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氨基丁酸含量

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  • 【原创大赛】黄酒中γ-氨基丁酸含量测定的辛酸历程

    【原创大赛】黄酒中γ-氨基丁酸含量测定的辛酸历程

    黄酒中γ-氨基丁酸含量测定的辛酸历程 近日实验室收到一批黄酒样品,该批黄酒是用发芽糙米为原料酿造而成,客户要求测定黄酒中的γ-氨基丁酸含量。由于之前实验室以丹磺酰氯为衍生试剂,建立了高效液相色谱法测定发芽糙米中γ-氨基丁酸含量的实验方法,并对实验方法的线性、精密度以及回收率进行了确认,均可以满足发芽糙米中γ-氨基丁酸含量测定要求,因此拿到黄酒样品后直接按照发芽糙米的前处理方法和色谱方法进行分析。链接如下:http://bbs.instrument.com.cn/shtml/20141226/5591256/。然而事与愿违,在测定的液相色谱图中压根就没有见到γ-氨基丁酸的色谱峰,反而在11.5min左右有个小的色谱峰,其峰高与发芽糙米中γ-氨基丁酸峰高有点相似,初步怀疑是保留时间发生了漂移,与发芽糙米样品色谱图对比后发现,在发芽糙米样品色谱图中该保留时间处也出现了一个相似的小峰,因此将该色谱峰是γ-氨基丁酸的可能性排除。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2014/12/201412311333_530568_1669358_3.jpghttp://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2014/12/201412311334_530570_1669358_3.jpg 原本该实验到此结束,准备将实验结果反馈给客户:黄酒中γ-氨基丁酸的检测结果为“未检出”。为了保证数据的准确性和可靠性,在黄酒样品中进行加标实验,结果在加标的色谱图中也未在相应的保留时间出峰,而且11.5min左右的色谱峰也没有增大,因此决定先将“未检出”的结果搁置,并对实验方法进行分析。 经过对样品前处理过程和色谱方法的分析,觉得可能造成加标样品中γ-氨基丁酸未检出的原因可能有:(1)保留时间漂移。由于流动相需要调节pH值,同时样品前处理过程中也涉及到酸、碱溶液的使用,怀疑是流动相或者样品pH的改变导致保留时间的漂移,从而未在原有的保留时间出现应有的色谱峰。然而重新配制流动相和前处理样品,加标样品测定结果依然是“未检出”,对比加标和不加标样品的色谱图,两者几乎一样,也没有峰面积或峰高变化明显的色谱峰;(2)衍生试剂失效。丹磺酰氯对光和湿敏感,不稳定,放置时间久了会生产二氯亚砜并继续分解成其他物质,影响其在有机溶剂中的溶解度,也会影响结果。可是为了排除衍生试剂的问题,重新打开一瓶刚购置不久的丹磺酰氯试剂,并重新试验,结果仍然不理想;(3)衍生条件控制不当。之前用相似的方法测定牛磺酸含量以及测定发芽糙米中γ-氨基丁酸含量时曾出现过衍生过程条件控制不当造成衍生不完全或者不能衍生的情况,可是与黄酒样品同一批处理的γ-氨基丁酸标准溶液和发芽糙米样品均能衍生成功,并正常出峰,为何唯独黄酒样品不出峰呢?在百思不得其解之际,看到同事在滴定黄酒中总酸,忽然间若有所悟:黄酒中的γ-氨基丁酸需要在碱性条件下才能与丹磺酰氯发生衍生反应,而黄酒是酸性介质,pH值一般在3~5之间,同时黄酒为酿造产物,对酸碱性具有一定的缓冲能力。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2014/12/201412311336_530572_1669358_3.jpg 通过比较发现:黄酒为酸性样品,缓冲能力较强,按照发芽糙米样品前处理方法直接加入0.5mL 碳酸钠(pH9.8)可能不能达到合适的衍生反应条件,最终导致黄酒样品中γ-氨基丁酸“未检出”。 找到问题后调整实验方案,先将黄酒样品调整至中性,然后再按照发芽糙米样品方法进行前处理。调整实验方案后,黄酒样品中γ-氨基丁酸测定的色谱图如下图。从色谱图中可以发现,经过实验方案的调整黄酒样品中检出了γ-氨基丁酸的存在。http://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2014/12/201412311337_530573_166

