农药残留检验方法系列讲座(43)HPLC测动物组织中苯并咪唑类兽药残留 反相高效
液相色谱法同时测定动物组织中
苯并咪唑类兽药残留量
摘要
本文建立了高灵敏度的苯并咪唑的测定方法,通过对实验条件的优化,采用反相高效
液相色谱法同时测定动物组织中的苯亚砜苯咪唑(oxfendazole)、噻苯咪唑酯(cambendazole)、丙苯咪唑(albendazole)及苯硫达唑(fenbendazole)4种苯并咪唑类兽药残留量。测定方法的相关系数r>0.9999,检出限为0.01mg/kg,,线性范围为0.05-10.0mg/L,精密度为2.1%-7.3%,回收率为74.8%-90.2%。
本文由广州出入境检验检疫局的陈毓芳和广东出入境检验检疫局彭肖颜两位研究人员共同完成的,下面全文介绍如下:
1 前言
苯并咪唑类作为兽药主要用于动物的驱虫药,广泛应用于兽医临床上。对动物源食品中苯并咪唑类兽药残留量检测和监控,已列入《中华人民共和国及动物源食品残留监控计划》,以确保我国动物源食品的安全卫生,保证人民的身体健康,增强我国动物源食品在国际上的竞争力。分析苯并咪唑类残留含量的方法主要是高效
液相色谱法[1-3],用梯度洗脱分离多个组分[1],或等梯度洗脱法分离测定某单一成分[2],用荧光或紫外检测器检测。一般都不同程度地存在萃取、净化等繁琐的样品前处理,被测组分损失较大及梯度洗脱法测定时基线易漂移影响测定结果等缺点。本文采用高压混合泵和二极管阵列检测器(PDA),用等梯度洗脱法成功地分离和测定了4种苯并咪唑残留含量,优化了样品前处理条件,方法简便、快速,检出限低,精密度好,回收率高,结果令人满意,可广泛应用于动物组织中的苯并咪唑类残留含量的检测和监控。
2 实验部分
2.1 仪器与色谱条件
2.1.1 主要仪器
LC-10AD系列高效
液相色谱仪,LC-10AD泵,SIL-10A自动进样器,CTO-10A柱温箱(均为日本岛津公司);Waters 996二极管阵列检测器,WatersMillenium32色谱数据系统;ZYMARK水浴氮气吹干浓缩机。
2.1.2 色谱条件
色谱柱:DiscoveryC18,250×4.6mm,5μm;保护柱:DiscoveryC18,20×4.0mm,5μm。柱温32℃,流动相中甲醇:KH2PO4(0.02mol/L,pH7.0)=65:35,流速1.0mL/min,检测波长294nm及316nm,进样体积20μL。
2.2 试剂与试样
2.2.1 试剂
甲醇为色谱纯,磷酸、磷酸二氢钾为优级纯,水为超纯水,其他试剂均为分析纯。
2.2.2 标准药品
苯亚砜咪唑、噻苯咪唑酯、丙苯咪唑、苯硫达唑为SIGMA公司提供,纯度分别为99.6%、
98.7%、99.5%、99.0%。
2.3 标准溶液
标准贮备液::准确称取10.0mg苯并咪唑的各标准品,分别溶于100mL甲醇中,制得单个的100mg/L的标准贮备液,在4℃下保存,每月新配一次。
中间标准液::取5mL贮备液用50mL甲醇稀释,制得10mg/L单个的中间标准溶液。同时还制备10mg/L的混合标准溶液。在4℃下保存,每半个月新配一次。
标准使用液::取中间标准液配制适当浓度的混合标准使用液,4℃下保存,每周新配一次。
2.4 样品处理及样液制备
将动物组织解冻,准确称取10g置于50mL具塞三角瓶中,按顺序加入1mL4mol/L的碳酸钾溶液、25mL乙酸乙酯,盖上塞子,在旋涡混合器上旋混30s,置于超声波振荡机上振摇20min。以3000r/min高速离心3min,取上清液,通过加有30g无水硫酸钠(已灼烧过)的滤纸过滤到浓缩瓶中。离心后的残渣用同一方法提取两次,提取液一并加入到浓缩瓶中。于55℃水浴中用微缓氮气吹干。加2mL正己烷到吹干的浓缩瓶中溶解残渣,在旋涡混合器上振荡溶解残渣,并将溶液转移到5mL离心管中,再加2mL甲醇-1mol/L磷酸溶液(1:1)到浓缩瓶中,合并溶液到离心管内,充分旋混。以3500r/min的速度离心3min。弃掉上层正己烷,再向浓缩瓶中加入2mL正己烷清洗,洗液加入离心管中重复上述操作至下层溶液澄清。取下层溶液过滤后上机测定。用外标法/峰面积定量。
3 结果与讨论
3.1 色谱条件的选择
3.1.1 流动相
