苦参碱氧化苦参碱

为什么测苦参碱和氧化苦参碱时要用氨基柱？什么情况下应该用氨基柱？

用毛细管电泳分离苦参碱和氧化苦参碱，缓冲液为pH=7.4的PBS，CZE模式，哪个先出峰呀，为什么呀，依据是什么呀？[~192149~]

高效液相 250mm氨基柱进样 10μl ，92、5%标准氧化苦参碱 出现这样的峰正常吗？流动相为乙腈:无水乙醇:3%磷酸溶液（8:1:1） 标品溶剂为乙腈:无水乙醇（8:2）（1.5mg每ml）感觉保留时间也往后延了很多，为什么会出现这样的原因？

附件请参考。不知道人尿液中的氧化苦参碱是什么产生的。

1 苦参碱的水剂很多杂物，用滤纸过滤速度十分慢，用什么方法解决？2 苦参碱在各种溶剂(如甲醇，乙醇等)的溶解度多少？3 苦参碱用液相反相柱能检测不，波长多少，溶剂为什么？知道的朋友请告诉我，谢谢！

[color=#444444]关于2010版和2015版药典中关于液相法检验苦参中苦参碱流动相问题[/color][color=#444444]色谱柱为氨基键合硅胶，可以理解，苦参碱极性大，普通ODS柱子保留时间短，无法分离[/color][color=#444444]但其流动相为乙腈-无水乙醇-3%磷酸（80:10:10），其中磷酸的使用目的，不解！[/color][color=#444444]益母草中盐酸水苏碱的含量检查也是使用到酸[/color][color=#444444]求高人指点迷津。[/color]

最近一直为苦参碱的HPLC条件烦心，我用的是YMC亲水C18色谱柱，有谁用过呀，我试了好多条件，有没有人 帮忙说下合理的条件，感激不尽

苦参碱的提取方法有哪些？请专家指点，谢谢！

各位大虾：哪位有苦参碱，鱼藤酮的检验方法或经验介绍？有没有标准品？另，哪里有苯达松、苯硫磷的标准样？最好是国产的。

最近在做苦参碱,主要使用了C18和氨基柱，出现以下问题：1.使用C18做的时候，峰形最难看，流动相为乙腈：甲醇：0.1%磷酸（1：4.5：94.5），保留时间还出问题，流动相配到一起为10分钟，流动相用液相自己混合时间为4分钟？2.使用氨基柱，药典流动相，30分钟内一直不出峰？求解答

各位帮帮忙！紧急求助！有哪位知道苦参碱药物残留（蔬菜，土壤）的检测方法的？谢谢了！

请问各位老师，有谁有苦参碱气象色谱的分析方法？谢谢！

问题：大侠们，有人测过苦参碱吗？能传授一下你们的条件不？回复： 按药典的方法做的打家有谁做过么？

苦参碱、氧化苦参碱、槐果碱、氧化槐果碱、槐定碱的极性大小顺序是怎样的？

RT，最近在做苦参碱，按照药典的方法乙腈、无水乙醇、磷酸做不出来，用的是氨基柱，测了一下pH，2.0，能有不用磷酸的方法吗，这么低pH，估计柱子很快就挂掉。求高手指导！！

大家好，我现在正在用大孔吸附树脂分离苦参中总生物碱，现在需要边分离边在硅胶G板上用薄层色谱进行分析。现遇到个问题就是，我要配置苦参碱，氧化苦参碱，氧化槐果碱三种生物碱的展开剂。拿氧化苦参碱和氧化槐果碱的展开剂系统举例：三氯甲烷：甲醇：浓氨，我是按照药典规定的比例，将三种试剂放到烧杯中，用移液管准确量取的，然后直接放到分液漏斗中，等全放完了之后我就摇匀三者，然后就放到室温下静置了。这样的操作可以吗？

