨[/b][/align]苯甲酸、山梨酸是常用的食品添加剂,也是液相色谱经典的检测项目。但是苯甲酸山梨酸不溶于水,溶于甲醇,所以苯甲酸、山梨酸的标准溶液如何配置也是目前的难点之一!根据 GB5009.28—2016苯甲酸、山梨酸标准溶液的配置方法有以下两种:1、 确称取苯甲酸钠、山梨酸钾,用水溶解并分别定容。2、 当使用苯甲酸和山梨酸标准品时,需要用甲醇溶解并定容。根据GB/T5009.29—2003苯甲酸、山梨酸标准溶液的配置方法为:3、 称取苯甲酸、山梨酸,加入碳酸氢钠溶液5毫升,加热溶解,随后定容。 总结这几种方法,因为标准品的溶解介质不一样,与实际样品的基质不一样,样品的检测结果还是有较大区别的。因为标准品的问题,有的能力验证甚至难以通过。我想和大家请教一下,究竟哪种标准品溶液配制更加合理。

  • 【求助】为什么氢氧化钠标准溶液用邻苯二甲酸氢钾标定数据不平行,用硫酸标准溶液标定就能平行?

    我配制了一桶0.3mol/L氢氧化钠标准溶液,用基准物邻苯二甲酸氢钾标定出来的数据波动很大,根本不平行。可是用硫酸标准溶液标定出来却很平行(己排除了滴定管、基准物、烘箱的准确度因素),而且有个奇怪的现象,就是邻苯二甲酸氢钾标称样量一样数据就能平行,如果称样量不一样数据就不能平行,称样量越大标定出来的数据越高,称样量越小标定出来的数据就越低(比如称1.9g邻苯二甲酸氢钾标定得0.3050mol/L,称1.5g邻苯二甲酸氢钾标定得0.3000mol/L,如果8组都称1.9g邻苯二甲酸氢钾8组都标定得0.3050mol/L,如果8组都称1.5g邻苯二甲酸氢钾8组都标定得0.3000mol/L)这是为什么啊?

  • 关于苯系物标准溶液

    之前一直用着1000ug/ml的苯系物标准溶液。请问现在有没有二硫化碳中的苯系物的标准溶液,100ug/ml的(苯,甲苯,二甲苯,乙苯,苯乙烯)还有甲醇中的苯系物和二硫化碳中的苯系物有什么区别?做样的方法是584-2010二硫化碳中解析法来做苯系物的。

  • 山梨酸和苯甲酸的测定——薄层色谱法

    1.原理试样酸化后,用乙醚提取苯甲酸、山梨酸。将试样提取液浓缩,点于聚酰胺薄层板上,展开。显色后,根据薄层板上苯甲酸、山梨酸的比移值与标准比较定性,并可进行概略定量。2.试剂异丙醇、正丁醇、石油醚(沸程30~60℃)、乙醚(不含过氧化物)、氨水、无水乙醇、聚酰胺粉(200目)、盐酸(1+1,取100mL盐酸,加水稀释至200mL、氯化钠酸性溶液。展开剂:正丁醇+氨水+无水乙醇(7+1+2)或异丙醇+氨水+无水乙醇(7+1+2)。山梨酸标准溶液:准确称取O.2000g山梨酸,用少量乙醇溶解后移入100mL容量瓶中,并稀释至刻度,此溶液lmL相当于2.0mg山梨酸。苯甲酸标准溶液:准确称取0.2000g苯甲酸,用少量乙醇溶解后移入100mL容量瓶中,并稀释至刻度,此溶液1mL相当于2.0mg苯甲酸。显色剂:溴甲酚紫-乙醇(50%)溶液(0.4g/L),用氢氧化钠溶液(4g/L)调至pH 8。3.仪器吹风机、色谱分离缸、玻璃板(10cm×18cm)、微量注射器(10μL,100μL)、喷雾器。4.分析步骤(1)试样提取称取2.50g事先混合均匀的试样,置于25mL具塞量简中,加0.5mL盐酸(1+1)酸化,用15mL、10mL乙醚提取两次,每次振摇1min,将上层醚提取液吸入另一个25mL具塞量筒中,合并乙醚提取液。用3mL氯化钠酸性溶液(40g/L)洗涤两次,静置15min,用滴管将乙醚层通过无水硫酸钠滤入25mL容量瓶中,加乙醚至刻度,混匀,吸取10.0mL乙醚提取液分两次置于10mL具塞离心管中,在约40℃的水浴上挥干,加入0.10mL乙醇溶解残渣,备用。(2)测定 聚酰胺粉板的制备:称取1.6g聚酰胺粉,加0.4g可溶性淀粉,加约15mL水,研磨3~5min,立即倒入涂布器内制成10cm×18cm、厚度0.3mm的薄层板两块,室温干燥后,于80℃干燥1h,取出,置于干燥器中保存。点样:在薄层板下端2cm的基线上,用微量注射器点1μL、2μL试样液,同时各点1μL、2μL山梨酸、苯甲酸标准溶液。展开与显色:将点样后的薄层板放入预先盛有展开剂的展开槽内,展开槽周围贴有滤纸,待溶剂前沿上展至10cm,取出挥干,喷显色剂,斑点成黄色,背景为蓝色。试样中所含山梨酸、苯甲酸的量与标准斑点比较定量(山梨酸、苯甲酸的比移值依次为0.82,0.73)。5.结果计算试样中苯甲酸或山梨酸的含量按下式进行计算。X=( A×1000)/m××1000式中,X为试样中山梨酸或苯甲酸的含量,g/kg;A为测定用试样液中山梨酸或苯甲酸的质量,mg;V1为加入乙醇的体积,mL;V2为测定时点样的体积,mL;m为试样的质量,g;10为测定时吸取乙醚提取液的体积,mL;25为试样乙醚提取液的总体积,mL。

