植物性食物是黄酮类物质的优秀来源,尤其是洋葱、欧芹、紫甘蓝、浆果、柑橘、茶叶、豆类及豆制品中,黄酮类物质含量很丰富,大家可适当多吃。物是黄酮类物质的优秀来源,尤其是洋葱、欧芹、紫甘蓝、浆果、柑橘、茶叶、豆类及豆制品中,黄酮类物质含量很丰富,大家可适当多吃。
哪位大侠知道黄酮类标准品的有效时间是多少????????????、、、[em04]
[em0808] 有谁知道,黄酮类的检测金属镉和其他杂质,怎么做的。用什么溶剂,要不要萃取的。知道的大侠,指导看看,谢啦![em0808]
花生红色包衣中黄酮类物质的研究与质谱分析的相关文献或者资料有没有?谢谢!
植物黄酮类化合物的分离分析方法研究
请教黄酮类化合物的提取方法
有一天然产物样品(黄酮类),怎么用[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质[/color][/url]定性?(没有标准品)谢谢!
[img=,690,239]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/12/201812082320325952_2016_2570923_3.png!w690x239.jpg[/img] 化合为天然产物中的黄酮类,含氮、氧原子。求结构。
谁做过天然产物中有关黄酮类成分的分离优化设计
请教各位,谁能告诉我,麦苗中含有哪些黄酮类物质?
今天下了些黄酮的资料,为加强交流,互通有无,把我的一本关于黄酮书附上,无者下之,有者加勉!!![img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=101152]电子书:黄酮类化合物[/url]
荠菜中含有多种黄酮类物质,有抗炎、抗氧化的作用。荠菜草酸含量高,需要焯水后吃;如果挖到很多荠菜,可以焯水挤干冷冻起来慢慢吃。
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在作毕业课题,快到最后了,但是现在遇到了难题,我的课题是枣核中黄酮类物质的纯化,现在是用聚酰氨薄膜来进行薄层层析,但是总是找不到合适的展开剂和显色剂,我现在用的是乙醇:水:甲酸(4:1:0.1)这个为展开剂作的,但是效果很不好,卢丁标液总是出现脱尾现象,而且黄酮根本就不显色,帮帮忙,看看我这个问题应该怎么解决,谢谢啊!
[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=104063]微波提取苦丁茶中的黄酮类物质的研究[/url]
联系方式QQ号461895099谢谢!本人现在正在从灯心草分离黄酮类和具有联苯结构物质两类谢谢前辈门多多指点![em54] [em54] [em54] [em54] [em07]
花青苷和黄酮类(多酚类化合物Anthocyans and flavonoids)分子结构特点:含有苯并吡喃环,它们是植物组织中的水溶性色素的主要成分,具有各种色泽。常见有三种类型:花青苷素、黄酮类和儿茶素,均属于多酚化合物类,大量存在于自然界中。1.花青苷的色泽——红色(1)花青苷在酸性条件下呈红色,在中性条件下呈无色,在碱性条件下呈蓝色。(2)金属离子sn2+、Fe2+、Cu2+、Al3+与花青苷结合使花青苷呈蓝色。(3)亚硫酸盐类可以对花青苷进行漂白使之褪色,通过加热或酸化处理可去掉亚硫酸,使花青苷再生,重新恢复原来的红色。2.无色花青苷(Leucoanthicyanins)无色花青苷的结构与花青苷相似,以三聚体以上存在。自然界中无色花青苷存在于苹果、梨、葡萄和山楂等水果之中。它们与涩味有关,在无机酸中加热可以转化为花青苷,可参加酶促褐变反应。既可赋予食品(如酒、茶、香蕉、巧克力、越橘)以特殊的风味,也可影响食品的色泽,如使罐头果肉变红、变褐,在啤酒或其他酒中形成混浊物。3.黄酮类黄酮是一种多种多样,广泛存在着的呈无色至黄色的色素,其结构上与花青苷类不同之处在于它具有的是苯并吡喃酮结构。黄酮类的热稳定性比花青苷类好,热加工对它们的破坏不大。一些金属离子形成深色化合物,往往会造成食品的异常色泽。4.单宁(Tannin)来源:单宁存在于柿子、茶叶、咖啡、石榴等植物组织中,在未成熟时含量尤为多,它们的结构较为复杂,多是高分子多元酚类的衍生物,水解后可生成葡萄糖、没食子酸或其他多酚酸(鞣酸)。性质:①单宁与食品的涩味有关,能参加酶促褐变反应;②与Fe3+形成黑色物质;③与蛋白质形成不溶性沉淀可以用来对果汁的澄清;④含单宁高的植物可以作为制革工业中的植物性鞣质原料。
如题 黄酮类化合物用DMSO打HMQC, HMBC谱 羟基氢能出相关峰吗?
[align=center]从黄芩中提取黄酮类化合物的工艺研究[/align][align=center]西安国联质量检测技术股份有限公司[/align][align=center]食品事业部:李灿[/align][b]摘要:[/b]探讨超声波辅助法提取黄芩中总黄酮的最佳提取条件及对提取物的抗氧化性活性研究,这为黄芩作为天然抗氧化剂和功能性食品的开发利用提供理论基础和实验依据。[b][/b] 通过设计正交试验,采用超声波辅助法提取黄芩中总黄酮的最佳工艺条件条件,并通过对羟自由基、超氧自由基和DPPH自由基的清除效果研究其抗氧化活性。[b][/b]超声波辅助提取黄芩中总黄酮的最佳条件为:乙醇浓度为50%,时间为25min,料液比为1∶10,温度为30℃,黄芩总黄酮的提取率为3.25%。并且研究了黄芩提取物中的黄酮类物质对O[sub]2[/sub]-• 、• OH和DPPH自由基的抗氧化性能。研究结果表明洋葱提取物中黄酮类物质的抗氧化性较VC强。在浓度为0.0125mg/ml下,对羟基自由基的清除率为88.30%,对超氧基自由基的清除率为90.01%,对DPPH自由基的清除率为93.87%。[b]关键词[/b]:黄芩;超声波提取;总黄酮;抗氧化活性 [align=center][b] Study on extraction technology of flavonoids from Scutellaria[/b][/align][align=center]Li Can[/align][align=center] (Department of Chemistry and Chemical Engineering, Xi′an University of [/align][align=center]Arts and Science, Xi′an 710065)[/align][b]Abstract: [/b]To investigate the ultrasonic assisted extraction optimum extraction conditions of total flavonoids from Scutellaria and to extract antioxidant activity, which is a skullcap as a natural antioxidant and functional food development and utilization of theoretical and experimental evidence provided . [b][/b] Through orthogonal experiment, the optimum conditions using ultrasonic assisted extraction conditions of total flavonoids from Scutellaria, and to study its antioxidant activity by hydroxyl radicals, superoxide radicals and DPPH radical scavenging effect. Optimal conditions . [b] [/b]Ultrasonic