收益了，有没有可以联系的方式有点问题请教

如有需要，可以发邮件联系

请教楼主一个问题：我最近也在分析一个多肽的物质，但是具体结构不适很清楚，只知道分子量大概为2000左右。用磷酸和磷酸二氢钠和乙腈作流动相。分离时调节了很多参数，可是都没有办法将主峰和前面的杂质很好的分离开来。请问，分析多肽时，分离度主要和什么有关系？谢谢了

分离度主要受制于流动相里盐的选择和柱子的好坏，一般尽量不要用无机盐，根据不同情况可以选择三氟乙酸、磷酸三乙胺、醋酸铵等

感谢楼主分享，正想做这方面的检测

谢谢楼主，分享。我现在在做一些多肽的分离。楼主对特别疏水的多肽纯化有什么建议啊。疏水AA 占到序列的70左右。十几个AA的长度。都不出峰，但
质谱是有要的东西的，而且还很好。

对于这种比较疏水的不出峰，主要是溶解以及柱子选择，还要看这条肽的酸碱性，如果不是酸性的，可以考虑先用纯甲酸直接溶解，再用乙腈与水稍微稀释，流动相还用0.1%TFA先试试；酸性的就要考虑用氨水溶解，但PH尽量不要超过8，否则就直接用反相聚合柱，流动相用4g/L醋酸铵，根据需要PH可以往上调。如果这时候C18柱还测不出来，就改用C8或CN柱或反相聚合柱（依次）。注意进样口尽量要用溶解液过一下。如果还不能解决，请留言或者回复到站内邮箱

谢谢楼主分享，我刚开始做多肽LCMS,液相是WATERS,质谱是LCQ,希望可以多向你请教学习

你好，对于20个AA左右的肽，疏水达到70%。乙腈和水做流动相分析没有峰，ms是正确的。有什么好点的解决方法么

应助达人

检测波长是多少，建议试试0.1%TFA-乙腈为流动相试试。