  • 测定食品中的山梨酸、苯甲酸的案例

    一、案例我国普遍使用的防腐剂有山梨酸、山梨酸钾、苯甲酸、苯甲酸钠等,《食品添加剂使用卫生标准》规定,苯甲酸及苯甲酸钠在碳酸饮料中的最大使用量为O.2g/kg,在低盐酱菜、酱菜、蜜饯、食醋、果酱(不包括罐头)、果汁饮料、塑料装浓缩果蔬汁中最大使用量为2g/kg。山梨酸及山梨酸钾用于水果、蔬菜及碳酸饮料为0.2g/kg,低盐酱菜、蜜饯、果汁饮料、果冻等为0.3g/kg,塑料装浓缩果蔬汁等为1g/kg。二、选用的国家标准GB/T 5009.29—2003食品中山梨酸、苯甲酸的测定——气相色谱法。三、测定方法1.试样提取称取2.50g事先混合均匀的试样,置于25mL带塞量筒中,加0.5mL盐酸(1+1)酸化,用15mL、10mL乙醚提取两次,每次振摇1min,将上层乙醚提取液吸入另一个25mL带塞量筒中,合并乙醚提取液。用3mL氯化钠酸性溶液(40g/L)洗涤两次,静置15min,用滴管将乙醚层通过无水硫酸钠滤入25mL容量瓶中,加乙醚至刻度,混匀。准确吸取5mL乙醚提取液于5mL,带塞刻度试管中,置40℃水浴上挥干,加入2mL石油醚一乙醚(3+1)混合溶剂溶解残渣,备用。2.测定(1)色谱参考条件色谱柱:玻璃柱,内径3mm,长2m,内装涂以5%DEGs+1%磷酸固定液的60~80目Chromosorb WAW。气流速度:氮气,50mL/min。温度:进样口230℃;检测器230℃;柱温170℃。(2)样品测定 进样2μL标准系列中各浓度标准使用液于气相色谱仪中,可测得不同浓度山梨酸、苯甲酸的峰高,以浓度为横坐标,相应的峰高值为纵坐标,绘制标准曲线。同时进样2μL试样溶液,测得的峰高与标准曲线比较定量。3.结果计算X=A*1000/m*5/25*V2/V1*1000式中 X——试样中山梨酸或苯甲酸的含量,mg/kg;A——测定用试样液中山梨酸或苯甲酸的质量,μg;V1——加入石油醚一乙醚(3+1)混合溶剂的体积,mL;V2——测定时进样的体积,μL;m——试样的质量,g;5——测定时吸取乙醚提取液的体积,mL;25——试样乙醚提取液的总体积,mL。由测得苯甲酸的量乘以1.18,即为试样中苯甲酸钠的含量。4.试剂①乙醚:不含过氧化物。②石油醚:沸程30~60℃。③盐酸。④无水硫酸钠。⑤盐酸(1+1):取100mL盐酸,加水稀释至200mL。⑥氯化钠酸性溶液(40g/l):于氯化钠溶液(40g/L)中加少量盐酸(1+1)酸化。⑦山梨酸、苯甲酸标准溶液:准确称取山梨酸、苯甲酸各0.2000g,置于100 mL容量瓶中,用石油醚~乙醚(3+1)混合溶剂溶解后稀释至刻度。此溶液每毫升含2.Omg山梨酸或苯甲酸。⑧山梨酸、苯甲酸标准使用液:吸取适量的山梨酸、苯甲酸标准溶液,以石油醚一乙醚(3+1)混合溶剂稀释至每毫升含50μg、100μg、150μg、200μg、250μg山梨酸或苯甲酸。5.仪器气相色谱仪:具有氢火焰的离子化检测器。

  • 标准溶液的配制与标定

    实训一 氢氧化钠标准溶液的配制和标定一、目的要求1.掌握NaOH标准溶液的配制和标定。2.掌握碱式滴定管的使用,掌握酚酞指示剂的滴定终点的判断。二、方法原理NaOH有很强的吸水性和吸收空气中的CO2,因而,市售NaOH中常含有Na2CO3。反应方程式: 2NaOH + CO2 → Na2CO3 + H2O由于碳酸钠的存在,对指示剂的使用影响较大,应设法除去。除去Na2CO3最通常的方法是将NaOH先配成饱和溶液(约52%,W/W),由于Na2CO3在饱和NaOH溶液中几乎不溶解,会慢慢沉淀出来,因此,可用饱和氢氧化钠溶液,配制不含Na2CO3的NaOH溶液。待Na2CO3沉淀后,可吸取一定量的上清液,稀释至所需浓度即可。此外,用来配制NaOH溶液的蒸馏水,也应加热煮沸放冷,除去其中的CO2。标定碱溶液的基准物质很多,常用的有草酸(H2C2O4•2H2O)、苯甲酸(C6H5COOH)和邻苯二甲酸氢钾(C6H4COOHCOOK)等。最常用的是邻苯二甲酸氢钾,滴定反应如下: C6H4COOHCOOK + NaOH → C6H4COONaCOOK + H2O计量点时由于弱酸盐的水解,溶液呈弱碱性,应采用酚酞作为指示剂。三、仪器和试剂仪器:碱式滴定管(50ml)、容量瓶、锥形瓶、分析天平、台秤。试剂:邻苯二甲酸氢钾(基准试剂)、氢氧化钠固体(A.R)、10g/L酚酞指示剂:1g酚酞溶于适量乙醇中,再稀释至100mL。

  • 【求助】苯系物的标准溶液

    各位,我有一些难题需要大家帮忙一下的!就是那个水中的苯系物的测定,它里面的物质是八种的而那些标准溶液都是七种的,所以让我和迷茫不知道去哪里买这个苯系物中八种物质的标准溶液。各位可以来为小弟解答一下吗?

  • 新人求助!食醋中苯甲酸回收率低

    向各位老师请教:我做食醋中苯甲酸,30g样品加了4000ug,但是回收率只有70%多一点,很着急,请大家指点指点1、我用的是乙酸铵(0.02mol/L):甲醇=95:5的流动相,配乙酸铵的时候没加冰乙酸,影响大么?2、我将食醋稀释10倍,然后调PH接近中性后除蛋白,离心,过滤,进样。调PH有必要么?调过之后是不是苯甲酸都变成苯甲酸钠了啊?3、标准品是1000ppm的苯甲酸标准溶液用水稀释成的浓度系列,最小5ppm,最大100ppm4、我也用标准加入法计算了,算出的食醋(稀释10倍)本底浓度80多个ppm(调过PH的),没调PH的也做了一次,只有70多个ppm请各位帮我分析一下原因,拜托了!!!!!!!

  • 【讨论】室内空气中苯检测用标准溶液的选择!

    在室内空气中苯浓度分析,选用标液直接解吸进样的方法时,大家选择的标液是 甲醇中苯标准溶液 还是 二硫化碳中苯标准溶液?欢迎做这项分析的进来都能留个言!我们现在选用的是甲醇中苯标准溶液,用填充柱做的话,就有溶剂峰有很大的拖尾现象,峰形很不好看。买不到浓度合适的二硫化碳中苯标准溶液,我们都是自己配的,如哪位高人知道合适浓度的有证二硫化碳中苯标准溶液哪里有得买,也请指点!