assisted extraction of total flavonoids from Scutellaria: ethanol concentration of 50%, the time is 25min, solid-liquid ratio of 1:10, the temperature is 30 ℃, extraction of total flavonoids was 3.25%. And studied the extract of Scutellaria flavonoids on O2-• , • OH and DPPH radical antioxidant properties. The results show that the onion extract antioxidant flavonoids than VC strong. At a concentration of under 0.0125mg/ml, hydroxyl radical scavenging rate of 88.30% for super-group was 90.01% scavenging of DPPH radical scavenging rate was 93.87%.[b][color=#2b2b2b]Key Words[/color][/b][color=#2b2b2b]:[/color][color=#2b2b2b] [/color][color=#2b2b2b]Skullcap [/color][color=#2b2b2b]U[/color][color=#2b2b2b]ltrasonic extraction [/color][color=#2b2b2b]T[/color][color=#2b2b2b]otal flavonoids [/color][color=#2b2b2b]A[/color][color=#2b2b2b]ntioxidant activity[/color][b]1 前言[/b]黄岑主要生长在陕西秦岭,为常用中草药之一,性寒,味苦。具有清热燥湿,泻火解毒,止血安胎[sup][/sup]等功效,它的主要成分为黄酮类化合物[sup][/sup],黄酮类化合物主要存在于双子叶及裸子植物的叶、果、实、根、皮中,在植物中主要与糖结合成苷的形式存在[sup][/sup]。目前从黄酮类物质有很多种,黄酮类化合物的结构特点是具有 C[sub]6[/sub]- C[sub]3[/sub]- C[sub]6[/sub]的基本骨架,根据中间三碳链的氧化程度、B 环( 苯基) 连接位置( 2-或3-位) 以及三碳链是否呈环状等特点,主要有黄酮醇,二氢黄酮,二氢黄酮醇,黄烷,黄烷醇,异黄酮等,被广泛应用在医药、功能食品添加剂、兽药和农药等领域。在医药方面,根据其在心血管系统、内分泌系统、抗肿瘤方面的药理作用,很多以黄酮类成分为主的制剂已作为成药上市[sup][/sup]。在食品中它们应用于功能性食品添加剂,如天然甜味剂、天然抗氧化剂、天然色素等;应用于功能食品,如生物类黄酮口香糖、银杏叶袋泡茶等防衰、抗癌、提高免疫力食品;在兽药、农药等领域,现已开发出些具有特效功能的含有黄酮类化合物药品和驱虫、杀虫剂等[sup][/sup]。目前国内侧重于对黄酮类化合物的研究,但他们常被当作残渣而扔掉,因而就造成了黄芩的浪费,没有使黄芩得到充分利用,本文主要针对黄芩总黄酮的提取方法及其抗氧化能力测定方法进行研究,以期为黄芩黄酮类成分的进一步开发利用从黄岑中提取黄酮类化合物的方法有很多种,传统提取方法有煎煮法[sup][/sup]、有机溶剂提取法[sup][/sup]、浸渍法、渗漉法、回流提取法[sup][/sup]、水提法等,新的提取方法有超声波提取法、微波提取法、索氏提取法、超临界萃取法、大孔树脂吸附法、酶解法提取[sup][/sup]。黄芩黄酮的提取主要为溶剂萃取法,包括无机溶剂萃取法和有机溶剂萃取法。其主要原理是利用黄芩黄酮能溶于碱水或甲醇等有机溶剂的特性来提取黄芩中的黄酮[sup][/sup],考虑到该法提取时间长,提取率较低的缺点,我们采用超声波辅助提取法。因为超声波提取法是一种新型方法,它具有能耗低、效率高、不破坏有效成分的特点,在低温下可以强化水浸提效率,达到省时高效节能的目的,而且是目前广泛使用的方法。超声提取的主要理论依据是超声的空化效应、热效应和机械作用。当大能量的超声波作用于介质时,介质被撕裂成许多小空穴,这些小空穴瞬时闭合,并产生高达几千个大气压的瞬间压力,即空化现象。超声空化中微小气泡的爆裂会产生极大的压力,使植物细胞壁及整个生物体的破裂在瞬间完成,缩短了破碎时间,同时超声波产生的振动作用加强了胞内物质的释放、扩散和溶解,从而显著提高提取效率。因此本实验拟决定用超声波提取法来提取黄酮类化合物。黄酮类化合物的测定方法也多种多样,目前有薄层扫描法、紫外分光光度法、液相色谱法等[sup][/sup]。但是以上方法测定黄芩提取液中总黄酮的含量都比较繁琐,非黄酮类物质干扰比较大。由于Al[sup]3+[/sup]仅与黄酮类物质有特征反应,使用这种显色方法可以使黄酮类化合物溶液在510nm左右出现吸收峰,采用紫外分光光度法测定黄芩提取液中总黄酮含量,方法简单快速[sup][/sup]。对于黄酮类化合物的抗氧化性研究,国内外所做研究也比较多。方法可分为体外抗氧化与体内抗氧化,其中体外抗氧化运用较为广泛,体外抗氧化还可分为直接清除活性氧自由基、抑制油脂过氧化反应[sup][/sup]等;体内抗氧化是用受试物连续喂饲大鼠或小鼠1个月~3个月,然后处死动物,测定其血或组织(如肝、脑)中各物质的含量,同对照组进行比较,间接地说明受试物的抗氧化活性。采用体外抗氧化性研究,常用到的自由基有OH[sup] [/sup],O[sub]2[/sub][sup]-[/sup], DPPH等,由于直接清除活性自由基的方法易行且效果直观,本次实验采用该种方法。本实验将从两个方面研究黄芩黄酮类化合物。第一部分为黄芩总黄酮最佳提取方法的研究。本环节采取超声辅助提取法,采用料液比(A),乙醇浓度(B), 超声时间(C),超声温度(D)作为研究因素,采用四因素三水平,选择L[sub]9[/sub](3[sup]4[/sup])设计正交试验。用芦丁做标准曲线测定黄芩提取液中总黄酮的含量。第二部分为总黄酮类化合物抗氧化性的研究,采用对OH,O[sub]2[/sub][sup]-[/sup]自由基和DPPH自由基的清除作用研究其抗氧化性。[b]2 实验部分2.1 材料与仪器2.1.1 材料和试剂[/b] 黄芩(购于西安同仁堂大药房),芦丁(分析纯,上海试剂药品厂),亚硝酸钠(分析纯,成都市科龙化工试剂厂),硝酸铝(分析纯,成都市科龙化工试剂厂),氢氧化钠(分析纯,成都市科龙化工试剂厂),邻苯三酚(分析纯,成都市科龙化工试剂厂),盐酸(分析纯,天津市天力化学试剂有限公司),双氧水(天津市天力化学试剂有限公司),硫酸亚铁(分析纯,成都市科龙化工试剂厂),水杨酸(分析纯,天津市天力化学试剂有限公司),无水乙醇(分析纯,天津市天力化学试剂有限公司),三羟基甲基氨基甲烷(分析纯,天津市福晨化学试剂厂),邻二氮菲(分析纯,天津市福晨化学试剂厂),DPPH(购于阿拉丁试剂)。[b]2.1.2 仪器[/b] 高速粉碎机(FW80型,北京中兴伟业仪器有限公司);紫外可见分光光度计(722N,上海精密科学仪器有限公司) 电子天平(YP202W,上海精密科学仪器有限公司);循环水式多用真空泵(SHB-Ⅲ,郑州长城科工贸有限公司);超声波清洗机(11—1404,宁波新芝生物科技股份有限公司);智能型恒温鼓风干燥箱(CMD-20X型,上海琅轩试验设备有限公司);玻璃仪器气流烘干器(TH48SYBQ-1型,北京中兴伟业仪器有限公司)。[b]2.2实验方法2.2.1黄芩样品的制备[/b] 将黄芩在烘箱中60℃干燥8h,干燥后的黄芩用粉碎机粉碎成粉末,用分样筛(40目)筛分黄芩粉末,保证粉末均匀一致,密封保存,待用。