柱子：菲罗门 C18柱子 苦参碱一直没检测出来 期望大家帮帮忙

有段时间没有来了，月旭版越来越红火，客套话不说，直接上正文。于2006年给一家药厂制定的改剂型类新药申报资料，我主要负责含量测定的标准制定，现在主要说的是色谱条件摸索的一些小结，说不上经验，因为时间较久，就没有色谱图，就看看文字，希望对大家有帮助。复方石韦胶囊：石韦、黄芪、苦参、扁蓄。：清热燥湿，利尿通淋。用于小便不利，尿频，尿急，尿痛，下肢浮肿等症；也可用于急慢性肾小球肾炎，肾盂肾炎，膀胱炎，尿道炎，见有上述证状者。检测成分：苦参碱分析仪器：岛津高效液相色谱仪 紫外检测器 手动进样阀一、检测波长确定： 配置苦参碱的标准溶液，浓度为5.0μg/ml，于紫外分光光度计中进行波长扫描，确定最大吸收波长；根据波长扫描结果和参照相关方法，确定检测波长为：220nm二、色谱条件建立：1、色谱柱：大连某家ODS C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：甲醇：水：三乙胺（50：50：0.2） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm色谱图： S-001： 保留时间 11.000min 峰形较差，呈馒头样 Y-001： 保留时间 11.005min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件2、色谱柱：大连某家ODS C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：乙腈：磷酸水溶液（PH：2.0）：无水乙醇（80 ：10 ：8） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm色谱图： S-002： 保留时间 15.093min 峰形较差，保留时间较长 Y-002： 保留时间 15.102min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件由于峰形较差，理论板数较低，更换色谱柱。（换下的色谱柱，用另一台LC进行冲洗）3、色谱柱：上海某家 C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：乙腈：磷酸水溶液（PH：2.0）：无水乙醇（80 ：10 ：8） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm色谱图： S-003： 保留时间 19.537min 峰形较差，保留时间较长 Y-003： 保留时间 19.601min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件由于峰形较差，理论板数较低，更换色谱柱。（换下的色谱柱，用另一台LC进行冲洗）4、色谱柱：月旭XB C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：乙腈：磷酸水溶液（PH：2.0）：无水乙醇（80 ：10 ：8） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm色谱图： S-004： 保留时间 16.024min 峰形较好，保留时间较长 Y-004： 保留时间 16.099min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件5、色谱柱：月旭XB C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：甲醇：水：三乙胺（50：50：0.2） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm色谱图： S-005： 保留时间 11.398min 峰形好 Y-005： 保留时间 11.297min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件6、色谱柱：月旭XB C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：甲醇：水：三乙胺（50：70：0.2） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm色谱图： S-006： 保留时间 13.110min 峰形好 Y-006： 保留时间 13.082min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件在以上实验中，确定了色谱柱和检测波长，柱温，流速，苦参碱的出峰时间和顺序，为了节约时间，在以下的色谱条件选择中考察是否能样品中杂质峰分离7、流动相：甲醇：水：三乙胺（50：71：0.2）色谱图： Y-007： 保留时间 13.570min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件8、流动相：甲醇：水：三乙胺（50：75：0.2）色谱图： Y-008： 保留时间 13.390min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件9、流动相：甲醇：水：三乙胺（80：75：0.2）色谱图： Y-008： 保留时间 8.800min 与目标峰的前一个杂质峰无法分开，更改色谱条件10、流动相：甲醇：水：三乙胺（80：100：0.2）色谱图： Y-008： 保留时间 25.950min 与目标峰的前一个杂质峰完全重合，更改色谱条件11、流动相：甲醇：水：三乙胺（60：40：0.2）色谱图： Y-009： 保留时间 8.920min 与目标峰分开，分离度1.95复方石韦胶囊中苦参碱含量检测色谱条件：分析仪器：高效液相色谱仪 紫外检测器色谱条件： 色谱柱：月旭XB C18（250mm*4.6mm，5.0μm） 流动相：甲醇：水：三乙胺（60：40：0.2） 柱温：40℃ 流速：1.0ml/min 检测波长：220nm小结：1、苦参碱为碱性物质，故在流动相中加入三乙胺作为碱性调节剂，但是该种物质和水溶解度较小，在配置流动相时要尽量的混匀；2、在该样品中，由于苦参碱和前一个杂峰对流动相的敏感度想接近，在做流动相调节时，相互成分之间的比例作较大调整，如果调整较小，两个峰同时向前或向后移动，故没有明显的分离效果。因为没有色谱图，没有办法做很直观的比较，请大家耐心的看，多提宝贵意见。