  • 山梨酸苯甲酸

    做饮料中的山梨酸苯甲酸,根据国标用买来的山梨酸苯甲酸标准(都是1mg/ml),分别移取0.05ml、0.1、0.2、0.4、0.6苯甲酸和山梨酸到10ml容量瓶,用正己烷+乙酸乙酯(1+1)定容,配成5、10、20、40、60mg/L的浓度,但定容的过程中发现溶液好像会分层,标准曲线做出来也很不好,用丙酮做过也不行,想请问一下是什么原因,配的过程中有什么注意事项吗,配标准的手法和步骤都是一样的。

  • 液相色谱法检测苯甲酸、山梨酸、糖精钠的疑难详解

    苯甲酸、山梨酸、糖精钠是衡量食品卫生质量的重要指标,苯甲酸、山梨酸的检测参照GB/T5009.29-1996,糖精钠的检测参照GB/T 5009.28-1996,即可开展实验。苯甲酸、山梨酸、糖精钠虽是较常见的检测项目,但是要得到一个准确可靠的结果,也存在一定的难度,许多新手常出现因对方法理解发生偏差而检测出错的事故。笔者根据自己多年该方面工作的实际经验出发,以苯甲酸、山梨酸为着重点,从样品前处理、检测仪器的选择、超标时的判断等几个易出问题的方面,进行了详细的阐述。2 样品前处理的注意事项 GB/T5009.28-1996和GB/T5009.29-1996 在文字结构上有缺陷,在涉及用仪器法测定苯甲酸、山梨酸、糖精钠时,只讲述了液体样品的前处理方法,没有涉及对固体样品的前处理。食品样品往往含有大量的油脂、蛋白质,对提取极为不利;如处理不干净也会污染色谱柱,影响检测工作。这类样品处理的关键在于如何找到一种较理想的沉淀剂,尽量排除待测样品中的油脂、蛋白质,且不影响待测物组分的回收率。GB/T5009.29-1996使用5%硫酸铜溶液沉淀蛋白,对于蛋白质含量较低的食品尚可,对于豆粉、奶粉、月饼等高油脂、高蛋白样品则沉淀效果不理想。如用10%钨酸钠溶液作为沉淀剂,效果好些;如用10%亚铁氰化钾溶液和20%醋酸锌溶液则效果更理想(这是笔者目前用过最理想的沉淀剂)。具体操作步骤如下:取一定量样品,捣碎,利用四分法原理称取样品5.0 克于50ml比色管中,加水20ml,浸泡、振荡均匀,加入氢氧化钠溶液(1mol/L)1.0 ml,加入9.5mL10%亚铁氰化钾溶液, 9.50mL 20%乙酸锌溶液,定容,振荡使其充分混匀后,用滤纸初滤除去沉淀物, 初滤液过0.45μm微孔滤膜,收集滤液于样品瓶中,样品处理液和标准有溶液各进样5uL测定。用这种方法简单易行,接触有机试剂少,重复性和回收率都令人满意;缺点是一定要用液相色谱法检测,有一定局限。3 检测仪器的选择虽然液相色谱仪操作起来比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]要复杂,但笔者建议如条件许可仍尽量用液相色谱法检测。原因如下:3.1 液相色谱法所用的样品处理方法远比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]法简单,且不需使用有机试剂。尤其对于高油脂样品(如月饼)若采用碱化-排油-酸化-提取-挥干-溶解等步骤,再上[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]检测,工作量大,试剂毒性也大,且结果由于处理步骤太多而难以保证准确。3.2 用液相色谱法还可同时完成糖精钠项目的检测,而[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]法只能做苯甲酸、山梨酸的检测。3.3 液相色谱仪所用的紫外检测器比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]的氢火焰检测器灵敏,可进行更低含量的检测。如用二极管阵列检测器,还可辅助定性,这更是[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]氢火焰检测器不可比拟的。4 选用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]时的注意事项 GB/T5009.29-1996所用的[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]柱为 5%DEGS+1%磷酸固定液的60-80目 Chromosorb W AW,。这种柱有性能稳定、重复性好、保留时间稳定的优点,但同时也有稳定时间较长的缺点。该柱的适用的样品提取溶剂为石油醚或乙醚,如果用甲醇或乙醇,则溶剂峰拖尾效应较大,对山梨酸的测定有影响。如用毛细管柱,能取得更好的峰形和灵敏度,但其稳定性及特异性不如填充柱。一般可用非极性毛细管柱,0.530mm内径,10-15m长度。色谱条件可能需用程序升温。在[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]上的出峰次序为先出山梨酸,后出苯甲酸。糖精钠不能直接用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]进行检测,必须衍生化后才能汽化进样。5 选用液相色谱仪的注意事项 按照GB/T5009.29-1996,流动相应为5:95的甲醇:0.02M醋酸铵溶液,但是这个比例仅是个参考值,我们在工作中应根据实际情况进行调节。 为什么用甲醇溶液?