[b]2.2.2 总黄酮的测定方法2.2.2.1 芦丁标准曲线的绘制[/b] 准确称取干燥至恒重的芦丁4.0mg 于小烧杯中,用50%乙醇溶解,并定容于25ml的容量瓶,摇匀,得浓度0.16mg/ml的标准液。准确吸取标准应用液0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0ml 于6 个10ml容量瓶中,与上述容量瓶中分别加入5% NaNO[sub]2[/sub]0.3ml,摇匀,放置6min后,分别加入10% Al(NO[sub]3[/sub])[sub]3[/sub] 溶液0.3ml,摇匀,放置6min后,再分别加入4% NaOH 溶液4ml,加50%乙醇定容至10ml,摇匀,以试剂空白为参比,放置10~15min,用紫外可见分光光度计进行全波长扫描,在最大吸收波长510nm处测定吸光度,得到吸光度Y与芦丁浓度X(mg/ml)间标准曲线回归方程。[b]2.2.2.2 提取液总黄酮含量的测定 [/b]准确称取1.00g黄芩粉末,在不同的提取条件下提取黄芩总黄酮,提取液用乙醇稀释定容至50ml。准确吸取提取液1.0ml于25ml容量瓶,按上述方法显色后测定吸光度,代入标准曲线回归方程中可以得到黄芩中黄酮类物质的含量(mg/ml),从而计算出黄芩中黄酮类物质的提取率,即:黄芩中黄酮类物质的提取率= ×100%[b]2.2.3 单因素试验[/b] 主要研究料液比、乙醇浓度、超声波时间、超声波温度4个因素,在保持其他因素相同的条件下分别进行单因素试验,研究各因素对黄芩总黄酮提取效果的影响,筛选最佳的提取条件。 准确称取黄芩粉末,在不同的条件下进行超声提取,提取液冷却后用乙醇定容,按照2.2.2的测定方法,计算黄芩中总黄酮的含量。[b]2.2.4 正交试验[/b]在单因素试验基础上,选择料液比、乙醇浓度、超声时间、超声温度4因素,设计L[sub]9[/sub](3[sup]4[/sup])正交试验,以总黄酮的含量为评价指标,确定黄芩总黄酮超声辅助法的最佳提取工艺。[b]2.2.5 总黄酮体外抗氧化性的研究2.2.5.1 对羟自由基清除作用的研究[sup][/sup][/b]原理:通过反应所产生的羟基自由基可将Fe[sup]2+[/sup]氧化为Fe[sup]3+[/sup], Fe[sup]2+[/sup]和邻二氮菲反应可产生有色络合物,向有色沉淀加入抗氧化剂后,其反应效果会相对减弱。羟基自由基对二价铁离子的氧化作用,会导致吸光值不断变化,从而评价样液消除羟基自由基的能力。步骤:取0.75 mmoL/L邻二氮菲溶液1 mL,加入不同浓度的样液,再加0.75 mmoL/L硫酸亚铁1 mL混匀,加0.75mmol/l的过氧化氢1 mL,于37 ℃ 水浴下,水浴60 min后,在536 nm处测其吸光度,所得吸光度A[sub]b[/sub]。 反应方程式:H[sub]2[/sub]O[sub]2[/sub] + Fe[sup]2+[/sup]=OH[sup]-[/sup] +OH + Fe[sup]3+ [/sup]清除率S(%)=「Ax- A[sub]b[/sub]]/[As- A[sub]b[/sub]] ×100% 其中 A[sub]b[/sub]:标准体系的吸光度 Ax:不含黄芩提取液的吸光度As:不含过氧化氢的标准体系吸光度本底吸光度[b]2.2.5.2 对超氧自由基清除作用的研究 [sup][/sup][/b] 原理:在碱性条件下,邻苯三酚能迅速发生自氧化反应,生成超氧阴离子自由和有色中间产物,且邻苯三酚自氧化速率与生成超氧阴离子自由基的浓度呈正相关,该有色中间产物在300nm处有一特征吸收峰。当加入抗氧化剂能催化超氧阴离子自由基与H[sup]+[/sup]结合生成O[sub]2[/sub]和H[sub]2[/sub]O[sub]2[/sub] ,从而阻止了中间有色产物积累,溶液在320nm 处的吸收减弱。因此可通过测定添加试样前后吸光度[i]A[/i]的变化来表示抗氧化剂对超氧阴离子自由基的清除效果。步骤:取0.05mol/L三羟甲基氨基甲烷盐酸缓冲液(pH =8.2)4.5mL,置于25℃水浴中预热20min,分别加入0.1mL试样和0.4mL2.5mmol/L邻苯三酚溶液,混匀后于25℃水浴中反应4min,加入8mol/L HCl溶液两滴终止反应,于波长299nm处测定吸光度As,空白对照组以相同体积的蒸馏水代替样品,并计算清除率。 清除率计算公式: S(%)=[(1-(As-A[sub]0[/sub] )/A[sub]b[/sub]]×100%其中 A[sub]b[/sub]:不含黄芩提取物的标准体系吸光度 As:标准体系的吸光度值 Ao:不含邻苯三酚的标准体系吸光度[b]2.2.5.3 对DPPH自由基清除作用的研究[sup][/sup] [/b]原理:DPPH 在有机溶液中是一种稳定的自由基,其乙醇溶液呈深紫色,当 DPPH 溶液中加入自由基清除剂时,其孤对电子被配对,溶液颜色变浅,可由此来检测自由基的清楚状况,从而评价物质的抗氧化能力。步骤:将样品储备液适当稀释得到不同浓度的黄芩黄酮溶液。 向一系列 10 mL比色管中加入 3.5 mL 1.0×10[sup]-4[/sup]mol/L 的 DPPH 溶液和 0.5 mL 样品液,摇匀避光反应30 min,与波长517 nm下测定吸光度 A s。空白对照组以无水乙醇代替样品,并计算清除率。清除率计算公式: 清除率S(%)=[(1-(As-A[sub]0[/sub] )/A[sub]b[/sub]]×100% 其中 A[sub]b[/sub]:不含黄芩提取物的标准体系吸光度 A[sub]s[/sub]:标准体系的吸光度值 A[sub]0[/sub]:不含DPPH的标准体系吸光度[b]3. 结果与分析 3.1 芦丁标准曲线[/b]由图可得,芦丁在0.02—0.10mg/ml浓度范围内与吸光度呈良好的线性关系,R[sup]2[/sup]= 0.9998。回归方程为Y= 11.47X+ 0.0554 [align=center]表1 芦丁浓度与吸光度的关系[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]芦丁浓度/(mg/ml)[/align][/td][td][align=center]0.02[/align][/td][td][align=center]0.04[/align][/td][td][align=center]0.06[/align][/td][td][align=center]0.08[/align][/td][td][align=center]0.10[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]吸光度(A)[/align][/td][td][align=center]0.288[/align][/td][td][align=center]0.514[/align][/td][td][align=center]0.736[/align][/td][td][align=center]0.976[/align][/td][td][align=center]1.204[/align][/td][/tr][/table][align=center] [/align][align=center] [/align][align=center] [/align][align=center][img=,463,249]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807091813421003_7187_2904018_3.png!w463x249.jpg[/img] [/align][align=center]图1 芦丁标准曲[/align]Fig.1 Standard curve of rutin[b]3.2 总黄酮提取条件的优化3.2.1 料液比对黄酮类化合物提取效果的影响[/b]在料液比为1:6,1:8,1:10,1:12,1:14时,50%乙醇作为提取剂,超声波时间为20min,超声波温度为60℃,冷却后采用超声波提取法提取黄芩中黄酮类化合物含量,研究料液比对提取效果的影响。