  • 测氨基丁酸方法

    [url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Yp][color=#3333ff]液质联用[/color][/url]测氨基丁酸的文献

  • γ-氨基丁酸 (GABA) 的 HPLC 分析

    文献报道采用高效[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/5p][color=#3333ff]液相色谱[/color][/url] (HPLC) 方法测定不同发酵食品中的 γ-氨基丁酸 (GABA) 和谷氨酸 (Glu) 含量。提取最佳溶剂是 75% EtOH 和水,再加上 4% 磺基水杨酸作为后处理。提取的氨基酸在室温下用邻苯二甲醛 (OPA) 衍生 2 分钟,并通过带有荧光检测器 (λex = 340 nm 和 λem = 455 nm) 的 HPLC 分析。与植物和大豆发酵产品相比,动物发酵产品的 GABA 含量更高。将 HPLC 方法获得的结果与分光光度法获得的结果比较,用 HPLC 法测得的所有 GABA 含量都远低于用分光光度法测得的值,这是由于分光光度法使用的着色剂与 GABA 以外的其他氨基酸的非特异性反应干扰测定。因此,食品中的 GABA 含量只能通过 HPLC 来测量。详见https://doi.org/10.1007/s12161-020-01734-2

  • 国标QB/T4587中r-氨基丁酸检测问题

    国标QB/T4587中r-氨基丁酸检测问题

    请教下各位老师,我们用QB/T 4587-2013检测r-氨基丁酸含量,然后遇到下面的问题对照和样品的色谱图会有2个峰,不能确定第一个峰是r-氨基丁酸的峰,还是第二个峰是r-氨基丁酸的峰。有没有哪位老师有做过该方法的,能帮忙解答下。对照品谱图如下:[img=,678,272]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/07/202107221103479791_7924_2022385_3.jpg!w690x517.jpg[/img]进水的谱图如下:[img=,684,207]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/07/202107221112238041_5481_2022385_3.png!w690x213.jpg[/img]进样品空白的谱图如下:[img=,684,215]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/07/202107221139206496_4010_2022385_3.png!w690x213.jpg[/img]进样品的谱图如下:[img=,690,229]https://ng1.17img.cn/bbsfiles/images/2021/07/202107221140208678_3330_2022385_3.png!w690x229.jpg[/img]

  • 关于γ-氨基丁酸测定的问题

    有哪位高人测过γ-氨基丁酸,我查到的标准是QB/T4587-2013,具体操作中,有哪位高人做过,帮忙指导一下,有哪些注意的,谢谢

  • 氨基酸含量测定

    使用ACCQ.TAG 氨基柱检测甘氨酸含量,内标物质α-氨基丁酸拖尾因子比较大(药典标准0.95-1.40),新柱子开始做拖尾因子就1.3多,做三四次后拖尾因子就超标准了,请教各位大神是什么原因?

  • 【原创大赛】VIII因子氨基酸含量测定之:组氨酸与甘氨酸快快分开!