氧化苦参碱和氧化槐果碱能不能相互转化？用HPLC怎样将这两种生物碱分开？最好不用缓冲盐和梯度洗脱，请各位高手指点，谢谢各位！

[size=14px] [/size] [size=14px]肝纤维化是慢性肝病发展的重要阶段，与肝硬化甚至癌症的进展密切相关，目前还没有批准用于临床的抗肝纤维化药物。苦参碱是苦参的活性成分，在动物模型中对急性肝损伤和肝纤维化有保护作用。该课题组前期开展了苦参碱衍生物作为抗肝纤维化剂的研究，鉴定出一系列苦参噻二唑衍生物和苦参丁醇衍生物在mRNA和蛋白质水平上抑制COL1A1，其中，化合物1广泛抑制多种纤维化相关蛋白的表达，体外表现出中等的抗纤维化活性。[/size] [size=14px]2023年6月22日，中国医学科学院医药生物技术研究所宋丹青、何红伟、李迎红团队在J Med Chem（IF=7.3）上发表题为“Evolution and Discovery of Matrine Derivatives as a New Class of Anti-Hepatic Fibrosis Agents Targeting Ewing Sarcoma Breakpoint Region 1 (EWSR1)”的文章，研究以化合物1为先导化合物，进行新一轮的结构修饰和优化，制备了一系列新的苦参碱衍生物，发现化合物6k在细胞水平上对肝纤维化相关基因和蛋白质有显著抑制作用。基于活性的蛋白质分析（ABPP）测定表明，其可能直接与尤文肉瘤断点区域1（EWSR1）结合，从而调节肝纤维化。研究为肝纤维化的治疗提供了潜在的新靶点，并为将苦参碱衍生物药物开发成有前途的抗肝纤维化药物提供了强有力的信息。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px] [/size] [size=14px]1、结构修饰[/size] [size=14px]作者首先以1为先导化合物，不断进行新一轮的结构修饰和优化，制备了23种新的三环基特林烷衍生物，制备流程如下。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]2、结构活性关系（SAR）分析对COL1A1的抑制效果[/size] [size=14px]接着作者分析了化合物结构及其对COL1A1启动子的抑制活性，用COL1A1启动子荧光素酶质粒pGL4.17-COL1A1P转染人肝星状细胞LX-2。随后对12个抑制效果最好的化合物（7b、7c、6c、6d、6f和6h?n）进行抗col1a1半抑制浓度（IC50）值的测试，其中6k的IC50值为14.5μM，选择性指数（SI）值为37.4，效价最高。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]3、化合物6k抑制COL1A1 mRNA和蛋白水平的表达[/size] [size=14px]接下来通过qRT-[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/jp][color=#3333ff]PCR[/color][/url]测定7种活性化合物6c、6d、6f、6i、6k、6l和6m对COL1A1的抑制作用，其中5个化合物（6f、6i、6k、6l、6m）明显抑制COL1A1的mRNA表达。然后，在mRNA水平上揭示了它们对其他纤维化生物标志物的作用，发现化合物6l对CTGF没有抑制作用。同时，Western blot检测显示6k对COL1A1、α-SMA和MMP-2的产生抑制作用最高，因此选择6k作为代表性化合物进行进一步研究[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]4、化合物6k抑制HSC中肝纤维化基因和蛋白的表达[/size] [size=14px]进一步验证6k对HSC细胞的抗纤维化作用，包括人LX-2和小鼠HSC- t6细胞系。化合物6k显著降低各种纤维化标志物的蛋白和mRNA水平。这些结果进一步表明，化合物6k在细胞水平上是一种有效的抗纤维化药物[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]5、化合物6k减轻胆管结扎（BDL）大鼠肝损伤及肝纤维化[/size] [size=14px]作者进一步采用胆管结扎（BDL）大鼠模型验证6k的抗肝纤维化作用，发现口服化合物6k可有效降低AST、ALT、ALP、TBA和TBiL水平。