[align=center]表2 料液比与提取率的关系[/align][align=center][img=,394,250]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807091815178933_5515_2904018_3.png!w394x250.jpg[/img][/align][align=center] 图2 料液比对黄芩黄酮提取的影响[/align][align=center]Fig.2 Solid-liquid ratio on the extraction of flavonoids from Scutellaria impact[/align]由图2可见,随着料液比的增加,黄酮类化合物的提取率也逐渐升高,当料液比为1:10时,黄酮类化合物的提取率达到最高值,继续增加料液比,提取率会有一定的降低。在一定范围内料液比的增加有利于物料中黄酮类物质的溶出,但料液比过大的时候,会导致溶液浓度太小,从而影响到黄酮类物质对超声波能的吸收,导致黄酮得率下降。因此选定料液比在1:10的条件下进行实验。[b]3.2.2 乙醇浓度对黄酮类化合物提取效果的影响[/b]当乙醇浓度为30%,40%,50%,60%,70%时作为提取剂,超声波时间为20min,超声波温度为60℃,料液比为1:10的条件下,冷却后采用超声波提取法提取液中总黄酮含量,研究料液比对提取效果的影响。结果如图2所示[align=center]表3 乙醇浓度与提取率的关系[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]乙醇浓度(%)[/align][/td][td][align=center]30[/align][/td][td][align=center]40[/align][/td][td][align=center]50[/align][/td][td][align=center]60[/align][/td][td][align=center]70[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]提取率(%)[/align][/td][td][align=center]2.08[/align][/td][td][align=center]2.44[/align][/td][td][align=center]3.18[/align][/td][td][align=center]2.15[/align][/td][td][align=center]1.28[/align][/td][/tr][/table][align=center][img=,457,289]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807091815413326_3128_2904018_3.png!w457x289.jpg[/img][/align]图3 乙醇浓度对黄芩总黄酮提取的影响[align=center] Fig.3 The effect of ethanol concentration on the extraction of flavonoids from Scutellaria[/align]由图3可见,随着乙醇浓度的增加,黄酮类化合物的提取率逐渐升高,在乙醇浓度为50%时提取率最高,再增加乙醇浓度,提取率逐渐降低。这主要是随着乙醇浓度的增加导致溶液极性的改变,使提取液中杂质含量增加,因此选择50%的乙醇溶液作为提取剂。[b]3.2.3 超声波时间对黄酮类化合物提取效果的影响[/b]当超声波时间为5min,10min,15min,20min,25min,料液比为1:10,乙醇浓度为50%,超声波温度为60℃的条件下,冷却后采用超声波提取法提取液中总黄酮含量,研究料液比对提取效果的影响。[align=center]表4 超声波时间与提取率的关系[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]超声波时间(min)[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][td][align=center]10[/align][/td][td][align=center]15[/align][/td][td][align=center]20[/align][/td][td][align=center]25[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]提取率(%)[/align][/td][td][align=center]1.67[/align][/td][td][align=center]1.82[/align][/td][td][align=center]1.93[/align][/td][td][align=center]2.19[/align][/td][td][align=center]2.08[/align][/td][/tr][/table][align=center][img=,420,258]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807091815572952_9256_2904018_3.png!w420x258.jpg[/img][/align]图4 超声时间对黄芩总黄酮提取的影响[align=center]Fig.4 Ultrasonic time of total flavonoids extracted[/align]由图4可见,随着超声波时间的延长,黄酮类化合物提取率逐渐升高,在20min时提取率最高,继续延长超声波提取时间提取率几乎不变,主要是因为在初期,黄芩中黄酮类化合物没有完全浸提到溶剂中,而随着时间的增加,黄酮类化合物逐渐完全溶于提取剂中,因此提取率几乎不变。所以选择超声波时间为20min时进行实验。[b]3.2.4 超声波温度对黄酮类化合物提取效果的影响[/b]当超声波温度为20℃,30℃,40℃,50℃,60℃,料液比为1:10,乙醇浓度为50%,超声波时间为20min的条件下,冷却后采用超声波提取法提取液中总黄酮含,研究料液比对提取效果的影响。[align=center]表5 超声波温度与提取率的关系[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]超声波温度(℃)[/align][/td][td][align=center]20[/align][/td][td][align=center]30[/align][/td][td][align=center]40[/align][/td][td][align=center]50[/align][/td][td][align=center]60[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]提取率(%)[/align][/td][td][align=center]1.87[/align][/td][td][align=center]2.34[/align][/td][td][align=center]2.44[/align][/td][td][align=center]2.25[/align][/td][td][align=center]2.31[color=#ff0000] [/color][/align][/td][/tr][/table][align=center][img=,360,256]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807091816171242_5784_2904018_3.png!w360x256.jpg[/img][/align][align=center] [/align][align=center] [/align]图5 超声温度对黄芩黄酮提取的影响[align=center]Fig.5 Skullcap ultrasonic extraction temperature on impact[/align] 由图5可见,随着超声波温度的升高,黄酮类化合物提取率逐渐升高,在40℃时提取率最高,继续升高超声波提取温度,提取率反而略有下降。