酚含量

【作者】 于翠翠； 刘军锋； 车鑫； 刘珂；【机构】 烟台大学药学院； 山东靶点药物研究有限公司；【摘要】 目的:建立一种测定丹酚酸A中有关物质含量的方法。方法:用外标法测定丹酚酸C的含量,采用Diamonsil C18柱(4.6 mm×250 mm,5μm),乙腈-0.2%磷酸水溶液(30∶70)为流动相,流速1 mL.min-1,检测波长285 nm,柱温30℃,以主成分自身对照法控制其他杂质的总含量。结果:丹酚酸C的含量均1.0%,其他杂质峰面积和3.0%。结论:该方法专属性强,灵敏度高,简单准确,能有效控制丹酚酸A中有关物质的含量。 http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/07/201207231559_379228_2379123_3.jpg

[align=center][b]亚麻荠种子总多酚含量测定[/b][/align][b]摘要：[/b]亚麻荠是一种环保型油料作物，有很长时间的种植历史，富含人体必需脂肪酸和多种天然活性成分。总多酚不是一种单一的物质，它主要包括黄酮类、单宁类、酚酸类和花色苷等，具有抗氧化、抗衰老、预防癌症等多种生物活性，被誉为“第七类营养素”。经实验发现，亚麻荠种子中含有多酚，为了把其价值最大化，更好地运用到食品、医药、保健品、化妆品等行业当中去，本实验通过对亚麻荠种子总多酚提取条件的比较，筛选出料液比、丙酮体积分数、提取温度和提取时间的最适宜水平，在最适宜水平条件下测定出甘肃、青海、汤阴三个不同产地的亚麻荠种子中的总多酚含量。[b]关键词：[/b]亚麻荠种子；总多酚；含量测定；[b]Abstract: [/b]As an environmentally friendly oilseed crop, camelina has a long history of cultivation and is rich in essential fatty acids and many natural active ingredients. Total polyphenols are not a single substance, and they mainly include flavonoids, tannins, phenolic acids and anthocyanins, etc. They have many biological activities such as antioxidant, anti-aging and cancer prevention, and are praised as "the seventh nutrient". Experiments found that camelina seeds contain polyphenols, in order to maximize its value, to better applied to food, medicine, health products, cosmetics and other industries, the experiment of camelina seeds the comparison of total polyphenol extraction conditions, select material liquid ratio, acetone volume fraction, extraction temperature and extraction time, the most suitable level, under the condition of optimum levels determine the Gansu, Qinghai, Tangyin provinces’ camelina seeds from different regions of three total polyphenol content.[b]Keywords: [/b]Camelina seedsTotal polyphenols Content determination 亚麻荠（Camelina sativa（L.）Crantz）属于十字花科，亚麻荠属一年生草本植物，现在我国东北地区有分布。其种植历史悠久，在青铜器时代就有被种植的痕迹。但尽管气候条件很适宜种植亚麻荠，中世纪以后，也并未在欧洲发现亚麻荠的大面积种植，其原因一直不得而知。到了20世纪50年代，由于油菜的传入与推广，再加上亚麻荠油的氢化作用困难，加工成本较高，导致亚麻荠的种植规模又逐渐减小。近些年来，随着对亚麻荠产品利用的深入研究发现，亚麻荠具有其独特的栽培特性、食用价值和工业价值，人们开始逐渐重视对亚麻荠的开发利用。亚麻荠是一种高油料作物，能利用的部分主要是种子（果实），含油量38%~43%，主要用来榨油。亚麻荠油富含人体必需脂肪酸和多种天然活性成分，甾醇、多酚和生育酚等多种脂质活性成分，能增加油脂的稳定性和亚麻荠油的生物活性，还能帮助人们提高免疫力，预防老年痴呆和癌症等多种疾病的发生。 此外，亚麻荠种子还是油粮、饲料、食品、医药、保健品、化妆品等行业产品的原料。总多酚是一类化学物质的总称，它的主要活性成分是含有多个酚性羟基结构的次生代谢物，即多酚类化合物，主要包括黄酮类、单宁类、酚酸类以及花色苷类，广泛分布于植物根、枝、叶、果实，具有抑菌、抗癌、抗氧化等多种生物活性，被誉为“第七类营养素”。经实验发现，亚麻荠种子中含有多酚[sup][/sup]，但目前关于亚麻荠的研究有很多，关于多分的研究也数不胜数，但关于亚麻荠种子中多酚含量测定及抗氧化方面尚且未见相关报道。除榨油外，亚麻荠的其他价值并未得到很好的开发利用。所以，本实验通过研究亚麻荠种子中总多酚含量及抗氧化活性，以便为将来更好地开发利用亚麻荠这一优良作物奠定基础。