    本人在8月发表的一篇原创中提及”甘氨酸与组氨酸无法分离“的问题,在经过10多天的准备,已有不小的收获,现在分享。摘要 目的: 建立用高效液相色谱法测定人凝血因子VIII中氨基酸含量。方法: 采用6 - 氨基喹啉- N - 羟基琥珀酰亚氨基氨基甲酸酯( AQC) 为衍生剂,与氨基酸柱前衍生后,用Agilent 1200 高效液相色谱仪,AccQ·Tag C18柱( waters 150 mm ×3. 9 mm,4 μm) ,以水Eluent( 醋酸盐- 磷酸盐缓冲液) 稀释液和乙腈进行梯度洗脱,检测波长为248 nm,柱温37 ℃,进样量10μL。结果: 各氨基酸在32 min 内测定完毕,回收率为98.7% ~ 101.5%。RSD 均小于1. 5%。结论: 本法分离度好,快速、简便,可作为产品的质量控制方法。关键词: 6 - 氨基喹啉- N - 羟基琥珀酰亚氨基氨基甲酸酯; 人凝血因子VIII; 甘氨酸; 衍生物; 梯度洗脱; 高效液相色谱法;氨基酸; 含量测定人凝血因子VIII,本品对缺乏人凝血因子礓所致的凝血机能障碍具有纠正作用,主要用于防治甲型血友病和获得性凝血因子Ⅷ缺乏而致的出血症状及这类病人的手术出血治疗。该药物制备过程中使用了氨基酸( 精氨酸、丙氨酸、甘氨酸、组氨酸、盐酸赖氨酸、脯氨酸 等) 做稳定剂,为了保证药品质量和用药安全,应对其中氨基酸的含量进行控制。该法依据过量的6 - 氨基喹啉基- N - 羟基琥珀酰亚氨基氨基甲酸酯( AQC) 在一定条件和氨基酸形成稳定的衍生产物( 柱前衍生) ,用高效液相色谱法测定衍生产物,根据衍生产物的含量计算人凝血因子中各氨基酸的含量。1 仪器和试药1200 高效液相色谱系统( 美国Agilent 公司) ,配置低压四元梯度泵、1314B 紫外吸收检测器、自动进样器、柱温箱、Chemistations 化学工作站; Sartorius CP225D 电子微量天平( 德国Sartorius 公司) ; SartoriusPB - 21 型pH 计( 德国Sartorius 公司) ; LDZ5 -2 低速自动平衡离心机( 上海医用离心机厂) 等。各标准品均来自于中国食品药品检定研究院2 色谱条件及系统适用性试验色谱柱: Waters AccQ·Tag C18色谱柱( 3. 9 mm ×150 mm) ; 流动相: 水为溶剂D,Eluent( 醋酸盐- 磷酸盐缓冲液) 稀释液( A) - 乙腈( B) - 水( D) ,柱温:37 ℃; 检测波长: 248 nm。精密量取对照品溶液与供试品溶液10 μL,分别注入液相色谱仪,记录色谱图32 min。3 溶液制备3. 1 Eluent( 醋酸盐- 磷酸盐缓冲液) 稀释液称取三水乙酸钠190. 4 g,加注射用水1000 mL,搅拌,溶解,用稀磷酸将pH 调至5. 2,加入乙二胺四乙酸二钠溶液( 称取乙二胺四乙酸二钠100 mg,加注射用水100 mL,摇匀使其溶解) 10 mL,加入叠氮化钠0. 1 g 及三乙胺23. 7 mL( 17. 2 g) ,用稀磷酸滴定至pH 4. 95,用0. 45 μm 的滤膜过滤,于4 ℃储存,备用( 此条件下可保存6 个月) 。量取该溶液100 mL,加注射用水稀释至1000 mL,混匀,即得Eluent( 醋酸盐- 磷酸盐缓冲液) 稀释液。3. 2 对照品储备液混合对照品储备液精密称取各氨基酸对照品适量,置同一100 mL量瓶中,以注射用水溶解并定容至刻度。制成含氨基酸含量均含5. 0 mg·mL - 1 的混合对照品溶液,即得。单个对照品储备液: 精密称取各含氨基酸的各对照品适量,分别置100mL 量瓶中,用注射用水溶解并定容至刻度。制成分别含各氨基酸的单个对照品溶液,即得。3. 3 供试品储备液3. 3. 1 加样回收率试验溶液精密称取各氨基酸各0. 3200,0. 4000,0. 4800 g 和辅料适量,加人凝血因子VIII原液7. 5 mL,肝素钠适量,用1. 0 mol·L - 1 盐酸调pH 至6. 9,加0. 01 mol·L - 1枸橼酸三钠溶液溶解并定容于20 mL。分别制备成16. 0, 20. 0, 24. 0 mg·mL - 1溶液。3. 3. 2 空白溶液 按公司处方,加入辅料的混合物,用注射用水制备各空白溶液3. 4 内标溶液精密称取α - 氨基丁酸( AABA)0. 4 g,加注射用水定容至100 mL。4 氨基酸衍生方法4. 1 精密量取供试品储备液、样品及对照品储备液各1. 0 mL,加1. 5%磺基水杨酸9. 0 mL,混匀静置2 h以上, 3000 r·min - 1离心10 min,留取上清液。4. 2 精密量取“4. 1”项下上清液1. 0 mL( 其中对照品储备液对应上清液分别精密量取0. 06, 0. 4,0. 8,1. 0, 1. 2, 1. 6 mL) ,分别置10 mL 量瓶中,用注射用水定容。制备成供试品溶液、样品溶液及浓度分别为1. 5, 10. 0, 20. 0, 25. 0, 30. 0,40. 0 mg·mL - 1 的对照品溶液。4. 3 精密量取“4. 2”项下溶液各100 μL,分别加注射用水0. 4 mL 及内标溶液20 μL,混匀备用。4. 4 精密量取“4. 3”项下溶液30 μL 放入衍生管中,加硼酸缓冲液( pH 8 ~ 10) 210 μL 涡旋混合,并加入AQC 衍生剂60 μL 涡旋混合15 s,即为各供试品溶液,待用。