高温提取的过程是先使物料升温,保持一定时间后,利用温度使细胞壁破碎,乙醇溶剂溶入细胞内部,黄酮充分溶解,再继续升高温度,反而使更多的杂质释放出来,导致黄酮提取率不再上升。所以选择超声波温度为40℃进行实验。[b]3.3 正交试验确定最佳工艺3.3.1 正交试验结果[/b]通过上述单因素试验,得出各个单因素的最佳条件,其中料液比为1:10,乙醇浓度为50%,超声时间为20min,超声温度为40℃。选择料液比、乙醇浓度、超声波时间、超声波温度4因素3水平,设计L[sub]9[/sub](3[sup]4[/sup])正交试验,因素与水平见表1,试验结果见表2为了进一步判断上述4类因素对试验结果的影响是否存在,将以正交试验数据进行方差分析,找出这些因素中起主导作用的来源。表1 正交试验因素及水平表Tab 1 Factors and levels of the orthogonal tests[table][tr][td=1,2]水平[/td][td] 因素[/td][/tr][tr][td]A B C D料液比(g/ml) 乙醇浓度(%) 超声时间(s) 超声温度(℃)[/td][/tr][tr][td=2,1]1 1:8 40 15 302 1:10 50 20 403 1:12 60 25 50[/td][/tr][/table]表2 正交试验结果及分析 Tab 2 The results and analysis of orthogonal tests [table][tr][td=1,2]试验号[/td][td] 因素[/td][td=1,2]提取量(%)[/td][/tr][tr][td]A B C D料液比(g/ml) 乙醇浓度(%) 超声时间(s) 超声温度(℃)[/td][/tr][tr][td=3,1]1 1:8 40 15 30 2.622 1:8 50 20 40 2.903 1:8 60 25 50 2.764 1:10 50 25 30 3.255 1:10 60 15 40 2.626 1:10 40 20 50 2.507 1:12 60 20 30 2.408 1:12 40 25 40 2.589 1:12 50 15 50 2.85K[sub]1[/sub]/3 2.76 2.57 2.70 2.76K[sub]2[/sub]/3 2.79 3.00 2.60 2.70K[sub]3[/sub]/3 2.61 2.59 2.86 2.70R 0.18 0.43 0.26 0.06[/td][/tr][/table]由表1、2可知,主次因素由极差大小确定:B>C>A>D,即影响黄芩总黄酮提取效率的因素贡献率为乙醇浓度>超声时间>料液比>超声温度。以总黄酮含量为评价指标,得最佳提取工艺条件为A[sub]2[/sub]B[sub]2[/sub]C[sub]3[/sub] D[sub]1[/sub],即乙醇浓度为50%、超声时间为25min、料液比为1∶10、超声温度为30℃。最佳条件为正交表中的第四组,因此测抗氧化性实验选择此组数据。[b]3.4 总黄酮的抗氧化性3.4.1 对羟自由基的清除作用[/b][align=center]表6 提取液浓度对羟基自由基清除率[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]提取液浓度/(mg/ml)[/align][/td][td][align=center]0.0025[/align][/td][td][align=center]0.0050[/align][/td][td][align=center]0.0075[/align][/td][td][align=center]0.0100[/align][/td][td][align=center]0.0125[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]VC清除率(%)[/align][/td][td][align=center]20.54[/align][/td][td][align=center]42.88[/align][/td][td][align=center]59.39[/align][/td][td][align=center]74.44[/align][/td][td][align=center]79.09[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]黄酮清除率(%)[/align][/td][td][align=center]40.39[/align][/td][td][align=center]67.21[/align][/td][td][align=center]78.42[/align][/td][td][align=center]85.29[/align][/td][td][align=center]88.30[/align][/td][/tr][/table][align=center][img=,360,256]http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2018/07/201807091816376703_5430_2904018_3.png!w360x256.jpg[/img][/align]图6 黄芩总黄酮对羟自由基的清除Fig.6 Scutellaria Flavonoids on Scavenging of Hydroxyl Radicals黄芩总黄酮对羟自由基的清除作用,结果见图6。由图6可知,黄芩总黄酮对羟基自由基具有一定的清除作用。在相同的浓度范围下,清除能力大小为:提取物VC溶液。在0.0025—0.0125mg/ml浓度下,各溶液的清除能力都随浓度的增大而增大。当提取液浓度为0.0125mg/ml下,黄芩提取液的清除率达到了88.30%。3.4.2 [b]对超氧自由基的清除作用[/b][align=center]表7 提取液浓度对超氧基自由基清除率[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]提取液浓度/(mg/ml)[/align][/td][td][align=center]0.0025[/align][/td][td][align=center]0.0050[/align][/td][td][align=center]0.0075[/align][/td][td][align=center]0.0100[/align][/td][td][align=center]0.0125[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]VC清除率(%)[/align][/td][td][align=center]26.77[/align][/td][td][align=center]43.09[/align][/td][td][align=center]61.73[/align][/td][td][align=center]78.69[/align][/td][td][align=center]80.20[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]黄酮清除率(%)[/align][/td][td][align=center]49.81[/align][/td][td][align=center]75.29[/align][/td][td][align=center]84.38[/align][/td][td][align=center]89.21[/align][/td][td][align=center]90.01[/align][/td][/tr][/table]黄芩总黄酮对超氧自由基的清除作用,结果见图7。