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生物提取样品

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  • 微生物样品取样要求

    1)在取样之前应确认货、证是否相符。2)取样过程中应避免与水等环境的不良因素影响,防止样品被污染。3)取样用具(如注射器、采血管、试管、探子、铲子、匙、取样器、剪子、样品袋等)必须是经过灭菌的。4)对采集的样品一般要求随机取样。若怀疑最有可能受病原体污染或者带有病原体的样品,可以进行选择取样。5)根据样品种类(如盒装、袋装、瓶装和罐装),应取完整密封的样品。如果样品很大,则需用无菌取样器取样;若样品是粉末,应边取边混合;若样品是液体的,通过振摇即可混匀;若样品是冷冻的,应保持冷冻状态(可放在冰内、冰箱的冷盒内或低温冰箱内保存),而非冷冻动物产品须保持在0℃~5℃中保存。6)取样前或取样后应在盛装样品的容器或样品袋上立即贴上标签,每件样品必须标记清除(包括品名、来源、数量、取样地点、取样人及取样日期)。7)获取有关取样产品的信息:如样品名称、批量大小、包装类型、包装容器体积、生产线、产品编号或控制号、批量号、标签内容、包装破损状况、产品存放地点或建筑物的基本情况等。8)当客户对所规定的取样程序有偏离、添加或删节的要求时,应详细记录这些要求和相关的取样资料,并记入包含检测结果的所有文件中,同时告知相关人员。9)当取样作为检测一部分时,实验室应有程序记录与取样有关的资料和操作。这些纪录应包括所用的取样程序、取样人的识别、环境条件(如果相关)、必要时有抽样地点的图示或其他等效方法,如果合适,还应包括取样程序所依据的统计方法。转自 食品伙伴网

  • FIB制样,提取样品

    利用FIB-SEM制备微米级粉末的TEM样品,lift-out法,样品提取后,如何转移到C膜上或者如何焊接到Cu网上呢?我的疑问在于:提取的样品是垂直于C膜或者Cu网,后续的什么操作可以使得样品与C膜或者Cu网水平呢?此贴在SEM版块发过,不知在TEM版块发一遍,是否违规,如违规,版主就删帖吧。

  • 全自动稀有样品核酸提取仪

    全自动稀有样品核酸提取仪

    [img=,257,264]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/06/201706301258_01_3194653_3.png[/img]Aurora全自动核酸提取系统采用专利SCODA( Synchro-nous Coefficient of Drag Alteration)电泳DNA操作技术,从具有挑战性的样品中浓缩和纯化DNA.SCODA根据DNA的物理特性选取长的带电聚合物(而非通过其其化学性质或化合物亲合力分离DNA).因此,系统可提供卓越的污染物排斥.此外,Aurora系统可从单一样本中提取高达100倍浓度,从几百分子到100微克的DNA.可高效稳定地纯化提取核酸和蛋白,尤其适合珍贵样品、低生物质低丰度样品、土壤、环境等各类型难提取样品的提取. 产品特征电泳纯化高分子量DNA的提取低生物量和严重抑制样品处理样品成本为零,适合低通量样品处理宏基因组学/NGS/光学测绘/单分子测序应用应用领域生命科学研究土壤与环境农业生物技术法医学 技术参数样品处理时间:2-4小时,样品盐度60%DNA / RNA片段大小: 500 nt RNA,300 bp - 50 kb DNA,可扩展到1Mb污染物抑制: 10-50,000X2产量: 60 uL 该系统避免了研磨、匀浆等传统方法的费力、耗时、低效等诸多缺点,通过非机械过程直接从环境样品,细胞提取物,或带电泳插头的琼脂糖中回收完整的高纯大片段DNA。DNA提取缓冲液、DNA凝胶柱可用于进行后续的克隆,归档,光学标测,或PCR、测序等遗传分析。系统可从至多5毫升稀释裂解液或洗出液中提取核酸,回收低生物质样品包括沉积物,土壤,苔原,和水样中的微量核酸。系统还可净化商业试剂盒受污染洗脱液,提高样品利用率,并无缝对接到现有的工作流程中.

  • 微生物取样问题

    请问大家,生产过程中需要取微生物样品到实验室进行检测。取样人是谁?过程控制的人员?微生物检测人员还是其他人员。因为涉及到检测结果与取样污染问题,是否有相应的标准要求?