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]组织病理染色显示6k给药减少病理损伤。此外，化合物6k显著降低BDL诱导的羟脯氨酸水平（肝纤维化的严重程度指标）升高，降低纤维化基因的mRNA和蛋白表达。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]此外，化合物6k降低α-SMA和lrat阳性共染色细胞的数量，表明化合物6k可以有效抑制BDL大鼠HSC的活化。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]6、化合物6k可减轻Mdr2?/?小鼠的肝损伤和肝纤维化[/size] [size=14px]Mdr2（一种管状磷脂翻转酶）的缺乏会破坏胆道磷脂分泌，导致潜在毒性胆汁酸的增加，从而诱导肝细胞损伤和肝纤维化。作者进一步采用Mdr2-/-大鼠模型验证6k的抗肝纤维化作用，发现口服化合物6k同样可以改善了肝脏病理改变，降低纤维化基因的mRNA和蛋白表达水平。因此，化合物6k减轻Mdr2?/?小鼠的肝损伤和肝纤维化。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]7、转录组学揭示化合物6k影响的相关基因[/size] [size=14px]作者进一步通过转录组测序分析了6k治疗BDL大鼠的基因表达谱的影响，GO分析显示共有差异基因参与多种生物学过程或信号通路，其中一些基因与肝纤维化或核转录因子调控密切相关，包括Col1a1等细胞外基质-受体相互作用相关蛋白。[/size] [size=14px]图片[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]图7 转录组学揭示化合物6k影响的相关基因[/size] [size=14px]8、化合物6k靶向EWSR1调控肝纤维化[/size] [size=14px]作者采用ABPP技术进一步探索了化合物6k抑制肝纤维化作用的靶蛋白。根据SAR分析，使用6k作为药效团和生物素通过不同的接头连接，分别构建生物素化探针12a和12b，并证明两个探针均具备良好的抑制活性，可用作捕获靶蛋白的活性探针。质谱鉴定获得87个探针12a和12b共有的候选靶蛋白，其中EWSR1（一种经过充分研究的抗肿瘤靶点）和SFRP1在两组中丰度均较高，而生物素对照组未检测到。WB证实WSR1，而非SFRP1，与化合物6k具有稳定的结合作用。接下来，作者研究6k对EWSR1表达的影响，发现6k不影响EWSR1蛋白和mRNA表达，但明显抑制其下游基因Ctgf的mRNA表达，这些发现提示6k可能通过抑制EWSR1功能及其下游基因表达来改善肝纤维化（图8）。[/size] [size=14px]EWS作为TET家族蛋白的一员，含有一个公认的RNA结合结构域，通过靶向microRNAs调控Col4a1和CTGF mRNA的表达。作者在LX-2细胞中过表达和敲低EWSR1，以确定EWSR1在肝纤维化中的作用，发现EWSR1过表达导致多种纤维化标志物mRNA和蛋白水平升高，下游靶点CTGF表达增加，而敲低EWSR1时，纤维化标志物下调。以上结果表明，EWSR1过表达可促进肝纤维化的发展，可能是化合物6k抑制LX-2细胞纤维化标志物表达的靶点，这种作用可能与6k抑制EWSR1功能，从而减弱对下游mRNA表达的促进有关（图9）。[/size] [size=14px] [/size] [size=14px]总结[/size] [size=14px]研究合成了一系列新的苦参碱衍生物，并评估了其在基因和蛋白质水平上对COL1A1、α-SMA和MMP-2的抑制作用。化合物6k不仅在细胞水平上显著抑制了纤维化基因和蛋白质的表达，而且在BDL模型和Mdr2敲除模型中也显示出优秀的治疗效果。此外，研究发现EWSR1为治疗肝纤维化的潜在靶点，化合物6k可能直接与EWSR1结合从而调节肝纤维化过程，这可能为三环苦参碱衍生物进一步发展为潜在的抗肝纤维化药物提供强有力的信息（图10）。[/size]