根据仪器条件,利用甲醇和磷酸二氢钾缓冲液,,按不同配比进行了二元等梯度洗脱的研究,结果表明采用甲醇-磷酸二氢钾缓冲液(65+35),4种标准品在14min内均可达到基线分离,分离度R>1.5,峰纯度好和峰形对称。达到柱效高、分离度佳、峰纯度好、色谱峰对称、分析时间尽可能短等要求,选用该系统为最佳流动相体系。
3.1.2 流速
流速影响苯并咪唑标准品的分离。流速过快,色谱峰重叠,且柱压升高,不利于分离;流速过慢,又会延长分离时间,降低分离效率。经试验,选择流速1.0mL/min为宜。
3.1.3 柱温
温度的变化可以引起保留时间的改变。保持恒定的柱温,有利于峰位的重现性。实验证实,柱温选择在32℃时,实验结果重现性好,各标准品的保留时间tR的相对标准偏差为0.39%-0.47%(n=7);分离度R最佳为2.0-9.3。
3.1.4 检测波长
标准光谱图都有两个最大吸收波长(见图1)。220nm附近吸收最大,但因甲醇在短波长吸收较大,故选择294nm作为苯亚砜苯咪唑、丙苯咪唑、苯硫达唑的分析波长,314.5nm作为噻苯咪唑酯的分析波长。
3.1.5 检测器
采用二极管阵列检测器分析效果较佳,如用Waters996二极管阵列检测器,方法检出限为0.01mg/kg,不但可选择双波长进行分析,提高灵敏度,还可通过光谱图来确证可疑峰,增加准确度。
3.2 样品前处理
由于被测定的残留物具有弱碱性,这性质可利用来进行有效的提取和净化。动物组织样品用碳酸钾碱化,再用乙酸乙酯提取,残留物在甲醇-磷酸溶液和己烷之间进行分配,除去油脂。用甲醇-磷酸溶液定容,既可用正己烷除脂,又可使苯并咪唑残留物很好地溶解于甲醇-磷酸溶液层。甲醇在磷酸溶液中几乎不与正己烷互溶,且溶液测定时不会形成负峰,所以待测样液用甲醇-磷酸溶液定容。简化了文献[1]报道的复杂的萃取反萃取过程,提高了回收率。
3.3 标准样品色谱图
图2为标准样品色谱图。各标准品的保留时间为:苯亚砜苯咪唑4.669min,噻苯咪唑酯5.588min、丙苯咪唑10.095min、苯硫达唑13.471min。
3.4 方法的线性范围和检出限
用混合中间标准溶液配制0.05,0.1,0.2,0.5,1.0,2.0,5.0,10.0μg/mL的混合标准液。将不同浓度的标准溶液在上述选定的色谱条件下分别进行测定,进样体积为20μL。以浓度(C)为横坐标,峰面积(A)为纵坐标绘制校准曲线。实验结果表明,各标准品的浓度在0.05-10.0mg/L的范围内,浓度与其峰面积呈良好的线性关系(如图3),线性回归方程分别为:
苯亚砜苯咪唑:A=6.695466×104C-2.099328×102 r=0.99993;
噻苯咪唑酯:A=8.918677×104C+1.156670×103 r=0.99998;
丙苯咪唑:A=5.095955×104C+1.035631×103 r=0.99995;n
苯硫达唑:A=5.922077×104C-4.936883×102 r=0.99995。
各标样的方法检出限为0.01mg/kg(信噪比>2)。
3.5 精密度和准确度
表1为动物肾脏样品中定量分析的实验数据。在空白(未检出)的样品中加入不同量的苯并咪
4 结论
本文研究了反相高效
液相色谱法测定动物体组织中的苯并咪唑类兽药残留量的条件。研究结果表明,以甲醇L缓冲溶液=65L35作流动相,在MN=7.0的条件下,这4种组分可以达到基线分离。根据这4种组分的光谱图,确定其最大检测波长为294及314.5Om(双通道)。该方法线性范围较宽,检出限低,重现性好,精密度高,可同时测定可食性动物组织中的苯亚砜苯咪唑((Oxfendazole)噻苯咪唑酯(cambendazole)丙苯咪唑(albendazole)和苯硫达唑(fenbendazole)4种苯并咪唑类兽药残留量。
参考文献
[1]、中华人民共和国国家进出口商品检验局《食品分析大全》编写组编,食品分析大全[M],第1卷,北京:高等教育出版社,1997,884-886.
[2]、中华人民共和国农业部,兽药及其他化学物质在动物可食性组织中残留检测方法[M],1998,17:1-5,60-63.
[3]、Marti A M, Mooser A E Koch H,.肉样中苯并咪唑的测定方法[j].j.Chromatogr.,1990,498:145-157.