由图7可知,黄芩总黄酮对邻苯三酚自氧化产生的超氧自由基有一定的清除作用,其清除率随浓度的增大而增大。在相同的浓度范围下,清除能力大小为:提取物VC溶液。各溶液的清除能力都随浓度的增大而增大。当提取液浓度为0.0125mg/ml下,黄芩提取液的清除率达到了90.01%。3.4.3 [b]对DPPH自由基的清除作用[/b][align=center]表8 提取液浓度对DPPH自由基清除率[/align][table][tr][td][align=center]序号[/align][/td][td][align=center]1[/align][/td][td][align=center]2[/align][/td][td][align=center]3[/align][/td][td][align=center]4[/align][/td][td][align=center]5[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]提取液浓度/(mg/ml)[/align][/td][td][align=center]0.0025[/align][/td][td][align=center]0.0050[/align][/td][td][align=center]0.0075[/align][/td][td][align=center]0.0100[/align][/td][td][align=center]0.0125[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]Vc清除率(%)[/align][/td][td][align=center]27.36[/align][/td][td][align=center]52.41[/align][/td][td][align=center]79.98[/align][/td][td][align=center]80.49[/align][/td][td][align=center]81.31[/align][/td][/tr][tr][td][align=center]黄酮清除率(%)[/align][/td][td][align=center]55.7[/align][/td][td][align=center]82.3[/align][/td][td][align=center]89.78[/align][/td][td][align=center]93.74[/align][/td][td][align=center]93.81[/align][/td][/tr][/table][b] [/b]黄芩总黄酮对DPPH的清除作用,结果见图8。由图8可知,黄芩总黄酮对DPPH有一定的清除作用,其清除率随浓度的增大而增大。相同的浓度范围下,清除能力大小为:提取物VC溶液。各溶液的清除能力都随浓度的增大而增大。当提取液浓度为0.0125mg/ml下,黄芩提取液的清除率达到了93.81%。[b]4.总结[/b]1.通过单因素实验,得出各个单因素的最佳条件,其中料液比为1:10,乙醇浓度为50%,超声时间为20min,超声温度为40℃,为正交试验奠定了基础。然后用设计正交试验,确定了超声辅助法提取黄芩总黄酮的最佳工艺条件:乙醇浓度为50%、超声时间为25min、料液比为1∶10、超声温度为30℃。黄芩总黄酮的提取率为3.25%。2.本实验分别就黄芩提取物对羟基自由基,超氧阴离子自由基和DPPH自由基的抗氧化性进行了测定,并与VC进行了对比实验,得到如下结论:在0.0025—0.0125mg/ml浓度下,提取物对各自由基清除能力为:DPPH O[sub]2[/sub][sup]-[/sup]• • OH ,同浓度黄芩提取物清除能力普遍高于VC溶液,黄芩黄酮提取液和VC溶液对自由基清除率随其浓度的增大而增大。在浓度为0.0125mg/ml下,对羟基自由基的清除率为88.30%,对超氧基自由基的清除率为90.01%,对DPPH自由基的清除率为93.87%,由此可知黄芩总黄酮是一种天然有效的自由基清除剂。黄芩中黄酮类化合物的利用已经有一定的规模,但黄芩中黄酮化合物的提取方法和工艺尚未成熟,所以充分利用黄芩资源是我国药用研究的科学发展方向。基于提取率、成本等因素的影响,通过对各种因素的比较分析,从而探索开发出适合工业化生产应用的方案,提高黄芩利用率,仍是研究工作的重点之一。随着人们对健康的日渐重视,因黄芩中的黄酮化合物有着极高的药用营养及良好的保健作用,具有极为广阔的市场前景[b]。[/b]本文旨在研究黄芩中黄酮类物质的提取工艺及其体外抗氧化活性,为黄芩中黄酮类化合物作为天然抗氧化剂和功能性药品得到开发利用提供理论基础和实验依据。[align=center][b] [/b][/align] 刘雄,高建德.黄芩研究进展.甘肃中医学院,2007,24(2):46-50. 罗小文.黄芩中黄酮类成分提取工艺研究进展.中国现代中药.2010,12(7):5-8. 张睿,徐雅琴,时阳.黄酮类化合物提取工艺研究.食品与机械.2003,15(1):21-22. 梁丹,张保东.黄酮类化合物提取和分离方法研究进展.周口师范学院学报,2007,24(5):87-89. 龙春,高志强,陈凤鸣,等.黄酮类化合物的结构-抗氧化活性研究进展.重庆文理学院学报.2006,5(2):13-15. 刘雄,高建德.黄岑研究进展.甘肃中医学院学报,2007,24(2):46-50. 郭雪峰, 岳永德. 黄酮类化合物的提取-分离纯化和含量测定方法的研究进展. 安徽农业科学. 2007, 35(26): 8083- 8086.. 唐德智.黄酮类化合物的提取、分离、纯化研究进展.中药与天然产物,2009,21(12):101-104.. 张岩, 曹国杰, 张燕,等. 黄酮类化合物的提取以及检测方法的研究进展.天食品研究与开发,2008,29(1):154-157. 韩雅慧,陶宁萍.甘草黄酮提取及其抗氧化能力测定方法研究进展.山西农业科学,2010, 38(11):89- 93. 崔永明,余龙江,等. 甘草总黄酮的提取技术及其抑菌活性研究.中药材,2006, 29(8): 838-840. 孙墨珑, 宋湛谦, 方桂珍. 核桃楸总黄酮的提取工艺.东北林业大学学报, 2006, 34 (1) : 38 - 39. 徐清萍,钟桂,芳孟君. 抗氧化剂抗氧化方法研究进展.食品工程,2007,6(7):23-25. 安卓,贾昌喜.苦苣菜总黄酮提取、纯化工艺优化抗氧化活性研究.食品科学. 赵新淮.大黄醇提取物对三种自由基的清除能力的研究.东北农业大学学报.1998,29(3):284-288 杨立琛,李荣.花椒叶黄酮的微波提取及其成分分析.食品科学. CHI Ru-an,ZHOU Fang,HUANG Kun,ZHANG Yue-fei.Separation of baicalin form Scutellaria Baicalensis Georgi with polyamide.Key Laboratory for Green Chemical Process of Ministry of Education.2008,15(1):606-611.