利用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]法建立复方苦参注射液中7个成分（甲基氧化偶氮甲醇樱草糖苷、苦参碱、槐果碱、槐定碱、氧化槐果碱、氧化苦参碱、番石榴酸）的含量测定方法。采用Waters Xselect CSHTM C18色谱柱（250 mm×4.6 mm, 5μm）,以甲醇-0.2%磷酸二氢钾为流动相，梯度洗脱，流速0.6 mLmin-1,柱温30℃,检测波长211 nm。测定的甲基氧化偶氮甲醇樱草糖苷、苦参碱、槐果碱、槐定碱、氧化槐果碱、氧化苦参碱、番石榴酸7个成分的平均加样回收率分别为95.7%、101.3%、100.8%、101.7%、102.6%、102.5%、99.5%,RSD分别为2.0%、0.72%、0.90%、0.74%、1.4%、0.96%、1.8% 10批次样品中7个成分的含量分别为0.53～0.73、2.66～4.22、0.75～1.11、0.70～0.89、2.20～2.84、7.62～9.95、1.63～2.20 mgmL-1。该方法稳定可靠，可为复方苦参注射液的质量控制与评价提供参考。详见王鹏飞等，药物分析杂志. 2022,42(07)

黄连味苦性寒，具有清热燥湿、泻火解毒的功效。《中国药典》2020年版规定黄连为毛茛科黄连属植物黄连Coptis chinensis Franch.、三角叶黄连C. deltoidea C. Y. Cheng et Hsiao或云连C. teeta Wall.的干燥根茎。以上3种分别习称“味连”“雅连”“云连”，经课题组前期调研以味连产量最多，主产于我国重庆、湖北、四川等地[1]。现代研究表明，黄连含有多种活性成分，可发挥多种药理作用[2]，包括抗炎、抗病毒、抗菌、抗癌、镇痛、抗抑郁、降血糖等作用，临床应用极广[3]。苦参性寒、味苦，为豆科苦参属植物苦参Sophora flavescens Ait.的干燥根，主产于我国内蒙古、河南、山东、安徽等地[1]，具有抗菌、抗肿瘤、镇痛、抗炎、防治心力衰竭、心律失常及心肌缺血等多种功效[4-5]。 现代研究表明，生物碱类化合物是黄连及苦参的主要活性成分。苦参碱、氧化苦参碱可发挥抗炎、镇痛效果[6-7]，其机制可能与降低促炎因子，升高抗炎因子有关；氧化苦参碱、苦参碱也可发挥抗肿瘤作用，其机制可能与抑制癌症基因表达，促进肿瘤细胞凋亡，抑制肿瘤细胞生长有关[8]；而苦参碱、氧化苦参碱、槐定碱也可对多种菌株具有一定的抑菌作用[9]。木兰花碱可通过活性氧（reactive oxygen species，ROS）/鼠类肉瘤病毒癌基因（Kirsten rat sarcoma viral oncogene，KRAS）/单磷酸腺苷活化蛋白激酶（adenosine monophosphate activated protein kinase，AMPK）通路抑制结直肠癌SW480细胞的增殖和有氧糖酵解，从而发挥对结直肠癌的治疗效果[10]；药根碱、巴马汀、表小檗碱、黄连碱、小檗碱可联合发挥降糖作用[11]，其效果可能与调控丝氨酸-苏氨酸激酶1（serine/threonine kinase 1，LKB1）/ AMPK/CREB分子调节转录共激活剂2（CREB-regulated transcription coactivator 2，TORC2）信号通路抑制肝脏糖异生等有关[12]；小檗碱具有抗炎作用，可保护螺旋神经节细胞免受巨细胞病毒诱导的凋亡作用，其机制与通过途径抑制线粒体活性氧的产生有关[13]。 除此之外，小檗碱、表小檗碱、巴马汀等生物碱类成分也可联合发挥抗心律失常作用[14]。基于此，选择苦参中苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱及黄连中木兰花碱、非洲防己碱、药根碱、表小檗碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱来作为黄连-苦参药对的代表性药效成分，用于研究该类成分溶出量与药对配比的关系。药对作为中药配伍的最小单元，是复方研究的重要组成部分之一[15]。用于不同疾病的治疗时，不同量的配比会有不同效果的相关呈现，因此，首先需要对黄连-苦参药对配比的不同物质基础，即量-质[16]相关性进行剖析比较，为进行量-效[17]相关性提供依据，为临床合理配比提供参考[18]。 1 仪器与试药 1.1 主要仪器 Waters e2695型高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url]系统，Waters 2998型二极管阵列检测器（PDA），美国Waters公司；BBA224S-CW型电子天平，赛多利斯科学仪器（北京）有限公司；TGL-16C型离心机，上海安亭科学仪器厂；EPED-E2-20TS型超纯水一体机系统，南京易普易达科技发展有限公司；GM-0.5B型真空泵，天津市津腾实验设备有限公司；KH-500V型超声器，昆山禾创超声仪器有限公司。 1.2 药品及试剂 1.2.1 药材与饮片 本研究所选择黄连（产地重庆石柱黄水，批号20230411）及苦参（产地内蒙古赤峰市，批号2020121604）药材，均经南京中医药大学药学院刘圣金教授鉴定，分别为毛茛科黄连属植物黄连C. chinensis Franch.的干燥根茎和豆科苦参属植物苦参S. flavescens Ait.的干燥根。 1.2.2 对照品 表小檗碱（批号J24HB186173）、盐酸小檗碱（批号S01A10K94340）、盐酸黄连碱（批号T21S11C125202）、药根碱（批号D18GB171805）、盐酸巴马汀（批号Z16J10X79792）、非洲防己碱（批号W14J8Z37548）、木兰花碱（批号R21M9F61834）、苦参碱（批号M14GB141405）、氧化苦参碱（批号G14N11KL130769）、槐定碱（批号F18F7S9784），HPLC质量分数均≥98%，均购自上海源叶生物科技有限公司。 