[b][b]1 材料与设备1.1材料[/b]亚麻荠种子：(青海、汤阴、甘肃)；没食子酸、福林-酚；丙酮、无水乙醇、无水碳酸钠：均为国产分析纯；纯净水：娃哈哈纯净水。[b]1.2 仪器与设备[/b][/b]111型二两装高速中药粉碎机；ME204型电子天平；TU-1810型紫外分光光度计；N-1100S-W型旋转蒸发仪；SB-1100型水浴锅；KQ-250DB数控超声波清洗器；L420台式低速离心机DZKW-S-6型电热恒温水浴锅；[b][b]2试验方法2.1亚麻荠种子的预处理 [/b][/b] 将亚麻荠种子充分干燥，去除杂质，用粉碎机粉碎，装密封袋备用。[b][b]2.2标准品溶液的制备 [/b][/b] 精密称取没食子酸对照品适量，加蒸馏水制成57.66 μg/ml对照品溶液。[b][b]2.3亚麻荠种子样品溶液的制备[/b][/b] 精密称取亚麻荠种子样品2g，精密加入75%丙酮溶液30ml于具塞锥形瓶，密塞，称重，60℃超声提取3h，冷却，补重，摇匀，滤过，即得。[b][b]2.4确定检测波长的方法 [/b][/b] 分别精密吸取亚麻荠种子样品溶液1.5mL和对照品溶液1.5mL于25mL容量瓶中，加入1.0mL福林酚试剂，摇匀，加入10%碳酸钠溶液2mL，用蒸馏水定容至刻度，充分摇匀后置于25℃的恒温水浴锅中避光反应30min，冷却至室温，以相应的提取溶剂为空白，在400~850nm下扫描，记录紫外光普图，确定最佳吸收波长。[b][b]2.5单因素试验 [/b][/b] 本实验选取料液比，丙酮体积分数，提取温度，提取时间四个因素来研究对亚麻荠种子中总多酚含量的影响，并确定各个因素适宜的水平。在考虑各因素不同水平的变化时，都以料液比1:15，丙酮质量分数70%，提取温度60℃，提取时间1.5h为不变条件，作参照。单因素实验表如表1所示。[align=center][img=,639,277]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101736212274_7213_1858223_3.jpg!w639x277.jpg[/img][/align][b][b]3 结果与讨论3.1最佳检测波长的确定[/b][/b] 由2.4的设计，结果显示，亚麻荠种子多酚提取液和没食子酸标准品溶液均在760nm处有最大吸收，所以得出检测波长为760nm。[b][b]3.2单因素试验结果3.2.1不同料液比对总多酚提取得率的影响[/b][/b] 从亚麻荠种子中提取多酚时，料液比不同，所得到的总多酚含量也有差异。由图1可以看出，在料液比为1：15和1：20时得到最高的多酚含量，但考虑经济价值，选取1:15为最佳料液比。当料液比超过1:20后，多酚含量开始逐渐下降。在超声提取时，传质动力会随着溶剂量的增大而增大，在一定范围内，当丙酮体积分数增大时，传质动力也增大，多酚类化合物能够更好地溶解在丙酮溶剂中，得到的多酚含量不断增加；但到达一定程度后，随着溶剂量的增大，由于产生的热量相同，提取温度相对较低，固液两相存在吸附平衡，从而使得多酚提取得率变低。[align=center][img=,501,300]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101737144424_9357_1858223_3.jpg!w501x300.jpg[/img] [/align][align=center]图1 不同料液比对总多酚提取率的影响[/align][b][b]3.2.2 不同丙酮体积分数对总多酚提取得率的影响[/b][/b] 不同浓度的丙酮溶液对亚麻荠种子的多酚提取得率有不同的影响。在一定范围内，丙酮体积分数增大，得到的多酚含量也随之增大，在丙酮体积分数为75%时，多酚含量达到最大值；丙酮体积分数继续增大，多酚含量开始下降。[align=center][img=,494,299]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101737308326_4393_1858223_3.jpg!w494x299.jpg[/img] [/align][align=center]图2 不同丙酮体积分数对总多酚提取率的影响[/align][b][b]3.2.3不同提取温度对总多酚提取得率的影响[/b][/b] 不同的提取温度对亚麻荠种子的多酚提取得率有不同的影响。由图3可以得知，在一定范围内，多酚含量随着提取温度的增加而增加，当温度为60℃时多酚含量达到最高峰值；此后当温度继续增加，多酚含量开始逐渐下降，在70℃时达到最低值，此后又开始上升，但并未达到最高值。随着提取温度的升高，多酚能够很好地溶解在丙酮溶液中，但温度过高则会破坏多酚类物质的结构，造成总多酚含量的损失，因此60℃为最佳提取温度。[align=center][img=,514,312]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101738159551_4103_1858223_3.jpg!w514x312.jpg[/img] [/align][align=center]图3 不同提取温度对总多酚含量的影响[/align][b][b]3.2.4 不同提取时间对总多酚提取得率的影响 [/b][/b] 由图4可以得知，不同的提取时间，亚麻荠种子的总多酚提取得率不全相同。随着提取时间的增加，总多酚含量也在增加，从1.5h增加到2h，总多酚含量增长明显；从2h增加到3h时，总多酚含量也呈现增加趋势，在3h时达到最高峰值；但当提取时间延长至4h时，总多酚含量开始下降，与2h时含量相等，分析可能是由于随着提取时间的增长，提取出的多酚被氧化造成总含量下降。