甲醇有两个作用,(1)防腐,液相色谱柱最怕流动相长菌,尤其霉菌。甲醇可使蛋白质变性,有杀菌作用。(2)调节流动相极性,这是最重要的一点。甲醇在溶液中比例的较小变化都会使苯甲酸、山梨酸、糖精钠的保留时间发生明显的改变,因此可以通过改变流动相中甲醇含量,以调节这几个组分的出峰和分离,以得到较理想的色谱图。5:95是一个通用的比例,如减少甲醇含量,苯甲酸、山梨酸、糖精钠的出峰时间变慢,扩散效应增大,峰形较差,但这三组分的分离情况较好。如增加甲醇含量,苯甲酸、山梨酸、糖精钠的出峰时间提前,扩散效应较小,峰形尖锐,但这三组分的分离情况可能受影响,产生重叠。在选择条件时,只能通过实验手段,如配制3:97,4:96,5:95,6:96,7:93的流动相,综合考虑分离效果和分离时间选择最佳比例。不同柱的最适比例不同,举例来说,色谱科公司的液相柱最适比例为4:96,而岛津公司液相柱的最佳比例为7:93。就是同一根柱,一年前和一年后的极性也会有变化,需调节溶液配比。为什么使用0.02M醋酸铵溶液?加入醋酸铵是为了调节离子强度,使待测物的峰形不致于变坏。如果单独检测苯甲酸和糖精钠,加不加醋酸铵没有什么关系,都可以得到较好的峰形;但是检测山梨酸时流动相一定要加醋酸铵,否则得不到一个完整的色谱峰,峰形呈破裂状。醋酸铵溶液浓度不需严格控制,0.01M、0.02M、0.04M均可。苯甲酸、山梨酸、糖精钠在液相上的出峰次序很有特点。在流动相5:95及以下比例时,次序是苯甲酸、山梨酸、糖精钠(注意一下[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]的出峰次序),逐步增大甲醇含量,苯甲酸、山梨酸的出峰时间逐步提前,而糖精钠是出峰时间迅速提前,随着甲醇比例的逐步增大(15%-30%),原先在最后出峰的糖精钠集次和前面的山梨酸、山梨酸重叠,并位于最前面,其次序变为糖精钠、苯甲酸、山梨酸。再提高甲醇浓度,次序不变。用高甲醇比例条件(甲醇15%以上)做出的三种标准物质色谱图峰形较好,出峰时间也较快,但做实际样品时干扰较大;因此建议尽量使用低甲醇比例条件(甲醇5%左右)。6 苯甲酸、山梨酸超标时的判断苯甲酸、山梨酸超标的样品较多,由于它们往往牵涉到一批货物是否合格,因此责任重大。由于该方法定量较准确,因此遇到超标样品时应将精力集中于定性方面。如同时有[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]和液相色谱仪,建议用这两种性质相差较大的仪器进行对照,如定量结果差不多,即可确认。如只有[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url],应利用其在填充柱保留时间稳定的特性,同时进五针标准液和五针样品液(注:峰面积应差不多,否则需对一方按比例稀释),如标准和样品液的保留时间相差时间超过1 秒,可认为不是。(如进针的技术不过关,请不要做此实验)如用液相色谱仪,当检测器为二极管阵列检测器时,根据保留时间和紫外吸收图结合定性,当只有紫外检测器时,改检测波长为220nm,230nm,250nm,重复进标准和样品液,由标准和样品在不同波长的峰高比值看是否吻合。如有微生物检测手段,可加样品于有菌培养基中,观察有无抑菌现象,如无抑菌现象则无防腐剂。不是很推荐用双柱法,因为有时柱极性相差不大,反而会影响最终判断。7 糖精钠超标时的判断当检测糖精钠超标时,除了采用二极管阵列检测器或波长验证,还可以利用糖精钠的荧光特性,用荧光检测器进行验证。荧光条件是激发波长为277nm,荧光波长为410nm。只有当用荧光检测器和用紫外检测器做出的定量结果相差不多,才可以判断为是。还有一个简单粗糙、却也行之有效的验证方法,即感官法。糖精钠是一种甜味剂,用舌头可以感觉到它的甜味,如果含量超标,一定能尝出来。8 标准溶液的配制贮存问题苯甲酸、山梨酸、糖精钠的标准溶液如用水、乙醇作基体,一般几个月后会严重降解,。如用甲醇溶解再放于冰箱冷冻层,可保持稳定一两年。因此推荐用甲醇作溶剂。在配制标准溶液时,初学者常犯的错误多为用甲醇溶解苯甲酸钠,用水溶解苯甲酸,晃了半天才发现怎么也不没溶解。应该用弱碱性水溶解苯甲酸钠、山梨酸钾,用甲醇溶解苯甲酸、山梨酸。9 苯甲酸、山梨酸的应用范围首先应注意到,并不是所有食品都需要加入防腐剂,只有那些富含营养物质,且需要长时间暴露于空气的才有这样的需要,否则对厂家来说会增加不必要的成本。酱油、酱料、咸菜、浓缩果汁等由于开封后不可能短期内吃完,月饼等需在货架上摆放,如不加防腐剂很快会发霉变质,有添加防腐剂的必要。而利乐装或易拉罐装的饮料由于很快可以食用完毕,即在细菌大量繁殖前己被消化了,因而没有添加的必要。苯甲酸、山梨酸如果要起到防腐的作用,含量就不能太低。如果我们检测样品时只有几个ppm的浓度,有可能是从原料中带来的或由其它添加剂转化来的,而不是厂家出于防腐目的加入的。苯甲酸、山梨酸也只是防腐剂中的两种。并不是所有需要加入防腐剂的食品都会添加苯甲酸、山梨酸,有可能使用防霉剂或其它种类的防腐剂,或自行规定需冷藏(如某些月饼)。因此有些食品检测不出也属正常。另外,我们应该比较清楚地理解苯甲酸与苯甲酸钠、山梨酸与山梨酸钾之间的关系。在食品中添加防腐剂通常以苯甲酸钠、山梨酸钾形式加入,它们不易汽化,易溶于水,但不溶于甲醇等有机试剂;而苯甲酸、山梨酸易汽化,易溶于有机试剂,但