  • 微生物取样问题

    请问大家,生产过程中需要取微生物样品到实验室进行检测。取样人是谁?过程控制的人员?微生物检测人员还是其他人员。因为涉及到检测结果与取样污染问题,是否有相应的标准要求?

  • 如何提取样品中硒的形态化合物

    我现在做原子荧光与液相色谱联用测样品中的硒形态化合物,想问问大家都是做了哪些样品,有什么样有效的样品处理方法,我查阅很多文献,按照文献的处理方法,不能有效提取硒的形态化合物,目前感到很困惑。。请大侠指点迷津,谢谢。。

  • 求助:如何从粪样中提取样品?

    我在做黄酮类化合物的药代工作,血浆中的提取用乙酸乙酯液液萃取,回收率可达80%,但在分析粪便样品时回收率只有5%不到.各位兄弟姐妹帮忙拉!

  • 【求助】溶剂提取样品中色素的去除

    我是做香[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]关分析的,我的样品中还有大量的色素和酚类物质。以前用sde做,样品很干净,效果也不错,但是分析太耗时间,周期太长,一天只能处理4-5个样品,现在想用溶剂直接萃取,看看是否可以缩短周期。但溶剂萃取时色素实在太高,不敢进样。目前已试过两种溶剂-二氯甲烷和乙酸乙酯。用二氯甲烷提取的样品,大部分色素可以过硅土柱去除,但二氯甲烷提取效果不理想,所能提取到的物质比较少,因而试用乙酸乙酯,但色素无法用上述方法去除,想用其他吸附材料来去除色素,但又怕去除色素的同时也把所要的目标物去除了。因此想请教大家有没有这方面的相关经验,对有乙酸乙酯提取物中的色素用什么方法去除较为理想。

  • 关于液相的样品提取

    [color=#444444]我在做一个中药的指纹图谱,在提取样品的时候,前期是用99.5%的分析甲醇来提取,后来改用色谱甲醇来提取,两种提取方法所得的色谱图有些许差别,本来分开的两个峰又有点合在一起了。请问之所以结果不同,是因为有污染吗?常规的做法是用哪一种甲醇来提取呢?[/color]

  • 生物样品提取

    在书上看到这样一句话:样品提取前建议加入外源性标准品作为内标,以监测预处理过程的稳定性。请问如何理解可以监测预处理过程的稳定性,如何监测呢?

  • 单细胞“纳米生物间谍”技术能进入活细胞取样

    原标题 “纳米生物间谍”技术能进入活细胞取样 可用于深入揭示线粒体基因组变异的重要性 科技日报讯 据物理学家组织网近日报道,美国加利福尼亚大学圣克鲁兹分校(UCSC)研究人员开发出一种机器人式的“纳米生物间谍”系统,能从单个活细胞内提取出微量样本,进行RNA或DNA测序,而不会杀死细胞。研究人员表示,这种单细胞“纳米生物间谍”技术是一种了解活细胞内部动态过程的有力工具。相关论文发表在最近出版的美国化学协会《纳米》杂志上。 “我们能从活细胞中拿走一个‘生物间谍’,再把它送回该细胞,在几天内这样重复多次而不会杀死细胞。如果用其他技术,你不得不牺牲这个细胞才能分析它。”该生物传感与生物电技术小组负责人、UCSC巴斯金工程学院生物分子工程教授内德·波曼德说。 “纳米生物间谍”平台是研究小组用纳米吸液管开发的最新设备。纳米吸液管是一种小玻璃管,取液端越来越细,至尖端直径仅50到100纳米。波曼德说:“我能在实验室造出纳米吸液管,这不需要昂贵的纳米制造设备。但要进入一个细胞,问题是即使在高倍显微镜下,你也看不见吸液管尖端,不知道它偏离了细胞有多远。” 实验室博士后研究员亚当·赛格尔解决了这一问题。他基于在一台改造过的扫描离子电导显微镜(SICM),开发出一种反馈控制系统。该系统能利用通过纳米吸液管尖端的离子流作为反馈信号,在尖端接近细胞表面时探测其中的液滴。在尖端进入细胞之前,一种自动控制系统能定位它在细胞上面的位置,然后尖端很快插入穿透细胞膜,通过操控电压有控制地提取一小点细胞内物质。由于吸液管尖端极精细,对细胞造成的损害极微小。 研究小组用这种系统从活细胞中提取的微量细胞物质,估计只有50毫微微升(千万亿分之一升),约一个人体细胞百分之一的量。他们从单个人体癌细胞中提取物质并进行RNA测序,还从人类成纤维细胞中提取了线粒体并对其进行了DNA测序。“人们已经知道,线粒体和多种神经退化疾病有关。该技术可用于深入揭示线粒体基因组变异的重要性。”波曼德说。 该技术应用前景广阔。波曼德希望能与其他研究人员合作,探索其更多用途。“对于癌症生物学家、干细胞生物学家等想要了解细胞内部情况的科学家来说,这是一种多功能的平台。”(常丽君)来源:中国科技网-科技日报 2014年01月20日