[align=center][img=,494,301]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101739317344_4177_1858223_3.jpg!w494x301.jpg[/img][/align][align=center]图4 不同提取时间对总多酚提取得率的影响[/align][b][b]3.3总多酚含量测定结果3.3.1 标准曲线的建立及样品的测定[/b][/b] 精密称取没食子酸对照品5.766mg ，加甲醇溶解并定容至100ml，得到质量浓度为57.66μg/ml的没食子酸标准液。分别吸取标准液0.3、0.5、1.0、1.5、2.0mL置于10mL棕色容量瓶中，定容至刻度。从上述各量瓶中分别吸取1.5mL不同浓度标准液于25ml容量瓶中，加入1.0ml福林-酚试剂，摇匀静置30s，加入10%碳酸钠溶液1.0ml，用水定容，25℃水浴30min（避光），于760nm下测定吸光度。以没食子酸标准液的浓度为横坐标，吸光度为纵坐标作图，结果如图5所示。线性关系为 y = 0.0663x + 0.0100，R2 = 0.9997，线性良好。其中，y为标准品的吸光度，x为没食子酸标准液浓度，单位为ug/ml。在测定样品中总多酚含量时，在相同的反应条件下测定样品的吸光度，通过公式算出样品溶液中多酚的浓度，再换算出样品的最终含量。公式为：[align=center][img=,201,56]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101745019767_2542_1858223_3.jpg!w201x56.jpg[/img][/align]其中M为总多酚含量，单位是mg/g；V为定容体积，单位是ml；N为稀释倍数；m为称取亚麻荠样品重量，单位为g，y为样品溶液的吸光度。[align=center][img=,485,297]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101740167674_8180_1858223_3.jpg!w485x297.jpg[/img][/align][align=center]图5 亚麻荠种子总多酚含量测定的标准曲线[/align][b][b]3.3.2含量测定结果[/b][/b]在单因素实验得出最佳提取工艺条件后，对不同产地的三组样品进行3次重复实验，总多酚提取得率如表3，青海产地的亚麻荠种子中总多酚含量为2.05mg/g，汤阴产地的亚麻荠种子中总多酚含量为1.86mg/g，甘肃产地的亚麻荠种子中总多酚含量为2.66mg/g。因此，通过单因素试实验得到的最佳提取工艺条件比较稳定，具有良好的可重复操作性。[align=center]表2 总多酚含量测定结果[/align][align=center][img=,589,155]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2019/09/201909101741237654_3695_1858223_3.jpg!w589x155.jpg[/img][/align][b]4. 结论[/b] 本实验研究结果表明，考察不同因素，最后选择75%丙酮，60℃超声3h为最佳条件，甘肃产地的亚麻荠种子的总多酚含量最高，达2.66mg/g；青海产地的亚麻荠种子的总多酚含量次之，为2.05mg/g；汤阴产地的亚麻荠种子的总多酚含量在三者之中最低，仅有1.86mg/g。但总体来说，这三个产地的亚麻荠多酚含量都比较高。[b]参考文献[/b]邓曙东,张青文. 亚麻荠种植和利用的研究现状. 植物学通报,2004,(03):376-382.邓乾春,黄凤洪,黄庆德,谢笔钧,钮琰星,万楚筠,刘昌盛.一种高利用价值油料作物-亚麻荠的研究进展.中国油料作物学报,2009,31(04):551-559.Abram oviH, Abram V. Phys ico-chem ical properties,composition and oxidative stab ility of Cam elina sa tivaoil. Food Technology and B iotechnology, 2005, 43:63- 70. Pietta PG. Flavonoids as antiox idants . Journal of Natural Products, 2000, 63: 1 035- 1 042. 宋立江, 狄莹, 石碧. 植物多酚研究与利用的意义及发展趋势. 化学进展, 2000, 12(2):161.尹志娜.植物多酚分离提取方法和生物功能研究进展.生命科学仪器，2010，8（6）：43-49.裘爱泳, 刘军海, 张海晖. 植物多酚提取和应用. 粮食与油脂, 2003(6):10-11.Helena A, Bojan B, Vojko N. Changes occurring in phenolic content , tocopherol composition and oxidative stab ility of Cam elina sativa oil during storage . Food Chemistry, 2007, 104: 903- 909.李巨秀,李利霞,曾王旻,袁尚瑞.燕麦多酚化合物提取工艺及抗氧化活性的研究.中国食品学报,2010,10(05):14-21.黄雅,陈华国,周欣,巫兴东,胡恩明,蒋政萌,李洪德.黔产接骨草中总多酚的含量测定及抗氧化活性研究.天然产物研究与开发,2017,29(02):255-263.李焘,屈新运,王喆之.菘蓝种子总多酚提取工艺的优化及抗氧化活性研究.中成药,2011,33(11):1895-1900.汪洪涛,陈成,余芳,李小华,杨爱萍.紫叶李果实总多酚的提取工艺及其抗氧化活性研究.河南农业科学,2013,42(10):153-156.