  • 【第二届网络原创作品大赛】食品中苯甲酸测定测量结果不确定度评定

    食品中苯甲酸测定测量结果不确定度评定依据JJF1059-1999《测量不确定度评定与表示》、CNAL/AG06《测量不确定度政策实施指南》和CNAL/AR11《测量不确定度政策》分析1. 测定方法按照国家标准GB/T5009.29-2003《食品中山梨酸、苯甲酸的测定》中规定食品中苯甲酸测定可以用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]法,高效液相色谱法和薄层色谱法。本例中用高效液相色谱法(HPLC)测定果汁类饮料食品中苯甲酸的含量。 检测过程为:1) 称取样品:用精度为0.1mg的精密电子天平称取5.00g样品,称准至0.1mg。2) 样品前处理:用氨水(1+1)调节PH值到7.0,用100ml容量瓶加水定容,离心沉淀,上清液经0.45μm滤膜过滤,滤液即进HPLC样液。3) 苯甲酸标准原液:使用国家标准物质中心提供的1000mg/L的标准溶液。4) 苯甲酸标准曲线溶液:将苯甲酸标准原液用10ml移液管和25ml容量瓶稀释成100mg/L, 200mg/L,400mg/L的标准系列溶液。5) 样品的稀释溶液定容好后,在HPLC上用3点校准曲线法进行定量。2.测量流程方框示意图 3. 苯甲酸含量的计算 式中:X——试样中苯甲酸的含量,单位为克每千克(g/kg);A——进样体积中苯甲酸的质量,单位为毫克(mg);V2——进样体积,单位为毫升(mL);V1——试样稀释液总体积,单位为毫升(mL);m——试样质量,单位为克(g)。计算结果保留两位有效数字。 4. 不确定度的来源本测试方法的不确定度来源主要来自如下几部分:4.1 测量重复性带来的不确定度分量 (含人员、环境、测量方法和仪器重复性等其他分量的贡献)。样品反复进行10次分析,见表1。表1 - ( - )21201.00.70.492200.80.50.253200.60.30.094200.70.40.165200.80.50.256200.90.60.367201.10.80.648201.31.01.009201.51.21.4410201.61.31.69 201.03 (A类不确定度)4.2 样品测试全过程中引入的不确定度分量 。(B类不确定度)4.2.1 样品称取和前处理过程中天平准确度和100ml容量瓶准确度引起的不确定度分量 。a 天平准确度引起的不确定度分量 天平的准确度为σ=0.1mg,采用矩型分布计算标准不确定度。 b 100ml容量瓶准确度引起的标准不确定度分量 。公差为±0.08ml,按矩形分布。 C. 5 ml容量瓶准确度引起的标准不确定度分量 4.2.2标准溶液配制过程和HPLC制定校准曲线时引入的不确定度分量 。a 苯甲酸标准溶液引入的不确定度分量 。苯甲酸标准溶液的浓度值为1000mg/L±1mg/L,采用矩形分布。 b 稀释过程中的10ml移液管引起的不确定度分量 。公差为±0.01ml,矩形分布。 c 25ml容量瓶的准确度引起的不确定度分量 。公差为±0.03ml,矩形分布。 d 10μl进样针准确度引起的不确定度分量 。公差为±0.02μl,矩形分布。 e HPLC仪器的准确度引起的不确定度分量 。σ=0.0018mg/kg,矩形分布。 4.2.3 HPLC测量样品时10μl进样针和HPLC仪器的准确度引起的不确定度分量 。 5. 合成标准不确定度计算标准不确定度一览表标准不确定度分量u(xi)不确定度来源标准相对不确定度 样品测量重复性4.18×10-3 样品测试全过程( )2.00×10-3 样品称取和前处理( )4.62×10-4 标准溶液配制过程和HPLC制定校准曲线( )1.57×10-3 HPLC测量样品时(10μl进样针和HPLC仪器的准确度)( )1.15×10-3 天平的准确度1.15×10-3 100ml容量瓶准确度4.628×10-4 苯甲酸标准原液浓度5.77×10-4 10ml移液管5.77×10-4 25ml容量瓶6.92×10-4 10μl进样针1.15×10-3 HPLC仪的准确度5.17×10-6合成相对不确定度: 6. 扩展不确定度的评定扩展不确定度通过使用包含因子k=2计算得出: 7.不确定度报告按照国家标准GB/T5009.29-2003规定的检测程序进行,最后测量出本次果汁类饮料食品中苯甲酸含量为:0.201(2)g/kg。(比标准规定多一位有效数字)[img]http://bbs.instrument.com.cn//images/affix.gif[/img][url=http://bbs.instrument.com.cn/download.asp?ID=194240]食品中苯甲酸测定测量结果不确定度评定.doc[/url][color=#DC143C][size=4][font=黑体]应疯子哥的要求,把公式及图片贴上来,在4楼-8楼有版主ROGERSW的完整佳作。[/font][/size][/color]

  • 薄层色谱和气相色谱在样品前处理的方法分别是什么?(食品中防腐剂苯甲酸和山梨酸的测定)