[color=#444444]利用高效液相色谱检测黄芩黄酮类根茎叶中的有效成分,色谱峰均出现拖尾现象,尝试过的流动相有甲醇和0.1%磷酸水,甲醇和0.2%磷酸水,乙腈和0.2%磷酸水,甲酸和1%甲酸水,乙腈和1%甲酸水等色谱条件,但是色谱峰均出现拖尾现象,[/color][color=#444444]求助各位大神,有木有什么好的办法拯救色谱峰拖尾现象!!!谢谢大家!![/color]
柚子中含有的黄酮类物质能降低人们患上中风的可能性。这种抗氧化剂同时能增强血管功能并消炎,起到了保护大脑的作用。
【作者】 王晓辉; 刘涛; 李清; 陈晓辉; 毕开顺;【Author】 WANG Xiaohui,LIU Tao,LI Qing,CHEN Xiaohui,BI Kaishun(School of Pharmacy,Shenyang Pharmaceutical University,Shenyang 110016,China)【机构】 沈阳药科大学药学院; 沈阳药科大学药学院 辽宁沈阳110016; 辽宁沈阳110016;【摘要】 对蒙古黄芪中5种异黄酮类成分的含量进行了反相高效液相色谱法测定。色谱柱为D iam ons il C18柱,流动相为乙腈-水系统,梯度洗脱,检测波长230nm,柱温35℃。毛蕊异黄酮-7-O-β-D-葡萄糖苷在20.12~201.2m g/L、芒丙花素-7-O-β-D-葡萄糖苷在4.62~46.2m g/L、9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-葡萄糖苷在4.86~48.6m g/L、毛蕊异黄酮在9.24~92.4m g/L、芒丙花素在6.92~69.2m g/L时峰面积与浓度呈良好的线性关系,相关系数分别为0.999 2,0.999 7,0.999 7,0.999 5和0.999 5。5种成分的加样回收率均高于94%,相对标准偏差(RSD)小于3.2%(n=9)。该法简便快速,重复性良好,结果准确可靠,可用于黄芪药材中5种主要异黄酮类成分的含量测定。 http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/07/201207301613_380608_2379123_3.jpg
本实验分别提取两年生、三年生无腺毛甘草主根、侧根、水平根及茎中的黄酮,并测定其含量,初步找出消长规律。以甲醇为提取溶剂,索氏提取法提取黄酮,分光光度法测定总黄酮含量。结果表明两年生无腺毛中主根、侧根、水平根及茎中的黄酮含量分别为1.28%、1.28%、1.56%、0.73%;三年生无腺毛中主根、侧根、水平根及茎中的黄酮含量分别为1.75%、1.46%、1.81%、0.41%。随着年限的增大,无腺毛甘草中根部的黄酮含量逐渐增大。同龄期无腺毛甘草中黄酮含量:水平根最高,主根和侧根次之,茎最小。 无腺毛甘草 黄酮 含量测定 消长规律1.前 言无腺毛甘草(Glycyrrhiza eglandulosa X.Y.Li)是石河子大学李学禹教授在新疆发现、1993年命名的新种,也是我国的特有种。它生长的环境条件比乌拉尔甘草(G. uralensis)更恶劣,因而更加耐干旱、耐盐碱,而且是很适合于低产地、弃耕地等恶劣环境条件下生长的抗逆性极强的甘草物种。这个种在形态分类系统学、细胞学、生态学都有研究,根据细胞染色体组型分析与形态数值分析,都证实它与乌拉尔甘草、光果甘草亲缘关系较近,但在化学成分方面未进行系统研究。根据资料报导,产于新疆的胀果甘草(G.inflata)、黄甘草(G.eurycarpa)及云南的云南甘草(G.yunnanensis)都发现过大量的具有生理活性的新的化学成分。由此可知:一个形态性状特异、分布于逆境条件下能正常生长的新物种,肯定具有抗逆性较强的基因所决定的代谢产物,肯定有特殊性。为此,我们拟从应用开发的角度,提取无腺毛甘草中黄酮类化合物,对其进行含量测定,并进一步研究其在不同龄期、不同部位黄酮类化合物的消长规律,为进一步研究其化学组成和结构打下基础,并且为退耕还草大面积栽培无腺毛甘草提供科学依据。2.实验部分2.1实验仪器、样品与试剂2.1.1实验仪器:紫外可见分光光度计(上海棱光技术有限公司),索氏提取器(自治区化玻站提供),烘干箱(湖北省黄石医疗器材厂),电光分析天平(上海棱光技术有限公司),精密PH计(上海雷磁仪器厂)。2.1.2实验样品:两年生、三年生的无腺毛甘草(石河子大学甘草栽培基地李学禹教授提供)。2.1.3实验试剂:柚皮苷对照品(中国药品生物制品检定所),10%的氢氧化钾溶液,甲醇(AR)。2.2黄酮类化合物的提取分别称取3份两年生无腺毛甘草的主根粉碎后放入索氏提取器中,加入甲醇回流2h,冷却后分别将回流液转移至容量瓶中,提取两次,提取液合并,用甲醇定容。用同样的方法分别提取两年生无腺毛甘草的水平根、侧根和茎以及三年生无腺毛甘草中主根、侧根、水平根、茎中的黄酮。2.3黄酮类化合物的含量测定2.3.1对照品溶液的制备准确称取柚皮苷对照品适量,用甲醇溶解并定容于10mL容量瓶中,制得浓度约为1.0mg.mL-1的对照品溶液。2.3.2最大吸收峰的确定精确吸取柚皮苷对照品溶液0.5ml,加入5ml甲醇,再加入10%KOH溶液2.5ml,室温放置5min,用甲醇稀释至50ml[
最近,在做黄酮类物质二氢杨梅素与金属离子形成的金属配合物,曾用过水、甲醇、二甲亚砜和四氢呋喃溶解这种金属配合物,但溶解效果均不理想。请专家和老师不吝赐教,帮忙提供一种试剂,不甚感激!!!
Introduction 黄酮类化合物泛指两个具有酚羟基的苯环(A环和B环)通过中央三碳原子相互连结而成的一系列化合物,其基本母核为2-苯基色原酮。黄酮类化合物结构中常连接有酚羟基、甲氧基、甲基、异戊烯基等官能团。黄酮类小部分以游离态(苷元)的形式存在,多数与糖结合成苷。绝大多数植物体内都含有黄酮类化合物,它在植物的生长、发育、开花、结果以及抗菌防病等方起着重要的作用。 本实验研究对象为某中药中一个黄酮类化合物的代谢,本次发表的为代谢产物某流分的定性分析,该流分含有3个代谢产物,我们用Ultimate XB-C18柱和国外某名牌色谱柱对该流分进行了定性分析比较。1.Chemical and reagents 甲醇(色谱纯,天津大茂),水(哇哈哈纯净水,杭州),三氟乙酸(TFA, Dikma, USA),其它试剂均为分析纯。2.HPLC analysis of an unknown sample Waters 高效液相色谱系统,由Waters Model 600 controller液相色谱,Millennium 32 工作站,Model Delta 600 泵,以及Waters 996 DAD检测器组成。 色谱柱:Ultimate XB-C18柱(5μm, 4.6x250mm)和国外某品牌色谱柱(5μm, 4.6x250mm)(用column X表示,投入使用约半年) 流动相:A通道:甲醇,B通道:水(0.05%TFA)=(45:55, v/v)或A通道:甲醇,B通道:水(0.05%TFA)=(40:60, v/v) 流 速:0.6mL/min 柱 温:35℃ 检测波长:190-400nm扫描 进样量:20μL3.Sample preparation 因为涉及保密内容,此部分略去。