  • 请教高手关于索试提取样品的问题

    索试提取时,每次溶剂到中间部分,突然一下都虹吸完了,然后,重复...而不是连续不断的如丝丝溪流虹吸请问,上述那种现象提取效率更好些?

  • [转帖]生物样品前处理方法

    转自:[url]http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=117&id=4512473&sty=3&keywords=%D1%F9%C6%B7+%B4%A6%C0%ED+%B4%BF%BB%AF[/url],希望对大家的学习和工作有所帮助。1. 样品均匀化 对于生物样品,应在测定前混合均匀,以免造成测定误差。可置涡流混合器上混匀,血浆样品往复振摇亦可达到均匀化的目的。 对粪便、肌肉和组织等固体样品都存在均匀化这一问题。对含有不溶性组分的样品(例如组织和粪便),须将样品进行匀浆处理,以保证样品的均匀性。同时还应注意取样的代表性问题。 2. 去蛋白处理 生物样品如血浆、血清等含有大量的蛋白质,它们能结合药物,因此对于某些药物的测定,必须先将与蛋白结合的药物游离之后再作进一步处理。通常去蛋白过程是将蛋白质变性处理后,把与蛋白结合的药物解离出来,离心分离以除去蛋白。 目前已有很多去蛋白方法可供使用,但使用各种方法之前应了解该方法是否会导致生物样品中的药物发生分解或影响药物的提取等。通常除蛋白的方法是在含蛋白样品中加入适当的沉淀剂或变性剂,使蛋白质脱水而沉淀(如有机溶剂、中性盐),有的是由于蛋白质形成不溶性盐而析出(如高氯酸),离心后取上清液用于分析。甲醇、乙腈、丙酮和乙醇是沉淀蛋白常用的有机溶剂,中性盐可用氯化铵等。无机盐沉淀蛋白是可逆的,即将蛋白稀释后仍具有生理活性,而有机溶剂和酸类沉淀的蛋白是不可逆的。也可用透析法与超滤法除去样品中蛋白。3. 被测组分的提取 生物样品中被测组分一般需提取后才能进行色谱分析,这一步骤包含了样品的净化与浓缩。提取方法和提取条件的选择是分析方法研究的重要内容之一,它与分析方法的选择性、精密度和准确度紧密相关。 3.1 液-液提取 液-液提取是经典的提取方法之一,它基于被测组分在不相混溶的两种溶剂中的分配。在提取过程中,水相的pH是重要的参数;一般弱酸性药物可加入一定量的酸,弱碱性药物可加入一定量的碱,使药物以分子状态存在,有利于有机溶剂的提取效果;在[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质联用[/color][/url]中,必须使用可挥发性的酸和碱,如盐酸、甲酸、乙酸、氨水等。有时加入一些强离子的无机盐(如氯化钠), 利用盐析作用,能促进组分进入有机相。通过选择不同的有机溶剂可提高选择性。一般可选用乙酸乙酯、乙醚、二氯甲烷、氯仿、正己烷、甲基叔丁基醚、甲醇、乙腈等有机溶剂及其不同比例的混合物进行提取。液-液提取可用于水为基质的样品中非极性或弱极性组分的提取,液液提取可用氮气吹干,残渣可用与色谱方法相适应的溶剂溶解后进样。 液-液提取有时会发生乳化现象以及被测组分损失。为了防止乳化,可应用较大体积的有机溶剂,避免猛烈振摇或加入适当的试剂改变其表面张力而破乳,若已发生严重的乳化现象,可将试管置于冰箱中冷冻破乳。 萃取过程中所用的玻璃容器壁对某些药物的吸附是不可忽略的,特别是当药物浓度较低时更是如此。可使用经硅烧化处理的器具,同时萃取剂中加入异戊醇也可减少玻璃壁的吸附,还可减少萃取过程中乳化的形成。两性药物或水溶性很强的药物不能用一般的溶剂萃取法将它们自体液介质中萃取出来,通常可用离子对萃取法。针对呈解离状态的药物,可以加入反离子来形成离子对络合物,再用有机溶剂萃取出来。一般碱性药物用十二烷基磺酸类(RSO3H)作为反离子,其他有戊烷磺酸、己烷磺酸、庚烷磺酸、辛烷磺酸等;酸性药物可用烷基季铵类化合物(R4N+X-)作为反离子,如四丁基铵、四乙基铵、四辛基铵等。形成离子对后可用相应有机溶剂提取。 3.2 固相分离 固相分离又称为固相提取柱法,其常用的柱填料有吸附剂、高分子大孔树脂、离子交换树脂、键合硅胶等。固相分离有两种实现样品纯化的途径。一种是保留杂质,待测组分不被保留而自然流出或者被洗脱。更为常用的一种途径是先使待测物完全保留在柱上,使干扰杂质随样品溶剂或洗涤液洗出,然后以小体积溶剂洗脱待测物。键合硅胶固相提取的一般操作步骤如下:①以适当强溶剂湿润固相提取填料使其溶剂化;②以弱溶剂通常是水或缓冲溶液洗涤填料,使其达到良好的分离状态;③将溶于弱溶剂常是缓冲溶液中的样品加到固相提取柱上;④以强度适当的弱溶剂,如含有少量甲醇的水或缓冲溶液,洗涤、除去基质或干扰组分;⑤用强度较高的溶剂洗脱待测组分,收集洗脱液,直接或适当浓缩后进行色谱分析。 为了确立最佳固相提取条件,使方法有良好的选择性、准确度和重现性,在实验、实践中应当从下列各方面着手:首先要研究待测组分(药物等)的物理、化学性质,根据这些性质选择合适的固相提取剂,然后根据待提取组分的性质和已选用的提取剂来选择洗脱剂;再了解样品基质的性质,这有助于选择上样前固相提取剂的平衡溶剂、样品溶剂和消除杂质用的洗涤溶剂,最后进行回收率试验,考察提取的完全程度。