    第一法 薄层色谱法1 原理  样品酸化后,用乙醚提取山梨酸、苯甲酸。将样品提取液浓缩,点于聚酰胺薄层板上,展开。显色后,根据薄层板上山梨酸、苯甲酸的比移值,与标准比较定性,并可进行概略定量。2 试剂2.1 异丙醇。2.2 正丁醇。  2.3 石油醚:沸程:30~60℃。2.4 乙醚: 不含过氧化物。2.5 氨水。2.6 6N盐酸: 取100mL盐酸,加水稀释至200mL。2.7 无水乙醇。2.8 聚酰胺粉:200目。2.9 山梨酸标准溶液:精密称取0.2000g山梨酸,用少量乙醇溶解后移入100ml容量瓶中并稀释至刻度,此溶液每毫升相当于2mg山梨酸。2.10 苯甲酸标准溶液:精密称取0.2000g苯甲酸,用少量乙醇溶解后移入100ml容量瓶中,并稀释至刻度,此溶液每毫升相当于2mg苯甲酸。2.11 展开剂2.11.1 正丁醇-氨水-无水乙醇(7:1:2)。2.11.2 异丙醇-氨水-无水乙醇(7:1:2)。2.12 显色剂:0.04%溴甲酚紫的50%乙醇溶液,用0.1N氢氧化钠溶液调至pH=8。2.13 4%氯化钠酸性溶液:于4%氯化钠溶液中加少量6N盐酸酸化。3 仪器3.1 吹风机。3.2 层析缸。3.3 玻璃板:10×18cm。3.4 微量注射器:10μL,100μL。3.5 喷雾器。4 操作方法4.1 样品提取:  称取2.5g事先混合均匀的样品,置于25ml带塞量筒中,加0.5ml 6N盐酸酸化,用15、10ml乙醚提取两次,每次振摇1min,将上层醚提取液吸入另一个25ml带塞量筒中,合并乙醚提取液。用3ml4%氯化钠酸性溶液洗涤两次,静止15min,用滴管将乙醚层通过无水硫酸钠滤入25ml容量瓶中。加乙醚至刻度,混匀。吸取10.0ml乙醚提取液分两次置于10ml带塞离心管中,在约40℃的水浴上挥干, 加入0.10ml乙醇溶解残渣,备用。4.2 测定4.2.1 聚酰胺粉板的制备:称取1.6g聚酰胺粉,加0.4g可溶性淀粉,加约15ml水,研磨3~5min,立即倒入涂布器内制成10×18cm、厚度0.3mm的薄层板两块,于室温干燥后,于80℃干燥1h,取出,置于干燥器中保存。4.2.2 点样:在薄层板下端2cm的基线上,用微量注射器点1μL、2μl样品液,同时各点1μl、2μl山梨酸、苯甲酸标准溶液。4.2.3 展开与显色:将点样后的薄层板放入预先盛有展开剂(2.11.1或2.11.2)的展开槽内,展开槽周围贴有滤纸,待溶剂前沿上展至10cm,取出挥干,喷显色剂,斑点成黄色,背景为蓝色。样品中所含山梨酸、苯甲酸的量与标准斑点比较定量(山梨酸、苯甲酸的比移值依次为0.82,0.73)。4.2.4 计算:A1 × 1000X1 = ─────────────..........(1)m1 × 10/25 ×V2/V1×1000式中:X1—─样品中山梨酸(苯甲酸)的含量,g/kg;   A1—─测定用样品液中山梨酸(苯甲酸)的含量,mg;   m1——样品质量,g;   V1——加入乙醇的体积,mL;   V2──测定时点样的体积,mL;   10——测定时吸取乙醚提取液的体积,mL;   25——样品乙醚提取液总体积,mL。   注:本方法还可以同时测定果酱、果汁中的糖精。              第二法 气相色谱法5 原理      样品酸化后,山梨酸、苯甲酸用乙醚提取浓缩后,用附氢火焰离子化检测器的气相色谱仪进行分离测定,与标准系列比较定量。6 试剂6.1 乙醚。6.2 石油醚:沸程30~60℃。6.3 盐酸。6.4 无水硫酸钠。6.5 山梨酸、苯甲酸标准溶液: 精密称取山梨酸、苯甲酸各0.2000g,置于100ml容量瓶中,用石油醚-乙醚(3:1)混合溶剂溶解后并稀释至刻度。此溶液每毫升相当于2mg山梨酸或苯甲酸。6.6 山梨酸、苯甲酸标准使用液:吸取适量的山梨酸、苯甲酸标准溶液,以石油醚-乙醚(3:1)混合溶剂稀释至每毫升相当于50、100、150、200、25Oμg山梨酸或苯甲酸。7 仪器  气相色谱仪:具氢火焰离子化检测器。8 操作方法8.1 样品提取  按4.1自“称取2.5g”至“加乙醚至刻度”依法操作。准确吸取5mL乙醚提取液于5mL带塞刻度试管中,置40℃水浴上挥干,加入2ml石油醚-乙醚(3:1)混合溶剂溶解残渣,备用。8.2 色谱条件8.2.1 色谱柱:玻璃柱,内径3mm,长2m,内装涂以5%DEGS+1%H3PO4固定液的60~80目Chromosorb W AW。8.2.2 气流速度: 载气,氮气,50ml/min(氮气和空气、氢气之比按各仪器型号不同选择各自的最佳比例条件。)8.2.3 温度:进样口 230℃;检测器230℃;柱温170℃。8.3 测定  进样2μL标准系列中各浓度标准使用液于气相色谱仪中,可测得不同浓度山梨酸,苯甲酸的峰高,以浓度为横坐标,相应的峰高值为纵坐标,绘制标准曲线。同时进样2μL样品溶液,测得峰高与标准曲线比较定量。8.4 计算A3 × 1000X2 = ─────────────..................(2)m2×5/25×V4/V3×1000式中:X2──样品中山梨酸或苯甲酸的含量,g/kg;   A3——测定用样品液中山梨酸或苯甲酸的含量,μg;   V3——加入石油醚—乙醚(3:1)混合溶剂的体积,mL;   V4─—测定时进样的体积,μL;   m2──样品的质量,g;    5─—测定时吸取乙醚提取液的体积,mL;   25──样品乙醚提取液的总体积,mL。  由测得苯甲酸的量乘以1.18,即为样品中苯甲酸钠的含量。2.山梨酸、苯甲酸的气相色谱测定原理:样品经酸化后,用乙醚提取山梨酸和苯甲酸,再用带氢火焰离子化检测器的气相色谱仪进行分离测定,然后与标准系列进行比较定量。仪器和试剂 :(1)乙醚、石油醚:沸程30~60 ℃(2)山梨酸、苯甲酸标准溶液:用石油醚-乙醚(3:1)混合溶剂配制溶液每毫升相当2mg山梨酸或苯甲酸。(3)山梨酸、苯甲酸标准使用液:吸取适量山梨酸、苯甲酸标准溶液,以石油醚-乙醚(3:1)混合溶剂稀释至每毫升相当于50、100、150、200、250µg山梨酸或苯甲酸。(4)仪器:气相色谱仪,带氢火焰离子化检测器操作步骤(1)样品的处理:称取2.5g事先混合均匀的样品,置于 25mL带塞试管中,加0.5mL 6mol/L HCI酸化,用15、10mL乙醚提取2 次,每次振摇1min,将上层醚提取液吸入另一个25mL一带塞试管中,合并乙醚提取液。用 3mL 4%氯化钠酸性溶液洗涤2次,静置15min,用滴管将乙醚层通过无水硫酸钠滤入25mL容量瓶中。加乙醚至刻度,混匀。准确吸取5mL乙醚提取液于5mL 带塞刻度试管中,置40℃水浴上挥干,加入2mL石油醚-乙醚(3:1)混合溶液溶解残渣,备用。(2)色谱参考条件色谱柱:玻璃柱,内径3mm,长2m, 气流速度:载气、氮气,50mL/min(氮气和空气、氢气比按各仪器型号不同选择各自的最佳比例条件)。温度:进样口 230 ℃ ,检测器230 ℃ ,柱温170 ℃ 。(3)测定:进样2µL标准系列中各浓度标准使用液于气相色谱仪中,可得不同浓度山梨酸、苯甲酸的峰面积,以浓度为横坐标,相应峰面积值为纵坐标,绘制标准曲线。同时进样2µL样品溶液,测得峰面积可从标准曲线相应的山梨酸、苯甲酸的浓度。结果计算http://pic.wenwen.soso.com/p/20091101/20091101113118-1266021439.jpg式中:X——样品中山梨酸或苯甲酸的含量,g/kg;ρ ——标准曲线上查得山梨酸或苯甲酸的量,μg/mL;V1——加入石油醚-乙醚(3+1)混合溶剂的体积,mL:m——样品的质量,g;5——测定时吸取乙醚提取液的体积,mL;25——样品乙醚提取液的总体积,mL。说明及注意事项:1、由测得苯甲酸的量乘以相对分子质量比1.18,即为样品中苯甲酸钠含量。2、由测得山梨酸的量乘以相对分子质量比1.34,即为样品中山梨钾的含量。3、通过无水硫酸钠层过滤后的乙醚提取液应达到去除水分的目的,否则5mL乙醚提取液在40 ℃挥去乙醚后仍残留少量水分会影响l测定结果,这时必须将残留水分挥干,但会析出极少量白色氯化钠,当出现此情况时应搅松残留的无机盐后加入石油醚-乙醚(3:1)振摇,取上清液进样,否则氯化钠覆盖了部分山梨酸、苯甲酸,使定结果偏低。