  • 使用waters的AQC衍生氨基酸的人注意了

    脯氨酸与γ-氨基丁酸采用上述方法时,很难分离,从而对脯氨酸的测定产生一定影响。而γ-氨基丁酸又是人体内常见的神经递质,可由谷氨酸脱羧基生成,故广泛存在。对于来自生物提取物(工艺较滥时),这种情况尤为明显。

  • 【转帖】使用waters的AQC衍生氨基酸的人注意了

    [size=4][color=#000080]  使用waters的AQC衍生氨基酸的人注意了[/color][/size][size=4][color=#000080]  脯氨酸与γ-氨基丁酸采用上述方法时,很难分离,从而对脯氨酸的测定产生一定影响。而γ-氨基丁酸又是人体内常见的神经递质,可由谷氨酸脱羧基生成,故广泛存在。对于来自生物提取物(工艺较滥时),这种情况尤为明显。[/color][/size][size=4][color=#000080]  另外,用大连伊利特的DNFB(2,4-二硝基氟苯)衍生氨基酸,结果脯氨酸和γ-氨基丁酸分离度也不好,大家注意一下。[/color][/size]

  • 【求助】求助正丁酸钠含量检测方法

    有谁做过[url=https://insevent.instrument.com.cn/t/Mp]气相[/url]检测正丁酸钠含量的吗?我查了下熔点是二百五十多度,可气化吗?使用温度,柱型,请老师指导,急需,谢谢!

  • 【求助】氨基酸衍生反应物

    我用液谱检测γ-氨基丁酸,用异硫氰酸苯酯衍生反应,冻干后反应物成块状,不溶解.为什么呢 ?郁闷啊!请大侠指点迷津,不胜感激!

  • 求助:如何测正丁酸

    我们的污水处理,需要用到一种原料:微营养剂。不知道同行的有没有做过微营养剂中正丁酸含量的测定。

  • 【资料】应用近红外技术快速测定饲料原料氨基酸含量

    应用近红外技术快速测定饲料原料氨基酸含量通常,饲料原料的氨基酸含量是通过离子交换(IEC)或高效液相色谱(HPLC)方法测定。这些方法由于费用极其昂贵,而且所需时间很长,用于饲料厂的配方调整和质量控制,不切实际。也可以通过测定饲料原料的干物质和粗蛋白含量,回归预测氨基酸含量(NRC,1998),但是,这种折中的方法推测的饲料原料的氨基酸含量与其实际值差异较大(丁丽敏等,2002),直接用于生产,会造成较大的损失。在实际生产中,饲料厂在制定饲料配方时,饲料原料中所用的氨基酸含量只好参考数据库中推荐的平均值,但推荐的平均值无法反应特定原料氨基酸含量的变异。因此,饲料研究和生产人员一直在寻找一种快速、廉价的测定饲料原料氨基酸含量的方法。 过去人们认为,近红外(Near-Infrared Reflectance Spectroscopy,简称NIRS)技术不适用于测定饲料原料氨基酸含量,因为原料中氨基酸含量过低。但是,近年来,随着近红外分析技术和仪器的发展,通过近红外技术测定的氨基酸结果与传统的测定方法具有了很好的可比性(张维军等,2000)。本文主要对笔者近期应用NIRS方法快速测定饲料原料氨基酸含量方面所取得的经验进行介绍,以使NIRS技术更好的服务于国内饲料行业。[img]http://www.instrument.com.cn/bbs/images/affix.gif[/img][url=http://www.instrument.com.cn/bbs/download.asp?ID=69522]应用近红外技术快速测定饲料原料氨基酸含量[/url]