苯酚试剂含量的技术验证方法 苯酚试剂不属于我们常用试剂，但也是是实验室某些化学分析中必用的分析试剂之一，就比如纺织纤维中聚酯纤维的定量分析，因聚酯纤维在强酸强碱中都不溶，要用到这个试剂配制溶液，才能溶解，那么我们新采购的苯酚试剂，也应该按试剂相关标准要求对试剂进行验收，验收的目的就是验证其含量是否达到我们的分析试验要求。能否用于正常的试验分析。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2013/11/201311132004_477036_2154459_3.jpg 苯酚试剂具有腐蚀性，在使用操作中要注意自身的保护，要佩戴防毒口罩，最好是防毒面具，防护眼镜，防护服，以免发生伤害或意外事故 低浓度苯酚被人体吸收后，肝脏组织的解毒功能将使其失去大部分毒性，并随尿排出。但可能会造成慢性中毒，如出现不同程度的头昏、头痛等神经症状，以及食欲不振、吞咽困难、呕吐和腹泻等消化道症状 苯酚试剂的技术指标主要就是苯酚的含量的测定，那么我们看看苯酚的含量测定。1.测试程序1.1.苯酚含量检测——化学法1.2.原理：采用碘量法，利用苯酚与溴反应生成三溴苯酚，过量的溴与碘化钾反应生成碘，用硫代硫酸钠标准溶液滴定，计算出苯酚的含量。1.3.仪器及设备（1）碱式滴定管，50ml；（2）三角烧瓶，500ml；（3）分析天平，准确至0.0001g。1.4.试剂（1）溴标准溶液，0.1mol/L；（2）硫代硫酸钠标准溶液，0.1mol/L；（3）淀粉指示液，2%；（4）碘化钾，分析纯；（5）盐酸，分析纯；（6）三氯乙烷，分析纯。1.5.检测步骤准确称取约0.1g试样，放入500ml碘量瓶中，加水30ml水，精密加入溴标准溶液40ml，加入5ml盐酸，封口，振荡30分钟，静至15分钟，加2g碘化钾，立即封口。充分振摇后，加入三氯乙烷1ml，用硫代硫酸钠标准液滴定至近终点时加3ml淀粉指示液，继续滴定至蓝色消失为终点。1.6.含量计算苯酚的含量按下式进行计算： ×0.01596 X= ───── ×100％ M式中 X：苯酚含量（m/m），%N1：溴标准溶液的浓度，mol/L；V1：加入溴标准溶液的体积，ml；N2：硫代硫酸钠标准液的浓度，mol/L；V2：滴定时消耗的硫代硫酸钠标准液的体积，ml；M：苯酚样品的称样量，g0.01596:苯酚的毫摩尔当量。1.7.允许误差苯酚的两次平行测定结果之绝对差值应不大于0.2%，取其算术平均值作为检测结果。2.水分测定按《微量水分检测方法-卡尔·费休法》中的规定进行，两次平行测定结果的绝对差值应不大于0.005%，取其算术平均值作为检测结果。3.质量指标指标名称指标[/

【作者】 周欣； 钟兆健； 宋粉云；【机构】 广东药学院；【摘要】 目的建立窈窕茶中大黄酚含量测定的方法。方法采用RP-HPLC法,Diamonsil-C18柱,甲醇-0.2%磷酸溶液(90∶10)为流动相;流速:1.0mL/min;检测波长:254nm。结果大黄酚的平均回收率为97.6%,方法精密度(RSD)为0.91%(n=6)。结论所建方法可用于窈窕茶中大黄酚的含量测定。 更多还原【关键词】 窈窕茶； 决明子； 大黄酚； HPLC； 含量测定； http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2012/08/201208201044_384539_2352694_3.jpg