  • 液相色谱法检测苯甲酸、山梨酸、糖精钠的疑难详解

    苯甲酸、山梨酸、糖精钠是衡量食品卫生质量的重要指标,苯甲酸、山梨酸的检测参照GB/T5009.29-1996,糖精钠的检测参照GB/T 5009.28-1996,即可开展实验。苯甲酸、山梨酸、糖精钠虽是较常见的检测项目,但是要得到一个准确可靠的结果,也存在一定的难度,许多新手常出现因对方法理解发生偏差而检测出错的事故。笔者根据自己多年该方面工作的实际经验出发,以苯甲酸、山梨酸为着重点,从样品前处理、检测仪器的选择、超标时的判断等几个易出问题的方面,进行了详细的阐述。2 样品前处理的注意事项 GB/T5009.28-1996和GB/T5009.29-1996 在文字结构上有缺陷,在涉及用仪器法测定苯甲酸、山梨酸、糖精钠时,只讲述了液体样品的前处理方法,没有涉及对固体样品的前处理。食品样品往往含有大量的油脂、蛋白质,对提取极为不利;如处理不干净也会污染色谱柱,影响检测工作。这类样品处理的关键在于如何找到一种较理想的沉淀剂,尽量排除待测样品中的油脂、蛋白质,且不影响待测物组分的回收率。GB/T5009.29-1996使用5%硫酸铜溶液沉淀蛋白,对于蛋白质含量较低的食品尚可,对于豆粉、奶粉、月饼等高油脂、高蛋白样品则沉淀效果不理想。如用10%钨酸钠溶液作为沉淀剂,效果好些;如用10%亚铁氰化钾溶液和20%醋酸锌溶液则效果更理想(这是笔者目前用过最理想的沉淀剂)。具体操作步骤如下:取一定量样品,捣碎,利用四分法原理称取样品5.0 克于50ml比色管中,加水20ml,浸泡、振荡均匀,加入氢氧化钠溶液(1mol/L)1.0 ml,加入9.5mL10%亚铁氰化钾溶液, 9.50mL 20%乙酸锌溶液,定容,振荡使其充分混匀后,用滤纸初滤除去沉淀物, 初滤液过0.45μm微孔滤膜,收集滤液于样品瓶中,样品处理液和标准有溶液各进样5uL测定。用这种方法简单易行,接触有机试剂少,重复性和回收率都令人满意;缺点是一定要用液相色谱法检测,有一定局限。3 检测仪器的选择虽然液相色谱仪操作起来比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]要复杂,但笔者建议如条件许可仍尽量用液相色谱法检测。原因如下:3.1 液相色谱法所用的样品处理方法远比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]法简单,且不需使用有机试剂。尤其对于高油脂样品(如月饼)若采用碱化-排油-酸化-提取-挥干-溶解等步骤,再上[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]检测,工作量大,试剂毒性也大,且结果由于处理步骤太多而难以保证准确。3.2 用液相色谱法还可同时完成糖精钠项目的检测,而[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]法只能做苯甲酸、山梨酸的检测。3.3 液相色谱仪所用的紫外检测器比[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]的氢火焰检测器灵敏,可进行更低含量的检测。如用二极管阵列检测器,还可辅助定性,这更是[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]氢火焰检测器不可比拟的。4 选用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]时的注意事项 GB/T5009.29-1996所用的[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]柱为 5%DEGS+1%磷酸固定液的60-80目 Chromosorb W AW,。这种柱有性能稳定、重复性好、保留时间稳定的优点,但同时也有稳定时间较长的缺点。该柱的适用的样品提取溶剂为石油醚或乙醚,如果用甲醇或乙醇,则溶剂峰拖尾效应较大,对山梨酸的测定有影响。如用毛细管柱,能取得更好的峰形和灵敏度,但其稳定性及特异性不如填充柱。一般可用非极性毛细管柱,0.530mm内径,10-15m长度。色谱条件可能需用程序升温。在[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]上的出峰次序为先出山梨酸,后出苯甲酸。糖精钠不能直接用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱[/url]进行检测,必须衍生化后才能汽化进样。5 选用液相色谱仪的注意事项 按照GB/T5009.29-1996,流动相应为5:95的甲醇:0.02M醋酸铵溶液,但是这个比例仅是个参考值,我们在工作中应根据实际情况进行调节。 为什么用甲醇溶液?甲醇有两个作用,(1)防腐,液相色谱柱最怕流动相长菌,尤其霉菌。甲醇可使蛋白质变性,有杀菌作用。(2)调节流动相极性,这是最重要的一点。甲醇在溶液中比例的较小变化都会使苯甲酸、山梨酸、糖精钠的保留时间发生明显的改变,因此可以通过改变流动相中甲醇含量,以调节这几个组分的出峰和分离,以得到较理想的色谱图。5:95是一个通用的比例,如减少甲醇含量,苯甲酸、山梨酸、糖精钠的出峰时间变慢,扩散效应增大,峰形较差,但这三组分的分离情况较好。如增加甲醇含量,苯甲酸、山梨酸、糖精钠的出峰时间提前,扩散效应较小,峰形尖锐,但这三组分的分离情况可能受影响,产生重叠。在选择条件时,只能通过实验手段,如配制3:97,4:96,5:95,6:96,7:93的流动相,综合考虑分离效果和分离时间选择最佳比例。不同柱的最适比例不同,举例来说,色谱科公司的液相柱最适比例为4:96,而岛津公司液相柱的最佳比例为7:93。就是同一根柱,一年前和一年后的极性也会有变化,需调节溶液配比。为什么使用0.02M醋酸铵溶液?加入醋酸铵是为了调节离子强度,使待测物的峰形不致于变坏。如果单独检测苯甲酸和糖精钠,加不加醋酸铵没有什么关系,都可以得到较好的峰形;但是检测山梨酸时流动相一定要加醋酸铵,否则得不到一个完整的色谱峰,峰形呈破裂状。醋酸铵溶液浓度不需严格控制,0.01M、0.02M、0.04M均可。苯甲酸、山梨酸、糖精钠在液相上的出峰次序很有特点。在流动相5:95及以下比例时,次序是苯甲酸、山梨酸、糖精钠(注意一下[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]的出峰次序),逐步增大甲醇含量,苯甲酸、山梨酸的出峰时间逐步提前,而糖精钠是出峰时间迅速提前,随着甲醇比例的逐步增大(15%-30%),原先在最后出峰的糖精钠集次和前面的山梨酸、山梨酸重叠,并位于最前面,其次序变为糖精钠、苯甲酸、山梨酸。再提高甲醇浓度,次序不变。用高甲醇比例条件(甲醇15%以上)做出的三种标准物质色谱图峰形较好,出峰时间也较快,但做实际样品时干扰较大;因此建议尽量使用低甲醇比例条件(甲醇5%左右)。6 苯甲酸、山梨酸超标时的判断苯甲酸、山梨酸超标的样品较多,由于它们往往牵涉到一批货物是否合格,因此责任重大。由于该方法定量较准确,因此遇到超标样品时应将精力集中于定性方面。如同时有[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url]和液相色谱仪,建议用这两种性质相差较大的仪器进行对照,如定量结果差不多,即可确认。如只有[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相色谱仪[/url],应利用其在填充柱保留时间稳定的特性,同时进五针标准液和五针样品液(注:峰面积应差不多,否则需对一方按比例稀释),如标准和样品液的保留时间相差时间超过1 秒,可认为不是。(如进针的技术不过关,请不要做此实验)如用液相色谱仪,当检测器为二极管阵列检测器时,根据保留时间和紫外吸收图结合定性,当只有紫外检测器时,改检测波长为220nm,230nm,250nm,重复进标准和样品液,由标准和样品在不同波长的峰高比值看是否吻合。如有微生物检测手段,可加样品于有菌培养基中,观察有无抑菌现象,如无抑菌现象则无防腐剂。不是很推荐用双柱法,因为有时柱极性相差不大,反而会影响最终判断。7 糖精钠超标时的判断当检测糖精钠超标时,除了采用二极管阵列检测器或波长验证,还可以利用糖精钠的荧光特性,用荧光检测器进行验证。荧光条件是激发波长为277nm,荧光波长为410nm。只有当用荧光检测器和用紫外检测器做出的定量结果相差不多,才可以判断为是。还有一个简单粗糙、却也行之有效的验证方法,即感官法。糖精钠是一种甜味剂,用舌头可以感觉到它的甜味,如果含量超标,一定能尝出来。8 标准溶液的配制贮存问题苯甲酸、山梨酸、糖精钠的标准溶液如用水、乙醇作基体,一般几个月后会严重降解,。如用甲醇溶解再放于冰箱冷冻层,可保持稳定一两年。因此推荐用甲醇作溶剂。在配制标准溶液时,初学者常犯的错误多为用甲醇溶解苯甲酸钠,用水溶解苯甲酸,晃了半天才发现怎么也不没溶解。应该用弱碱性水溶解苯甲酸钠、山梨酸钾,用甲醇溶解苯甲酸、山梨酸。9 苯甲酸、山梨酸的应用范围首先应注意到,并不是所有食品都需要加入防腐剂,只有那些富含营养物质,且需要长时间暴露于空气的才有这样的需要,否则对厂家来说会增加不必要的成本。酱油、酱料、咸菜、浓缩果汁等由于开封后不可能短期内吃完,月饼等需在货架上摆放,如不加防腐剂很快会发霉变质,有添加防腐剂的必要。而利乐装或易拉罐装的饮料由于很快可以食用完毕,即在细菌大量繁殖前己被消化了,因而没有添加的必要。苯甲酸、山梨酸如果要起到防腐的作用,含量就不能太低。如果我们检测样品时只有几个ppm的浓度,有可能是从原料中带来的或由其它添加剂转化来的,而不是厂家出于防腐目的加入的。苯甲酸、山梨酸也只是防腐剂中的两种。并不是所有需要加入防腐剂的食品都会添加苯甲酸、山梨酸,有可能使用防霉剂或其它种类的防腐剂,或自行规定需冷藏(如某些月饼)。因此有些食品检测不出也属正常。另外,我们应