  • 【原创】应用近红外技术快速测定饲料原料氨基酸含量

    通常,饲料原料的氨基酸含量是通过离子交换(IEC)或高效液相色谱(HPLC)方法测定。这些方法由于费用极其昂贵,而且所需时间很长,用于饲料厂的配方调整和质量控制,不切实际。也可以通过测定饲料原料的干物质和粗蛋白含量,回归预测氨基酸含量(NRC,1998),但是,这种折中的方法推测的饲料原料的氨基酸含量与其实际值差异较大(丁丽敏等,2002),直接用于生产,会造成较大的损失。在实际生产中,饲料厂在制定饲料配方时,饲料原料中所用的氨基酸含量只好参考数据库中推荐的平均值,但推荐的平均值无法反应特定原料氨基酸含量的变异。因此,饲料研究和生产人员一直在寻找一种快速、廉价的测定饲料原料氨基酸含量的方法。 过去人们认为,近红外(Near-Infrared Reflectance Spectroscopy,简称NIRS)技术不适用于测定饲料原料氨基酸含量,因为原料中氨基酸含量过低。但是,近年来,随着近红外分析技术和仪器的发展,通过近红外技术测定的氨基酸结果与传统的测定方法具有了很好的可比性(张维军等,2000)。本文主要对笔者近期应用NIRS 方法快速测定饲料原料氨基酸含量方面所取得的经验进行介绍,以使NIRS技术更好的服务于国内饲料行业。 1 NIRS技术测定饲料原料氨基酸含量的原理和方法 NIRS技术是依据被检测样品中某一化学成分对近红外区光谱的吸收特性而进行定量测定的一种分析方法。应用NIRS方法测定原料氨基酸含量,首先要建立定标方程。定标方程的建立,不仅需要饲料原料的NIRS光谱值,而且需要利用标准方法测定的原料的氨基酸含量。饲料原料NIRS光谱的扫描和氨基酸含量的化学分析值必须是对同一样品进行的。根据所得的光谱值和化学分析值,运用多元回归计算便可得到相应的定标方程。但仅有很少的实验室能够大量的测定这些数据,这也是NIRS在测定原料氨基酸含量方面发展较慢的原因。 每种饲料原料至少需要50个样品才能建立定标方程,而且所取样品必须具有代表性。增加建立定标方程所用的样品数量,能够提高定标方程的准确性和可靠性。德固赛(Degussa)公司拥有全球最大的饲料氨基酸分析实验室,每年分析的饲料样品超过10,000个,为建立NIRS定标方程奠定了坚实的基础,目前,已经对全球16种常用饲料原料的干物质、粗蛋白质和所有必需氨基酸含量建立了定标方程(表1)。新到货的饲料原料,可以对其取样、制样,然后利用NIRS 分析仪对其样品进行扫描获得NIRS 光谱值,并根据相应的定标方程计算,很快就可以获得饲料原料的氨基酸含量。 表1 已经建立定标方程的饲料原料 类别原料名称N 大麦233 玉米328 黑麦273 谷物及其副产品小麦281 麦麸178 高梁205 米糠181 玉米蛋白粉184 菜籽粕171 豆粕341 油籽类葵花粕107 豌豆110 羽扇豆105 鱼粉307 动物副产品羽毛粉247 肉骨粉468 注:N=建立相应饲料原料定标方程的样本数 2 NIRS与色谱法测定的饲料原料氨基酸含量的一致性 NIRS分析结果的有效性,最终还要看其与色谱法测定值的吻合程度(Fontaine等,2001)。图1~3列出了德固赛(Degussa)公司利用NIRS和色谱方法测定的豆粕、肉骨粉和小麦的蛋氨酸以及赖氨酸含量之间的拟合情况。由图以及相应的统计结果可以看出,NIRS方法对饲料原料的氨基酸含量的预测值非常准确和可靠。因此,在实际生产中,可以利用快速、低成本的NIRS 技术代替耗时、昂贵的色谱法测定饲料原料的氨基酸含量。 3 NIRS 技术在饲料生产中的作用 由于利用NIRS技术测定饲料原料氨基酸含量,不仅费用极其低廉,而且所用时间很短,因此获得饲料原料氨基酸含量测定结果的时间主要决定于对原料进行采样和制样的时间。