1.2.3 试剂 乙腈、甲醇，色谱纯，安徽天地高纯溶剂有限公司；磷酸、盐酸、无水乙醇，分析纯，国药集团化学试剂有限公司；纯净水，屈臣氏集团（香港）有限公司；磷酸二氢钾，分析纯，南京化学试剂股份有限公司。 2 方法与结果 2.1 不同配比黄连-苦参药对指纹图谱的建立 2.1.1 色谱条件 色谱柱为Venusil XBP C18（2）（250 mm×4.6 mm，5 μm）；柱温30 ℃；体积流量0.8 mL/min；流动相为乙腈-3 g/L磷酸二氢钾溶液（加入200 μL磷酸调节pH值），梯度洗脱：0～10 min，10%乙腈；10～25 min，10%～24%乙腈；25～35 min，24%乙腈；35～60 min，24%～35%乙腈；60～62 min，35%～60%乙腈；62～65 min，60%～10%乙腈；65～70 min，10%乙腈；分析时间70 min，进样量10 μL；检测波长220 nm。 2.1.2 混合对照品溶液的制备 取非洲防己碱、药根碱、表小檗碱、盐酸小檗碱、盐酸巴马汀、盐酸黄连碱、木兰花碱、苦参碱、氧化苦参碱、槐定碱对照品各适量，分别置于10 mL量瓶中，加甲醇溶解并定容，即得各对照品储备液。分别取适量上述11种对照品储备液，置于同一10 mL量瓶中，加甲醇稀释并定容，制得上述成分质量浓度分别为0.20、0.16、0.24、0.25、0.25、0.44、0.26、0.21、0.80、0.36 mg/mL的混合对照品溶液。 2.1.3 供试品溶液的制备 制备黄连药材粉末（过二号筛）及苦参药材粉末（过三号筛），将上述黄连及苦参依照5∶1、4∶1、3∶1、2∶1、1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5共9个质量比例，进行称取后分别充分混合，并称取单一黄连药材粉末及单一苦参药材粉末作为对照药材，各比例药对总质量及单一药材质量均为12 g。每个比例平行称取各药对3份，将药对以10倍量水浸泡0.5 h后，煎煮1.5 h，取1次滤液；将滤渣加入8倍量水煎煮1.5 h，取2次滤液。将2次滤液混合后抽滤，12 000 r/min离心（离心半径10.4 cm）10 min，取上清液，取1 mL上清液加入4 mL甲醇，以0.45 μm微孔滤膜滤过，即得供试品溶液。 2.1.4 精密度试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，再按“2.1.1”项下色谱条件进样测定6次，考察特征峰的保留时间和峰面积一致性。以盐酸小檗碱的保留时间和峰面积为参照分别计算相对保留时间及相对峰面积。计算得各共有峰相对保留时间的RSD＜0.20%，相对峰面积的RSD＜2.13%，结果表明仪器精密度良好。 2.1.5 稳定性试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，再按“2.1.1”项下色谱条件每隔4 h进样1次，共测定24 h，考察特征峰保留时间和峰面积的一致性。以盐酸小檗碱的保留时间和峰面积为参照分别计算相对保留时间及相对峰面积。计算得各共有峰相对保留时间的RSD＜0.21%、相对峰面积的RSD＜2.46%，结果表明该供试品溶液在室温放置24 h内稳定性良好。 2.1.6 重复性试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，平行制6份，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，分别按“2.1.1”项下色谱条件进样分析，考察特征峰保留时间和峰面积的一致性。以盐酸小檗碱的保留时间和峰面积为参照分别计算相对保留时间及相对峰面积。计算得各共有峰相对保留时间的RSD＜0.18%、相对峰面积的RSD＜1.57%，表明该方法重复性较好。 2.1.7 黄连-苦参药对指纹图谱的建立及相似度评价分析 将黄连及苦参药材依照“2.1.3”项下方法制备成供试品溶液（S1～S9依次为黄连-苦参比例为5∶1、4∶1、3∶1、2∶1、1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5），再按“2.1.1”项下色谱条件进样分析，记录色谱图。将图谱输入《中药色谱指纹图谱相似度评价系统（2012版）》，设置编号S7的样品（黄连-苦参为1∶3）图谱为参照，采取中位数法[19]，将时间窗宽度设置为0.1 s，进行多点校正，建立黄连-苦参药对的HPLC指纹图谱和对照指纹图谱（R，图1），指认9批黄连-苦参药对的16个共有峰。采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系统（2012版）》对9批黄连-苦参药对进行相似度评价[20]。结果显示，9批黄连-苦参药对和R之间的相似度均大于0.95，这表明各批次黄连-苦参药对的相似性较好，整体质量稳定,可以用于考察黄连-苦参药对水煎液。以分离度较好、峰面积较大的小檗碱（峰16）为参照峰（S），得到9批黄连-苦参药对16个共有峰相对保留时间的RSD为0.175%～0.894%，提示各批次黄连-苦参药对共有峰的保留时间稳定 2.1.8 黄连-苦参药对指纹图谱色谱峰归属认定 通过比对单味药的色谱峰[21]，不同比例配伍黄连-苦参药对HPLC指纹图谱16个共有峰中峰2～6号共5个峰均来源于单味药苦参，峰1、7～16号共11个峰来源于单味药黄连（图1）。