4.Results and discussionhttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/05/201105181521_294755_2160661_3.jpgFig.1 Chromatogram of sample solution analyzed by column Xhttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/05/201105181522_294756_2160661_3.jpgFig.2 Chromatogram of sample solution analyzed by Ultimate XB-C18 columnhttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/05/201105181523_294757_2160661_3.jpgFig.3 Chromatogram of sample solution analyzed by column X(Fig.1的局部放大图)http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/05/201105181524_294758_2160661_3.jpgFig.4 Chromatogram of sample solution analyzed by Ultimate XB-C18 column(Fig.2的局部放大图)http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/05/201105181525_294759_2160661_3.jpgFig.5 Chromatogram of sample solution analyzed by Ultimate XB-C18 column(流动相比例降低后) 从图1和图2比较结果可以看出,该样品共含有3种黄酮类成分,DAD检测器给出其最大紫外吸收~270nm,~310nm,从紫外吸收还可以看出,这3种成分结构相似,其保留时间也很近。我们可以看出Ultimate XB-C18柱表现出了更好的分离度,而且展现了更好的峰形。 图3和图4是图1和图2的局部放大图,可以观察到色谱峰的保留时间,图5是将流动相比例降低后用Ultimate XB-C18柱再次分析的结果,虽然没有完全达到基线分离,但结果也是不错的。 该实验只是对代谢产物某流分中的3种黄酮类化合物进行定性分析,没有进行其它条件的考察,比如流动相加不同的酸,加酸的量(pH),以及在乙腈水系统下进行考察,这些将在后续实验中补充。5.Conclusions 我们通过一个简单的定性实验,即中药某成分代谢产物的分析,比较了2种色谱柱对该流分中3种黄酮类化合物分离能力的研究,结果显示Ultimate XB-C18柱丝毫不落下风,反而表现出了神勇的分离能力。在未来的实验中,Ultimate色谱柱会一直伴随该项目的研究,我们会有更加精彩的结果发表出来,供大家分析讨论。
[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=87706]薄层色谱法分离鱼藤中异黄酮类化合物 [/url]
CAPCELL CORE C18 S2.7色谱柱填充了核壳型(表面多孔型)填料,具有与Sub 2 μm全多孔型填料柱同等水平的色谱性能,且柱压与3 μm填料色谱柱的压力相当,因此,该款色谱柱适用于使用常规液相色谱仪器在高流速条件下进行的快速分析。 本次,使用CAPCELLCORE C18 S2.7色谱柱对10种类黄酮类化合物进行快速分析。由于类黄酮类化合物具有相似的化学结构,若想得到充分的分离,通常需要延长分析时间。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/02/201702091019_01_2222981_3.pnghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/02/201702091019_02_2222981_3.pnghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/02/201702091019_03_2222981_3.png图1为将流速设定为常规流速的3倍(0.6 mL/min)时得到的结果。对于这10种具有配位性的类黄酮类化合物,可以在6分钟内完成分析,并能得到良好峰形。如需在梯度条件下提高分离度,可将梯度变缓,但这会使分析时间变长。为解决这一问题,同样使用CAPCELL CORE C18 S2.7色谱柱,对于流速与分离度的关系进行了探究。如图2,将流速由0.2 mL/min开始,每次提高0.1 mL/min,一直提高至0.6 mL/min,可以看到,峰2(甘草苷)与峰3(芦丁)的出峰顺序在流速为0.4 mL/min时发生了翻转,并且随着流速的提高,其分离度亦得到了进一步的改善。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2017/02/201702091019_04_2222981_3.png
[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=72387]高效液相色谱法测定仙灵脾配方颗粒中5种主要黄酮类成分的含量[/url]
前言 黄酮类化合物泛指两个具有酚羟基的苯环(A环和B环)通过中央三碳原子相互连结而成的一系列化合物,其基本母核为2-苯基色原酮。黄酮类化合物结构中常连接有酚羟基、甲氧基、甲基、异戊烯基等官能团。黄酮类小部分以游离态(苷元)的形式存在,多数与糖结合成苷。 本实验主要内容为运用Ultimate XB-C18柱对两个连有葡萄糖醛酸基的黄酮类化合物进行分析,这两个主要成分为某药物在大鼠尿液中极性较大的代谢产物,为了制备得到这两个代谢产物,首先我们对该流分进行了分析条件的摸索,主要考察了在水相添加不同的酸对目标成分峰形的影响。1. 仪器和试剂 岛津高效液相色谱,LC-10AD泵,SPD-10A检测器,古老的N2000工作站。 甲醇(色谱纯,天津大茂),水(重蒸水,SPU),三氟乙酸(TFA, Dikma, USA),乙酸(分析纯,天津大茂),其它试剂均为分析纯。2. 色谱条件 色谱柱:Ultimate XB-C18柱(5μm, 4.6x250mm) 流动相:甲醇-水(35:65,v/v);水含0.01%乙酸或0.01%三氟乙酸 流 速:1 mL/min 柱 温:35℃ 检测波长:271nm 进样量:20μL3.样品的制备 因为涉及保密内容,此部分略去。4.实验结果http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/06/201106131638_299654_2160661_3.jpg图1. 流动相为甲醇-水(35:65,v/v),水含0.01%乙酸,该条件下的色谱图http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2011/06/201106131639_299656_2160661_3.jpg图2.流动相为甲醇-水(35:65,v/v),水含0.01%三氟乙酸,该条件下的色谱图5.结果与讨论5.1 实验目的 本实验主要应用Ultimate XB C18柱对某药物大鼠口服给药后尿液代谢产物进行柱色谱后得到的某流分中的两个主要成分进行分析条件摸索,目的是为制备液相提供条件参考。5.2 添加不同酸的考察 试用该色谱柱时就和小S交流过,要耐酸,但是考虑到对色谱柱的保护,我们只在水相中加入体积含量为0.01%的酸(实际上,刚开始听实验室一个过来人说加6滴,我稀里糊涂就听了,殊不知这样很不可取,我们要有量的概念)。 我被警告过说三氟乙酸对色谱柱不好,为了保护我心爱的Ultimate XB C18柱,我就听取别人的建议,不用三氟乙酸,用乙酸代替,但是结果和我们期待的差的太远,从图1 可以看出,0.01%的乙酸几乎没起多大作用,色谱峰拖尾之严重程度,让人感觉很杯具。 之前一直用三氟乙酸,于是,就重新配了一个含有0.01%三氟乙酸的水,这时候我们就看到了图2,看到这样的图,您的心情是不是也一下子由阴转晴,至少我是很happy的,无论是峰形还是分离度都很满意。我们还可以看到,相同的进样量,图1 电压值仅20多mv,而图2 电压值达到160mv,宽而扁的拖尾峰变成了尖而正态的色谱峰。5.3 总结 一句话,三氟乙酸该用的时候还是得用,但是这和待分析成分的理化性质有很重要的关系,如果你的化合物酸性很强,我建议你还是不用乙酸的好,不给力啊,但是以上这些结果归根结底还是要把功劳送给Ultimate XB C18柱,没有它就没有这么精彩的结果,也不会给大家的实验带来有参考意义的内容。
用DMSO溶剂做黄酮类化合物的氢谱时,酚羟基的信号有时能够做出了,有时做不出来,是不是羟基氢被置换的原因?是如何置换的?