饲料厂可以通过快速、准确的氨基酸含量测定值,评估来自不同产地和供货商的原料,实施真正的质量管理。 3.1 细分饲料原料 饲料厂可以根据氨基酸的测定值,将到厂的饲料原料进行细分。例如,以下几个因素可以作为细分时考虑的因素:品种,种植方法(例如施肥情况),产地,加工条件。将饲料原料细分,能够促使配合饲料厂更准确的优化配方。为了统计分析不同来源、品种或供应商原料的差别,所采集的样品必须具有代表性。而且,每种来源或供应商的样品至少应该有20个。如表2所示,根据粗蛋白质和氨基酸含量的测定值,饲料原料可以分为不同的质量等级。不同质量的饲料原料,应该以不同的价格购买。 表2 根据养分含量对饲料原料(以豆粕为例)的细分表 养分含量(%)所有样品低等质量中等质量高等质量 N=490N=62N=348N=80 粗蛋白(均值)44.8741.6944.8147.58 变异系数4.70 4.632.723.51 赖氨酸(均值)2.7632.5612.7552.961 变异系数4.643.482.511.69 蛋+胱(均值)1.2771.1891.2761.353 变异系数4.693.952.662.89 苏氨酸(均值)1.7321.6081.7291.840 变异系数6.15 4.35 2.89 3.26 注:N=样品数量 如果配合饲料厂以相同的价格购买所有质量级别的饲料原料,那么饲料厂将会为氨基酸含量较低的饲料原料支付过高的价格。因此,当供应商提供的饲料原料氨基酸含量较低时,饲料厂应该调低支付价格或拒绝接货。 3.2 提高配合饲料质量 NIRS技术还能充分保证配合饲料的质量。如果不能及时检测到的饲料原料的养分变异,即使机械设备和混和技术达到最佳,也会严重影响配合饲料的质量。原料氨基酸含量较大的变异,不可避免的需要增加配合饲料的安全系数,从而增加生产成本。在养殖业中,饲料养分的变异,会导致动物生产性能的降低和畜产品质量变异的增加,尤其是像胸肉率和瘦肉率这些敏感指标。畜产品质量的降低或不整齐,会导致其价格的降低。如果饲料原料到货时以及随后能经常性的检测其氨基酸含量,饲料厂则可以根据检测的结果,对配方进行及时调整,从而保证配合饲料的氨基酸含量。 4 NIRS技术推广中存在的问题与对策 NIRS 技术能够降低饲料生产成本,提高饲料产品质量,但是许多饲料厂没有购买NIRS 分析仪器,有些饲料厂虽然拥有自己的NIRS分析仪器,却没有能力建立可靠的氨基酸定标方程,在一定程度上限制了NIRS 技术的推广。针对以上情况,可以采用一些更为灵活的方法,使饲料厂能够在几乎不增加成本的基础上,获得NIRS技术服务。没有购买NIRS分析仪器的饲料厂,可以将采集的饲料原料样品邮寄到相应单位进行测定。而已经购买了NIRS分析仪器却没有能力建立定标方程的饲料厂则可以与建立了NIRS 饲料原料氨基酸含量定标方程的单位合作,获得定标方程的转移和人员的培训服务。定标方程转移的前提条件是软硬件之间的兼容性。另外,这些饲料厂也可以利用自己的NIRS分析仪对饲料原料进行扫描,然后将获得的NIRS光谱值,通过电子邮件传到拥有NIRS定标方程的单位,进行相应的数据处理,便可以获得饲料原料的氨基酸含量值。通过这些方法,饲料厂可以在几乎不增加成本的基础上,利用NIRS技术,在线检测饲料原料的氨基酸含量。通过在线检测饲料原料氨基酸含量,饲料厂可以更有效的监控原料质量和调整配方,生产出优质、低价的配合饲料产品。 综上所述,NIRS技术测定饲料原料氨基酸含量,具有快速、准确、成本低的特点。因此,饲料厂可以利用NIRS技术对主要的饲料原料氨基酸含量进行在线监测,调整配方和采购策略,降低生产成本,提高产品质量。

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