通过对比混合对照品溶液色谱图（图2）及黄连、苦参及样品HPLC叠加图（图2）对各样品指纹图谱的各峰进行定性认证[22]，得到2、3、6号峰分别为苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱，属于单味药苦参；8、11～16号峰分别为木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱，属于单味药黄连。 2.1.9 黄连-苦参药对各共有峰相对峰面积差异分析 将各比例药对中黄连-苦参药对生药量以黄连、苦参单煎样品的生药量为标准，换算成一致的量，并以黄连及苦参单煎样品峰面积作为参比，比较不同配比黄连-苦参药对的共有峰相对峰面积，结果见表2。可知在不同程度配比下，各共有峰相对峰面积均有不同程度的变化，绝大部分表现出显著性差异。除属黄连药材的10、13号峰各相对峰面积相比药材单提均有所下降外，其余峰均表现为升高，表明配比后成分的溶出对苦参总体表现为促进作用，而对黄连的不同成分表现为促进和抑制的不同作用。1、5、7号峰在黄连-苦参为2∶1时相对峰面积最大；2～4、8、10号峰在黄连-苦参为5∶1时相对峰面积最大；11～16号峰在黄连-苦参为4∶1时相对峰面积最大；6号峰在黄连-苦参为1∶3时相对峰面积最大；9号峰在黄连-苦参为3∶1时相对峰面积最大，提示在方剂中使用不同配比黄连-苦参药对治疗疾病，可能与不同配比下药对中成分的溶出变化有关[23]。 2.2 不同配比黄连-苦参药对中差异性成分含量测定 2.2.1 色谱条件 按照“2.1.1”项下色谱条件进行测定。设定在波长为205 nm时，对苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱进行测定；在波长为220 nm时，对木兰花碱进行测定；345 nm时，对非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱进行测定。此时各指标性成分均为最大吸收波长。 2.2.2 混合对照品溶液的制备 依照“2.1.2”项下方法制备混合对照品溶液。 2.2.3 供试品溶液的制备 依照“2.1.3”项下方法制备9个比例的黄连-苦参药对供试品溶液，每个比例制备3个供试品溶液作为平行对照。 2.2.4 线性关系考察及检测限、定量限 对照品母液的配制：取苦参碱、槐定碱、氧化槐果碱、木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱对照品各适量，分别置于10 mL量瓶中，加甲醇溶解并定容，制得上述成分质量浓度分别为0.98、0.40、0.85、0.35、0.31、0.35、0.36、0.36、0.35、0.81 mg/mL的对照品溶液。 取各对照品母液，逐级稀释0、2、4、8、16、32、64倍，按照“2.1.1”项下色谱条件进行测定。以各差异性成分的质量浓度为横坐标（X）、峰面积为纵坐标（Y）绘制标准曲线，进行线性回归，得回归方程，结果见表3，表明各成分线性关系良好。 依照信噪比，即S/N为3∶1及S/N为10∶1对各成分的检测限及定量限进行检测，结果见表3。 2.2.5 精密度试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，按“2.1.1”项下色谱条件连续进样6次，记录各差异性成分的峰面积。结果显示，苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱、木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱峰面积的RSD分别为1.40%、2.13%、1.37%、2.11%、0.91%、0.69%、1.25%、1.19%、0.17%、0.14%，结果表明仪器精密度良好。 2.2.6 稳定性试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，于室温放置0、4、8、12、16、20、24 h，按“2.1.1”项下色谱条件进样分析，记录各差异性成分的峰面积。结果显示，苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱、木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱峰面积的RSD分别为1.57%、2.24%、2.22%、2.46%、0.22%、0.16%、0.65%、0.05%、0.14%、0.20%，表明各差异性成分在室温放置24 h内稳定性较好。 2.2.7 重复性试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，按照“2.1.3”项下方法平行制备供试品溶液6份，再按“2.1.1”项下色谱条件进样分析，记录各差异性成分的峰面积，并根据标准曲线计算含量。结果显示，苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱、木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱质量分数的RSD分别为1.16%、1.24%、1.33%、1.57%、1.05%、1.19%、1.42%、1.30%、1.21%、1.22%，表明该方法重复性良好。 2.2.8 加样回收率试验 依照黄连与苦参比例1∶3，精密称取黄连药材粉末3 g及苦参药材粉末9 g，平行称取6份，分别加入含有苦参碱0.31 mg、槐定碱0.20 mg、氧化苦参碱1.52 mg、木兰花碱0.07 mg、非洲防己碱0.08 mg、表小檗碱0.27 mg、药根碱0.06 mg、黄连碱0.22 mg、巴马汀0.21 mg、小檗碱0.79 mg的对照品溶液5 mL，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，再按“2.1.1”项下色谱条件进样分析，记录各标志性成分的峰面积，并计算平均加样回收率。