  • 【转帖】苯甲酸等59种防腐剂 高效薄层色谱法

    1 应用范围本法适用于化妆品中常用59种防腐剂的鉴别和半守时检测。可检测的浓度相当于化妆品卫生标准允许使用的浓度(1)。2 原理化妆品中防腐剂以萃取、高效薄层板-展开体系分离后,经显色或在紫外光激发下显现样斑。根据未知样斑的Rf 值及显色反应与已知标准的Rf 值及显色特微比较,可以识别可能存在的防腐剂,然后将此品种的防腐剂标准溶液与样品液在同一薄层板上展开,以进一步确认。3 试剂3.1 标准溶液:防腐剂标准列于表2-3-24。表2-3-24 防腐剂的名称、分子式及最大允许用量代号 化学名称 序号 最大允许用量**(%) 英文名称 中文名称 Ac1 Benzoic acid 苯甲酸 4-36 0.5(酸) Ac2 p-Hydroxyben-zoic acid 对羟基苯甲酸 4-46 单酯0.4(酸)混合酯0.8(酸) Ac3 p-Hydroxyben-zoic acid,methyl ester 对羟基苯甲酸甲酯 4-46 单酯0.4(酸)混合酯0.8(酸) Ac4 p-Hydroxyben-zoic acid,ethyl ester 对羟基苯甲酸乙酯 4-16 单酯0.4(酸)混合酯0.8(酸) Ac5 p-Hydroxyben-zoic acid,propyl ester 对羟基苯甲酸丙酯 4-46 单酚0.4(酸)混合酯0.8(酸) Ac6 p-Hydroxyben-zoic acid,butyl ester 对羟基苯甲酸丁酯 4-46 单酯0.4(酸)混合酯0.8(酸) Ac7 p-Hydroxyben-zoic acid,isobutyl ester 对羟基苯甲酸异丁酯 4-46 单酯0.4(酸)混合酯0.8(酸) Ac8 p-Hydroxyben-zoic acid,benzyl ester 对羟基苯甲酸苄酯 4-47 0.1(酸) Ac9 Dehydroacetic acid 脱氢乙酸 4-62 0.6(酸) Ac10 Salicylic acid 水杨酸 4-22 0.5(酸) Ac11 Sorbic acid 山梨酸 4-16 0.6(酸) Ac12 Undecylenic acid 一-10-碳烯酸 4-2 0.2(酸) Ac13 Usnic acid 地衣酸 4-12 0.2 H1 2-Benzyl-4-chlorophenol 苄氯酚 4-42 0.2 H2 3,4-Dichlorobenzyl alcohol 3,4-二氯苄醇 4-5 0.15 H3 4,4′Dichloro-3-(trifluorome-thyl) carbanilide 卤卡班(4,4′-二氯-3-三氯甲基)均二苯脲 4-20 0.3 H4 3,4,4′-Trichloro-carbanilide 3,4,4′-三氯均苯脲 4-18 0.2 H5 3,3′-Debromo 5,5′-dichloro-2,2′dehydroxy-diphenyl-methane 溴氯双酚 4-4 0.1 H6 5,5′-Dechloro-2,2′dihydroxydiphenyl-methane 双氯酚 4-7 0.2 H7 2,2′-Dehydroxy-3,3′,5,5′,6,6′-nexachloro-diphenylme-thane 六氯酚 4-24 0.1 H8 2,4,4′-Tichloro-2′-hydroxydi-phenylether 三氯生(2,4,4′-三氯-2′-羟基二苯基醚 4-21 0.3

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