  • 【求助】配制磷酸盐缓冲液提取样品溶液进液质,急!

    急需用磷酸氢二钾与磷酸二氢钾配制磷酸盐缓冲液(pH7.8), 取磷酸氢二钾5.59g与磷酸二氢钾0.41g,加水使溶解成1000ml,即得。这种方法配出来的是多少mol/L的缓冲液?pH是7.8吗,有没有别的方法?详细点的。另外,用下面方法磷酸盐缓冲液(pH7.8) 甲液:取磷酸氢二钠35.9g,加水溶解,并稀释至500ml。乙液:取磷酸二氢钠2.76g,加水溶解,并稀释至100ml。取上述甲液91.5ml与乙液8.5ml混合,摇匀,即得。钠盐和钾盐有什么区别呢,用来做土壤样品提取液进[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质[/color][/url]?方法步骤如下:称取10 g试样,加入10.0 mL乙腈:0.2mol/L磷酸缓冲溶液(pH 7.8)(2:8,v/v)(以下简称提取液),旋涡1 min,提取5 min,离心5 min。提取步骤重复3次,每次提取液均为10 mL。合并3次提取并离心后的上清液与50 mL烧杯中,加约1 mL 83%磷酸调节pH值至2.5±0.1净化:SPE柱先用5mL甲醇浸泡活化30min,淋洗,再用5mL提取液(用85%磷酸调节pH值至2.5)淋洗。上样,控制在1mL/min,样品过完后,抽真空10~15min。洗脱,最后用3mL乙腈:pH7.8磷酸缓冲液(9:1,v/v)洗脱,N2吹干,用乙腈定容至1mL,待测。这个步骤有什么问题吗,最后上[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质[/color][/url]质有和不利影响吗?谢谢了先

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