结果显示，苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱、木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱的平均加样回收率分别为100.2%、100.1%、100.3%、100.2%、101.2%、100.7%、99.8%、101.1%、100.60%、101.0%，RSD分别为0.67%、0.97%、0.89%、0.97%、0.56%、0.70%、0.57%、0.71%、0.99%、0.85%，表明该方法准确度良好。 2.2.9 不同配比黄连-苦参药对水煎液成分含量测定及比较 取9个不同比例的黄连-苦参药对药材粉末，精密称定，按照“2.1.3”项下方法制备供试品溶液，再按“2.1.1”项下色谱条件进样分析，记录各差异性成分的峰面积，并根据标准曲线计算苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱、木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱的含量。将各比例药对中黄连-苦参药对生药量以黄连、苦参单煎样品的生药量为标准，换算成一致的量，计算各特征性成分的含量。通过SPSS 27.0软件，对数据进行单因子方差分析和显著性检验[24]，结果见表4。 对含量测定结果进行系统分析。黄连-苦参比例为4∶1时，所得非洲防己碱、表小檗碱、巴马汀、小檗碱含量为各比例最高，且黄连总生物碱含量最高，与单药材提取具有显著性差异（P＜0.05）；黄连-苦参比例为5∶1时，所得苦参碱、槐定碱、木兰花碱含量为各比例最高，与单药材提取具有显著性差异（P＜0.05）；黄连-苦参比例为1∶3时，氧化苦参碱含量为各比例最高，与单药材提取具有显著性差异（P＜0.05）；黄连-苦参比例为1∶1时，苦参总生物碱含量为各比例最高。与黄连、苦参各药材单提相比，各比例下苦参中总生物碱类成分的溶出均有不同程度的提升，黄连中总生物碱类成分在黄连-苦参5∶1及4∶1比例下溶出表现为提升，其他比例表现为降低。随着药对中黄连比例的降低，黄连中整体生物碱类成分呈现下降趋势。对苦参中差异性成分进行比较，随着药对中黄连比例的降低，苦参碱、槐定碱在药液中的溶出降低，而氧化苦参碱的溶出提升，3种成分呈现“U”型分布，提示3者之间的相互影响关系。 3 讨论 本研究考虑与临床应用一致，黄连-苦参药对选择水回流提取法，选择分离效果最佳的乙腈-磷酸二氢钾溶液体系，对黄连及黄连-苦参药对的色谱条件进行优化，并在190～440 nm进行全波长扫描，于220 nm下进行指纹图谱建立以求全面对待测样品的差异性成分进行测定。结果表明，本研究建立的黄连-苦参药对指纹图谱稳定有效，可全面的测定黄连-苦参药对中的标志性成分。 大量文献研究发现，黄连-苦参药对在方剂中多采用1∶5至5∶1区间配比，故选择典型的9个配比进行量-质传递对比性研究。生物碱类成分作为黄连-苦参药对的主要药效成分，研究生物碱类成分在传统方剂煎煮过程中的溶出差异，可以为临床用药提供参考。故采用建立指纹图谱方式进行定性验证，确定稳定可测的生物碱类成分，并根据“2.1.8”项下结果，选择苦参中苦参碱、槐定碱、氧化苦参碱及黄连中木兰花碱、非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱进行研究[25-26]。 本研究在最佳吸收波长下，对黄连-苦参药对不同配比中10个差异性成分进行含量测定，分析差异性成分在不同配比下的溶出变化。苦参中3种差异性成分的溶出量随黄连比例的降低呈现“U”型分布，而黄连中7种差异性成分溶出量随黄连比例的降低整体呈现降低趋势。在黄连-苦参药对中，高黄连比例更容易促进药对中差异性成分的溶出。初步分析，当黄连-苦参药对中黄连占比的降低，可能会通过改变溶液中pH值、酸碱度等性质，对二者差异性成分的溶出产生影响，也可能对其中成分的相互转化产生促进作用，其具体产生机制有待深入研究。黄连-苦参药对被应用与各类中医经典方及现代经验方剂中[27-28]，但其配伍面对临床不同疾病的合理应用仍需深入研究。 本研究首次将黄连-苦参相须药对与中医传统经验方剂药效相结合，探究差异性成分药理作用与临床疾病治疗的联系。黄连-苦参比例为5∶1时，所得苦参碱、槐定碱、木兰花碱含量为各比例最高；非洲防己碱、表小檗碱、药根碱、黄连碱、巴马汀、小檗碱含量较高，相比各药材单提含量有所提升，与单药材提取均具有显著性差异（P＜0.05），与《普济方》中“相须为用，其效益彰”的方解一致，发挥各成分共同药效，达到“清热燥湿”效果。氧化苦参碱具有抗肿瘤作用，当黄连-苦参比例为1∶3时，其溶出量达到最大并与单药材提取具有显著性差异（P＜0.05），与临床上使用参白解毒方进行抗结直肠道腺瘤[29]的治疗方式一致。药根碱可发挥降糖作用，在黄连-苦参比例为1∶1时含量最高，与国医大师李玉奇治疗消渴症时采用方剂中黄连-苦参药对[30]的配比一致，证明了方剂中黄连-苦参使用该比例配比的合理性。 综上所述，本研究成果预期可为开展黄连-苦参药对的量-效关系研究提供数据支撑，为临床不同疾病采用药对适宜配比用量、开发黄连-苦参药对新方剂提供借鉴。

请问苦参末中苦参碱和氧化苦参碱的含量怎么算啊？在线等(?￣? ?? ￣??)

问题: 哪位老师帮我分析分析出现这样的峰形图是什么原因，苦参碱液相检测 流动相是 甲醇+0.1%三乙胺水溶液=50:50[img]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/08/201708192306_01_3114888_3.jpg[/img]